技术领域
本发明涉及荧光定量PCR领域，具体涉及一种检测CYP2C19基因多态性 的试剂盒及方法。
背景技术
CYP2C19基因是一种重要的药物代谢酶，其对药物反应起着关键性的作用， 这是因为CYP2C19基因的活性存在显著的个体差异，表现为遗传多态性，从而 产生血药浓度的个体差异，研究其遗传多态性将为临床确定最佳治疗剂量、制 定合理用药方案、发挥最大疗效、避免和减少不良反应提供指导依据。
在CYP2C19基因中，CYP2C19基因的CYP2C19*2多态性和CYP2C19*3 多态性在我国人群中的分布频率分别为39.9％和6.1％，导致CYP2C19编码的蛋 白质活性丧失，使得药物代谢障碍，引发药物蓄积性中毒，而CYP2C19基因的 CYP2C19*17多态性在我国人群中的分布频率为0.7％，其导致CYP2C19基因编 码的蛋白质活性增加，加速了药物代谢，使得药物在体内代谢过快，降低了药 物的治疗效果，CYP2C19基因多态性具体详见CYP等位基因数据库(http://ww w.cypalleles.ki.se)。
现有技术中一般采用直接测序或定性PCR(Polymerase Chain Reaction，聚 合酶链式反应)检测技术检测CYP2C19基因CYP2C19*2多态性、CYP2C19*3 多态性和CYP2C19*17多态性。
研究发现，采用直接测序或定性PCR技术检测CYP2C19基因CYP2C19*2 多态性、CYP2C19*3多态性和CYP2C19*17多态性，其检测的灵敏度和特异性 均不高，所以，不能准确的检测出CYP2C19基因CYP2C19*2多态性、CYP2C 19*3多态性和CYP2C19*17多态性，。另外，检测时间过长，一般需要48个小 时以上，使该检测的效率降低，因此，为检测CYP2C19基因多态性带来不便。
发明内容
针对现有技术中检测CYP2C19基因CYP2C19*2、CYP2C19*3和CYP2C1 9*17多态性的灵敏度和特异性均不高、而且检测时间长等问题，本发明的目的 在于提供一种检测CYP2C19基因多态性的试剂盒。
本发明的另一目的在于提供一种检测CYP2C19基因多态性的方法。
为了解决现有技术检测CYP2C19基因CYP2C19*2、CYP2C19*3和CYP2 C19*17多态性的灵敏度和特异性均不高、而且检测时间长等问题，本发明采用 了以下技术方案：
一种检测CYP2C19基因多态性的试剂盒，包括检测用引物以及检测用荧光 探针，所述检测用引物以及检测用荧光探针包括：CYP2C19基因CYP2C19*2 多态性的特异性上下游引物及所述CYP2C19基因CYP2C19*2多态性的特异性 Taqman荧光探针、CYP2C19基因CYP2C19*3多态性的特异性上下游引物及所 述CYP2C19基因CYP2C19*3多态性的特异性Taqman荧光探针、和CYP2C19 基因CYP2C19*17多态性的特异性上下游引物及所述CYP2C19基因CYP2C19* 17多态性的特异性Taqman荧光探针中的至少一组，其中：
所述CYP2C19基因CYP2C19*2多态性的特异性上游引物序列如序列表中 SEQ ID NO:1所示；
所述CYP2C19基因CYP2C19*2多态性的特异性下游引物序列如序列表中 SEQ ID NO:2所示；
所述CYP2C19基因CYP2C19*2多态性的特异性Taqman荧光探针的碱基 序列如序列表中SEQ ID NO:3所示；
所述CYP2C19基因CYP2C19*3多态性的特异性上游引物序列如序列表中 SEQ ID NO:4所示；
所述CYP2C19基因CYP2C19*3多态性的特异性下游引物序列如序列表中 SEQ ID NO:5所示；
所述CYP2C19基因CYP2C19*3多态性的特异性Taqman荧光探针的碱基 序列如序列表中SEQ ID NO:6所示；
所述CYP2C19基因CYP2C19*17多态性的特异性上游引物序列如序列表中 SEQ ID NO:7所示；
所述CYP2C19基因CYP2C19*17多态性的特异性下游引物序列如序列表中 SEQ ID NO:8所示；
所述CYP2C19基因CYP2C19*17多态性的特异性Taqman荧光探针的碱基 序列如序列表中SEQ ID NO:9所示。
在上述试剂盒中，作为一种优选实施方式，所述试剂盒还包括内参基因GP ADH、所述内参基因GAPDH的上下游引物及所述内参基因GAPDH的Taqman 荧光探针，其中，
所述内参基因GAPDH的上游引物序列如序列表中SEQ ID NO:10所示；
所述内参基因GAPDH的下游引物序列如序列表中SEQ ID NO:11所示；
所述内参基因GAPDH的Taqman荧光探针的碱基序列如序列表中SEQ ID NO:12所示；
所述内参基因GAPDH的序列如序列表中SEQ ID NO:13所示。
在上述试剂盒中，作为一种优选实施方式，所述CYP2C19基因CYP2C19* 2多态性的特异性Taqman荧光探针、所述CYP2C19基因CYP2C19*3多态性的 特异性Taqman荧光探针、所述CYP2C19基因CYP2C19*17多态性特异性Taq man荧光探针和所述内参基GAPDH的Taqman荧光探针的5’端均连接有荧光报 告基团FAM，3’端均连接有荧光淬灭基团TAMRA-MGB。
在上述试剂盒中，作为一种优选实施方式，所述试剂盒还包括各种荧光定 量PCR反应试剂或者各种荧光定量PCR反应试剂的混合物，优选地，所述各种 荧光定量PCR反应试剂包括PCR预混合液、Mg2+(比如氯化镁)、dNTPs、dU TP、Taq酶、UNG酶和无RNase去离子水。
在上述试剂盒中，作为一种优选实施方式，所述试剂盒还包括内部阳性控 制序列、内部阳性控制序列的上下游引物和Taqman荧光探针，其中：
所述内部阳性控制序列如序列表中SEQ ID NO:14所示；
所述内部阳性控制序列的上游引物如序列表中SEQ ID NO:15所示；
所述内部阳性控制序列的下游引物如序列表中SEQ ID NO:16所示；
所述内部阳性控制序列的Taqman荧光探针的碱基序列如序列表中SEQ ID NO:17所示。更优选地，所述内部阳性控制序列的Taqman荧光探针的5’端连 接有荧光报告基团TET，3’端连接有荧光淬灭基团TAMRA。
在上述试剂盒中，作为一种优选实施方式，所述试剂盒还包括阳性对照和 阴性对照，其中，所述阴性对照为去离子水；所述阳性对照为同时含有所述CY P2C19基因CYP2C19*2多态性、所述CYP2C19基因CYP2C19*3多态性和所述 CYP2C19基因CYP2C19*17多态性的基因组DNA样品。
一种检测CYP2C19基因多态性的方法，采用荧光定量PCR法，包括如下 步骤：
步骤一，提取受检者基因组DNA；
步骤二，以稀释成不同浓度的如序列表中SEQ ID NO:13所示的内参基因 GAPDH标准品为模板，采用如序列表中SEQ ID NO:10所示的上游引物、如序 列表中SEQ ID NO:11所示的下游引物和如序列表中SEQ ID NO:12所示的Ta qman荧光探针进行荧光定量PCR反应以制作内参基因GAPDH标准品的标准曲 线；
步骤三，以步骤一得到的基因组DNA为模板，采用如序列表中SEQ ID N O:1所示的上游引物、如序列表中SEQ ID NO:2所示的下游引物和如序列表中 SEQ ID NO:3所示的Taqman荧光探针，对CYP2C19基因CYP2C19*2多态性 进行荧光定量PCR扩增；以步骤一得到的基因组DNA为模板，采用如序列表 中SEQ ID NO:4所示的上游引物、如序列表中SEQ ID NO:5所示的下游引物 和如序列表中SEQ ID NO:6所示的Taqman荧光探针，对CYP2C19基因CYP2 C19*3多态性进行荧光定量PCR扩增；以步骤一得到的基因组DNA为模板， 采用如序列表中SEQ ID NO:7所示的上游引物、如序列表中SEQ ID NO:8所 示的下游引物和如序列表中SEQ ID NO:9所示的Taqman荧光探针，对CYP2 C19基因CYP2C19*17多态性进行荧光定量PCR扩增；其中所述步骤三中的荧 光定量PCR扩增的反应条件与步骤二的荧光定量PCR反应条件相同；
步骤四，数据收集处理和分析。
在上述方法中，作为一种优选实施方式，在所述步骤二和所述步骤三中， 所述荧光定量PCR反应中均加入了如序列表中SEQ ID NO:14所示的内部阳 性控制序列、如序列表中SEQ ID NO:15所示的内部阳性控制序列的上游引物、 如序列表中SEQ ID NO:16所示的内部阳性控制序列的下游引物以及如序列表 中SEQ ID NO:16所示的内部阳性控制序列的Taqman荧光探针。
在上述方法中，作为一种优选实施方式，在所述步骤二和所述步骤三中， 所述荧光定量PCR反应的条件为：95℃10min预变性，然后95℃15s，60℃ 1min扩增40个循环。更优选地，所述荧光定量PCR的反应液中部分组分及终 浓度如下：1×的PCR预混合液、2.5-4.0mM的Mg2+、0.2-0.4mM的dNTPs、0. 3-0.6mM的dUTP、0.2U/μL的Taq酶、0.01-0.05U/μL的UNG酶。
本发明试剂盒及检测方法的优点和效果如下：
(1)敏感性高：可重复敏感度为0.01％，即10000个细胞中有一个含CYP 2C19基因CYP2C19*2多态性、CYP2C19基因CYP2C19*3多态性或CYP2C19 基因CYP2C19*17多态性就可以被检测出。
(2)特异性强：使用特异性探针对定量分子进行识别，准确性高。同时， 靶序列由引物和探针双重控制，特异性好、假阳性低。
(3)简便安全：操作简单、安全、自动化程度高而且防止污染。扩增和检 测可以在同一管内检测，不需要开盖，不易被污染；同时扩增和检测一步完成， 不需要后期处理，无需要担心放射性污染。
(4)全程监控：本发明实施例提供的试剂盒引入了内部阳性控制质量控制 体系，对检测过程进行全程质量监控，有效避免假阳性或者假阴性。
(5)快速：速度快、高通量，可在3-4小时完成。
本发明的试剂盒及检测方法能快速、准确、定量检测CYP2C19基因CYP2 C19*2多态性、CYP2C19基因CYP2C19*3多态性和CYP2C19基因CYP2C19* 17多态性，有效杜绝了假阳性和假阴性的发生。
附图说明
为了更清楚地说明本发明实施例中的技术方案，下面将对实施例描述中所 需要使用的附图作简单地介绍，显而易见地，下面描述中的附图仅仅是本发明 的一些实施例，对于本领域普通技术人员来讲，在不付出创造性劳动的前提下， 还可以根据这些附图获得其他的附图。
图1是本发明实施例2提供的采用实施例1试剂盒的荧光实时定量PCR反 应体系扩增CYP2C19基因CYP2C19*2多态性阳性的受检者外周血的荧光曲线 图，及内参基因GAPDH标准品扩增的荧光曲线图和内部阳性控制序列标准品 扩增的荧光曲线图，其横坐标为Cycle Number(循环数，个)，其纵坐标为FL UORESCENCE(荧光强度，a.u.)；
图2是本发明实施例2提供的采用实施例1试剂盒的荧光实时定量PCR反 应体系扩增CYP2C19基因CYP2C19*3多态性阳性的受检者外周血的荧光曲线 图，及内参基因GAPDH标准品扩增的荧光曲线图和内部阳性控制序列标准品 扩增的荧光曲线图，其横坐标为Cycle Number(循环数，个)，其纵坐标为FL UORESCENCE(荧光强度，a.u.)。
图3是本发明实施例2提供的采用实施例1试剂盒的荧光实时定量PCR反 应体系扩增CYP2C19基因CYP2C19*17多态性阳性的受检者外周血的荧光曲线 图，及内参基因GAPDH标准品扩增的荧光曲线图和内部阳性控制序列标准品 扩增的荧光曲线图，其横坐标为Cycle Number(循环数，个)，其纵坐标为FL UORESCENCE(荧光强度，a.u.)。
图中：1-CYP2C19*2多态性的阳性扩增曲线、2-GAPDH标准品的扩增曲 线、3-内部阳性控制品扩增曲线、4-CYP2C19*3多态性的阳性扩增曲线、5-CY P2C19*17多态性的阳性扩增曲线。
具体实施方式
为使本发明的目的、技术方案和优点更加清楚，下面结合附图对本发明实 施方式作进一步地详细描述。下面实施例中未注明具体条件的实验方法，通常 为本领域常规方法，如按照常规实验条件如Sambrook等人，分子克隆，实验手 册(第三版)(科学出版社，2002)中所述的条件，或按照试剂制造厂家所建议 的条件。
实施例1.试剂盒的制备
1、内参基因GAPDH以及检测用引物和荧光探针的设计
根据基因序列分别设计对上述各基因序列特异的引物和荧光探针，其中，G APDH基因序列和CYP2C19基因序列来源于美国国家生物技术信息中心核酸数 据库(NCBI)，GAPDH基因ID分别为2597，参考序列号为NG_007073.2，也 可参见本发明序列表中SEQ ID NO:13；CYP2C19基因ID分别为1557，参考 序列号为NG_008384.1。采用Primer5.0引物设计软件分别设计如下引物：CYP 2C19基因CYP2C19*2多态性的特异性上下游引物及所述CYP2C19基因CYP2 C19*2多态性的特异性Taqman荧光探针、CYP2C19基因CYP2C19*3多态性的 特异性上下游引物及所述CYP2C19基因CYP2C19*3多态性的特异性Taqman 荧光探针、CYP2C19基因CYP2C19*17多态性的特异性上下游引物及所述CYP 2C19基因CYP2C19*17多态性的特异性Taqman荧光探针、内参基因GAPDH 的上下游引物及内参基因GAPDH的Taqman荧光探针。
通过上述设计得到：
CYP2C19基因CYP2C19*2多态性的特异性上游引物序列：5’-CCCACTAT CATTGATTATTTCCCA-3’(序列表中SEQ ID NO:1所示)。
CYP2C19基因CYP2C19*2多态性的特异性下游引物序列：5’-ACAAATAC GCAAGCAGTCACA-3’(序列表中SEQ ID NO:2所示)。
CYP2C19基因CYP2C19*2多态性的特异性Taqman荧光探针：FAM 5’-AT GGAAAGTGATATTTTGG-3’TAMRA-MGB(序列表中SEQ ID NO:3所示)。
CYP2C19基因CYP2C19*3多态性的特异性上游引物序列：5’-CAGGATTG TAAGCACCCCCTA-3’(序列表中SEQ ID NO:4所示)。
CYP2C19基因CYP2C19*3多态性的特异性下游引物序列：5’-CAGGGAG CTAATGGGCTTAGA-3’(序列表中SEQ ID NO:5所示)。
CYP2C19基因CYP2C19*3多态性的特异性Taqman荧光探针：FAM 5’-A GTCTTGCCTAGACAGC-3’TAMRA-MGB(序列表中SEQ ID NO:6所示)。
CYP2C19基因CYP2C19*17多态性的特异性上游引物序列：5’-AATTTGT GTCTTCTGTTCTCAAAGT-3’(序列表中SEQ ID NO:7)。
CYP2C19基因CYP2C19*17多态性的特异性下游引物序列：5’-AAAAGGG AGACCCTGGGAGA-3’(序列表中SEQ ID NO:8)。
CYP2C19基因CYP2C19*17多态性的特异性Taqman荧光探针：FAM 5’- CTCAGCTCAAATCC-3’TAMRA-MGB(序列表中SEQ ID NO:9)。
内参基因GAPDH的上游引物序列：5’-CCTTTTGCAGACCACAGTCCAT-3’ (序列表中SEQ ID NO:10所示)。
内参基因GAPDH的下游引物序列：5’-GGCCATGCCAGTGAGCTT-3’(序 列表中SEQ ID NO:11所示)。
内参基因GAPDH的Taqman荧光探针：FAM 5’-CCATCACTGCCACCC-3’ TAMRA-MGB(序列表中SEQ ID NO:12所示)。
对于上述四个Taqman荧光探针，均采用添加荧光染料的方法分别在5’端标 记了FAM，3’端标记了TAMRA-MGB。
2、内部阳性控制序列及其引物和探针的设计
该内部阳性控制序列为人工合成序列，包含CYP2C19基因部分序列和一部 分人工合成序列，如序列表中SEQ ID NO:14所示。
采用Primer5.0引物设计软件并按照上述引物和探针设计原则设计出上述内 部阳性控制序列的上下游引物分别为：5’-CGTATTGCACTCACTCAGAG-3’(如 序列表中SEQ ID NO:15所示)、5’-ACAACAGCGTAAGATGATCACTATC-3’ (如序列表中SEQ ID NO:16所示)，内部阳性控制序列的Taqman荧光探针为： TET 5’-AATAAGTCCTCTACTATATTAGC-3’TAMRA(序列表中序列17)。对 于该Taqman荧光探针，采用添加荧光染料的方法在5’端标记了TET，3’端标记 了TAMRA。
3、试剂盒的组成及制备
本发明试剂盒组成如下：
①基因组DNA提取试剂：该提取试剂为本领域常用试剂，本实施例采用组 织基因组DNA提取试剂盒(Qiagen公司，货号：69504)中的试剂。
②引物、探针：上述CYP2C19基因CYP2C19*2多态性的特异性上下游引 物、上述CYP2C19基因CYP2C19*2多态性的特异性Taqman荧光探针、上述C YP2C19基因CYP2C19*3多态性的特异性上下游引物、上述CYP2C19基因CY P2C19*3多态性的特异性Taqman荧光探针、上述CYP2C19基因CYP2C19*17 多态性的特异性上下游引物、上述CYP2C19基因CYP2C19*17多态性的特异性 Taqman荧光探针、上述内部阳性控制序列的上下游引物、上述内部阳性控制序 列的Taqman荧光探针、上述内参基因GAPDH的上下游引物以及上述内参基因 GAPDH的Taqman荧光探针。
③上述内参基因GAPDH和内部阳性控制序列标准品。
上述引物序列、内部控制序列、内参基因GAPDH序列和上述各Taqman荧 光探针序列均由上海生工生物工程技术服务有限公司合成。
④阴性对照和阳性对照：以去离子水为阴性对照，以含有CYP2C19*2基因 多态性、CYP2C19*3基因多态性和CYP2C19*17基因多态性的基因组DNA样 品为阳性对照；
阳性对照的制备方法：采用组织基因组DNA提取试剂盒(Qiagen公司，货 号：69504)快速提取已经确诊的含有CYP2C19*2基因多态性、CYP2C19*3基 因多态性以及CYP2C19*17基因多态性的0.5ml受检者外周血基因组DNA，作 为阳性对照。
⑤各种荧光定量PCR反应试剂：PCR预混合液，本实施例中选用2×PCR Premix(Qiagen公司，产品货号：210212)；Mg2+(本实例选用氯化镁)、dN TPs、dUTP、Taq酶、UNG酶和无RNase去离子水。
实施例2.用实施例1的试剂盒检测CYP2C19基因多态性
以随机检测30例受检者外周血标本结果为例。
用本发明的试剂盒检测某一受检者的CYP2C19*2基因多态性、CYP2C19* 3基因多态性和CYP2C19*17基因多态性的检测流程为：首先获取临床受检者外 周血样本，快速提取基因组DNA；其次，先配制内参基因GAPDH和内部阳性 控制序列的荧光定量PCR反应液，将内部阳性控制序列标准品和内参基因GAP DH标准品分别稀释至拷贝数/mL为1.0x103、1.0x104、1.0x105和1.0x106，分别 制作内部阳性控制序列标准品的标准曲线和内参基因GAPDH标准品的标准曲 线；接下来再配制CYP2C19*2基因多态性、CYP2C19*3基因多态性和CYP2C 19*17基因多态性的荧光定量PCR反应液，进行荧光定量PCR检测样品，在荧 光定量PCR仪数据分析系统中读出CT值结果。PCR扩增结束后，先分析各待 检测样品的荧光定量PCR反应中内部阳性控制序列的扩增结果，如果其Ct值 小于33，提示整个检测过程有效；如果其Ct值大于35，提示检测失败，则需 要重新进行检测；如果其Ct值位于33～35之间，需要重复检测。当内部阳性控 制序列Ct值小于33时，将实时荧光定量PCR所得数据进行计算即分别计算如 图1所示的CYP2C19*2基因多态性、如图2所示的CYP2C19*3基因多态性、 如图3所示的CYP2C19*17基因多态性及内参基因GAPDH的Ct值，两者之差 即为ΔCt值。最后，荧光定量PCR结果采用软件分析，并标化计算样本数据。
各受检者的CYP2C19基因多态性的具体检测步骤如下：
①受检者外周血基因组DNA的抽提：采用实施例1试剂盒中的基因组DN A提取试剂按DNA抽提纯化的方法快速提取0.5ml受检者外周血基因组DNA。
②将上述提取的受检者外周血基因组DNA经琼脂糖凝胶电泳鉴定其完整 性，通过紫外分光光度计测定260nm与280nm光密度值计算DNA的纯度与浓 度，用无菌去离子水调节抽提的DNA至相同浓度，置冰箱-20℃保存。
③将实施例1试剂盒中的内部阳性控制序列标准品和内参基因GAPDH标 准品分别稀释至拷贝数/mL为1.0x103、1.0x104、1.0x105和1.0x106，按以下荧光 定量PCR反应体系进行反应以分别制作内部阳性控制序列标准品的标准曲线和 内参基因GAPDH标准品的标准曲线。
稀释成不同浓度的内参基因GAPDH的荧光定量PCR扩增：
各PCR反应体系为20μL，该反应体系中各组分及其终浓度为：1×PCR混 合液(Qiagen公司，产品货号：210212，2×PCR Premix，10.0μL)，3mM的M g2+、0.3mM的dNTPs、0.5mM的dUTP、0.2U/μL的Taq酶、0.04U/μL的UN G酶，内参基因GAPDH的上、下游引物的终浓度均为0.2μmol/L，内参基因G APDH的Taqman荧光探针的终浓度为0.2μmol/L；另外，各稀释梯度的内参基 因GAPDH标准品用量为1.0μL，其余为无RNase去离子水。
稀释成不同浓度的内部阳性控制序列的荧光定量PCR扩增：
各PCR反应体系为20μL，该反应体系中各组分及其终浓度为：1×PCR混 合液(Qiagen公司，产品货号：210212，2×PCR Premix，10.0μL)，3mM的M g2+、0.3mM的dNTPs、0.5mM的dUTP、0.2U/μL的Taq酶、0.04U/μL的UN G酶，内部阳性控制序列的上、下游引物的终浓度均为0.25pmol/μL，内部阳性 控制序列的Taqman荧光探针的终浓度为0.3pmol/μL；另外，各稀释梯度的内部 阳性控制序列标准品用量为1.0μL，其余为无RNase去离子水。
将上述各PCR反应体系置于lightcycler荧光定量PCR仪上进行荧光定量P CR：先经过50℃10s、95℃10min预变性，然后95℃15s，60℃1min扩增 40个循环，扩增过程中仪器自动收集荧光信号。
④CYP2C19*2基因多态性荧光定量PCR扩增：
PCR反应体系为20μL，该反应体系中各组分及终浓度为：1×PCR预混合液 (Qiagen公司，产品货号：210212，2×PCR Premix，10.0μL)，3mM的Mg2+0.3mM的dNTPs和0.5mM的dUTP、0.2U/μL的Taq酶和0.04U/μL的UNG 酶，CYP2C19*2基因多态性特异性上、下游引物终浓度均为0.2μmol/L，CYP2 C19*2基因多态性特异性Taqman荧光探针终浓度为0.3μmol/L，同时加入内部 阳性控制序列上、下游引物的终浓度均为0.2μmol/L，内部阳性控制序列的Ta qman荧光探针的终浓度为0.3μmol/L，内部阳性控制序列的终浓度为0.2μmol/L； 另外，被提取的受检者外周血基因组DNA的用量为2.0μL，其余为无RNase去 离子水。
将上述PCR反应体系置于lightcycler荧光定量PCR仪上进行反应，扩增条 件：先经过50℃10s，95℃10min预变性，然后95℃15s，60℃1min扩增40 个循环，扩增过程中仪器自动收集荧光信号。
⑤CYP2C19*3基因多态性荧光定量PCR扩增：
PCR反应体系为20μL，该反应体系中各组分及终浓度为：1×PCR预混合 液(Qiagen公司，产品货号：210212，2×PCR Premix，10.0μL)，3mM的Mg 2+、0.3mM的dNTPs和0.5mM的dUTP、0.2U/μL的Taq酶和0.04U/μL的UNG 酶，CYP2C19*3基因多态性特异性上、下游引物终浓度均为0.2μmol/L，CYP2 C19*3基因多态性特异性Taqman荧光探针终浓度为0.3μmol/L，同时加入内部 阳性控制序列上、下游引物的终浓度均为0.2μmol/L，内部阳性控制序列的Ta qman荧光探针的终浓度为0.3μmol/L，内部阳性控制序列的终浓度为0.2μmol/L； 另外，被提取的受检者外周血基因组DNA的用量为2.0μL，其余为无RNase去 离子水。
将上述PCR反应体系置于lightcycler荧光定量PCR仪上进行反应：，扩增 条件：先经过50℃10s，95℃10min预变性，然后95℃15s，60℃1min扩增 40个循环，扩增过程中仪器自动收集荧光信号。
⑥CYP2C19*17基因多态性荧光定量PCR扩增
PCR反应体系为20μL，该反应体系中各组分及终浓度为：1×PCR预混合液 (Qiagen公司，产品货号：210212，2×PCR Premix，10.0μL)，3mM的Mg2+、 0.3mM的dNTPs和0.5mM的dUTP、0.2U/μL的Taq酶和0.04U/μL的UNG酶， CYP2C19*17基因多态性特异性上、下游引物的终浓度均为0.2μmol/L，CYP2 C19*17基因多态性的特异性Taqman荧光探针终浓度为0.3μmol/L，同时加入内 部阳性控制序列上、下游引物的终浓度均为0.2μmol/L，内部阳性控制序列的T aqman荧光探针的终浓度为0.3μmol/L，内部阳性控制序列的终浓度为0.2μmol/ L；另外，被提取的受检者外周血基因组DNA的用量为2.0μL，其余为无RNas e去离子水。
将上述PCR反应体系置于lightcycler荧光定量PCR仪上进行反应，扩增条 件：先经过50℃10s，95℃10min预变性，然后95℃15s，60℃1min扩增40 个循环，扩增过程中仪器自动收集荧光信号。
在CYP2C19*2、CYP2C19*3、CYP2C19*17基因多态性的荧光定量PCR扩 增的同时设置阴性对照和阳性对照，阳性对照、阴性对照荧光定量PCR扩增的 反应体系均为20μL，该反应体系中各组分及终浓度为：1×PCR混合液(Qiagen 公司，产品货号：210212，2×PCR Premix，10.0μL)，3mM的Mg2+、0.3mM 的dNTPs和0.5mM的dUTP、0.2U/μL的Taq酶和0.04U/μL的UNG酶，CYP2 C19*2基因多态性、CYP2C19*3基因多态性和CYP2C19*17基因多态性的特异 性上、下游引物的终浓度均为0.2μmol/L，CYP2C19*2基因多态性、CYP2C19* 3基因多态性和CYP2C19*17基因多态性的特异性Taqman荧光探针的终浓度均 为0.3μmol/L；另外，阳性对照的基因组DNA样品用量为1.0μL或者阴性对照 去离子水用量为1.0μL，其余为无RNase去离子水。
将该阴性对照和阳性对照也置于lightcycler荧光定量PCR仪上反应：扩增 条件为：先经过50℃10s，95℃10min预变性，然后95℃15s，60℃1min 扩增40个循环，扩增过程中仪器自动收集荧光信号。
⑦数据收集处理和分析：PCR扩增结束后，首先分析各反应体系中的内部 阳性控制序列扩增结果，如果其Ct值小于33，提示整个检测过程有效，如果 其Ct值大于35，则需要重新进行检测。当内部阳性控制序列Ct值小于33时， 将实时荧光定量PCR所得数据进行计算，得出CYP2C19*2基因多态性、CYP2 C19*3基因多态性或CYP2C19*17基因多态性相对于内参基因GAPDH的相对 表达量后再进行统计分析，以比值大于或等于0.0001为阳性表达，小于0.0001 为阴性表达，具体参见表1。
表1为荧光定量PCR分析CYP2C19*2基因多态性、CYP2C19*3基因多态性或 CYP2C19*17基因多态性在受检者外周血标本中的表达数据
表1中CYP2C19基因多态性模板和内参基因GAPDH模板中的数值均表示 荧光累计值。
本发明试剂盒检测能力评价：
以定性PCR作为本发明的比较检测方法，同时对上述30例受检者外周血标 本进行检测，对于定性PCR检测为阳性的14位受检者而言，本发明的方法检测 也为阳性，但是对于定性PCR检测为阴性的16位受检者而言，本发明的方法检 测结果则为其中两位受检者为阳性。因此，比较结果显示，本发明试剂盒采用 定量PCR发进检测的敏感性、特异性及灵敏度较定性PCR更为精确，完全符合 目前临床实用要求(具体参见表2)：
表2为两种不同方法检测受检者外周血中CYP2C19基因多态性的比较
由上表可知，通过定性PCR法检验荧光定量法，定性PCR法作为参照，本 发明的定量PCR法检测到16例阳性和14例阴性，而定性PCR法同时检测到1 4例阳性和16例阴性，由此得出，采用定性PCR法检测的阳性预测值为85.7％； 采用本发明的试剂盒检测的阳性预测值为100％。
其中：
①特异性：100％；
②阳性预测值：阳性预测值达到100％；
③阴性预测值：阴性预测值达到100％；
④重复性：多次重复实验结果一致；
⑤耗时：本发明检测一份临床标本的检测时间约为4h，而采用定性PCR 法一份临床标本的检测时间约为72h。
上述实验可以说明，本发明提供的试剂盒的敏感性及特异性均较高，本发明 提供的试剂盒采用人工设计与合成的内部阳性控制序列，监测受检者外周血CY P2C19*2基因多态性和CYP2C19*3基因多态性和CYP2C19*17基因多态性实时 荧光定量PCR检测的整个过程，能有效地解决目前受检者外周血中CYP2C19* 2基因多态性和CYP2C19*3基因多态性和CYP2C19*17基因多态性实时荧光定 量PCR检测过程中的假阳性、假阴性问题，使得检测结果更可靠，其检测结果 的特异性和敏感度均显著提高。
以上所述仅为本发明的较佳实施例，并不用以限制本发明，凡在本发明的 精神和原则之内，所作的任何修改、等同替换、改进等，均应包含在本发明的 保护范围之内。