山蜡梅叶片在制备抑制横纹肌肉瘤细胞A204细胞增殖药物中的应用.pdf

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摘要
申请专利号:

CN201510984154.3

申请日:

20151224

公开号:

CN105412171A

公开日:

20160323

当前法律状态:

有效性:

失效

法律详情:

IPC分类号:

A61K36/185,A61K9/20,A61K47/36,A61P35/00,A61K127/00

主分类号:

A61K36/185,A61K9/20,A61K47/36,A61P35/00,A61K127/00

申请人:

济南新时代医药科技有限公司

发明人:

杨志华,李晶

地址:

250200 山东省济南市章丘市唐人中心A5-125号

优先权:

CN201510984154A

专利代理机构:

代理人:

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内容摘要

本发明属于中药技术领域,具体涉及一种山蜡梅叶片在制备抑制横纹肌肉瘤细胞A-204细胞增殖药物中的应用及山蜡梅叶片的制备方法。所述山蜡梅叶片由山蜡梅叶1500g作为原料药制成,采用超临界萃取制备而成,使得槲皮素和山柰素含量有很大提高。

权利要求书

1.山蜡梅叶片在制备抑制横纹肌肉瘤细胞A-204细胞增殖药物中的应用,所述山蜡梅叶片由山蜡梅叶1500g作为原料药制成,其特征在于,所述山蜡梅叶片的制备方法由下列步骤组成:取山蜡梅叶,加入到CO超临界萃取器中,乙醇作为夹带剂,夹带剂占总萃取溶剂的体积百分比为4-6%,萃取压力15-30MPa,温度30-50℃,CO流量l-3ml/g生药·min,萃取时间700-800min,得超临界萃取物,将超临界萃取物加入淀粉,70%乙醇制颗粒,干燥,压片,制成500片,每片重0.35g。 2.根据权利要求l所述的山蜡梅叶片在制备抑制横纹肌肉瘤细胞A-204细胞增殖药物中的应用,其特征在于,所述山蜡梅叶片的制备方法由下列步骤组成:取山蜡梅叶,加入到CO超临界萃取器中,乙醇作为夹带剂,夹带剂占总萃取溶剂的体积百分比为5%,萃取压力25MPa,温度40℃,CO流量2ml/g生药·min,萃取时间750min,得超临界萃取物,将超临界萃取物加入淀粉,70%乙醇制颗粒,干燥,压片,制成500片,每片重0.35g。

说明书

技术领域

本发明属于中药技术领域,具体涉及一种山蜡梅叶片在制备抑制横纹肌肉瘤细胞A-204细胞增殖药物中的应用及山蜡梅叶片的制备方法。

背景技术

山蜡梅叶片标准号WS-11310(ZD-1310)-2002,记载于国家中成药标准汇编内科内科肺系(一)分册。由山蜡梅叶1500g作为原料药制成,具有辛凉解表,清热解毒的功效。用于风热感冒,发热,恶寒,咽痛。

现有技术中,尚未有山蜡梅叶片在在制备抑制人横纹肌肉瘤细胞A-204细胞增殖药物中的应用的报道,也未见有山蜡梅叶片提取制备方面采用超临界萃取的报道,而水煎煮、水蒸气蒸馏法提取挥发油的方法,工艺粗糙、落后,杂质多,导致患者用量过大,不方便服用,严重影响了本品在临床上应用。

发明内容

发明目的:本发明的目的在于提供一种山蜡梅叶片在制备抑制横纹肌肉瘤细胞A-204细胞增殖药物中的应用。

本发明的另一个目的在于提供一种山蜡梅叶片的制备方法。

本发明的目的是通过如下的方案实现的:

山蜡梅叶片在制备抑制横纹肌肉瘤细胞A-204细胞增殖药物中的应用,所述山蜡梅叶片由山蜡梅叶1500g作为原料药制成,所述山蜡梅叶片的制备方法由下列步骤组成:取山蜡梅叶,加入到CO2超临界萃取器中,乙醇作为夹带剂,夹带剂占总萃取溶剂的体积百分比为4-6%,萃取压力15-30MPa,温度30-50℃,CO2流量l-3ml/g生药·min,萃取时间700-800min,得超临界萃取物,将超临界萃取物加入淀粉,70%乙醇制颗粒,干燥,压片,制成500片,每片重0.35g。

优选的,上述的山蜡梅叶片在制备抑制横纹肌肉瘤细胞A-204细胞增殖药物中的应用,所述山蜡梅叶片的制备方法由下列步骤组成:取山蜡梅叶,加入到CO2超临界萃取器中,乙醇作为夹带剂,夹带剂占总萃取溶剂的体积百分比为5%,萃取压力25MPa,温度40℃,CO2流量2ml/g生药·min,萃取时间750min,得超临界萃取物,将超临界萃取物加入淀粉,70%乙醇制颗粒,干燥,压片,制成500片,每片重0.35g。

现有技术中,山蜡梅叶片口服,一次6~7片,一日3次。山蜡梅叶片服药量大。采用本发明方法制备成的山蜡梅叶片每片重0.35g,每次仅需3片,一日服用3次。在具有更多活性成分的条件下大大减少了服用量。此结论可以通过下述试验证明。

试验一、不同方法制备的山蜡梅叶片中槲皮素和山柰素含量的比较

l、仪器及试药本发明山蜡梅叶片:按实施例1方法制备,使用1500g原料药,经提取制成500片,每片重0.35g。原山蜡梅叶片,按照WS-11310(ZD-1310)-2002标准方法制备。Agilent1200高效液相色谱仪;METTLERAE240电子分析天平;槲皮素和山柰素对照品(中国药品生物制品检定所)。

2、方法

照高效液相色谱法(中国药典2010年版一部附录ⅥD)测定。

色谱条件与系统适用性试验用十八烷基硅烷键合硅胶为填充剂;甲醇-0.5%磷酸溶液(45∶55)为流动相;检测波长为365nm。理论板数分别按槲皮素、山柰素峰计算均应不低于1500。

对照品溶液的制备精密称取槲皮素、山柰素对照品适量,分别加甲醇制成每1ml含6μg、8μg的溶液,即得。

供试品溶液的制备取本发明山蜡梅叶片10片,精密称定,研细,取0.60g,精密称定,加甲醇加热回流2次(50ml、50ml),每次1小时,滤过,合并滤液,残渣加甲醇适量洗涤,滤过,洗液并入滤液中,蒸干,残渣加水30ml使溶解,用冰醋酸调节pH值至3~4,加醋酸乙酯振摇提取5次,每次30ml,合并醋酸乙酯液,蒸干,残渣加甲醇适量使溶解,转移至10ml量瓶中,加甲醇至刻度,摇匀,即得。

对照产品供试品溶液的制备取对照的山蜡梅叶片20片,精密称定,研细,取1.2g,精密称定,加甲醇加热回流2次(50ml、50ml),每次1小时,滤过,合并滤液,残渣加甲醇适量洗涤,滤过,洗液并入滤液中,蒸干,残渣加水30ml使溶解,用冰醋酸调节pH值至3~4,加醋酸乙酯振摇提取5次,每次30ml,合并醋酸乙酯液,蒸干,残渣加甲醇适量使溶解,转移至10ml量瓶中,加甲醇至刻度,摇匀,即得。

测定法分别精密吸取对照品溶液与供试品溶液、对照产品供试品溶液各5μl,注入液相色谱仪,测定,即得。

3、结果

结果表明,本发明山蜡梅叶片中槲皮素和山柰素的含量为220-362μg/片;而原山蜡梅叶片中槲皮素和山柰素的含量为36μg/粒,每次服用量3片的槲皮素和山柰素含量为原片剂6粒含量的3-5倍,在服用量减少的情况下,槲皮素和山柰素含量有很大提高。

上述研究表明,采用本发明制备方法制备的山蜡梅叶片,有效成分含量远远高于WS-11310(ZD-1310)-2002标准记载的方法制备的山蜡梅叶片。

具体实施方式

下面结合具体实施例对本发明作更进一步的说明,以便本领域的技术人员更了解本发明,但不应将此理解为本发明上述主题的范围仅限于以下的实例,凡基于本发明上述内容所实现的技术均属于本发明的范围。

实施例1

取山蜡梅叶1500g,加入到CO2超临界萃取器中,乙醇作为夹带剂,夹带剂占总萃取溶剂的体积百分比为5%,萃取压力25MPa,温度40℃,CO2流量2ml/g生药·min,萃取时间750min,得超临界萃取物,将超临界萃取物加入淀粉,70%乙醇制颗粒,干燥,压片,制成500片,每片重0.35g。

经检测,成品中槲皮素和山柰素的含量为362μg/片。

实施例2

取山蜡梅叶1500g,加入到CO2超临界萃取器中,乙醇作为夹带剂,夹带剂占总萃取溶剂的体积百分比为4%,萃取压力15MPa,温度30℃,CO2流量1ml/g生药·min,萃取时间800min,得超临界萃取物,将超临界萃取物加入淀粉,70%乙醇制颗粒,干燥,压片,制成500片,每片重0.35g。

经检测,成品中槲皮素和山柰素的含量为220μg/片。

实施例3

取山蜡梅叶1500g,加入到CO2超临界萃取器中,乙醇作为夹带剂,夹带剂占总萃取溶剂的体积百分比为6%,萃取压力30MPa,温度60℃,CO2流量3ml/g生药·min,萃取时间700min,得超临界萃取物,将超临界萃取物加入淀粉,70%乙醇制颗粒,干燥,压片,制成500片,每片重0.35g。

经检测,成品中槲皮素和山柰素的含量为308μg/片。

实施例4:山蜡梅叶片抑制横纹肌肉瘤细胞A-204细胞增殖的实验研究资料

1.实验材料

1.1实验用细胞株

人横纹肌肉瘤细胞A-204细胞,山东大学实验室细胞库,DMEM+10%FBS常规培养。

1.2实验药物

研究药物:本发明山蜡梅叶片:按实施例1方法制备。

药液储液:称取100mg山蜡梅叶片,溶于5ml无水乙醇中,0.2μm滤器过滤,500μldoff管分装,-20℃存储,同时0.2μm滤器过滤无水乙醇以备对照组之用。

1.3实验试剂

DMEM(GIBCO公司Cat.No.12100-061Lot.No.758137);胎牛血清(浙江天杭生物科技有限公司Lot.No.100419);NaHC03(上海久亿化学试剂有限公司Cat.No.11810-033Lot.No.1088387);Trypsin(AMRESCO公司);EDTA(AMRESCO公司);PenicillinGSodiumSalt(AMRESCO公司1);StreptomycinSulfate(AMRESCO);无水乙醇(淄博亚杜兰经贸有限公司);MTT(Biosharp批号:0793):PBS(实验室自配);

1.4实验器材

莱卡倒置显微镜(德国Leica型号:DMIL);可见-紫外光微孔板检测仪(美国MD公司型号:SPECTRAMAX190);C02培养箱(FORMA型号:3111);超净台(苏净集团安泰公司制造型号:SW-CJ-ZFD);纯水仪(美国Sprlng公司型号:S/N020579);精密移液器(法国吉尔森公司型号:P2);电子天平(德国赛多利斯有限公司型号:BT323S);全自动高压灭菌锅(日本SANYO公司型号:MLS-3020);台式电热鼓风干燥箱(上海精密实验设备公司型号:DHG9123A);冰箱(西门子公司型号:KG18V21TI);液氮罐(CBS型号:2001);低速离心机(上海安亭科学仪器厂型号:KA-1000);0.2μm滤器(MILLIPORE型号:SLGP033RB);1cm培养皿(NEST公司)、96孔培养板(NEST公司);细胞计数板;离心管、移液管、Tips若干。

2.实验方法

1)A-204细胞用DMEM+10%FBS于37℃、5%C02进行常规培养(10cm培养皿),当细胞生长至对数期时,收集细胞,弃去培养液,PBS轻洗3遍,加入3ml0.25%胰蛋白酶-0.04%EDTA,37℃消化2min后,向其中加入5ml完全培养基中和反应,吹打细胞后将其转入离心管中,1000rpm离心5min,调整细胞悬液浓度3×104个/ml。

2)将细胞种入96孔培养板中,每孔加入细胞悬液180μl,培养板放入细胞培养箱中(37℃,5%C02)常规培养。

3)根据细胞生长情况,一般长至50%-70%,加入山蜡梅叶片溶液,继续培养24h。

4)24h后加入20μlMTT溶液(5mg/ml,即0.5%MTT),继续培养4h。

5)4h后扣板法倒去上清,用吸水纸轻轻拍干,每孔加入200μl二甲基亚砜,置摇床上低速振荡10min,使结晶物充分溶解。在酶联免疫检测仪490nm处测量各孔的吸光值。

6)同时设置本底(不加细胞,只加培养液),对照孔(细胞、相同浓度的药物溶解介质、培养液、MTT、二甲基亚砜),每组设定6个复孔。

7)结果以药物对细胞的抑制率表示:细胞增值抑制率(%)=(对照孔OD值-给药孔OD值)、对照孔OD值×100%。实验重复3次。

3.统计处理

采用MicrosoftExcel2007软件中的相关分析和Studentt检验,数据以mean±S.D.表示。

4.实验结果

MTT法实验后统计结果显示,与对照组比较,当剂量达到5mg/ml时,对A-204细胞增殖抑制有差异(P<0.05),剂量在10mg/ml时该差异具有显著性(P<0.01),当剂量达到15-20mg/ml时有极显著性差异(P<0.001)。

表1山蜡梅叶片对A-204细胞增殖抑制影响研究(X±SD)

组别 药物浓度(mg/ml) 抑制率(%) 对照组 0 0 1 5 7.23±2.02 2 10 13.33±3.64* 3 15 20.54±7.58** 4 20 26.86±10.03**

注:与对照组比较,*P<O.01;**P<0.001。

5.实验结论

本发明的山蜡梅叶片可以抑制A-204细胞增殖,减少A-204细胞的细胞生长数目,该作用呈剂量依赖性。

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1、(10)申请公布号 (43)申请公布日 (21)申请号 201510984154.3 (22)申请日 2015.12.24 A61K 36/185(2006.01) A61K 9/20(2006.01) A61K 47/36(2006.01) A61P 35/00(2006.01) A61K 127/00(2006.01) (71)申请人 济南新时代医药科技有限公司 地址 250200 山东省济南市章丘市唐人中心 A5-125 号 (72)发明人 杨志华 李晶 (54) 发明名称 山蜡梅叶片在制备抑制横纹肌肉瘤细胞 A-204 细胞增殖药物中的应用 (57) 摘要 本发明属于中药技术领域, 具。

2、体涉及一种山 蜡梅叶片在制备抑制横纹肌肉瘤细胞 A-204 细胞 增殖药物中的应用及山蜡梅叶片的制备方法。所 述山蜡梅叶片由山蜡梅叶 1500g 作为原料药制 成, 采用超临界萃取制备而成, 使得槲皮素和山柰 素含量有很大提高。 (51)Int.Cl. (19)中华人民共和国国家知识产权局 (12)发明专利申请 权利要求书1页 说明书4页 CN 105412171 A 2016.03.23 CN 105412171 A 1/1 页 2 1.山蜡梅叶片在制备抑制横纹肌肉瘤细胞 A-204 细胞增殖药物中的应用, 所述山蜡梅 叶片由山蜡梅叶 1500g 作为原料药制成, 其特征在于, 所述山蜡梅叶。

3、片的制备方法由下列 步骤组成 : 取山蜡梅叶, 加入到CO2超临界萃取器中, 乙醇作为夹带剂, 夹带剂占总萃取溶剂 的体积百分比为 4-6%, 萃取压力 15-30MPa, 温度 30-50, CO2流量 l-3ml/g 生药min, 萃 取时间 700-800min, 得超临界萃取物, 将超临界萃取物加入淀粉, 70% 乙醇制颗粒, 干燥, 压 片, 制成 500 片, 每片重 0.35g。 2.根据权利要求 l 所述的山蜡梅叶片在制备抑制横纹肌肉瘤细胞 A-204 细胞增殖药 物中的应用, 其特征在于, 所述山蜡梅叶片的制备方法由下列步骤组成 : 取山蜡梅叶, 加入 到 CO2超临界萃取器。

4、中, 乙醇作为夹带剂, 夹带剂占总萃取溶剂的体积百分比为 5%, 萃取压 力 25MPa, 温度 40, CO2流量 2ml/g 生药min, 萃取时间 750min, 得超临界萃取物, 将超临 界萃取物加入淀粉, 70% 乙醇制颗粒, 干燥, 压片, 制成 500 片, 每片重 0.35g。 权 利 要 求 书 CN 105412171 A 2 1/4 页 3 山蜡梅叶片在制备抑制横纹肌肉瘤细胞 A-204 细胞增殖药 物中的应用 技术领域 0001 本发明属于中药技术领域, 具体涉及一种山蜡梅叶片在制备抑制横纹肌肉瘤细胞 A-204 细胞增殖药物中的应用及山蜡梅叶片的制备方法。 背景技术 。

5、0002 山蜡梅叶片标准号 WS-11310(ZD-1310)-2002, 记载于国家中成药标准汇编内科内 科肺系 (一) 分册。由山蜡梅叶 1500g 作为原料药制成, 具有辛凉解表, 清热解毒的功效。用 于风热感冒, 发热, 恶寒, 咽痛。 0003 现有技术中, 尚未有山蜡梅叶片在在制备抑制人横纹肌肉瘤细胞 A-204 细胞增殖 药物中的应用的报道, 也未见有山蜡梅叶片提取制备方面采用超临界萃取的报道, 而水煎 煮、 水蒸气蒸馏法提取挥发油的方法, 工艺粗糙、 落后, 杂质多, 导致患者用量过大, 不方便 服用, 严重影响了本品在临床上应用。 发明内容 0004 发明目的 : 本发明的目。

6、的在于提供一种山蜡梅叶片在制备抑制横纹肌肉瘤细胞 A-204 细胞增殖药物中的应用。 0005 本发明的另一个目的在于提供一种山蜡梅叶片的制备方法。 0006 本发明的目的是通过如下的方案实现的 : 山蜡梅叶片在制备抑制横纹肌肉瘤细胞 A-204 细胞增殖药物中的应用, 所述山蜡梅 叶片由山蜡梅叶 1500g 作为原料药制成, 所述山蜡梅叶片的制备方法由下列步骤组成 : 取 山蜡梅叶, 加入到 CO2超临界萃取器中, 乙醇作为夹带剂, 夹带剂占总萃取溶剂的体积百 分比为 4-6%, 萃取压力 15-30MPa, 温度 30-50, CO2流量 l-3ml/g 生药min, 萃取时间 700-8。

7、00min, 得超临界萃取物, 将超临界萃取物加入淀粉, 70% 乙醇制颗粒, 干燥, 压片, 制成 500 片, 每片重 0.35g。 0007 优选的, 上述的山蜡梅叶片在制备抑制横纹肌肉瘤细胞 A-204 细胞增殖药物中的 应用, 所述山蜡梅叶片的制备方法由下列步骤组成 : 取山蜡梅叶, 加入到 CO2超临界萃取器 中, 乙醇作为夹带剂, 夹带剂占总萃取溶剂的体积百分比为 5%, 萃取压力 25MPa, 温度 40, CO2流量 2ml/g 生药min, 萃取时间 750min, 得超临界萃取物, 将超临界萃取物加入淀粉, 70% 乙醇制颗粒, 干燥, 压片, 制成 500 片, 每片重。

8、 0.35g。 0008 现有技术中, 山蜡梅叶片口服, 一次67片, 一日3次。 山蜡梅叶片服药量大。 采 用本发明方法制备成的山蜡梅叶片每片重 0.35g, 每次仅需 3 片, 一日服用 3 次。在具有更 多活性成分的条件下大大减少了服用量。此结论可以通过下述试验证明。 0009 试验一、 不同方法制备的山蜡梅叶片中槲皮素和山柰素含量的比较 l、 仪器及试药本发明山蜡梅叶片 : 按实施例 1 方法制备, 使用 1500g 原料药, 经提取制 成 500 片, 每片重 0.35g。原山蜡梅叶片, 按照 WS-11310(ZD-1310)-2002 标准方法制备。 说 明 书 CN 10541。

9、2171 A 3 2/4 页 4 Agilent1200 高效液相色谱仪 ; METTLER AE240 电子分析天平 ; 槲皮素和山柰素对照品 (中 国药品生物制品检定所) 。 0010 2、 方法 照高效液相色谱法 (中国药典 2010 年版一部附录 D) 测定。 0011 色谱条件与系统适用性试验 用十八烷基硅烷键合硅胶为填充剂 ; 甲醇 -0.5 磷酸溶液 (45 55) 为流动相 ; 检测波长为 365nm。理论板数分别按槲皮素、 山柰素峰计算 均应不低于 1500。 0012 对照品溶液的制备 精密称取槲皮素、 山柰素对照品适量, 分别加甲醇制成每 1ml 含 6g、 8g 的溶液。

10、, 即得。 0013 供试品溶液的制备 取本发明山蜡梅叶片 10 片, 精密称定, 研细, 取 0.60g, 精密 称定, 加甲醇加热回流 2 次 (50ml、 50ml) , 每次 1 小时, 滤过, 合并滤液, 残渣加甲醇适量洗 涤, 滤过, 洗液并入滤液中, 蒸干, 残渣加水 30ml 使溶解, 用冰醋酸调节 pH 值至 3 4, 加醋 酸乙酯振摇提取 5 次, 每次 30ml, 合并醋酸乙酯液, 蒸干, 残渣加甲醇适量使溶解, 转移至 10ml 量瓶中, 加甲醇至刻度, 摇匀, 即得。 0014 对照产品供试品溶液的制备 取对照的山蜡梅叶片 20 片, 精密称定, 研细, 取 1.2g。

11、, 精密称定, 加甲醇加热回流 2 次 (50ml、 50ml) , 每次 1 小时, 滤过, 合并滤液, 残渣加 甲醇适量洗涤, 滤过, 洗液并入滤液中, 蒸干, 残渣加水 30ml 使溶解, 用冰醋酸调节 pH 值至 3 4, 加醋酸乙酯振摇提取 5 次, 每次 30ml, 合并醋酸乙酯液, 蒸干, 残渣加甲醇适量使溶 解, 转移至 10ml 量瓶中, 加甲醇至刻度, 摇匀, 即得。 0015 测定法 分别精密吸取对照品溶液与供试品溶液、 对照产品供试品溶液各 5l, 注入液相色谱仪, 测定, 即得。 0016 3、 结果 结果表明, 本发明山蜡梅叶片中槲皮素和山柰素的含量为 220-36。

12、2g / 片 ; 而原山蜡 梅叶片中槲皮素和山柰素的含量为36g /粒, 每次服用量3片的槲皮素和山柰素含量为原 片剂 6 粒含量的 3-5 倍, 在服用量减少的情况下, 槲皮素和山柰素含量有很大提高。 0017 上述研究表明, 采用本发明制备方法制备的山蜡梅叶片, 有效成分含量远远高于 WS-11310(ZD-1310)-2002 标准记载的方法制备的山蜡梅叶片。 具体实施方式 0018 下面结合具体实施例对本发明作更进一步的说明, 以便本领域的技术人员更了解 本发明, 但不应将此理解为本发明上述主题的范围仅限于以下的实例, 凡基于本发明上述 内容所实现的技术均属于本发明的范围。 0019 。

13、实施例 1 取山蜡梅叶 1500g, 加入到 CO2超临界萃取器中, 乙醇作为夹带剂, 夹带剂占总萃取溶 剂的体积百分比为 5%, 萃取压力 25MPa, 温度 40, CO2流量 2ml/g 生药min, 萃取时间 750min, 得超临界萃取物, 将超临界萃取物加入淀粉, 70% 乙醇制颗粒, 干燥, 压片, 制成 500 片, 每片重 0.35g。 0020 经检测, 成品中槲皮素和山柰素的含量为 362g / 片。 0021 实施例 2 说 明 书 CN 105412171 A 4 3/4 页 5 取山蜡梅叶 1500g, 加入到 CO2超临界萃取器中, 乙醇作为夹带剂, 夹带剂占总萃。

14、取溶 剂的体积百分比为 4%, 萃取压力 15MPa, 温度 30, CO2流量 1ml/g 生药min, 萃取时间 800min, 得超临界萃取物, 将超临界萃取物加入淀粉, 70% 乙醇制颗粒, 干燥, 压片, 制成 500 片, 每片重 0.35g。 0022 经检测, 成品中槲皮素和山柰素的含量为 220g / 片。 0023 实施例 3 取山蜡梅叶 1500g, 加入到 CO2超临界萃取器中, 乙醇作为夹带剂, 夹带剂占总萃取溶 剂的体积百分比为 6%, 萃取压力 30MPa, 温度 60, CO2流量 3ml/g 生药min, 萃取时间 700min, 得超临界萃取物, 将超临界萃。

15、取物加入淀粉, 70% 乙醇制颗粒, 干燥, 压片, 制成 500 片, 每片重 0.35g。 0024 经检测, 成品中槲皮素和山柰素的含量为 308g / 片。 0025 实施例 4 : 山蜡梅叶片抑制横纹肌肉瘤细胞 A-204 细胞增殖的实验研究资料 1实验材料 1.1 实验用细胞株 人横纹肌肉瘤细胞 A-204 细胞, 山东大学实验室细胞库, DMEM+10%FBS 常规培养。 0026 1.2 实验药物 研究药物 : 本发明山蜡梅叶片 : 按实施例 1 方法制备。 0027 药液储液 : 称取 100mg 山蜡梅叶片, 溶于 5ml 无水乙醇中, 0.2m 滤器过滤, 500ldof。

16、f 管分装, -20存储, 同时 0.2m 滤器过滤无水乙醇以备对照组之用。 0028 1.3 实验试剂 DMEM( GIBCO 公司 Cat.No.12100-061 Lot.No.758137) ; 胎牛血清 (浙江天杭生物科技 有限公司 Lot.No.100419) ; NaHC03( 上海久亿化学试剂有限公司 Cat.No.11810-033 Lot. No. 1088387) ; Trypsin (AMRESCO 公司) ; EDTA (AMRESCO 公司) ; Penicillin G Sodium Salt (AMRESCO 公司 1) ; Streptomycin Sulfa。

17、te(AMRESCO) ; 无水乙醇 (淄博亚杜兰经贸有限公 司) ; MTT (Biosharp 批号 : 0793) : PBS(实验室自配) ; 1.4 实验器材 莱卡倒置显微镜 (德国 Leica 型号 : DMIL) ; 可见 - 紫外光微孔板检测仪 (美国 MD 公司型 号 : SPECTRAMAX 190) ; C02培养箱 (FORMA型号 : 3111) ; 超净台 (苏净集团安泰公司制造型号 : SW-CJ-ZFD) ; 纯水仪 (美国 Sprlng 公司型号 : S/N 020579) ; 精密移液器 (法国吉尔森公司型 号 : P2) ; 电子天平 (德国赛多利斯有限公。

18、司型号 : BT323S) ; 全自动高压灭菌锅 (日本 SANYO 公司型号 : MLS-3020) ; 台式电热鼓风干燥箱 ( 上海精密实验设备公司型号 : DHG9123A) ; 冰 箱 ( 西门子公司型号 : KG18V21TI) ; 液氮罐 (CBS 型号 : 2001) ; 低速离心机 (上海安亭科学仪 器厂型号 : KA-1000) ; 0.2m 滤器 (MILLIPORE 型号 : SLGP033RB) ; 1cm 培养皿 (NEST 公司 )、 96 孔培养板 (NEST 公司) ; 细胞计数板 ; 离心管、 移液管、 Tips 若干。 0029 2实验方法 1)A-204 。

19、细胞用 DMEM+10%FBS 于 37、 5%C02进行常规培养 (10cm 培养皿) , 当细胞生长 至对数期时, 收集细胞, 弃去培养液, PBS 轻洗 3 遍, 加入 3ml 0.25% 胰蛋白酶 -0.04%EDTA, 37消化 2min 后, 向其中加入 5ml 完全培养基中和反应, 吹打细胞后将其转入离心管中, 1000rpm 离心 5min, 调整细胞悬液浓度 3104个 /ml。 说 明 书 CN 105412171 A 5 4/4 页 6 0030 2) 将细胞种入 96 孔培养板中, 每孔加入细胞悬液 180l, 培养板放入细胞培养箱 中 (37, 5%C02) 常规培养。

20、。 0031 3) 根据细胞生长情况, 一般长至 50%-70%, 加入山蜡梅叶片溶液, 继续培养 24h。 0032 4)24h 后加入 20l MTT 溶液 (5mg/ml, 即 0.5%MTT) , 继续培养 4h。 0033 5)4h 后扣板法倒去上清, 用吸水纸轻轻拍干, 每孔加入 200l 二甲基亚砜, 置摇床 上低速振荡 10min, 使结晶物充分溶解。在酶联免疫检测仪 490nm 处测量各孔的吸光值。 0034 6) 同时设置本底 (不加细胞, 只加培养液) , 对照孔 (细胞、 相同浓度的药物溶解介 质、 培养液、 MTT、 二甲基亚砜) , 每组设定 6 个复孔。 0035。

21、 7) 结果以药物对细胞的抑制率表示 : 细胞增值抑制率 (%)=(对照孔 OD 值 - 给药 孔 OD 值) 、 对照孔 OD 值 100%。实验重复 3 次。 0036 3统计处理 采用Microsoft Excel 2007软件中的相关分析和Student t检验, 数据以meanS D 表示。 0037 4实验结果 MTT 法实验后统计结果显示, 与对照组比较, 当剂量达到 5mg/ml 时, 对 A-204 细胞 增殖抑制有差异 (P0.05), 剂量在 10mg/ml 时该差异具有显著性 (P0.01), 当剂量达到 15-20mg/ml 时有极显著性差异 (P0.001)。 0038 表 1 山蜡梅叶片对 A-204 细胞增殖抑制影响研究 (XSD) 组别药物浓度 (mg/ml)抑制率 (%) 对照组00 157.232.02 21013.333.64* 31520.547.58* 42026.8610.03* 注 : 与对照组比较, *PO.01 ; *P0.001。 0039 5实验结论 本发明的山蜡梅叶片可以抑制A-204细胞增殖, 减少A-204细胞的细胞生长数目, 该作 用呈剂量依赖性。 说 明 书 CN 105412171 A 6 。

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