分泌T-2毒素单克隆抗体的杂交瘤细胞株技术领域
本发明涉及一种分泌T-2毒素单克隆抗体的杂交瘤细胞株，还涉及该细胞株分泌的
T-2毒素单克隆抗体，包含该抗体的免疫吸附剂、免疫亲和柱、试剂盒，以及利用该免疫
亲和柱提取纯化T-2毒素和HT-2毒素的方法。
背景技术
T-2毒素和HT-2毒素是由多种真菌，主要是三线镰刀菌产生的单端孢霉烯族化合物
(trichothecenes，TS)，HT-2毒素为T-2毒素的代谢产物。它们广泛分布于自然界，是常
见的污染田间作物和库存谷物的主要毒素，对人、畜危害较大。T-2和HT-2毒素主要作
用于细胞分裂旺盛的组织器官，如胸腺、骨髓、肝、脾、淋巴结、生殖腺及胃肠粘膜等，
抑制这些器官细胞蛋白质和DNA合成。此外，还发现该毒素可引起淋巴细胞中DNA单
链的断裂。T-2和HT-2毒素还可作用于氧化磷酸化的多个部位而引起线粒体呼吸抑制。
1973年联合国粮农组织(FAQ)和世界卫生组织(WHO)在日内瓦召开的联席会议上，
把这类毒素同黄曲霉素一样作为自然存在的最危险的食品污染源。
目前，T-2毒素、HT-2毒素的检测方法主要有薄层层析法、酶联免疫法(ELISA)。
薄层层析法，要接触大量的标准品，不利于实验者的健康，而且灵敏度很低。酶联免
疫法，只适用于定性检测，很容易出现假阳性和假阴性的现象。而免疫亲和层析-液相色
谱法是通过免疫亲和层析预处理样品分离提取待检物质，再用液相色谱法检测的方法，其
经济、快捷、精确、安全，但是制备得到分离提取待检物质的免疫亲和层析柱却并非易事，
最为关键的地方在于寻找同时有效结合T-2毒素、HT-2毒素的抗体。
王雄等人(抗T-2毒素单克隆抗体的制备及鉴定，中国卫生检验杂志，2010年2月，
20(2)：301-304)报道了一种T-2毒素的单抗。尽管该单抗与黄曲霉素无交叉反应，但
是其与HT-2毒素的交叉反应为65.9％。因此，用于免疫亲和层析时，该抗体可以有效提
取T-2毒素，但无法有效提取HT-2毒素。同时，该单抗的效价仅为1:12000，与T-2毒素
的结合力不强，容易解离，导致最终的检测结果不准确。
因此，目前需要一种与其他毒素不发生交叉反应，效价高，并且可以同时有效提取
T-2毒素与HT-2毒素的抗体。
发明内容
为解决上述问题，本发明提供了一种杂交瘤细胞株，该杂交瘤细胞株是中国微生物菌
种保藏管理委员会普通微生物中心保藏的编号为CGMCCNO.11181的杂交瘤细胞株。
本发明杂交瘤细胞株，命名为抗T2毒素、HT-2毒素单克隆抗体细胞，于2015年8
月21日保藏在中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心，其简称为CGMCC，其
地址为：北京市朝阳区北辰西路1号院3号，其保藏号为：CGMCCNO.11181。
本发明还提供了一种T-2毒素单克隆抗体，该单克隆抗体是由上述的杂交瘤细胞株制
备得到的。
本发明还提供了该免疫吸附剂包括固相载体和抗体，所述抗体包括本发明所述的单克
隆抗体。
优选地，所述抗体还包括下述单克隆抗体中的任一种或多种：
由中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心保藏的编号为CGMCCNO.
5504的杂交瘤细胞株制备得到的单克隆抗体；
由中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心保藏的编号为CGMCCNO.
5505的杂交瘤细胞株制备得到的单克隆抗体；
由中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心保藏的编号为CGMCCNO.
5506的杂交瘤细胞株制备得到的单克隆抗体；
由中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心保藏的编号为CGMCCNO.
9204的杂交瘤细胞株制备得到的单克隆抗体。
更优选地，所述抗体包括下述单克隆抗体：
由中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心保藏的编号为CGMCCNO.
5504的杂交瘤细胞株制备得到的单克隆抗体；
由中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心保藏的编号为CGMCCNO.
5505的杂交瘤细胞株制备得到的单克隆抗体；
由中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心保藏的编号为CGMCCNO.
5506的杂交瘤细胞株制备得到的单克隆抗体；
由中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心保藏的编号为CGMCCNO.
9204的杂交瘤细胞株制备得到的单克隆抗体。
进一步优选地，所述抗体与固相载体是通过偶联方式结合的。
本发明还提供了一种装载有上述免疫吸附剂的免疫亲和柱。
本发明还提供了一种检测T-2毒素和HT-2毒素的试剂盒，它包括前述的单克隆抗体、
前述的免疫吸附剂或/和前述的免疫亲和柱。
本发明还提供了一种提取T-2毒素和HT-2毒素方法，其特征在于：
(1)取样品，通过前述的免疫亲和柱；
(2)洗涤，洗脱，得洗脱液，即可；所述洗脱中，优选的洗脱剂为甲醇。
优选地，所述液体样品是饲料提取液样品。
而本发明的制备得到的T-2毒素单抗，腹水效价比达到1:50000，相比现有的单抗，
具有更高的效价比，与抗原的结合能力强。同时，该单抗与T-2毒素的结合率为100％，
与HT-2毒素的结合率达到92.8％，与其他多种抗原的交叉反应低于0.1％。也就是说，本
发明单抗会特异性结合T-2毒素和HT-2毒素，而不会与其他物质结合。因此，以其制备
为免疫吸附剂，可以将T-2毒素和HT-2毒素从样品中准确分离出来。
因此，在本发明提供的T-2毒素单抗的基础上，本发明的免疫亲和层析-液相色谱法
可以准确、高效、经济地检测许多商品中的T-2毒素和HT-2毒素。
除此之外，在本发明的具体实施方案中，以本发明的单抗和已知的3-乙酰脱氧雪腐
镰刀菌烯醇、黄曲霉毒素、赭曲霉毒素、玉米赤霉烯酮单抗制备得到的免疫亲和柱，可以
结合液相色谱同时准确地检测样品中T-2毒素、HT-2毒素、3-乙酰脱氧雪腐镰刀菌烯醇、
黄曲霉毒素B1、B2、G1、G2、赭曲霉毒素A和玉米赤霉烯酮，进一步证明了本发明单
抗能与T-2毒素、HT-2毒素高效、特异结合，而不会结合其他毒素。
显然，根据本发明的上述内容，按照本领域的普通技术知识和惯用手段，在不脱离
本发明上述基本技术思想前提下，还可以做出其它多种形式的修改、替换或变更。
以下通过实施例形式的具体实施方式，对本发明的上述内容再作进一步的详细说明。
但不应将此理解为本发明上述主题的范围仅限于以下的实例。凡基于本发明上述内容所实
现的技术均属于本发明的范围。
附图说明
图1为样品中3-乙酰脱氧雪腐镰刀菌烯醇的色谱图。
图2为样品中黄曲霉毒素B1,B2,G1,G2的色谱图。
图3为样品中赭曲霉毒素A的色谱图。
图4为样品中玉米赤霉烯酮的色谱图。
图5为样品中T-2毒素和HT-2毒素的色谱图。
具体实施方式
抗3-乙酰脱氧雪腐镰刀菌烯醇、黄曲霉毒素、赭曲霉毒素、玉米赤霉烯酮单克隆抗
体的分别由中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(CGMCC)的编号为CGMCC
NO.9204、CGMCCNO.5506、CGMCCNO.5505和CGMCCNO.5504的杂交瘤细
胞制备得到。上述杂交瘤细胞株均已在专利201510002847.8中公开，专利CN104707362
A中公开。其相应单抗的制备为本领域常规的制备方法。
实施例1制备T-2毒素单克隆抗体
1、动物免疫
免疫动物为8周龄左右雌性BALB/c小鼠。分别将抗原T-2-BSA(北京中检维康生物
技术有限公司自制)免疫10只小鼠。取适量免疫原(100mg/只)加等量弗氏完全佐剂，
制成乳化剂进行免疫，共免疫4-6次，每次间隔2周。除最后一次免疫为腹腔注射外，其
余均为颈背部皮下多点注射。
2、杂交瘤细胞的制备
①骨髓瘤细胞的培养
SP2/0骨髓瘤细胞在含10％胎牛血清的完全培养液中进行培养。当细胞处于对数生长
期时，按1:3-1:10比例稀释，传代，一般每3-4天进行1次传代或扩大培养。处于对数生
长期的细胞应浑圆、透亮、大小均一、排列整齐、呈半致密分布。选取处于生长旺盛、形
态良好的对数生长期细胞供融合用。融合前24h将SP2/0细胞扩大培养。融合当天，选
择处于对数生长期的细胞，用移液管将细胞吹下，收集于50mL离心管中，1000rpm离
心10min，然后用DMEM培养液重新悬浮，显微镜下计数并计算细胞成活率，大于90％
者，可用于融合。
②免疫脾细胞悬液的制备
采用ELISA对血清效价和抑制水平测定后，选取效价高、抑制水平好的小鼠于最后
一次免疫后第三天摘除眼球放血，并分离阳性血清作对照。
a)处死小鼠，置于75％酒精中浸泡5min后移入超净台，打开腹腔，无菌操作取出
小鼠脾脏，放入盛有5-10mLDMEM培养液的平皿中漂洗。
b)将脾脏移入另一盛有5mLDMEM不完全培养液的平皿中，用吸满DMEM培养液
的注射器针头插入脾脏，反复冲洗至脾细胞完全洗出。
c)将脾细胞悬液转移至50mL离心管中，1000rpm离心5min，弃上清液，以10mL
DMEM液悬浮，显微镜下计数。
3、细胞融合
a)分别吸取含6×107个脾细胞和含6×106个SP2/0细胞的细胞悬液(两种细胞数之
比为10∶1)，合并置入50mL塑料离心管中，1000rpm离心5min，弃上清液；
b)用手指轻弹管底，使沉淀松散成糊状；
c)取50％PEG15001mL，左手匀速转动离心管，右手持1mL移液管吸取50％PEG
溶液0.7mL，沿转动的管壁(尽量接近细胞处)缓缓滴入，并控制时间在60s内加完，
然后将细胞悬液缓缓吸入移液管内，控制时间在30s内刚好吸完，静置30s后，再将细
胞悬液缓缓吹回到离心管中，时间控制在30s内；
d)立即在5min内加入25mLDMEM不完全培养液，终止反应。加入速度为：第1
min内加1mL，第2min内加4mL，剩余20mL在3min内加完。加液时应轻轻匀速转
动离心管，此时操作应轻柔；
e)1000rpm离心7min，弃上清液，加入20mLHAT培养液，轻轻吹吸使沉淀细胞
悬浮。此时操作应轻柔，切勿用力吹打；
f)将细胞悬液加入已铺有饲养细胞的96孔细胞培养板中，0.1mL/孔，置37℃、含
5％CO2的培养箱中培养；
g)每天观察并记录细胞生长情况。融合后第3天每孔用HAT完全培养液半量换液，
融合后第7、10天改用HT完全培养液半量换液，随后均用完全培养液换液。
4、杂交瘤细胞的筛选
融合后的细胞克隆长至孔底面积的1/4-1/3时，即可用间接竞争ELISA法对所有克隆
生长孔的培养上清进行检测，选择OD值高、抑制率大、克隆数目较少的细胞孔进行克隆，
并扩大培养。
5、杂交瘤细胞的克隆
采用有限稀释法进行细胞克隆，具体步骤如下：
a)将待克隆的阳性孔中的细胞悬浮，吸出悬浮液至含有1mLHT培养液的无菌试管
中；
b)取0.1mL细胞悬液计数。以HAT完全培养液稀释细胞至100个/mL。每个克隆细
胞做3个稀释度(100个/mL、10个/mL、5个/mL)，分别加入于96孔细胞板中，每孔0.1
mL，即平均细胞数量分别为10个/孔、1个/孔、0.5个/孔。
c)将培养板置于37℃、含5％CO2的培养箱中培养7-10天，中间换液一次。当克隆
细胞长至孔底面积的1/4-1/3时，对其上清液进行间接竞争ELISA检测。取强阳性(OD
值高、抑制率最大)克隆扩大培养，冻存，同时按上法继续克隆至阳性率达100％；
d)将强阳性单克隆细胞扩大培养至12孔板，长满后扩至10mL细胞瓶，一部分冻
存，一部分继续培养，用于生产腹水，制备单克隆抗体。
本发明杂交瘤细胞即为前述方法最终得到的强阳性单克隆细胞，命名为抗T2毒素、
HT-2毒素单克隆抗体细胞，其于2015年8月21日保藏在中国微生物菌种保藏管理委员
会普通微生物中心，其简称为CGMCC，其地址为：北京市朝阳区北辰西路1号院3号，
其保藏号为：CGMCCNO.11181。
本发明杂交瘤细胞又简称杂交瘤细胞11181。
6、单克隆抗体的制备
采用体内诱生腹水法制备单克隆抗体。选择8-10周BALB/c雌性小鼠10只，每只腹
腔内注射无菌石蜡油0.5mL。10-14天后，接种杂交瘤细胞(保藏号为：CGMCC
NO.11181)。将培养的杂交瘤细胞吹打下来，1000rpm离心10min，弃去上清液，用不完
全培养液将其混匀，并将细胞数调至1-4×105个/mL，每只小鼠腹腔注射0.5mL。植入细
胞后第7天起，每天观察小鼠腹部，待小鼠腹部明显膨大，用9#针头穿刺腹腔，收集腹
水，5000rpm离心10min，收集上清液，分装，-20℃保存备用。
7、抗体性能测试
7.1抗血清效价的测定
按照常规的间接ELISA法进行检测，用包被液将包被原0.2μg/mL包被，100μL/孔
加入酶标板，4℃包被过夜；弃包被液，加洗液，200μL/孔，于振荡器上振荡3min，洗
涤3次；加入6％明胶封闭液，200μL/孔，37℃封闭2h；洗涤3次，加入倍比稀释的待
测血清，100μL/孔，最后一列加阴性血清对照组，37℃反应30min；洗涤3次，加入
HRP-羊抗鼠IgG(1:4000倍稀释)，100μL/孔，37℃反应30min；洗涤3次，加入TMB
底物液，100μL/孔，室温避光放置10min，加入2mol/LH2SO4终止反应，50μL/孔。用
酶标仪测定OD450nm值。并按下列公式计算P/N值：P/N值＝阳性对照孔OD450nm均值/
阴性对照孔OD450nm均值。当P/N值>2时，即阳性对照OD450nm值大于2倍阴性对照孔
OD450nm值时，阳性血清最高稀释倍数作为血清的ELISA效价。
经测定，本实验制备的T-2毒素单克隆抗体的效价均达到1：50000，其与抗原的结
合能力强。
7.2单抗特异性的鉴定
按照间接ELISA法和方阵滴定法确定抗原抗体的最适工作浓度。在最佳工作条件下，
采用间接竞争ELISA法检测待测药物与不同药物的交叉反应率。空白对照吸光值为B0，
不同质量浓度药品的吸光值为B，以B/B0为纵坐标，质量浓度的对数为横坐标，绘制标
准品抑制曲线，得出50％抑制质量浓度。同时根据公式(1.1)计算交叉反应率，结果如
表1所示。
(1.1)![]()
表1T-2毒素抗体特异性鉴定
药物种类
IC50μg/L
交叉反应率％
T-2毒素
6.5
100
HT-2毒素
7.0
92.8
黄曲霉毒素
>1000
<0.1
呕吐毒素
>1000
<0.1
玉米赤霉烯酮
>1000
<0.1
伏马毒素
>1000
<0.1
结果显示，本发明T-2毒素单克隆抗体与T-2毒素的结合率为100％，与HT-2毒素的
结合率为92.8％，而对其他的毒素，如黄曲霉毒素等则无交叉反应，说明本发明T-2毒素
单克隆抗体可以与T-2毒素、HT-2毒素高效、特异结合，而不会结合其他毒素，可以用
于T-2毒素、HT-2毒素的分离纯化。
综上，本发明制备得到了分泌T-2毒素单克隆抗体的杂交瘤细胞，还采用该细胞制备
得到了T-2毒素单克隆抗体，该抗体的效价高，与T-2毒素和HT-2毒素均有良好的结合
能力，而与其他毒素则无交叉反应，可以同时有效结合、提取T-2毒素和HT-2毒素。
实施例2T-2毒素、3-乙酰脱氧雪腐镰刀菌烯醇、黄曲霉毒素、赭曲霉毒素、玉米赤霉
烯酮免疫亲和柱的制备
1.基质制备
称取所需1g的Sepharose基质粉末(每克冻干基质粉末可形成3.5ml终体积的溶胀基
质)，溶于1mMHCl中。基质将会立即溶胀，然后置于烧结玻璃过滤器中使用1mMHCl
洗涤15min。
2.配体(抗体)偶联
a使用偶联缓冲液0.2MNaHCO3pH8.3溶解待偶联的杂交瘤细胞9204，5506,5505，
5504和11181分泌的3-乙酰脱氧雪腐镰刀菌烯醇、黄曲霉毒素、赭曲霉毒素、玉米赤霉
烯酮、T-2毒素抗体(实施例1制备的抗体)，抗体浓度为12.5mg/ml，溶解的抗体置于冰
浴中暂存。在一个带盖的可完全密封的容器中加入上述含有抗体的偶联缓冲液。迅速将
CNBr活化的Sepharose转移到抗体溶液中。室温条件(20-25℃)下采用end-over-end的
方式充分混匀上述的混和物2-4h，
b偶联率的计算：离心，2,000RMP×1min，将sepharose离心至管底，将上清液转移
至新的离心管中，测定上清液的蛋白质含量值。计算偶联率为98.3％(说明偶联很成功)。
取离心至管底的sepharose，使用偶联缓冲液进行洗涤，除去多余的配体。
c封闭：封闭所有残留的活性基团。转移基质至0.1MTris-HCl缓冲液中。室温条件
下静置2-4h
d为除去偶联后未偶联上的多余的配体，依次用低、高两种pH的缓冲液对基质进行
洗涤，至少洗涤3个循环，每种缓冲液的使用量至少5倍基质体积。
每个洗涤循环步骤：先用0.1M醋酸/醋酸钠缓冲液洗涤，接着再用0.1MTris-HCl缓
冲液进行洗涤。
e用5倍胶体积的0.01％NaN3-PBS洗涤，并使用0.01％NaN3-PBS保存。
3.装柱
使用结合缓冲液制备浆液，以75％沉降基质和25％缓冲液的比例进行混合。以连续
性的操作向柱内倾入浆液。使用一个斜靠在柱内壁上的玻璃棒进行填柱操作，将有助于减
少气泡的产生。填柱后，关闭亲和柱下端的开口，并取下亲和柱的顶端部件。仔细操作，
使用缓冲液加入充填亲和柱的余下部分，以在亲和柱的顶端形成一个向上的弯液面。将顶
端筛板以一定的角度插入到亲和柱中，确保在筛板的下方没有空气。将筛板锁定在基质表
面适当的位置上，打开亲和柱下方的开口，用5倍柱床体积的无菌过滤的0.01％NaN3-PBS
过柱，并使用0.01％NaN3-PBS保存，至此T-2毒素、3-乙酰脱氧雪腐镰刀菌烯醇、黄曲
霉毒素、赭曲霉毒素、玉米赤霉烯酮亲和柱已装填并平衡完毕，可直接供使用。
实施例3饲料中的T-2毒素、HT-2毒素、3-乙酰脱氧雪腐镰刀菌烯醇、黄曲霉毒素B1、
B2、G1、G2、赭曲霉毒素A、玉米赤霉烯酮的检测
1.0饲料中的T-2毒素、HT-2毒素、3-乙酰脱氧雪腐镰刀菌烯醇、黄曲霉毒素B1、B2、
G1、G2、赭曲霉毒素、玉米赤霉烯酮的检测
饲料添加回收实验，分别添加20μg/kg，50μg/kg，100μg/kg三个浓度梯度。每个实验
做五组平行试验。
1.1饲料中T-2毒素、HT-2毒素、3-乙酰脱氧雪腐镰刀菌烯醇，黄曲霉毒素B1，B2，G1，
G2，赭曲霉毒素A、玉米赤霉烯酮的提取：
准确称取经过磨细(粒度小于2mm)的试样50.0g于250mL具塞锥形瓶中，加入5.0g
氯化钠及准确加入100.0mL甲醇-水(8+2)，以均质器高速搅拌提取2min，或摇床震荡
30min。定量滤纸过滤，准确移取5.0mL滤液并加入45.0mLPH7.0PBS溶液稀释，用玻
璃纤维滤纸过滤1～2次，至滤液澄清。
将免疫亲和柱连接于10.0mL玻璃注射器下。准确移取10.0mL样品提取液注入玻璃
注射器中，将空气压力泵与玻璃注射器连接，调节压力使溶液以约6mL/min流速缓慢通
过免疫亲和柱，直至2～3mL空气通过柱体。以10.0mL水淋洗柱子2次，弃去全部流出
液，并使2mL～3mL空气通过柱体。准确加入2.0mL色谱级甲醇洗脱，流速为1mL/min
～2mL/min，收集全部洗脱液于玻璃试管中，供检测用。
2.0高效液相色谱条件
3-乙酰脱氧雪腐镰刀菌烯醇
a流动相：乙腈：水(10：90)
b检测器：紫外检测器波长218nm
c色谱柱：C-18柱(柱长250mm，内径4.6mm，填料直径5μm)
d流速：0.8mL/min
黄曲霉毒素B1、B2、G1、G2：
a流动相：甲醇-水(45+55)
b检测器：荧光检测器激发波长360nm，发射波长440nm
c色谱柱：C-18柱(柱长150mm，内径4.6mm，填料直径5μm)
d流速：0.8mL/min
e光化学衍生化系统：光化学衍生池(连接于色谱柱后，然后通向荧光检测器)
赭曲霉毒素A：
a流动相：乙腈：水：乙酸(49.5：49.5：1)
b检测器：荧光检测器激发波长333nm，发射波长477nm
c色谱柱：C-18柱(柱长250mm，内径4.6mm，填料直径5μm)
d流速：0.8mL/min
玉米赤霉烯酮
a流动相：乙腈-水(60：40)
b检测器：荧光检测器激发波长274nm，发射波长440nm
c色谱柱：C-18柱(柱长150mm，内径4.6mm，填料直径5μm)
d流速：0.8mL/min
T-2毒素、HT-2毒素
a流动相：甲醇-水(60：40)
b检测器：紫外检测器208nm
c色谱柱：C-18柱(柱长150mm，内径4.6mm，填料直径5μm)
d流速：0.8mL/min
3.0定量
用进样器吸取50μL标准工作液注入高效液相色谱仪，在上述色谱条件下测定标准溶
液的响应值(峰高或峰面积)，分别得到标准溶液高效液相色谱图。参考谱图3-乙酰脱氧
雪腐镰刀菌烯醇见图1，黄曲霉毒素B1，B2，G1，G2见图2，赭曲霉毒素A见图3，玉
米赤霉烯酮见图4，T-2毒素和HT-2毒素见图5
4.0结果
花生添加回收率结果都在80-100％之间，RSD均小于10％。结果表明该方法完全满
足饲料中3-乙酰脱氧雪腐镰刀菌烯醇，黄曲霉毒素，赭曲霉毒素A和玉米赤霉烯酮检测
的分析要求。结果分别见表2-7。
表2饲料中3-乙酰脱氧雪腐镰刀菌烯醇添加回收率结果
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表3饲料中黄曲霉毒素添加回收率结果
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表4饲料中赭曲霉毒素A添加回收率结果
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表5饲料中玉米赤霉烯酮添加回收率结果
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表6饲料中T-2毒素添加回收率结果
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表7饲料中HT-2毒素添加回收率结果
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可见，本发明提供的T-2毒素单抗，可以同时高效分离提取出T-2毒素与HT-2毒素，
还不会对其他物质——3-乙酰脱氧雪腐镰刀菌烯醇、黄曲霉毒素B1、B2、G1、G2、赭曲
霉毒素A、玉米赤霉烯酮的测定产生干扰，从而可以准确测定出样品中的包含T-2毒素与
HT-2毒素在内的多种物质含量。
综上所述，本发明分泌T-2毒素单克隆抗体的杂交瘤细胞株，其分泌的单抗的腹水效
价比达到1:50000，优于现有的单抗。同时，该单抗与HT-2毒素的交叉反应达到92.8％，
与其他多种抗原的交叉反应低于0.1％。包含该单抗的免疫亲和柱-液相色谱法，可以同时
高效分离提取出T-2毒素与HT-2毒素，还不会对其他物质的测定产生干扰，从而准确测
定出样品中的包含T-2毒素与HT-2毒素在内的多种物质含量。