技术领域
本发明属于生物技术，特别是涉及PML基因和RARA基因检测探针及其制 备方法和试剂盒。
背景技术
急性早幼粒细胞白血病(Acutepromyelocyteleukemia，APL)是一类非淋 巴细胞白血病，临床表现凶险，起病及治疗过程中容易发现出血和栓塞而引起 死亡，但对诱导分化治疗反应表现好。98％以上APL有着特异的基因表型，表 现为t(15；17)(q22；q21)相互易位，易位形成的PML/RARα融合基因表达蛋白显性 负抑制作用抑制早幼粒细胞分化成熟，使细胞阻断在早幼粒阶段，抑制其分化。 近二十年来，全反式维甲酸(ATRA)及砷剂的临床应用使APL成为可以治愈 的白血病之一。
检测PML/RARα融合基因是诊断APL最特异、敏感的方法之一，也是APL 治疗方案选择、疗效分析、预后分析和复发预测最可靠的指标。通过细胞遗传 学方法(染色体和荧光原位杂交法)检测t(15；17)阳性即可诊断APL。
目前常用的检测方法中，染色体分析需要进行外周血培养，耗时长，过程复 杂，检测结果判断对经验要求高；分子生物学(如PCR方法)直接进行RNA 融合基因检测，检测灵敏度高，但只能检测已知融合类型；而FISH方法操作简 单，可以检测90％的典型易位和约5％的不典型易位，报告速度快，有利于快速 靶向治疗。
荧光原位杂交(FluorescenceinsituhybridizationFISH)是20世纪80年 代末期在原有的放射性原位杂交技术的基础上发展起来的一种非放射性原位杂 交技术。目前这项技术已经广泛应用于动植物基因组结构研究、染色体精细结 构变异分析、病毒感染分析、人类产前诊断、肿瘤遗传学和基因组进化研究待 许多领域。FISH的基本原理是用已知的标记核酸为探针，按照碱基互补的原则， 与待检材料中未知的单链核酸进行异性结合，形成可被检测的杂交双链核酸。 由于DNA分子在染色体上是沿着染色体纵轴呈线性排列，因而可以探针直接与 染色体进行杂交从而将特定的基因在染色体上定位。与传统的放射性标记原位 杂交相比，荧光原位杂交具有快速、检测信号强、杂交特异性高和可以多重染 色等特点，因此在分子细胞遗传学领域受到普遍关注。
杂交所用的探针大致可以分类三类：1)染色体特异重复序列探针，例如α 卫星、卫星III类的探针，其杂交靶位常大于1Mb，不含散在重复序列，与靶位 结合紧密，杂交信号强，易于检测；2)全染色体或染色体区域特异性探针，其 由一条染色体或染色体上某一区段上极端不同的核苷酸片段所组成，可由克隆 到噬菌体和质粒中的染色体特异大片段获得；3)特异性位置探针，由一个或几 个克隆序列组成。
探针的荧光素标记可以采用直接和间接标记的方法。间接标记是采用生物 素标记DNA探针，杂交之后用藕联有荧光素亲和素或者链霉亲和素进行检测， 同时还可以利用亲和素-生物素-荧光素复合物，将荧光信号进行放大，从而可以 检测500bp左右的片段。而直接标记法是将荧光素直接与探针核苷酸或磷酸戊 糖骨架共价结合，或在缺口平移法标记探针时将荧光素核苷三磷酸掺入。直接 标记法在检测时步骤简单，临床使用方便。
而目前对于PML/RARA基因FISH检测，还缺少特异性高的检测试剂盒。
发明内容
本发明的目的之一是提供一种PML基因和RARA基因检测探针及其制备方 法，所制备的探针可用于检测PML基因和RARA基因状态，即检测PML基因和 RARA基因检测，实现细胞和染色体中直接观察信号，具有很好的特异性。
实现上述目的的技术方案如下。
一种PML基因和RARA基因检测探针的制备方法，包括以下步骤：
(4)选取针对PML基因的BAC克隆为RP11-832J18、CTD-2529B11、 RP11-756N20和RP11-1031J4中至少一种，和选取针对RARA基因的BAC克 隆为CTD-2360L10、RP11-737D6、CTD-3087O22、RP11-48O10和CTD-2134K5 中至少一种；
(5)对克隆分别提取质粒，得到质粒DNA，定量；
(6)用荧光素标记质粒DNA，针对同一种基因的质粒DNA所标记的荧光素相 同，针对PML基因和针对RARA基因的检测探针标记的荧光素的颜色不相同， 即得。
在其中一个实施例中，所述PML探针的BAC克隆为RP11-832J18、 CTD-2529B11、RP11-756N20和RP11-1031J4。
在其中一个实施例中，所述RARA探针的BAC克隆为CTD-2360L10、 RP11-737D6、CTD-3087O22、RP11-48O10和CTD-2134K5。
在其中一个实施例中，标记荧光素选择本领域已知的荧光染料，优选地，荧光素为AlexaFITC、AlexaRhodamine、TexasRed、pacificDEAC。
在其中一个实施例中，基因探针的标记可以采用现有技术中的方法将相应 荧光素标记至双链核酸上，所述方法包括但不限于：随机引物法、切口平移等， 标记基因探针可以使用市售的缺口平移标记试剂盒和随机引物标记试剂盒，优 选abbott和Roche公司的NickTranslationKit。本发明步骤(3)优选采用随机引物 法、切口平移法对质粒DNA进行荧光素标记。
在其中一个实施例中，所述标记的温度为15℃-18℃，标记的时间为8-12小 时。
本发明的另一目的是提供一种PML基因和RARA基因检测试剂盒。
实现该目的技术方案如下。
一种PML基因和RARA基因检测试剂盒，包括有上述PML基因和RARA基因 检测探针。
在其中一个实施例中，还包括有用于封闭重复序列的COTHumanDNA，和 DAPI复染剂。
本发明具有以下有益效果：
(1)本发明通过筛选到最优的PML/RARA融合基因检测探针及其组合， 采用FISH(FluorescenceIn-SituHybridization)方法对PML/RARA融合基 因检测，信号计数行准确、快速，且结果的重复性好；补充了临床中 PML/RARA融合检测依赖进口的不足，有利于筛选更多受益于靶向药物 的患者，提高急性早幼粒细胞白血病患者生存率和总生存期。
(2)本发明优选克隆检测特异性好，灵敏度高。通过对大片段重排的直观检 测，不易遗漏复杂变异类型，对未知融合类型也有很好的鉴别性。
(3)通过本发明所述的检测急性早幼粒细胞白血病PML/RARA融合试剂 盒，从基因水平了解PML/RARA融合状态改变，多种信号类型表现出实 体组织的肿瘤细胞遗传多样性，可以实现在肿瘤生物学、细胞遗传学等 领域的应用，有助综合评价各分子标志物，辅助临床靶向治疗用药及治 疗方案选择。
附图说明
图1A为是实施例1中PML基因检测探针序列的示意图。
图1B为是实施例1中RARA基因检测探针序列的示意图。
图2为实施例1中人外周血培养细胞片PML基因和RARA基因检测探针FISH 检测结果图。
图3为实施例4中临床骨髓样本FISH检测结果图，其中，检测信号类型为2R2G， PML/RARA融合基因检测阴性。
图4为实施例4中临床骨髓样本FISH检测结果图，其中，检测信号类型为 1R1G2F，PML/RARA融合基因检测阳性。
具体实施方式
为了便于理解本发明，下面将对本发明进行更全面的描述。本发明可以以 许多不同的形式来实现，并不限于本文所描述的实施例。相反地，提供这些实 施例的目的是使对本发明的公开内容的理解更加透彻全面。
下列实施例中未注明具体条件的实验方法，通常按照常规条件，例如 Sambrook等人，分子克隆：实验室手册(NewYork:ColdSpringHarborLaboratory Press,1989)中所述的条件，或按照制造厂商所建议的条件。实施例中所用到的 各种常用化学试剂，均为市售产品。
除非另有定义，本发明所使用的所有的技术和科学术语与属于本发明的技 术领域的技术人员通常理解的含义相同。本发明的说明书中所使用的术语只是 为了描述具体的实施例的目的，不用于限制本发明。本发明所使用的术语“和/ 或”包括一个或多个相关的所列项目的任意的和所有的组合。
实施例1PML基因和RARA基因检测探针的制备
本实施所述PML/RARA检测探针的制备方法，包括以下步骤： 挑选包含目的基因PML和RARA及两端序列的克隆，如图1和2所示。 GSPPML包括第一探针、第二探针、第三探针和第四探针，具体如下表，其购 买于InvitrogenRP11BAC及CTDBAC克隆库。 GSPRARA包括第一探针、第二探针、第三探针、第四探针和第五探针，具体 如下表，其购买于InvitrogenRP11BAC及CTDBAC克隆库。
以下分两组检测探针分别制备。
PML
BAC 插入片段起止位置 第一探针 RP11-832J18 chr15:73959323..74146088(187Kb) 第二探针 CTD-2529B11 chr15:74131135..74319424(188Kb) 第三探针 RP11-756N20 chr15:74317575..74414109(96Kb) 第四探针 RP11-1031J4 chr15:74406169..74624743(219Kb)
RARA
BAC 插入片段起止位置 第一探针 CTD-2360L10 chr17:38151217..38256149(105Kb) 第二探针 RP11-737D6 chr17:38257741..38440899(183Kb) 第三探针 CTD-3087O22 chr17:38430841..38564776(134Kb) 第四探针 RP11-48O10 chr17:38564771..38724970(160Kb) 第五探针 CTD-2134K5 chr17:38716958..38834072(117Kb)
(2)基因探针的制备：使用Qiagen公司的PlasmidMaxiKit，按照说明书 要求的操作方法对不同BAC克隆分别进行超低拷贝质粒DNA提取，通过测定 260nm和280nm处的吸光度对质粒DNA定量；采用高压灭菌的超纯水稀释为 200ng/ul,采用1.5ml的离心管分装，最后分别将得到针对PML基因或RARA基因的 4种或5种质粒DNA混合，-20℃密封保存。
(3)通过切口平移方法对质粒DNA混合物进行荧光标记，针对RARA基因 的每种探针标记的荧光素为Spectrum-Orange，针对PML基因的每种探针标记的 荧光素为Spectrum-GreendUTP。采用abbott的NickTranslationKit，按如下方案， 严格避光条件下在冰上配制PCR反应体系。
配完后震荡混匀，在16℃标记12小时，再80℃孵育10分钟灭活酶。取5ul使 用2％琼脂糖凝胶做电泳，要求在300bp左右存在弥散的带。
对标记产物进行乙醇沉淀和浓缩，按如下方案在1.5ml离心管中依次加入醋 酸钠和无水乙醇，避光、冰上配制：
标记产物45ul
醋酸钠(3mol/L)5ul
无水乙醇125ul
混匀后置于-70℃冰箱中至少2小时，4℃13000rpm离心30分钟，小心去上 清，勿搅动沉淀，加入1ml的70％乙醇，4℃13000转/分钟离心15分钟，小心去上 清，勿搅动沉淀，避光干燥。使用1ul纯化水溶解沉淀，获得GSPPML和GSP RARA基因探针，避光、-20℃储存。
4.GSPPML和GSPRARA基因探针验证：使用PML探针+RARA探针制备的 杂交液，使用人类正常分裂中期淋巴细胞滴片进行探针验证(检测方法参考实 施例3)。包含中期或间期染色体DNA,荧光原位杂交时，染色体DNA表现为形 态上可识别的染色体或是细胞核。如图3所示：中期染色体的FISH杂交结果图。 图中可以看见染色体相应位置显示红色荧光和绿色荧光信号。GSPPML探针显 示绿色信号；GSPRARA探针为红色信号。
实施例2：PML和RARA基因检测试剂盒制备方法
PML和RARA基因检测试剂盒包括有PML和RARA杂交液和DAPI复染剂两 个组分，其中PML和RARA杂交液包含实施例1所述的GSPPML和GSPRARA基 因探针、用于杂交环境(促进杂交)的缓冲液组分、封闭重复序列的COTHuman DNA等。DAPI复染剂主要用于杂交后的细胞复染，其中的DAPI会与DNA结合， 使得细胞核显示出蓝色荧光，含有对苯二胺的复染剂可以保持荧光的稳定。
具体配方如下：
杂交液配制
a.DAPI复染剂配制
10mg的对苯二胺溶于1ml的PBS中，调节pH为9.0，加入9ml甘油，反复震荡 混匀，-20℃储存。取2.5μl的DAPI溶液(0.1mg/ml)溶于1ml抗褪色液中，避光 条件下反复震荡混匀，-20℃避光密闭保存。
b.成品组装
组分名称 规格/10test 数量 杂交液 100μl/管 1管 DAPI复染剂 100μl/管 1管 说明书 1份
实施例3：PML/RARA基因检测试剂盒的检测方法
1、样品处理
1.1取外周血或骨髓2～3ml(肝素钠抗凝)2000rpm离心5min，小心去上清。
1.2加入10ml的低渗液(0.075mol/LKCl),吹打混匀，静置3min。
1.337±1℃水浴箱低渗30min。
1.4加新鲜固定液1ml，吹打混匀，室温预固定10min。
1.5吹打混匀，2000rpm离心5min。
1.6去上清，沉淀加新鲜固定液5～10ml，吹打混匀，室温静置10min。
1.72000rpm离心5min，去上清。
1.8可重复以上洗涤步骤，直至细胞沉淀洗白洗干净(此步骤不需室温静置 10min)。
2、制片
2.1取一张干净的载玻片；
2.2重悬细胞后取3μl悬液滴加到载玻片上；
2.3室温下晾干；
2.4用10×物镜在相差显微镜下观察细胞密度，要求细胞无重叠，且单视野细 胞数量在100～200个为宜。
a)如果细胞密度及数目合适，继续步骤3；
b)如果细胞有重叠，则加入适量新鲜固定液稀释细胞悬液，混匀后另取3μl 悬液制片，
c)如果细胞密度低，则2000rpm离心5min，小心吸去适量上清液，混匀后 另取3μl悬液制片，晾干，观察；
2.5在相差显微镜下观察，如果细胞碎片太多，则需要做预处理并且选择合适的 杂交区域；
注意:每个病例至少需要多制一张片，细胞滴片可置于放有无水乙醇的密闭容 器中，在-20±5℃可以保存一年。剩余的细胞悬液可以在2～8℃保存一个月， 以便必要时重新制片。
3、玻片预处理
3.1将滴好的玻片置于室温2×SSC(PH7.0)溶液中浸泡2min；
3.2依次在室温70％，90％，100％的乙醇中浸泡2min脱水；然后取出玻片，室 温晾干。
4、样品和探针同时变性
4.1从-20℃冰箱中取出杂交液，震荡混匀，瞬时离心；
4.2加10μl的杂交液到杂交区域，迅速盖上18×18mm盖玻片，轻压使杂交液均 匀分布，避免产生气泡；
4.3用橡皮胶沿盖玻片边缘封片，完全覆盖盖玻片和载玻片接触的部位；
4.4将玻片放入杂交仪中，湿润原位杂交仪湿度条，插入湿条，盖上杂交仪上盖， 设置“Denat&Hyb”程序，变性78℃2分钟，杂交37℃10～18小时(若无杂交仪， 可使用替代仪器，如恒温热台进行变性，电热烘箱/或水浴锅进行杂交，需注意 温度准确及保持杂交湿度)。
5、杂交后洗涤及复染
5.1洗涤前30分钟，将配制好的洗液I放入72±1℃水浴中,洗液II室温放置；
5.2关闭杂交仪电源，将玻片取出，轻轻撕去橡皮胶，移去盖玻片(若盖玻片难 以去除，可以将其放入洗液I中微微摇晃，以利于其脱落)；
5.3玻片放入72±1℃洗液I(1×SSC/0.3％NP-40)中2分钟；
5.4取出玻片，再将其放入室温洗液II(0.1％NP-40/2×SSC)中30秒；
5.5取出玻片，再将其放入室温70％，90％，100％乙醇中各2分钟；
5.6取出玻片，暗处自然干燥玻片；
5.7滴加10μlDAPI复染剂至干燥的22x22mm盖玻片上，反转样本片，使盖玻 片与载玻片的目标区域接触，反转后轻压，避免产生气泡，在暗处存放，待观 察。
6、结果分析
相关荧光和DAPI需用合适的滤块观察。其中，GSPPML探针显示绿色信 号；GSPRARA探针为红色信号。
6.1使用合适的滤镜，在10×物镜下寻找，在100×物镜下计数；
6.2调整合适的焦距，对信号和背景有明确的概念；信号点因位于细胞内；当细 胞外存在荧光信号点时,要注意与细胞内信号点区分，最好能避开该区域进行计 数；
6.3扫视几个细胞区域，要求细胞核边界完整，DAPI染色均匀、核无重叠，绿 色和红色信号点清晰；跳过信号弱及没有特定信号或高背景的核计数；需要主 观辨别的核不计数；
6.4从选择区域的左上角开始分析，从左到右扫视，观察多个视野；
6.5转到100×物镜，调整焦距，在核的不同层次找到所有信号点；
6.6在每个核内计数信号点；调焦找到每个核内的所有信号点，计数一个区域内 的两种信号，只计数每种颜色有1个或更多FISH信号的，没有信号或只有一种 颜色信号的核不计数；记录观察到的细胞总数(信号数目正常及异常)；
6.7设定阴性阈值。
随机选取5例以上的人外周血细胞或骨髓细胞，按照样本处理要求进行处 理，制备阴性阈值参考片。每张参考片随机计数200个细胞。观察每个核内的 绿色(PML)和红色(RARA)信号点。当红色与绿色信号点重叠在一起或两者 临近距离小于一个信号直径时记为1个融合信号(黄色，F)；否则记为1个红 色(R)和1个绿色(G)信号。
实施例4：PML基因和RARA基因检测试剂盒临床使用评价
使用实施例1所述PML基因和RARA基因检测探针组合，实施例2所述2 组检测探针试剂盒，对18份临床样本(其经过病理检测确诊，具体见下表)， 分别进行检测。对于临床诊断APL的患者，FISH检测结果为PML/RARA融合 基因阳性。
与市售商品化试剂比较，本实施例的试剂盒检测结果完全一致，试剂的特 异性和灵敏度高。图3和图4为两组探针的试剂盒的检测结果，图3中所示，检测 信号类型为2R2G，表现为正常信号类型，因此，结果判断为PML/RARA融合基 因检测阴性。图4中，检测信号类型为1R1G2F，相对于正常信号类型2R2G，除 了一组染色体R和G色信号表现正常(正常染色体)，另一组红色R信号出现断裂， 绿色G信号也出现断裂，并同时发生R和G信号融合，因此，结果判断为 PML/RARA融合基因检测阳性。
本发明中，针对PML基因和RARA基因，分别使用两组探针实现了基因状态 和融合检测，具体数据省略。但相对探针组合使用而言，上述组合克隆探针的 使用，检测信号会更好。理论上探针长度越长，实际检测时获得的荧光信号亮 度越明亮，但因为可能涉及到更多基因序列，所得到的信号复杂性可能性增多， 对检测实现的难度也增强。本发明所述针对PML基因的探针组、RARA基因的探针 组检测探针的BAC克隆其长度分别为：665Kb和683Kb。
从上述实验检测结果知，在对这些样本进行分子标志物检测后，可以据检 测结果对样本进行分子分型，依据检测指标的意义，用于临床治疗方案制定、 用药选择和疗效判断。
所述实施例的各技术特征可以进行任意的组合，为使描述简洁，未对上述 实施例中的各个技术特征所有可能的组合都进行描述，然而，只要这些技术特 征的组合不存在矛盾，都应当认为是本说明书记载的范围。
以上所述实施例仅表达了本发明的几种实施方式，其描述较为具体和详细， 但并不能因此而理解为对发明专利范围的限制。应当指出的是，对于本领域的 普通技术人员来说，在不脱离本发明构思的前提下，还可以做出若干变形和改 进，这些都属于本发明的保护范围。因此，本发明专利的保护范围应以所附权 利要求为准。