一种培养鸡HD11巨噬细胞的新方法.pdf

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摘要
申请专利号:

CN201410317770.9

申请日:

2014.07.04

公开号:

CN104059879A

公开日:

2014.09.24

当前法律状态:

实审

有效性:

审中

法律详情:

实质审查的生效IPC(主分类):C12N 5/0786申请日:20140704|||公开

IPC分类号:

C12N5/0786(2010.01)I

主分类号:

C12N5/0786

申请人:

江苏省家禽科学研究所

发明人:

刘向萍; 窦新红; 常国斌; 王克华; 朱静; 陈国宏

地址:

225125 江苏省扬州市邗江区仓颉路58号

优先权:

专利代理机构:

南京苏高专利商标事务所(普通合伙) 32204

代理人:

柏尚春

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内容摘要

一种培养鸡HD11巨噬细胞的新方法,分别用RPMI1640和DMEM两种不同的培养基,添加不同比例的胎牛血清和鸡血清,分别培养5小时、10小时、24小时、48小时后,通过MTT比色试验,检测最佳培养体系,得到培养鸡巨噬细胞HD11的最优培养基方案,发现培养基RPMI1640的培养效果要优于用培养基DMEM培养和当培养基含2.5%的鸡血清时,培养效果最优。

权利要求书

1.  一种培养鸡HD11巨噬细胞的新方法,其特征在于:分别用RPMI1640和DMEM两种不同的培养基,添加不同比例的胎牛血清和鸡血清,分别培养5小时、10小时、24小时、48小时后,通过MTT比色试验,记录光吸收结果;最后以时间为横轴,光吸收值(A)为纵轴绘制细胞生长曲线,检测最佳培养体系,具体步骤为:
(1)HD11细胞的准备:取生长状态良好,处于对数期生长的细胞两瓶;
(2)MTT溶液的制备:称取125mg MTT,放入小烧杯中,加25mL PBS(0.01mol/L,pH7.4),在磁力搅拌机上搅拌30min,用0.22μm的过滤器过滤除菌,分装,4℃保存,两周内有效,二甲基亚砜(DMSO,使用分析纯产品);
(3)培养基,胎牛血清及鸡血清的准备:分别准备两种未添加任何血清的培养基——RPMI1640和DMEM,各50mL,预热;预热好的胎牛血清和鸡血清各25mL;
所述步骤(3)的具体步骤为:
1)取生长状态良好,出于对数期生长的两瓶HD11细胞,分别计数;
2)收集细胞,用PBS清洗2-3次,离心(1000rpm,5min)弃上清,分别用未加任何血清的RPMI1640和DMEM重悬备用;
3)分别制备含不同鸡血清的两种培养基:
A.RPMI1640
a.RPMI1640+10%FBS+2.5%鸡血清+重悬细胞;
b.RPMI1640+10%FBS+5%鸡血清+重悬细胞;
c.RPMI1640+10%FBS+10%鸡血清+重悬细胞;
d.RPMI1640+15%鸡血清+重悬细胞;
B.DMEM;
e.DMEM+10%FBS+2.5%鸡血清+重悬细胞;
f.DMEM+10%FBS+5%鸡血清+重悬细胞;
g.DMEM+10%FBS+10%鸡血清+重悬细胞;
h.DMEM+15%鸡血清+重悬细胞;
4)接种细胞:按以上体系,将细胞接种于96孔板中,且每个水平4个重复;
5)细胞培养:放入CO2培养箱,在5%CO2、37℃条件下,按设计的时间分别培养5小时、10小时、24小时、48小时;
6)呈色:按设计时间培养后,每孔加入MTT溶液(5mg/mL)20uL,37℃继续孵育4小时,终止培养,离心(1000r/min,15min)小心弃去孔内培养液,每孔加入150uL DMSO,振荡10min,使甲臜充分溶解;
7)比色:选择490nm波长,在酶联免疫检测仪上测定各孔光吸收值,记录结果。以时间为横轴,光吸收值(A)为纵轴绘制细胞生长曲线;
8)结果:RPMI1640培养基与DMEM培养基比较差异极显著;不同的培养时间之间比较差异不显著;用不同鸡血清浓度培养之间比较差异极显著,两种培养基与不同培养时间之间互作比较,差异不显著;不同培养基与不同鸡血清浓度之间互作比较,差异极显著;不同培养时间与不同鸡血清浓度之间互作比较差异不显著;三者互作,差异不显著;通过两种多重比较方法显示,不同鸡血清浓度培养时,血清浓度为2.5%与其他三种鸡血清浓度有极显著的差异;并得到培养鸡巨噬细胞HD11的最优培养基方案为:RPMI1640(Sigma公司),10%新生牛血清补充(热灭活),10.0mM HEPES,1.0mM丙酮酸钠,0.1mM非必需氨基酸,2.0mM谷氨酰胺,100U·mL-1的青霉素100μg/ml链霉素,5×10-5M2-巯基乙醇(pH值7.3),2.5%鸡血清。

2.
  一种根据权利要求1所述的培养鸡HD11巨噬细胞的新方法,其特征在于:培养基RPMI1640的培养效果要优于用培养基DMEM培养。

3.
  一种根据权利要求1所述的培养鸡HD11巨噬细胞的新方法,其特征在于:当培养基含2.5%的鸡血清时,培养效果最优。

说明书

一种培养鸡HD11巨噬细胞的新方法
技术领域
本发明涉及动物细胞培养领域具体涉及细胞培养技术。
背景技术
巨噬细胞属免疫细胞,有多种功能,是研究细胞吞噬、细胞免疫和分子免疫学的重要对象。鸡HD11巨噬细胞属于悬浮细胞,该细胞的现有的培养体系:RPMI1640(Sigma公司),10%新生牛血清补充(热灭活),10.0mM HEPES,1.0mM丙酮酸钠,0.1mM非必需氨基酸,2.0mM谷氨酰胺,100U·mL-1的青霉素100μg/ml链霉素,5×10-5M2-巯基乙醇(pH值7.3)和5%的二氧化碳。培养瓶横放如培养箱时培养基的深度超过5mm,当培养瓶直立放置时,培养基高度超过10cm,还需要深层通入CO2和空气,以保证足够的气体交换。
鸡HD11巨噬细胞目前的培养体系存在细胞生长缓慢,增殖效率低以及转染效率低等问题,影响了巨噬细胞在相关科学研究中的应用,阻碍了家禽免疫研究进展。
发明内容
为了解决现有技术的问题,本发明以鸡巨噬细胞(HD11细胞)为研究对象,改进培养体系,用RPMI1640和DMEM两种不同培养基培养,并分别添加不同比例胎牛血清和鸡血清,在不同培养期间比较HD11细胞培养效果,旨在建立一种新的培养方法。本发明采用的技术方案如下:
一种培养鸡HD11巨噬细胞的新方法,分别用RPMI1640和DMEM两种不同的培养基,添加不同比例的胎牛血清和鸡血清,分别培养5小时、10小时、24小时、48小时后,通过MTT比色试验,记录光吸收结果;最后以时间为横轴,光吸收值(A)为纵轴绘制细胞生长曲线,检测最佳培养体系,具体步骤为:
(1)HD11细胞的准备:取生长状态良好,处于对数期生长的细胞两瓶;
(2)MTT溶液的制备:称取125mg MTT,放入小烧杯中,加25mL PBS(0.01mol/L,pH7.4),在磁力搅拌机上搅拌30min,用0.22μm的过滤器过滤除菌,分装,4℃保存,两周内有效,二甲基亚砜(DMSO,使用分析纯产品);
(3)培养基,胎牛血清及鸡血清的准备:分别准备两种未添加任何血清的 培养基——RPMI1640和DMEM,各50mL,预热;预热好的胎牛血清和鸡血清各25mL;
所述步骤(3)的具体步骤为:
1)取生长状态良好,出于对数期生长的两瓶HD11细胞,分别计数;
2)收集细胞,用PBS清洗2-3次,离心(1000rpm,5min)弃上清,分别用未加任何血清的RPMI1640和DMEM重悬备用;
3)分别制备含不同鸡血清的两种培养基:
A.RPMI1640
i.RPMI1640+10%FBS+2.5%鸡血清+重悬细胞;
j.RPMI1640+10%FBS+5%鸡血清+重悬细胞;
k.RPMI1640+10%FBS+10%鸡血清+重悬细胞;
l.RPMI1640+15%鸡血清+重悬细胞;
B.DMEM;
m.DMEM+10%FBS+2.5%鸡血清+重悬细胞;
n.DMEM+10%FBS+5%鸡血清+重悬细胞;
o.DMEM+10%FBS+10%鸡血清+重悬细胞;
p.DMEM+15%鸡血清+重悬细胞;
4)接种细胞:按以上体系,将细胞接种于96孔板中,且每个水平4个重复;
5)细胞培养:放入CO2培养箱,在5%CO2、37℃条件下,按设计的时间分别培养5小时、10小时、24小时、48小时;
6)呈色:按设计时间培养后,每孔加入MTT溶液(5mg/mL)20uL,37℃继续孵育4小时,终止培养,离心(1000r/min,15min)小心弃去孔内培养液,每孔加入150uL DMSO,振荡10min,使甲臜充分溶解;
7)比色:选择490nm波长,在酶联免疫检测仪上测定各孔光吸收值,记录结果。以时间为横轴,光吸收值(A)为纵轴绘制细胞生长曲线;
8)结果:RPMI1640培养基与DMEM培养基比较差异极显著;不同的培养时间之间比较差异不显著;用不同鸡血清浓度培养之间比较差异极显著,两种培养基与不同培养时间之间互作比较,差异不显著;不同培养基与不同鸡血清浓度之间互作比较,差异极显著;不同培养时间与不同鸡血清浓度之间互作比较差异不显著;三者互作,差异不显著;通过两种多重比较方法显示,不同鸡血清浓度培 养时,血清浓度为2.5%与其他三种鸡血清浓度有极显著的差异;并得到培养鸡巨噬细胞HD11的最优培养基方案为:RPMI1640(Sigma公司),10%新生牛血清补充(热灭活),10.0mM HEPES,1.0mM丙酮酸钠,0.1mM非必需氨基酸,2.0mM谷氨酰胺,100U·mL-1的青霉素100μg/ml链霉素,5×10-5M2-巯基乙醇(pH值7.3),2.5%鸡血清。
本发明实施例提供的技术方案带来的有益效果是:
鸡巨噬细胞HD11能够更快、更好的生长,提高增殖效率,新的培养体系,使细胞迅速增长,且细胞活力增加,缩短试验时间,使后续试验更好的进行。
附图说明
图1:5h,DMEM+10%胎牛血清+2.5%鸡血清;
图2:10h,DMEM+10%胎牛血清+2.5%鸡血清;
图3:24h,DMEM+10%胎牛血清+2.5%鸡血清;
图4:48h,DMEM+10%胎牛血清+2.5%鸡血清;
图5:5h,RPMI1640+10%胎牛血清+2.5%鸡血清;
图6:10h,RPMI1640+10%胎牛血清+2.5%鸡血清;
图7:24h,RPMI1640+10%胎牛血清+2.5%鸡血清;
图8:48h,RPMI1640+10%胎牛血清+2.5%鸡血清;
图9不同培养基之间的细胞生长图
图10不同鸡血清浓度之间的细胞生长图。
具体实施方式
下面结合附图对本发明作进一步详细描述:
实施例
本发明的技术方案是:分别用RPMI1640和DMEM两种不同的培养基,添加不同比例的胎牛血清和鸡血清,分别培养5小时、10小时、24小时、48小时后,通过MTT比色试验,检测最佳培养体系。
具体步骤为:首先用两种不同培养基按设置的时间培养细胞;其次用MTT比色试验检测,记录光吸收结果;最后以时间为横轴,光吸收值(A)为纵轴绘制细胞生长曲线。
1 材料与方法
1.1 材料
1.1.1HD11细胞的准备
取生长状态良好,处于对数期生长的细胞两瓶。
1.1.2MTT溶液的制备
称取125mg MTT,放入小烧杯中,加25mL PBS(0.01mol/L,pH7.4),在磁力搅拌机上搅拌30min,用0.22μm的过滤器过滤除菌,分装,4℃保存。两周内有效。二甲基亚砜(DMSO,使用分析纯产品)
1.1.3培养基,胎牛血清及鸡血清的准备
分别准备两种未添加任何血清的培养基——RPMI1640和DMEM,各50mL,预热;预热好的胎牛血清和鸡血清各25mL。
具体步骤:
(1)取生长状态良好,出于对数期生长的两瓶HD11细胞,分别计数;
(2)收集细胞,用PBS清洗2-3次,离心(1000rpm,5min)弃上清,分别用未加任何血清的RPMI1640和DMEM重悬备用;
(3)分别制备含不同鸡血清的两种培养基:
A.RPMI1640
q.RPMI1640+10%FBS+2.5%鸡血清+重悬细胞
r.RPMI1640+10%FBS+5%鸡血清+重悬细胞
s.RPMI1640+10%FBS+10%鸡血清+重悬细胞
t.RPMI1640+15%鸡血清+重悬细胞
B.DMEM
u.DMEM+10%FBS+2.5%鸡血清+重悬细胞
v.DMEM+10%FBS+5%鸡血清+重悬细胞
w.DMEM+10%FBS+10%鸡血清+重悬细胞
x.DMEM+15%鸡血清+重悬细胞
(4)接种细胞:按以上体系,将细胞接种于96孔板中,且每个水平4个重复。
(5)细胞培养:放入CO2培养箱,在5%CO2、37℃条件下,按设计的时间分别培养5小时、10小时、24小时、48小时。
(6)呈色:按设计时间培养后,每孔加入MTT溶液(5mg/mL)20uL,37℃继续孵育4小时,终止培养,离心(1000r/min,15min)小心弃去孔内培养液,每孔加入150uL DMSO,振荡10min,使甲臜充分溶解。
(7)比色:选择490nm波长,在酶联免疫检测仪上测定各孔光吸收值,记录结果。以时间为横轴,光吸收值(A)为纵轴绘制细胞生长曲线。
2结果
2.1不同培养体系之间培养效果比较:见表1
表1:不同培养体系之间培养效果比较

注:同列比较时,”**”表示差异极显著,”*”表示差异显著;同行比较时,大写字母”A”或”B”或”C”表示差异极显著,小写字母”a”或”b”或”c”或”d”表示差异显著。
2.2不同培养时间、培养基、不同血清浓度之间的方差分析
表2不同培养时间、培养基、不同血清浓度之间的方差分析

III型平方和 df 均方 F Sig. 校正模型 1.996a31 .064 5.910 .000 截距 1.044 1 1.044 95.810 .000 medium 1.044 1 1.044 95.787 .000 time .026 3 .009 .802 .498 serum .272 3 .091 8.317 .000 medium*time .026 3 .009 .803 .497 medium*serum .272 3 .091 8.317 .000 time*serum .178 9 .020 1.817 .082 medium*time*serum .178 9 .020 1.817 .082 误差 .697 64 .011

总计 3.737 96 校正的总计 2.693 95

通过上表数据得出,RPMI1640培养基与DMEM培养基比较差异极显著;不同的培养时间之间比较差异不显著;用不同鸡血清浓度培养之间比较差异极显著。两种培养基与不同培养时间之间互作比较,差异不显著;不同培养基与不同鸡血清浓度之间互作比较,差异极显著;不同培养时间与不同鸡血清浓度之间互作比较差异不显著;三者互作,差异不显著。
2.3不同鸡血清浓度之间的多重比较:
表3不同鸡血清浓度之间的多重比较

由上表得出:通过两种多重比较方法显示,不同鸡血清浓度培养时,血清浓度为2.5%与其他三种鸡血清浓度有极显著的差异。
2.4细胞生长图
2.4.1不同培养基之间的细胞生长比较(图9)
由此图可知,培养基RPMI1640的培养效果要优于用培养基DMEM培养。
2.4.2不同鸡血清浓度之间的细胞生长图(图10)
由图可知当培养基含2.5%的鸡血清时,培养效果最优。
具体细胞培养见附图1-8.
3.结论
由以上数据表明,培养鸡巨噬细胞HD11的最优培养基方案为:RPMI1640(Sigma公司),10%新生牛血清补充(热灭活),10.0mM HEPES,1.0mM丙酮酸钠,0.1mM非必需氨基酸,2.0mM谷氨酰胺,100U·mL-1的青霉素100μg/ml链霉素,5×10-5M2-巯基乙醇(pH值7.3),2.5%鸡血清。

一种培养鸡HD11巨噬细胞的新方法.pdf_第1页
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1、10申请公布号CN104059879A43申请公布日20140924CN104059879A21申请号201410317770922申请日20140704C12N5/078620100171申请人江苏省家禽科学研究所地址225125江苏省扬州市邗江区仓颉路58号72发明人刘向萍窦新红常国斌王克华朱静陈国宏74专利代理机构南京苏高专利商标事务所普通合伙32204代理人柏尚春54发明名称一种培养鸡HD11巨噬细胞的新方法57摘要一种培养鸡HD11巨噬细胞的新方法,分别用RPMI1640和DMEM两种不同的培养基,添加不同比例的胎牛血清和鸡血清,分别培养5小时、10小时、24小时、48小时后,通过M。

2、TT比色试验,检测最佳培养体系,得到培养鸡巨噬细胞HD11的最优培养基方案,发现培养基RPMI1640的培养效果要优于用培养基DMEM培养和当培养基含25的鸡血清时,培养效果最优。51INTCL权利要求书2页说明书5页附图5页19中华人民共和国国家知识产权局12发明专利申请权利要求书2页说明书5页附图5页10申请公布号CN104059879ACN104059879A1/2页21一种培养鸡HD11巨噬细胞的新方法,其特征在于分别用RPMI1640和DMEM两种不同的培养基,添加不同比例的胎牛血清和鸡血清,分别培养5小时、10小时、24小时、48小时后,通过MTT比色试验,记录光吸收结果;最后以时。

3、间为横轴,光吸收值A为纵轴绘制细胞生长曲线,检测最佳培养体系,具体步骤为1HD11细胞的准备取生长状态良好,处于对数期生长的细胞两瓶;2MTT溶液的制备称取125MGMTT,放入小烧杯中,加25MLPBS001MOL/L,PH74,在磁力搅拌机上搅拌30MIN,用022M的过滤器过滤除菌,分装,4保存,两周内有效,二甲基亚砜DMSO,使用分析纯产品;3培养基,胎牛血清及鸡血清的准备分别准备两种未添加任何血清的培养基RPMI1640和DMEM,各50ML,预热;预热好的胎牛血清和鸡血清各25ML;所述步骤3的具体步骤为1取生长状态良好,出于对数期生长的两瓶HD11细胞,分别计数;2收集细胞,用P。

4、BS清洗23次,离心1000RPM,5MIN弃上清,分别用未加任何血清的RPMI1640和DMEM重悬备用;3分别制备含不同鸡血清的两种培养基ARPMI1640ARPMI164010FBS25鸡血清重悬细胞;BRPMI164010FBS5鸡血清重悬细胞;CRPMI164010FBS10鸡血清重悬细胞;DRPMI164015鸡血清重悬细胞;BDMEM;EDMEM10FBS25鸡血清重悬细胞;FDMEM10FBS5鸡血清重悬细胞;GDMEM10FBS10鸡血清重悬细胞;HDMEM15鸡血清重悬细胞;4接种细胞按以上体系,将细胞接种于96孔板中,且每个水平4个重复;5细胞培养放入CO2培养箱,在5C。

5、O2、37条件下,按设计的时间分别培养5小时、10小时、24小时、48小时;6呈色按设计时间培养后,每孔加入MTT溶液5MG/ML20UL,37继续孵育4小时,终止培养,离心1000R/MIN,15MIN小心弃去孔内培养液,每孔加入150ULDMSO,振荡10MIN,使甲臜充分溶解;7比色选择490NM波长,在酶联免疫检测仪上测定各孔光吸收值,记录结果。以时间为横轴,光吸收值A为纵轴绘制细胞生长曲线;8结果RPMI1640培养基与DMEM培养基比较差异极显著;不同的培养时间之间比较差异不显著;用不同鸡血清浓度培养之间比较差异极显著,两种培养基与不同培养时间之间互作比较,差异不显著;不同培养基与。

6、不同鸡血清浓度之间互作比较,差异极显著;不同培养时间与不同鸡血清浓度之间互作比较差异不显著;三者互作,差异不显著;通过两种多重比较方法显示,不同鸡血清浓度培养时,血清浓度为25与其他三种鸡血清浓度有极显著的差异;并得到培养鸡巨噬细胞HD11的最优培养基方案为RPMI1640SIGMA公司,权利要求书CN104059879A2/2页310新生牛血清补充热灭活,100MMHEPES,10MM丙酮酸钠,01MM非必需氨基酸,20MM谷氨酰胺,100UML1的青霉素100G/ML链霉素,5105M2巯基乙醇PH值73,25鸡血清。2一种根据权利要求1所述的培养鸡HD11巨噬细胞的新方法,其特征在于培养。

7、基RPMI1640的培养效果要优于用培养基DMEM培养。3一种根据权利要求1所述的培养鸡HD11巨噬细胞的新方法,其特征在于当培养基含25的鸡血清时,培养效果最优。权利要求书CN104059879A1/5页4一种培养鸡HD11巨噬细胞的新方法技术领域0001本发明涉及动物细胞培养领域具体涉及细胞培养技术。背景技术0002巨噬细胞属免疫细胞,有多种功能,是研究细胞吞噬、细胞免疫和分子免疫学的重要对象。鸡HD11巨噬细胞属于悬浮细胞,该细胞的现有的培养体系RPMI1640SIGMA公司,10新生牛血清补充热灭活,100MMHEPES,10MM丙酮酸钠,01MM非必需氨基酸,20MM谷氨酰胺,100。

8、UML1的青霉素100G/ML链霉素,5105M2巯基乙醇PH值73和5的二氧化碳。培养瓶横放如培养箱时培养基的深度超过5MM,当培养瓶直立放置时,培养基高度超过10CM,还需要深层通入CO2和空气,以保证足够的气体交换。0003鸡HD11巨噬细胞目前的培养体系存在细胞生长缓慢,增殖效率低以及转染效率低等问题,影响了巨噬细胞在相关科学研究中的应用,阻碍了家禽免疫研究进展。发明内容0004为了解决现有技术的问题,本发明以鸡巨噬细胞HD11细胞为研究对象,改进培养体系,用RPMI1640和DMEM两种不同培养基培养,并分别添加不同比例胎牛血清和鸡血清,在不同培养期间比较HD11细胞培养效果,旨在建。

9、立一种新的培养方法。本发明采用的技术方案如下0005一种培养鸡HD11巨噬细胞的新方法,分别用RPMI1640和DMEM两种不同的培养基,添加不同比例的胎牛血清和鸡血清,分别培养5小时、10小时、24小时、48小时后,通过MTT比色试验,记录光吸收结果;最后以时间为横轴,光吸收值A为纵轴绘制细胞生长曲线,检测最佳培养体系,具体步骤为00061HD11细胞的准备取生长状态良好,处于对数期生长的细胞两瓶;00072MTT溶液的制备称取125MGMTT,放入小烧杯中,加25MLPBS001MOL/L,PH74,在磁力搅拌机上搅拌30MIN,用022M的过滤器过滤除菌,分装,4保存,两周内有效,二甲基。

10、亚砜DMSO,使用分析纯产品;00083培养基,胎牛血清及鸡血清的准备分别准备两种未添加任何血清的培养基RPMI1640和DMEM,各50ML,预热;预热好的胎牛血清和鸡血清各25ML;0009所述步骤3的具体步骤为00101取生长状态良好,出于对数期生长的两瓶HD11细胞,分别计数;00112收集细胞,用PBS清洗23次,离心1000RPM,5MIN弃上清,分别用未加任何血清的RPMI1640和DMEM重悬备用;00123分别制备含不同鸡血清的两种培养基0013ARPMI16400014IRPMI164010FBS25鸡血清重悬细胞;0015JRPMI164010FBS5鸡血清重悬细胞;说明。

11、书CN104059879A2/5页50016KRPMI164010FBS10鸡血清重悬细胞;0017LRPMI164015鸡血清重悬细胞;0018BDMEM;0019MDMEM10FBS25鸡血清重悬细胞;0020NDMEM10FBS5鸡血清重悬细胞;0021ODMEM10FBS10鸡血清重悬细胞;0022PDMEM15鸡血清重悬细胞;00234接种细胞按以上体系,将细胞接种于96孔板中,且每个水平4个重复;00245细胞培养放入CO2培养箱,在5CO2、37条件下,按设计的时间分别培养5小时、10小时、24小时、48小时;00256呈色按设计时间培养后,每孔加入MTT溶液5MG/ML20UL。

12、,37继续孵育4小时,终止培养,离心1000R/MIN,15MIN小心弃去孔内培养液,每孔加入150ULDMSO,振荡10MIN,使甲臜充分溶解;00267比色选择490NM波长,在酶联免疫检测仪上测定各孔光吸收值,记录结果。以时间为横轴,光吸收值A为纵轴绘制细胞生长曲线;00278结果RPMI1640培养基与DMEM培养基比较差异极显著;不同的培养时间之间比较差异不显著;用不同鸡血清浓度培养之间比较差异极显著,两种培养基与不同培养时间之间互作比较,差异不显著;不同培养基与不同鸡血清浓度之间互作比较,差异极显著;不同培养时间与不同鸡血清浓度之间互作比较差异不显著;三者互作,差异不显著;通过两种。

13、多重比较方法显示,不同鸡血清浓度培养时,血清浓度为25与其他三种鸡血清浓度有极显著的差异;并得到培养鸡巨噬细胞HD11的最优培养基方案为RPMI1640SIGMA公司,10新生牛血清补充热灭活,100MMHEPES,10MM丙酮酸钠,01MM非必需氨基酸,20MM谷氨酰胺,100UML1的青霉素100G/ML链霉素,5105M2巯基乙醇PH值73,25鸡血清。0028本发明实施例提供的技术方案带来的有益效果是0029鸡巨噬细胞HD11能够更快、更好的生长,提高增殖效率,新的培养体系,使细胞迅速增长,且细胞活力增加,缩短试验时间,使后续试验更好的进行。附图说明0030图15H,DMEM10胎牛血。

14、清25鸡血清;0031图210H,DMEM10胎牛血清25鸡血清;0032图324H,DMEM10胎牛血清25鸡血清;0033图448H,DMEM10胎牛血清25鸡血清;0034图55H,RPMI164010胎牛血清25鸡血清;0035图610H,RPMI164010胎牛血清25鸡血清;0036图724H,RPMI164010胎牛血清25鸡血清;0037图848H,RPMI164010胎牛血清25鸡血清;0038图9不同培养基之间的细胞生长图图10不同鸡血清浓度之间的细胞生长图。说明书CN104059879A3/5页6具体实施方式0039下面结合附图对本发明作进一步详细描述0040实施例004。

15、1本发明的技术方案是分别用RPMI1640和DMEM两种不同的培养基,添加不同比例的胎牛血清和鸡血清,分别培养5小时、10小时、24小时、48小时后,通过MTT比色试验,检测最佳培养体系。0042具体步骤为首先用两种不同培养基按设置的时间培养细胞;其次用MTT比色试验检测,记录光吸收结果;最后以时间为横轴,光吸收值A为纵轴绘制细胞生长曲线。00431材料与方法004411材料0045111HD11细胞的准备0046取生长状态良好,处于对数期生长的细胞两瓶。0047112MTT溶液的制备0048称取125MGMTT,放入小烧杯中,加25MLPBS001MOL/L,PH74,在磁力搅拌机上搅拌30。

16、MIN,用022M的过滤器过滤除菌,分装,4保存。两周内有效。二甲基亚砜DMSO,使用分析纯产品0049113培养基,胎牛血清及鸡血清的准备0050分别准备两种未添加任何血清的培养基RPMI1640和DMEM,各50ML,预热;预热好的胎牛血清和鸡血清各25ML。0051具体步骤00521取生长状态良好,出于对数期生长的两瓶HD11细胞,分别计数;00532收集细胞,用PBS清洗23次,离心1000RPM,5MIN弃上清,分别用未加任何血清的RPMI1640和DMEM重悬备用;00543分别制备含不同鸡血清的两种培养基0055ARPMI16400056QRPMI164010FBS25鸡血清重悬。

17、细胞0057RRPMI164010FBS5鸡血清重悬细胞0058SRPMI164010FBS10鸡血清重悬细胞0059TRPMI164015鸡血清重悬细胞0060BDMEM0061UDMEM10FBS25鸡血清重悬细胞0062VDMEM10FBS5鸡血清重悬细胞0063WDMEM10FBS10鸡血清重悬细胞0064XDMEM15鸡血清重悬细胞00654接种细胞按以上体系,将细胞接种于96孔板中,且每个水平4个重复。00665细胞培养放入CO2培养箱,在5CO2、37条件下,按设计的时间分别培养5小时、10小时、24小时、48小时。00676呈色按设计时间培养后,每孔加入MTT溶液5MG/ML2。

18、0UL,37继续孵育4说明书CN104059879A4/5页7小时,终止培养,离心1000R/MIN,15MIN小心弃去孔内培养液,每孔加入150ULDMSO,振荡10MIN,使甲臜充分溶解。00687比色选择490NM波长,在酶联免疫检测仪上测定各孔光吸收值,记录结果。以时间为横轴,光吸收值A为纵轴绘制细胞生长曲线。00692结果007021不同培养体系之间培养效果比较见表10071表1不同培养体系之间培养效果比较00720073注同列比较时,”表示差异极显著,”表示差异显著;同行比较时,大写字母”A”或”B”或”C”表示差异极显著,小写字母”A”或”B”或”C”或”D”表示差异显著。007。

19、422不同培养时间、培养基、不同血清浓度之间的方差分析0075表2不同培养时间、培养基、不同血清浓度之间的方差分析0076源III型平方和DF均方FSIG校正模型1996A310645910000截距10441104495810000MEDIUM10441104495787000TIME0263009802498SERUM27230918317000MEDIUMTIME0263009803497MEDIUMSERUM27230918317000TIMESERUM17890201817082MEDIUMTIMESERUM17890201817082误差69764011总计373796校正的总计2。

20、6939500770078通过上表数据得出,RPMI1640培养基与DMEM培养基比较差异极显著;不同的培养时间之间比较差异不显著;用不同鸡血清浓度培养之间比较差异极显著。两种培养基与不说明书CN104059879A5/5页8同培养时间之间互作比较,差异不显著;不同培养基与不同鸡血清浓度之间互作比较,差异极显著;不同培养时间与不同鸡血清浓度之间互作比较差异不显著;三者互作,差异不显著。007923不同鸡血清浓度之间的多重比较0080表3不同鸡血清浓度之间的多重比较00810082由上表得出通过两种多重比较方法显示,不同鸡血清浓度培养时,血清浓度为25与其他三种鸡血清浓度有极显著的差异。0083。

21、24细胞生长图0084241不同培养基之间的细胞生长比较图90085由此图可知,培养基RPMI1640的培养效果要优于用培养基DMEM培养。0086242不同鸡血清浓度之间的细胞生长图图100087由图可知当培养基含25的鸡血清时,培养效果最优。0088具体细胞培养见附图1800893结论0090由以上数据表明,培养鸡巨噬细胞HD11的最优培养基方案为RPMI1640SIGMA公司,10新生牛血清补充热灭活,100MMHEPES,10MM丙酮酸钠,01MM非必需氨基酸,20MM谷氨酰胺,100UML1的青霉素100G/ML链霉素,5105M2巯基乙醇PH值73,25鸡血清。说明书CN104059879A1/5页9图1图2说明书附图CN104059879A2/5页10图3图4说明书附图CN104059879A103/5页11图5图6说明书附图CN104059879A114/5页12图7图8说明书附图CN104059879A125/5页13图9图10说明书附图CN104059879A13。

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