具有增强的产量相关性状的植物和用于产生该植物的方法.pdf

本申请提供了通过增加编码低硫上调的多肽(LSU)的核酸在植物中的表达而增强产量相关性状的方法。本发明还提供了具有增加了编码LSU多肽之核酸的表达的植物，所述植物相对于相应的对照植物而言具有增强的产量相关性状。本发明还提供可用于增加植物的产量相关性状的LSU编码核酸以及包含该核酸的构建体。

权利要求书1.  用于在植物中相对于对照植物增强一种或多种产量相关性状的方法，包括增加编码LSU多肽的核酸在植物中的表达，其中所述LSU多肽由包含选自下述的核酸分子的核酸分子编码：(i).SEQ ID NO：1、33、3、5、7、9、11、13、15、17、19、21、23、25、27、29、31、35或47(的任意之一)所表示的核酸；(ii).SEQ ID NO：1、33、3、5、7、9、11、13、15、17、19、21、23、25、27、29、31、35或47(的任意之一)所表示的核酸的互补序列；(iii).编码SEQ ID NO：2、34、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、36或48(的任意之一)所表示的多肽的核酸，优选由于遗传密码的简并性，所述分离的核酸可以来源于SEQ ID NO：2、34、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、36或48(的任意之一)所表示的多肽序列，并且还优选相对于对照植物赋予一种或多种增强的产量相关性状；(iv).核酸，所述核酸以递增的优先顺序与SEQ ID NO：1、33、3、5、7、9、11、13、15、17、19、21、23、25、27、29、31、35或47的任一所述核酸序列具有至少30％、31％、32％、33％、34％、35％、36％、37％、38％、39％、40％、41％、42％、43％、44％、45％、46％、47％、48％、49％、50％、51％、52％、53％、54％、55％、56％、57％、58％、59％、60％、61％、62％、63％、64％、65％、66％、67％、68％、69％、70％、71％、72％、73％、74％、75％、76％、77％、78％、79％、80％、81％、82％、83％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％或99％的序列同一性，并且还优选相对于对照植物赋予一种或多种增强的产量相关性状；(v).第一核酸分子，其在严格条件下与(ii)的第二核酸分子杂交，并优选相对于对照植物赋予一种或多种增强的产量相关性状；(vi).编码多肽的核酸，所述多肽以递增的优先顺序与SEQ ID NO：2、34、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、36或48(的任意之一)所表示的氨基酸序列具有至少50％、51％、52％、53％、54％、55％、56％、57％、58％、59％、60％、61％、62％、63％、64％、65％、66％、67％、68％、69％、70％、71％、72％、73％、74％、75％、76％、77％、78％、79％、80％、81％、82％、83％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％或99％的序列同一性，并且还优选相对于对照植物赋予一种或多种增强的产量相关性状；(vii).编码多肽的核酸，其中所述LSU多肽在其来源物种中的表达在硫缺乏的条件下得到增加，并且其中所述LSU多肽具有小于7.0的等电点(pI)且是等于或者小于125个氨基酸的短长度的成熟蛋白质，并优选相对于对照植物赋予一种或多种增强的产量相关性状；或(viii).包含上文(i)至(vii)的特征的任意组合的核酸。2.  用于在植物中相对于对照植物增强一种或多种产量相关性状的方法，包括增加编码LSU多肽的核酸在植物中的表达，其中所述LSU多肽是靶向胞质和/或核的小于15000Da的小型酸性蛋白质。3.  权利要求1或2的任一项的方法，其中所述LSU多肽由权利要求1的(i)至(viii)之一中定义的核酸编码，并且所述LSU多肽是小于15000Da的小型酸性蛋白质，当用InterProScan软件(Zdobnov E.M.和Apweiler R.：″InterProScan-an integration platform for the signature-recognition methods in InterPro.″；Bioinformatics，2001，17(9)：847-8；InterPro数据库，Release36.0，2012年2月23日)分析时，所述LSU多肽没有可检测的特征。4.  权利要求1至3的任一项的方法，其中所述增加的表达通过在植 物中引入和表达编码所述LSU多肽的所述核酸而实现。5.  权利要求1至4的任一项的方法，其中所述LSU多肽包含a.全部以下基序：基序4(SEQ ID NO：45)：M[KR][SKR]E[ML][LQ][QR][LA]W[RE]R[TL][QVR]VAEEAEERLCSQL[AG]ELE[AV]E[SA][LV][SD][QH]ARD[YC]H[SDA]RI[VIL][FS]L[MV][DN][QE]基序5(SEQ ID NO：46)：TV[K或无][ATD][AG][ES]E[VEM][DEM][E或无]L[RK][RK][RK]N[GE]E[LM]E[KR][EA][VL]基序1(SEQ ID NO：37)：M[KR][KR]E[ML][LQ]Q[LA]W[RE]R[TL][QVR]VAEEAEERLCSQL[AG]ELE[AV]E[SA][LV]DQARDYH[SD]RI[VIL][FS]L[MV][DN][QE]基序2(SEQ ID NO：38)：TV[AT]A[ES]E[VE][DE]EL[RK][RK][RK]N[GE]E[LM]E[KR][EA][VL]基序3(SEQ ID NO：39)：[VM][AT]EEAEE[RQHS]LCSQL[AG]ELE[AV]E或b.a下所定义的基序1至5中任意4个、3个或2个；或c.基序3和基序2或基序1或者全部三个基序1和基序2和基序3；或d.a下所定义的基序3或基序1或基序2或基序4或基序5。6.  权利要求1至5的任一项的方法，其中所述一种或多种增强的产量相关性状包含相对于对照植物增加的生物量和/或增加的种子产量，并且优选包含相对于对照植物增加的地上生物量和/或增加的糖产量。7.  权利要求1-6的任一项的方法，其中所述一种或多种增强的产量相关性状在非胁迫条件下获得。8.  权利要求1至6的任一项的方法，其中所述一种或多种增强的产量相关性状在环境胁迫条件下，优选在温度胁迫、盐胁迫、氮缺乏和/或干旱条件下获得。9.  权利要求1至8的任一项的方法，其中所述编码LSU多肽的核酸是植物来源的，优选来自双子叶植物，还优选来自十字花科(Brassicaceae)，更优选来自拟南芥属(Arabidopsis)，最优选来自拟南芥(Arabidopsis thaliana)。10.  权利要求1至8的任一项的方法，其中所述核酸分子或所述多肽分别是植物来源的，优选来自双子叶植物，还优选来自杨柳科(Salicaceae)，更优选来自杨属(Populus)，最优选来自毛果杨(Populus trichocarpa)。11.  权利要求1至10的任一项的方法，其中所述编码LSU多肽的核酸编码表A中列出的任意一种所述多肽或者是该核酸的一部分，或者是能与该核酸的互补序列杂交的核酸。12.  权利要求1至10的任一项的方法，其中所述核酸序列编码表A中给出的任一所述多肽的直向同源物或旁系同源物。13.  权利要求1至12的任一项的方法，其中所述核酸与组成型启动子，优选与中等强度的组成型启动子，优选与植物启动子，更优选与GOS2启动子，最优选与来自稻的GOS2启动子有效连接。14.  核酸分子，所述核酸分子选自：(i)SEQ ID NO：1或33，优选SEQ ID NO：1所表示的核酸；(ii)SEQ ID NO：1或33，优选SEQ ID NO：1所表示的核酸的互补 序列；(iii)编码LSU多肽的核酸，所述多肽以递增的优先顺序与SEQ IDNO：2或34，优选与SEQ ID NO：2所表示的所述氨基酸序列具有至少40％、45％、50％、51％、52％、53％、54％、55％、56％、57％、58％、59％、60％、61％、62％、63％、64％、65％、66％、67％、68％、69％、70％、71％、72％、73％、74％、75％、76％、77％、78％、79％、80％、81％、82％、83％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％或99％的序列同一性，或者备选地包含一个或多个基序，所述基序以递增的优先顺序与SEQ ID NO：37、38、39、45或46中，优选与SEQ ID NO：37、38或39，更优选与SEQ ID NO：39中给出的任何一个或多个所述基序具有小于10个、9个、8个、7个、6个、5个、4个、3个、2个、1个或0个替换，并且还优选相对于对照植物赋予一种或多种增强的产量相关性状；(iv)编码LSU多肽的核酸，所述多肽以递增的优先顺序与SEQ ID NO：2或34，优选与SEQ ID NO：2所表示的所述氨基酸序列具有至少40％、45％、50％、51％、52％、53％、54％、55％、56％、57％、58％、59％、60％、61％、62％、63％、64％、65％、66％、67％、68％、69％、70％、71％、72％、73％、74％、75％、76％、77％、78％、79％、80％、81％、82％、83％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％或99％的序列同一性，并另外地包含一个或多个基序，所述基序以递增的优先顺序与SEQ ID NO：37、38、39、45或46中，优选与SEQ ID NO：37、38或39，更优选与SEQ ID NO：39中给出的任何一个或多个所述基序具有小于10个、9个、8个、7个、6个、5个、4个、3个、2个、1个或0个替换，并且还优选相对于对照植物赋予一种或多种增强的产量相关性状；和(V)核酸分子，所述核酸分子在高严格杂交条件下与(i)至(iii)的核酸分子杂交并且优选相对于对照植物赋予一种或多种增强的产量相关性状。15.  多肽，所述多肽选自：(i)SEQ ID NO：2或34所表示的氨基酸；(ii)氨基酸序列，其以递增的优先顺序与SEQ ID NO：2或34，优选与SEQ ID NO：2所表示的所述氨基酸序列具有至少40％、45％、50％、51％、52％、53％、54％、55％、56％、57％、58％、59％、60％、61％、62％、63％、64％、65％、66％、67％、68％、69％、70％、71％、72％、73％、74％、75％、76％、77％、78％、79％、80％、81％、82％、83％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％或99％的序列同一性，或者备选地包含一个或多个所述基序，所述基序以递增的优选顺序与SEQ ID NO：37、38、39、45或46中，优选与SEQ ID NO：37、38或39，更优选与SEQ ID NO：39中给出的任何一个或多个基序具有小于10个、9个、8个、7个、6个、5个、4个、3个、2个、1个或0个替换，并且还优选相对于对照植物赋予一种或多种增强的产量相关性状；(iii)氨基酸序列，其以递增的优先顺序与SEQ ID NO：2或34，优选与SEQ ID NO：2所表示的所述氨基酸序列具有至少40％、45％、50％、51％、52％、53％、54％、55％、56％、57％、58％、59％、60％、61％、62％、63％、64％、65％、66％、67％、68％、69％、70％、71％、72％、73％、74％、75％、76％、77％、78％、79％、80％、81％、82％、83％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％或99％的序列同一性，或者另外地包含一个或多个基序，所述基序以递增的优选顺序与SEQ ID NO：37、38、39、45或46中，优选与SEQ ID NO：37、38或39，更优选与SEQ ID NO：39中给出的任何一个或多个所述基序小于10个、9个、8个、7个、6个、5个、4个、3个、2个、1个或0个替换，并且还优选相对于对照植物赋予一种或多种增强的产量相关性状；(iv)上文(i)或(ii)给出的任何氨基酸序列的衍生物，并且还优选相对于对照植物赋予一种或多种增强的产量相关性状。16.  通过权利要求1至13的任一项的方法获得的植物、其植物部分，包括种子或植物细胞，其中所述植物、植物部分或植物细胞包含如权利要求14中所定义的编码LSU多肽的重组核酸或如权利要求1、2、5、9至12的任一项中所定义的编码LSU多肽的重组核酸，或者包含权利要求15所定义的LSU多肽或权利要求2、3、9或10中任一项中所定义的LSU多肽。17.  过表达构建体，包含：(i)权利要求1、2、5、9至12或14的任一项中所定义的编码LSU多肽的核酸或者编码权利要求15所定义的LSU多肽的核酸或权利要求2、3、9或10中任一项中所定义的核酸；(ii)能驱动(i)的核酸序列表达的一个或多个调控序列；和任选地(iii)转录终止序列。18.  权利要求17的过表达构建体，其中所述调控序列之一是组成型启动子，优选中等强度的组成型启动子，优选植物启动子，更优选GOS2启动子，最优选来自稻的GOS2启动子。19.  用权利要求17或18的构建体转化的植物、植物部分或植物细胞。20.  用于产生转基因植物的方法，所述转基因植物相对于对照植物具有一种或多种增强的产量相关性状，优选相对于对照植物增加的产量，和更优选相对于对照植物增加的种子产量和/或增加的生物量，所述方法包括：(i)在植物细胞或植物中引入和表达权利要求14或权利要求1、2、5、9至12的任一项中所定义的编码LSU多肽的核酸；其中通过编码LSU多肽的所述核酸的表达，增加所述编码的LSU多肽的丰度，和(ii)在促进植物生长和发育的条件下培养所述植物细胞或植物。21.  转基因植物或来源于所述转基因植物的转基因植物细胞，所述转基因植物在环境胁迫条件和/或非胁迫条件下相对于对照植物具有一种或多种增强的产量相关性状，优选相对于对照植物增加的产量，和更优选增加的种子产量和/或增加的生物量，所述转基因植物产生自权利要求14或权利要求1、2、5、9至12的任一项中所定义的编码LSU多肽的核酸的增加表达。22.  权利要求16、19或21的转基因植物或其来源的转基因植物细胞，其中所述植物是作物植物，例如双子叶植物如大豆、棉花、油菜包括低芥酸油菜、甜菜、糖萝卜或苜蓿；或者单子叶植物如甘蔗；或谷物如稻、玉米、小麦、大麦、粟、黑麦、黑小麦、高粱、野小麦、德国小麦、一粒系小麦、teff、高粱和燕麦。23.  权利要求16、19、21或22的任一项的植物的可收获部分，其中所述可收获部分优选是地上生物量，优选苗生物量、甜菜块根生物量和/或种子。24.  来源于权利要求16、19、21或22的植物和/或来源于权利要求23的植物的可收获部分的产品。25.  权利要求14或权利要求1、2、5、9至12的任一项中所定义的编码LSU多肽的核酸或者权利要求17或18的构建体或者权利要求15或权利要求2、3、9或10中任一项中所定义的LSU多肽的用途，用于在植物中相对于对照植物在环境胁迫条件和/或非胁迫条件下增强一种或多种产量相关性状，优选在植物中相对于对照植物用于增加产量，和更优选用于增加种子产量和/或用于增加生物量。26.  用于产生产品的方法，所述方法包括培养权利要求16、19、21、 22或24的任一项的植物，并从或通过(i)所述植物；或(ii)所述植物的一部分，包括种子产生所述产品的步骤。27.  重组染色体DNA，所述重组染色体DNA包含权利要求16或17的构建体。28.  包含于植物细胞中的权利要求16或17的表达构建体或者权利要求25的重组染色体DNA。

说明书具有增强的产量相关性状的植物和用于产生该植物的方法
本发明一般地涉及分子生物学领域，并涉及通过调节编码POI(目的蛋白质)多肽的核酸在植物中的表达而增强一种或多种产量相关性状的方法。本发明还涉及具有调节了编码POI多肽之核酸的表达的植物，所述植物相对于相应的对照植物而言具有一种或多种增强的产量相关性状。本发明还提供可用于本发明方法的构建体。
持续增加的世界人口和农业用可耕地供应萎缩刺激了有关增加农业效率的研究。常规的作物及园艺学改进手段利用选择性育种技术来鉴定具有受欢迎特性的植物。然而，此类选择育种技术具有几个缺陷，即这些技术典型地耗费很多劳动并且产生这样的植物，其经常含有异源性遗传组分，这可能不总是导致从亲代植物中传递所希望的性状。分子生物学进展已经允许人类改进动物及植物的种质。植物的遗传工程使得可以分离和操作遗传物质(典型地处于DNA或RNA形式)并且随后引入该遗传物质至植物中。此类技术具有产生具备多种经济学、农学或园艺学改进性状的作物或植物的能力。
性状是增加的产量。产量通常定义为作物产生的可测量的经济价值。这可以就数量和/或品质方面进行定义。产量直接取决于几个因素，例如器官的数目和大小、植物构造(例如枝的数目)、种子产生、叶衰老等等。根发育、养分摄入量、胁迫耐性和早期萌发势(early vigor)也可以是决定产量的重要因素。
种子产量是重要的性状，这是因为许多植物的种子对于人类和动物营养而言至关重要。诸如玉米、稻、小麦、低芥酸油菜(canola)和大豆等作物占人类总卡路里摄取量的一半以上，不论是通过种子本身的直接消耗，还是通过由加工的种子所饲养的肉类产品的消耗。它们也是工业加工所用的糖类、油类和多类代谢物的来源。种子含有胚(新的苗和根 的来源)和胚乳(萌发和幼苗早期生长过程中胚生长的养分来源)。种子的发育涉及许多基因，并且需要代谢物自根、叶和茎转移至正在生长的种子。特别是胚乳，同化糖类、油类和蛋白质的代谢前体，将其合成为贮存性高分子，以充盈籽粒。
对于众多作物的另一个重要性状是早期萌发势。改善早期萌发势是现代稻育种计划在温带和热带稻栽培品种两者上的一个重要目标。长的根在水栽稻中对于正确土壤固着是重要的。在将稻直接播种至涝田的情况下，以及在植物必须从水中迅速出苗的情况下，较长的苗与萌发势相关。在实施条播(drill-seeding)的情况下，较长的中胚轴和胚芽鞘对于良好的出苗是重要的。人工改造植物内早期萌发势的能力将在农业中是极其重要的。例如，不良的早期萌发势已经限制了基于玉米带生殖质(Corn Belt germplasm)的玉米(Zea mayes L.)杂种在欧洲大西洋地区的引种。
另一重要性状是改进的非生物胁迫耐受性。非生物胁迫是世界范围作物损失的主要原因，对于大多数主要作物植物而言降低平均产量超过50％(Wang等，Planta218，1-14，2003)。非生物胁迫可以由干旱、盐度、极端温度、化学毒性和氧化胁迫引起。改进植物对非生物胁迫耐受性的能力将在世界范围对农民具有极大的经济优势并且会允许在不利条件期间及在作物栽培否则是不可能的地域上栽培作物。
因此可通过优化上述因素之一来增加作物产量。
取决于最终用途，对某些产量性状的修饰可能优先于其它产量性状。例如对于应用如饲料或木材生产或生物燃料资源而言，增加植物营养体部分可能是期望的，而对于应用如面粉、淀粉或油生产而言，在种子参数方面的增加可能是特别希望的。即便在种子参数当中，某些参数可以更优先于其它参数，这取决于应用。多种机制可以对增加种子产量有贡献，无论形式为增加的种子大小或是增加的种子数目。
现已发现可以通过在植物中调节编码POI(目的蛋白质)多肽的核酸在植物中的表达而改进植物中的多种产量相关性状。
背景
在硫缺乏的条件下，许多植物基因显示出增加的表达。在文献中已经报道，这些基因中的两个，LSU1和LSU2(低硫上调的基因；也称为对低硫应答的基因)在硫缺乏条件下是上调的(Lewandowska M，Wawrzynska A，Moniuszko G，Lukomska J，Zientara K，Piecho M，Hodurek P，Zhukov I，Liszewska F，Nikiforova V，Sirko A.A contribution to identification of novel regulators of plant response to sulfur deficiency：characteristics of a tobacco gene UP9C，its protein product and the effects of UP9C silencing.Mol Plant.2010Mar；3(2)：347-60；Maruyama-Nakashita A，Nakamura Y，Watanabe-Takahashi A，Inoue E，Yamaya T，Takahashi H.Identification of a novel cis-acting element conferring sulphur deficiency response in Arabidopsis roots.Plant J.2005May；42(3)：305-14；Nikiforova VJ，Daub CO，Hesse H，Willmitzer L，Hoefgen R.Integrative gene-metabolite network with implemented causality deciphers informational fluxes of sulphur stress response.J Exp Bot.2005Jul；56(417)：1887-96)。
At5g24660(LSU2)在拟南芥属(Arabidopsis)中属于称为LSU1-4(分别地，At3g49580、At5g24660、At3g49570和At5g24655)的4个基因的小家族。在其他物种中存在这些基因的同源物。已经在烟草中鉴定了6个成员(UP9A至UP9F)，其中之一，UP9C已经显示出参与植物对硫缺乏应答的调节(Lewandowska M，Wawrzynska A，Moniuszko G，Lukomska J，Zientara K，Piecho M，Hodurek P，Zhukov I，Liszewska F，Nikiforova V，Sirko A.A contribution to identification of novel regulators of plant response to sulfur deficiency：characteristics of a tobacco gene UP9C，its protein product and the effects of UP9C silencing.Mol Plant.2010Mar；3(2)：347-60)。在硫缺乏条件下，与亲本 株系(对照株系)比较，下调烟草中UP9C基因表达，导致转基因株系的成熟叶中更低水平的谷胱甘肽。此外，在硫缺乏条件下观察到了硫醇(含硫代谢物)水平的降低的缺失。
已经更详细地研究了烟草同源物UP9C的序列(Lewandowska M，Wawrzynska A，Moniuszko G，Lukomska J，Zientara K，Piecho M，Hodurek P，Zhukov I，Liszewska F，Nikiforova V，Sirko A.A contribution to identification of novel regulators of plant response to sulfur deficiency：characteristics of a tobacco gene UP9C，its protein product and the effects of UP9C silencing.Mol Plant.2010Mar；3(2)：347-60)。在其序列中发现了卷曲螺旋区(在残基24和63之间)和核定位信号(残基16至33)。通过分析UPC9-EYFP融合构建体确认UPC9在核中的亚细胞定位。进行了Y2H筛选，导致了17个UPC9的可能蛋白质配偶体的鉴定(Lewandowska M，Wawrzynska A，Moniuszko G，Lukomska J，Zientara K，Piecho M，Hodurek P，Zhukov I，Liszewska F，Nikiforova V，Sirko A.A contribution to identification of novel regulators of plant response to sulfur deficiency：characteristics of a tobacco gene UP9C，its protein product and the effects of UP9C silencing.Mol Plant.2010Mar；3(2)：347-60)。
在此，本发明人报道了在硫缺乏下上调的基因(LSU编码基因)，用于增加植物中产量相关性状。
概述
目前已令人惊讶地发现，调节编码如本文中所定义的POI多肽之核酸的表达产生相对于对照植物具有一种或者多种增强的产量相关性状，特别是增加的产量的植物。
根据一个实施方案，提供了相对于对照植物改善植物产量相关性状的方法，所述方法包括在植物中调节编码如本文中所定义的POI多肽之核酸的表达。
在本说明书中章节标题和题目仅作为方便和参考目的，并不应当以任何方式影响本说明书的含义或解释。
定义
下述定义将被用于本申请文本通篇中。
多肽/蛋白质
术语“多肽”和“蛋白质”在本文中可互换使用，指通过肽键连接在一起的任意长度的氨基酸的聚合形式。
多核苷酸/核酸/核酸序列/核苷酸序列
术语“多核苷酸”、“核酸序列”、“核苷酸序列”、“核酸”、“核酸分子”在本文中可互换使用并且指任意长度的核苷酸的聚合无分支形式，即核糖核苷酸或脱氧核糖核苷酸或这二者组合。
同源物
蛋白质的“同源物”包括这样的肽、寡肽、多肽、蛋白质及酶，它们相对于非修饰的所讨论蛋白质具有氨基酸替换、缺失和/或插入并且与其所源自的非修饰蛋白质具有相似生物学活性和功能活性。
基因的“同源物”包括这样的基因，它们相对于非修饰的所讨论基因具有核苷酸替换、缺失和/或插入并且与其所源自的非修饰基因具有相似生物学活性和功能活性，或者编码与非修饰核酸序列所编码的多肽具有基本上相同的生物学和功能活性的多肽。
直向同源物和旁系同源物是同源物的两种不同形式，并包含用来描述基因先祖关系的进化概念。旁系同源物是相同物种内起源于先祖基因复制的基因；直向同源物是来自不同生物的起源于物种形成的基因，并且也来源于共同的先祖基因。
关于蛋白质，缺失指从蛋白质中移除一个或多个氨基酸。
插入指一个或多个氨基酸残基在蛋白质中预定位点内的引入。插入可以包含氨基端融合和/或羧基端融合以及单个或多个氨基酸的序列内插入。通常，在氨基酸序列内部的插入会比氨基端融合或羧基端融合小， 约1-10个残基的级别。氨基端或羧基端融合蛋白或融合肽的例子包括如酵母双杂交系统中所用转录激活物的结合结构域或激活结构域、噬菌体外壳蛋白、(组氨酸)-6-标签、谷胱甘肽S-转移酶-标签、蛋白A、麦芽糖结合蛋白、二氢叶酸还原酶、Tag·100表位、c-myc表位、-表位、lacZ、CMP(钙调蛋白结合肽)、HA表位、蛋白C表位和VSV表位。
替换指以具有相似特性(如相似疏水性、亲水性、抗原性、形成或破坏α-螺旋结构或β-折叠结构的倾向)的其它氨基酸替换蛋白质的氨基酸。氨基酸替换典型地是单个残基的，不过可以是簇集性的，这取决于置于多肽的功能性约束，并且可以在1-10个氨基酸的范围内；插入通常会是约1-10个氨基酸残基级别。氨基酸替换优选地是保守性氨基酸替换。保守性替换表是本领域众所周知的(见例如Creighton(1984)Proteins.W.H.Freeman和Company(编著)和下表1)。
表1：保守性氨基酸替换的例子
残基保守性替换残基保守性替换AlaSerLeuIle；ValArgLysLysArg；GlnAsnGln；HisMetLeu；IleAspGluPheMet；Leu；TyrGlnAsnSerThr；GlyCysSerThrSer；ValGluAspTrpTyrGlyProTyrTrp；PheHisAsn；GlnValIle；LeuIleLeu，Val  
氨基酸替换、缺失和/或插入可以使用本领域众所周知的肽合成技术如固相肽合成法等或通过重组DNA操作而容易地进行。用于操作DNA序列以产生蛋白质的替换、插入或缺失变体的方法是本领域众所周知的。 例如，用于在DNA中的预定位点处产生替换突变的技术是本领域技术人员众所周知的并且包括M13诱变法、T7-Gen体外诱变法(USB，Clevelaand，OH)、QuickChange位点定向诱变法(Stratagene，San Diego，CA)、PCR-介导的位点定向诱变或其它位点定向诱变法。
衍生物
“衍生物”包括这样的肽、寡肽、多肽，其与天然存在形式的蛋白质(如目的蛋白)的氨基酸序列相比，它们包含以非天然存在的氨基酸残基对氨基酸的替换或非天然存在的氨基酸残基的添加。蛋白质的“衍生物”也包含这样的肽、寡肽、多肽，其中与多肽的天然存在形式的氨基酸序列相比，它们包含天然存在的经改变(糖基化、酰化、异戊二烯化、磷酸化、肉豆蔻酰化、硫酸化等等)的氨基酸残基或非天然的经改变的氨基酸残基。与衍生物所来源的氨基酸序列相比，该衍生物可以也包含与所述氨基酸序列共价或非共价结合的一个或多个非氨基酸取代基或添加(例如报道分子或其它配体)，如为促进检测该衍生物而结合的报道分子，和与天然存在的蛋白质的氨基酸序列相对比的非天然存在的氨基酸残基。此外，“衍生物”还包括天然存在形式蛋白质与标签肽(如FLAG、HIS6或硫氧还蛋白)的融合体(标签肽的综述参阅Terpe，Appl.Microbiol.Biotechnol.60，523-533，2003)。
核酸的“衍生物”包括这样的核酸，其与天然存在形式的核酸的核苷酸序列相比，它们包含缺失、改变或以非天然存在的核苷酸的添加。核酸的“衍生物”也包括这样的核酸，其与天然存在形式的核酸的核苷酸的序列相比，它们包含天然存在的经改变的核苷酸或非天然的经改变的核苷酸。当分别在植物中表达或抑制时，蛋白质或核酸的衍生物仍提供了基本上相同的功能，例如增强的产量相关性状。
直向同源物/旁系同源物
直向同源物和旁系同源物包含用来描述基因先祖关系的进化概念。旁系同源物是相同物种内起源于先祖基因复制的基因；直向同源物是来自不同生物的起源于物种形成的基因，并且也来源于共同的先祖基因。
结构域，基序/共有序列/特征序列
术语“结构域”指依据进化相关蛋白质的序列比对结果而在特定位置处保守的一组氨基酸。尽管在其它位置处的氨基酸可以在同源物之间变动，然而在特定位置处的高度保守的氨基酸指示在蛋白质的结构、稳定性或功能方面可能是必需的氨基酸。结构域因通过在蛋白质同源物家族的比对序列中的高保守程度而被鉴定，它们可以用作鉴定物以确定任意的所讨论多肽是否属于先前已鉴定的多肽家族。
术语“基序”或“共有序列”或“特征序列”指在进化相关蛋白质的序列中的短保守区。基序往往是结构域的高度保守部分，不过也可以仅包括结构域的部分，或可以位于保守结构域之外(若基序的全部氨基酸位于定义的结构域之外)。
存在用于鉴定结构域的专门数据库，例如SMART(Schultz等(1998)Proc.Natl.Acad.Sci.USA95，5857-5864；Letunic等(2002)Nucleic Acids Res30，242-244)，InterPro(Mulder等，(2003)Nucl.Acids.Res.31，315-318)，Prosite(Bucher和Bairoch(1994)，A generalized profile syntax for biomolecular sequences motifs and its function in automatic sequence interpretation.(In)ISMB-94；Proceedings2nd International Conference on Intelligent Systems for Molecular Biology.Altman R.，Brutlag D.，Karp P.，Lathrop R.，Searls D.编著，第53-61页，AAAI Press，Menlo Park；Hulo等，Nucl.Acids.Res.32：D134-D137，(2004)或者Pfam(Bateman等，Nucleic Acids Research30(1)：276-280(2002)&The Pfam protein families database：R.D.Finn，J.Mistry，J.Tate，P.Coggill，A.Heger，J.E.Pollington，O.L.Gavin，P.Gunesekaran，G.Ceric，K.Forslund，L.Holm，E.L.Sonnhammer，S.R.Eddy，A.Bateman Nucleic Acids Research(2010)Database Issue38：D211-222)。用于计算机分析蛋白质序列的一组工具可获得自ExPASy蛋白组服务器(Swiss Institute of Bioinformatics(Gasteiger等，ExPASy：the proteomics server for in-depth protein knowledge and analysis，Nucleic Acids Res. 31：3784-3788(2003))。还可以使用常规技术(如通过序列比对)来鉴定结构域或基序。
比对序列以进行比较的方法为本领域所众所周知，这些方法包括GAP、BESTFIT、BLAST、FASTA和TFASTA。GAP利用Needleman和Wunsch((1970)J Mol Biol48：443-453)的算法来寻找两序列间使匹配数最高并使空位数最少的全局比对(即在完整序列上)。BLAST算法(Altschul等(1990)J Mol Biol215：403-10)在两序列间计算百分比序列同一性并进行相似性的统计学分析。用于进行BLAST分析的软件在国家生物技术信息中心(National Centre for Biotechnology Information(NCBI))向公众提供。可以使用例如ClustalW多重序列比对算法(1.83版)(采用默认配对比对参数)和百分比评分法来容易地鉴定同源物。也可以使用MatGAT软件包(Campanella等，BMC Bioinformatics.2003Jul10；4：29.MatGAT：an application that generates similarity/identity matrices using protein or DNA sequence)中提供的方法之一来确定全局的相似性和同一性百分比。本领域技术人员会意识到，可以进行少量手动编辑以优化保守性基序之间的比对。此外，还可以使用特定的结构域代替使用全长序列来鉴定同源物。序列同一性值可以是采用上述程序使用默认参数在完整的核酸或氨基酸序列上或在所选择的结构域或保守的基序上测定的。对于局部比对，Smith-Waterman算法是特别有用的(Smith TF，Waterman MS(1981)J.Mol.Biol147(1)；195-7)。
交互BLAST
通常，这包括以查询序列(例如，利用实施例章节的表A中所列的任何序列)针对任何序列数据库如可公共获得的NCBI数据库进行BLAST的首次BLAST。当从核苷酸序列开始时，通常使用BLASTN或TBLASTX(利用标准默认值)，而当从蛋白质序列开始时，则使用BLASTP或TBLASTN(利用标准默认值)。BLAST结果可以任选地被过滤。接着使用过滤的结果或者未过滤的结果的全长序列针对查询序列来源生物的序列进行反向BLAST(二次BLAST)。然后比较首次和二次 BLAST的结果。如果首次BLAST中的高排名命中来自查询序列来源的相同物种，然后反向BLAST理想地导致查询序列处于最高命中之列，则找到了旁系同源物；如果首次BLAST中高排名命中并不来自查询序列来源的相同物种，且优选地在反向BLAST时导致查询序列在最高命中之列，则找到了直向同源物。
高排名的命中是那些E值低的命中。E值越低，分值越具有显著性(或者换句话说，偶然发现此命中的几率越低)。E值的计算是本领域众所周知的。除了E值之外，还对比较进行同一性百分比评分。同一性百分比是指两比较核酸(或多肽)序列之间在特定长度上的相同核苷酸(或氨基酸)数。在大家族的情况下可以使用ClustalW，继之以邻接树来辅助相关基因的聚类可视化，和鉴定直向同源物和旁系同源物。
杂交
如本文中所定义的术语“杂交”是其中基本上同源的互补核苷酸序列彼此退火的过程。杂交过程可以完全在溶液中进行，即两种互补性核酸均处于溶液中。杂交过程也可以在互补性核酸之一固定到基质如磁珠、琼脂糖(Sepharose)珠或任何其它树脂的情况下发生。杂交过程也可以在互补性核酸之一固定至固相支持体如硝酸纤维素膜或尼龙膜上或通过例如照相平版印刷术固定至例如硅酸玻璃支持物(后者称作核酸阵列或微阵列或称作核酸芯片)上的情况下进行。为使杂交发生，通常将核酸分子热变性或化学变性以使双链解链成为两条单链和/或去除来自单链核酸的发夹或其它二级结构。
术语“严格性”指在其中发生杂交的条件。杂交的严格性受条件如温度、盐浓度、离子强度和杂交缓冲液组成影响。通常，将低严格性条件选择为在确定的离子强度及pH时低于特定序列热解链温度(Tm)约30℃。中等严格性条件是此时温度低于Tm约20℃，高严格性条件是此时温度低于Tm约10℃。高严格性杂交条件典型地用于分离与靶核酸序列具有高序列相似性的杂交序列。然而，核酸可以在序列上有所偏差但因遗传密码子的简并性而依旧编码基本上相同的多肽。因而有时候可能 需要中等严格性杂交条件来鉴定此类核酸分子。
Tm是在确定的离子强度及pH下50％的靶序列与完全匹配的探针杂交时的温度。Tm取决于溶液条件和探针的碱基组成及长度。例如，较长的序列在较高温度下特异性地杂交。从低于Tm约16℃直至32℃获得最大杂交速率。一价阳离子在杂交溶液中的存在降低了两条核酸链间的静电排斥，因而促进杂交分子形成；这种作用对于高达0.4M的钠浓度是明显的(对于更高浓度，这种效应可以忽略)。甲酰胺降低DNA-DNA和DNA-RNA双链体的解链温度，每百分数甲酰胺降低0.6至0.7℃，并且添加50％甲酰胺允许在30至45℃进行杂交，虽然杂交速率会降低。碱基对错配降低了杂交速率及双链体的热稳定性。平均而言并且对于大的探针来说，每％碱基错配Tm下降约1℃。取决于杂交分子的类型，Tm可以使用下列等式计算：
1)DNA-DNA杂交分子(Meinkoth和Wahl，Anal.Biochem.，138：267-284，1984)：
Tm＝81.5℃+16.6xlog10[Na+]a+0.41x％[G/Cb]-500x[Lc]-1-0.61x％甲酰胺
2)DNA-RNA或RNA-RNA杂交分子：
Tm＝79.8℃+18.5(l0g10[Na+]a)+0.58(％G/Cb)+11.8(％G/Cb)2-820/Lc
3)寡DNA或寡RNAd杂交分子：
对于＜20个核苷酸：Tm＝2(ln)
对于20-35个核苷酸：Tm＝22+1.46(ln)
a或对于其它一价阳离子，但是仅在0.01-0.4M范围内是精确的。
b仅对于％GC在30％至75％范围内是精确的。
cL＝双链体的长度(以碱基对计)。
d寡，寡核苷酸；ln，＝引物的有效长度＝2×(G/C数)+(A/T数)。
可以使用众多已知技术的任何一种来控制非特异性结合，如例如用含蛋白质的溶液封闭薄膜、添加异源性RNA、异源性DNA及SDS至杂 交缓冲液并且用RNA酶(Rnase)处理。对于非同源性探针，可以通过改变以下条件之一进行一系列杂交：(i)逐渐降低退火温度(例如从68℃至42℃)或(ii)逐渐降低甲酰胺浓度(例如从50％至0％)。技术人员了解杂交期间可以加以改变和将维持或改变严格性条件的多种参数。
除杂交条件之外，杂交特异性典型地还取决于杂交后洗涤的功能。为除去因非特异性杂交所致的背景，样品用稀释的盐溶液洗涤。此类洗涤的关键因素包括最终洗涤溶液的离子强度及温度：盐浓度越低并且洗涤温度越高，则洗涤的严格性越高。洗涤条件典型地以杂交严格性进行或低于杂交严格性进行。阳性杂交产生至少两倍于背景信号的信号。通常，用于核酸杂交分析法或基因扩增检测方法的合适严格性条件如上所述。也可以选择更严格或更不严格的条件。技术人员了解洗涤期间可以加以改变和将维持或改变严格性条件的多种参数。
例如，用于长度大于50个核苷酸的DNA杂交分子的典型高严格性杂交条件包括在65℃于1×SSC中或在42℃于l×SSC和50％甲酰胺中杂交，随后在65℃于0.3×SSC中洗涤。用于长度大于50个核苷酸的DNA杂交的中等严格性杂交条件的例子包括在50℃于4×SSC中或在40℃于6×SSC和50％甲酰胺中杂交，随后在50℃于2×SSC中洗涤。杂交分子的长度是杂交核酸的预期长度。当序列已知的核酸杂交时，可以通过比对序列并鉴定本文中所述的保守区而确定杂交分子长度。1×SSC是0.15M NaCl和15mM柠檬酸钠；杂交溶液和洗涤溶液可以额外地包含5×Denhardt试剂、0.5-1.0％SDS、100μg/ml变性的片段化鲑精DNA、0.5％焦磷酸钠。
为了定义严格性水平的目的，可以参考Sambrook等(2001)Molecular Cloning：a laboratory manual，第三版，Cold Spring Harbor Laboratory Press，CSH，New York或参考Current Protocols in Molecular Biology，John Wiley&Sons，N.Y.(1989和每年更新版本)。
剪接变体
如本文中所用的术语“剪接变体”包含其中已经切除、替换、移位或 添加所选内含子和/或外显子或其中内含子已经缩短或加长的核酸序列的变体。此类变体将是其中基本上保留了蛋白质的生物活性的变体；这可以通过选择性保留蛋白质的功能性片段而实现。此类剪接变体可以在自然界中找到或可以人工制造。用于预测和分离此类剪接变体的方法是本领域众所周知的(见例如Foissac和Schiex，(2005)BMC Bioinformatics.6：25)。
等位变体
等位基因或等位变体是给定基因的位于相同染色体位置内的替代形式。等位变体包含单核苷酸多态性(SNP)和小插入/缺失多态性(INDEL)。INDEL的尺寸通常小于100bp。SNP和INDEL形成在大部分生物的天然存在的多态性株系中的序列变体的最大集合。
内源
本文中提及的“内源”核酸和/或蛋白质不仅仅指如在植物中发现的以其天然形式(即没有任何人类干预如重组DNA技术)存在的所讨论核酸和/或蛋白质，还指处于分离形式随后(再)引入植物中的相同基因(或基本上同源的核酸/基因)(转基因)。例如，含有这种转基因的转基因植物可以遇到转基因表达大幅降低和/或内源基因表达的大幅降低。分离的基因可从生物体分离，或可人工制造(例如通过化学合成)。
外源
术语“外源”(与“内源”相反)核酸或基因指通过重组DNA技术引入到植物中的核酸。“外源”核酸不在植物中以其天然形式存在(不同于在植物中发现的以其天然形式存在的所讨论基因)，或者与在植物中发现的以其天然形式存在的核酸相同，但并没有整合在其天然遗传环境内。将“外源”的相应含义应用于蛋白质表达的上下文中。例如，含转基因(即外源核酸)的转基因植物，当与内源基因的表达比较时，其可以遭遇总体上各自基因或蛋白质的大幅增加。根据本发明的转基因植物包含在任何基因位点整合的外源POI核酸，以及任选地，该植物还包含天然遗传背景内的内源基因。
基因改组/定向进化
基因改组或定向进化由如下构成：反复DNA改组，随后适当筛选和/或选择以产生编码具有修饰的生物学活性的蛋白质之核酸或其部分的变体(Castle等，(2004)Science304(5674)：1151-4；美国专利5,811,238和6,395,547)。
构建体
其它调控元件可包括转录增强子及翻译增强子。本领域技术人员会了解可适于在实施本发明中使用的终止子和增强子序列。如在定义部分所述，也可将内含子序列添加至5′非翻译区(UTR)或添加至编码序列中，以增加在胞质内积累的成熟信息的量。其它控制序列(除启动子、增强子、沉默子、内含子序列、3’UTR和/或5’UTR区之外)可以是蛋白质和/或RNA稳定元件。本领域技术人员会知道或可以容易地获得此类序列。
本发明的遗传构建体还可以包括在特定细胞类型中维持和/或复制需要的复制起点序列。一个例子是当需要将遗传构建体在细菌细胞中作为附加型遗传元件(例如质粒或粘粒分子)维持时。优选的复制起点包括但不限于f1-ori和colE1。
为检测如在本发明方法中所用核酸序列的成功转移和/或选择包含这些核酸序列的转基因植物”使用标记基因(或报告基因)是有利的。因而，遗传构建体可以任选地包含可选择标记基因。可选择标记在本文“定义”部分中有更详细的描述。一旦不再需要，可以从转基因细胞中去除或切除标记基因。用于去除标记基因的技术是本领域已知的，有用的技术在上文定义部分中描述。
调控元件/控制序列/启动子
术语“调控元件”、“控制序列”和“启动子”均在本文中可互换使用，并且在广义上意指能够影响与之连接的序列表达的调控性核酸序列。术语“启动子”典型地指：位于基因转录起点上游的核酸控制序列，并且其参与识别及结合RNA聚合酶和其它蛋白质，因而指导有效连接的核酸 的转录。前述术语包括从典型的真核基因组基因(包括对于精确转录启动所需的TATA盒，具有或没有CCAAT盒序列)中衍生的转录调控序列和应答于发育刺激和/或外部刺激或以组织特异性方式改变基因表达的额外调控元件(即，上游激活序列、增强子和沉默子)。本术语还包括经典的原核基因的转录调控序列，在此情况下它可以包括-35盒序列和/或一10盒转录调控序列。术语“调控元件”也包含赋予、激活或增强核酸分子在细胞、组织或器官中表达的合成的融合分子或衍生物。
“植物启动子”包含介导编码序列片段在植物细胞中表达的调控元件。因此，植物启动子不一定是植物来源的，而是可以源自病毒或微生物，例如来自攻击植物细胞的病毒。“植物启动子”也可以源自植物细胞，例如来自待于用本发明方法表达及在本文中描述的核酸序列所转化的植物。这也适用于其它“植物”调控性信号，如“植物”终止子。可用于本发明方法、构建体、植物、可收获部分和产品中的核苷酸序列上游的启动子可以由一个或多个核苷酸替换、插入和/或缺失而受到修饰，但不干扰启动子、开放阅读框(ORF)或3′调控区(如终止子)或远离ORF的其它3′调控区的功能性或活性。启动子的活性还有可能因修饰该启动子的序列或由更具活性的启动子、甚至来自异源生物的启动子彻底替换该启动子而增加。为在植物中表达，如上所述，核酸分子必须有效连接至合适的启动子或包含合适的启动子，其中所述的启动子在正确时间点上并以所需要的空间表达模式表达基因。
为了鉴定功能等价启动子，可以分析候选启动子的启动子强度和/或表达模式，例如通过将该启动子与报告基因有效连接并检验该报告基因在多种植物组织中的表达水平和模式。合适的公知报告基因包括例如β-葡糖醛酸糖苷酶或β-半乳糖苷酶。通过测量β-葡糖醛酸糖苷酶或β-半乳糖苷酶的酶活性来检验启动子活性。接着可以将启动子强度和/或表达模式与参考启动子(如用于本发明方法中的)进行比较。或者，可以通过定量mRNA水平或者将本发明方法中所用核酸的mRNA水平与持家基因(如18S rRNA)的mRNA水平进行比较来测定启动子强度，其中使 用本领域众所周知的技术，如通过放射自显影的光密度测定分析进行的Northern印迹、定量实时PCR或RT-PCR(Heid等，1996Genome Methods6：986-994)。通常，“弱启动子”指驱动编码序列低水平表达的启动子。“低水平”指每个细胞中约1/10,000的转录物至约1/100,000的转录物至约1/500,0000的转录物的水平。相反，“强启动子”驱动编码序列高水平表达，或者每个细胞中约1/10的转录物至约1/100的转录物至约1/1000的转录物的水平。通常，“中等强度启动子”指下述启动子，其驱动编码序列以低于强启动子的水平表达，特别是在所有情况下以低于35S CaMV启动子控制时获得的水平表达。
有效连接
如本文中所用的术语“有效连接”或“功能性连接”指启动子序列与目的基因之间功能性地连接，以至于启动子序列能够启动目的基因转录。
组成型启动子
“组成型启动子”指在至少一种细胞、组织或器官中在其大多数(但不一定是全部)生长和发育阶段并在大多数环境条件下有转录活性的启动子。下表2a给出了组成型启动子的例子。
表2a：组成型启动子的例子


遍在启动子
遍在启动子在生物的基本上全部组织或细胞中有活性。
发育调控性启动子
发育调控性启动子在某些发育期期间或在经历发育变化的植物部分内有活性。
诱导型启动子
诱导型启动子在应答于化学品(综述见Gatz1997，Annu.Rev.Plant Physiol.Plant Mol.Biol.，48：89-108)、环境刺激或物理刺激时具有受诱导或增加的转录启动，或可以是“胁迫诱导型”，即当植物暴露于多种胁迫条件时受到激活，或是“病原体诱导型”，即当植物暴露于多种病原体时受到激活。
器官特异性/组织特异性启动子
器官特异性或组织特异性启动子是能够优先在某些器官或组织如叶、根、种子组织等等内启动转录的启动子。例如，“根特异性启动子”是在植物根中优势地具有转录活性的启动子，在植物的任何其它部分内 基本上无活性，尽管在植物的这些其它部分内允许任何渗漏表达。能够仅在某些细胞中启动转录的启动子在本文中称作“细胞特异性”。
根特异性启动子的例子列于下表2b中：
表2b：根特异性启动子的例子


种子特异性启动子主要在种子组织中有转录活性，但不一定仅在种子组织中有(渗漏表达的情况)。种子特异性启动子可在种子发育和/或发芽过程中有活性。种子特异性启动子可以是胚乳/糊粉/胚特异性的。种子特异性启动子的例子(胚乳/糊粉/胚特异性的)在下表2c至表2f中显示。种子特异性启动子的其它例子在Qing Qu和Takaiwa(Plant Biotechnol.J.2，113-125，2004)中给出，其公开内容通过引用整体并入本文。
表2c：种子特异性启动子的例子



表2d：胚乳特异性启动子的例子


表2e：胚特异性启动子的例子：

表2f：糊粉特异性启动子的例子：

如本文中所定义的绿色组织特异性启动子是主要在绿色组织中具有转录活性的启动子，在植物的任何其它部分内基本上无活性，尽管在植物的这些其它部分内允许任何渗漏表达。
可以用来实施本发明方法的绿色组织特异性启动子的例子在下表2g中显示。
表2g：绿色组织特异性启动的例子


组织特异性启动子的另一个例子是分生组织特异性启动子，其主要在分生性组织中具有转录活性，在植物的任何其它部分内基本上无活性，尽管在植物的这些其它部分内允许任何渗漏表达。可用于实施本发明方法的绿色分生组织特异性启动子的例子示于下列的表2h。
表2h：分生组织特异性启动子的例子


终止子
术语“终止子”包括这样的控制序列，其是在转录单元末端的DNA序列，发出对初级转录物进行3’加工并多聚腺苷化以及终止转录的信号。终止子可以来自天然基因、来自多种其它植物基因或来自T-DNA。待添加的终止子可以来自例如胭脂碱合酶或章鱼碱合酶基因，或者来自另一植物基因或较不优选地来自任何其它真核基因。
可选择标记(基因)/报告基因
“可选择标记”、“可选择标记基因”或“报告基因”包括向细胞赋予表型的任何基因，其中在所述的细胞内表达所述基因以促进鉴定和/或选择用本发明的核酸构建体所转染或转化的细胞。这些标记基因能够通过一系列不同原理鉴定核酸分子的成功转移。合适的标记可以选自赋予抗生素抗性或除草剂抗性、引入新代谢性状或允许目视选择的标记。可选择标记基因的例子包括赋予抗生素抗性的基因(如使新霉素和卡那霉素磷酸化的nptII或使潮霉素磷酸化的hpt或赋予对例如博来霉素、链霉素、四环素、氯霉素、氨苄青霉素、庆大霉素、遗传霉素(Geneticin，G418)、壮观霉素或杀稻瘟素的抗性的基因)、赋予除草剂抗性的基因(例如提供抗性的bar；提供草甘膦抗性的aroA或gox或赋予对例如咪唑啉酮、膦丝菌素或磺脲类的抗性的基因)或提供代谢性状的基因(如允许植物使用甘露糖作为唯一碳源的manA或利用木糖的木糖异构酶或抗营养标记如2-脱氧葡萄糖抗性)。目视标记基因的表达导致形成颜色(例如β-葡糖醛酸糖苷酶、GUS或β-半乳糖苷酶与其有色底物例如X-Gal)、发光(如萤光素/萤光素酶系统)或荧光(绿色荧光蛋白GFP及其衍生物)。这个名单仅代表少数的可能标记。技术人员熟悉此类标记。取决于生物和选择方法，优选不同的标记。
已知当核酸稳定或瞬时整合至植物细胞时，仅小部分的细胞摄取外来DNA并且根据需要将其整合至细胞基因组，这取决于所用表达载体 和使用的转染技术。为鉴定并选择这些整合子，通常将编码可选择标记(如上文所述的那些)的基因连同目的基因一起引入宿主细胞。这些标记可以例如在其中这些基因因例如常规方法所致的缺失而无功能的突变体中使用。此外，编码可选择标记的核酸分子可以引入宿主细胞中，与编码本发明多肽或本发明方法中所用多肽的序列在同一载体上，或在单独的载体上。已经用引入的核酸稳定转染的细胞可以例如通过选择进行鉴定(例如具有整合的可选择标记的细胞存活而其它细胞死亡)。
因为一旦已经成功引入了核酸，则转基因宿主细胞中就不再需要或不希望有标记基因，尤其抗生素抗性基因和除草剂抗性基因，因此用于引入核酸的本发明方法有利地使用能够去掉或切除这些标记基因的技术。一种如此方法称作共转化法。共转化法使用同时用于转化的两种载体，一种载体携带本发明的核酸而另一种载体携带标记基因。高比例的转化体接受或，在植物的情况下包含(高达40％或更多的转化体)这两种载体。在用农杆菌转化的情况下，转化体通常仅接受载体的一部分，即侧翼有T-DNA的序列，它通常代表表达盒。标记基因随后可以通过进行杂交而从转化的植物中去掉。在另一种方法中，整合至转座子的标记基因用来与想要的核酸一起进行转化(称作Ac/Ds技术)。转化体可以与转座酶来源植物杂交或转化体与导致转座酶表达的核酸构建体瞬时或稳定地转化。在一些情况下(大约10％)，转座子在已经成功发生转化时跳出宿主细胞的基因组并丢失。在其它更多情况下，转座子跳至不同位置。在这些情况下，标记基因必须通过进行杂交而去除。在微生物学中，开发了实现或促进检测这类事件的技术。又一个有利的方法依赖于已知的重组系统；此方法的优势在于可以排除通过杂交而去除标记基因。该类型的最知名系统称作Cre/lox系统。Cre1是去掉位于loxP序列之间序列的重组酶。若标记基因整合于loxP序列之间，则在已经成功发生转化时，通过重组酶表达去除标记基因。其它重组系统是HIN/HIX、FLP/FRT和REP/STB系统(Tribble等，J.Biol.Chem.，275，2000：22255-22267；Velmurugan等，J.Cell Biol.，149，2000：553-566)。有可能将本发明 核酸序列以位点特异性方式整合至植物基因组。这些方法自然也可以应用至微生物如酵母、真菌或细菌。
转基因的/转基因/重组
为本发明目的，“转基因的”、“转基因”或“重组”就例如核酸序列、包含此核酸序列的表达盒、基因构建体或载体或用本发明的核酸序列、表达盒或载体转化的生物而言意指，所有那些构建均通过重组方法产生，其中
a)本发明编码可用于本发明方法中的蛋白质的核酸序列、本发明构建体、植物、可收获部分和产品，或
b)与本发明核酸序列有效连接的遗传控制序列，例如启动子，或
c)a)和b)
不处于其天然遗传环境中或已经通过重组方法修饰，修饰有可能采用例如替换、添加、缺失、倒位或插入一个或多个核苷酸残基的形式。天然遗传环境理解为意指来源植物中或存在于基因组文库中的天然基因组基因座或染色体基因座。在基因组文库的情况下，核酸序列的天然遗传环境优选地得到保留，至少部分地得以保留。该环境分布在核酸序列的至少一侧并且具有至少50bp，优选至少500bp，特别优选至少1000bp，最优选至少5000bp的序列长度。天然存在的表达盒一一例如核酸序列的天然启动子与编码本发明方法、构建体、植物、可收获部分和产品中所用多肽的相应核酸序列的天然存在的组合，如上文所定义一一在这种表达盒通过非天然的合成(“人工”)方法(如例如诱变处理)修饰后，变成转基因表达盒。合适方法例如在US5,565,350或WO00/15815中描述。
用于本发明目的的转基因植物因此如上理解为意指：本发明方法中所用的核酸不存在于所述植物基因组中或不来源于所述植物基因组，或存在于所述植物基因组中，但不位于它们在所述植物基因组中的天然基因座内，所述核酸有可能同源或异源地表达。然而如所提及，转基因还意指尽管本发明核酸或在本发明方法中所用核酸处于植物基因组中该核酸的天然位置内，然而其序列相对于天然序列而言已经受到修饰，和/ 或所述天然序列的调控序列已经受到修饰。转基因优选地理解为意指本发明核酸在基因组中的非天然基因座内表达，即发生核酸的同源表达或优选异源表达。在本文中提到了优选的转基因植物。
还将认识到，在本发明的上下文中，术语“分离的核酸”或“分离的多肽”在一些情况下可以被分别认为是“重组核酸”或“重组多肽”的同义词，其指不位于其天然遗传环境中和/或已经过重组方法修饰过的核酸或多肽。
在本发明的一个实施方案中，“分离的”核酸序列位于非天然的染色体环境中。在一个实施方案中，分离的核酸序列或分离的核酸分子是不在其天然环境或其天然核酸周围的核酸序列或核酸分子，然而其在物理上和功能上与其他核酸序列或核酸分子有关，并发现作为核酸构建体、载体序列或染色体的一部分。
调节
术语“调节”就表达或基因表达而言意指这样的过程，其中表达水平与对照植物相比因所述基因的表达而改变，表达水平可以是增加或减少。原先未受调节的表达可以是结构RNA(rRNA、tRNA)或mRNA及随后的翻译的任何类型表达。就本发明的目的而言，原先未受调节的表达还可以是任何表达的不存在。术语“调节活性”或术语“调节表达”应当意指本发明核酸序列或所编码蛋白质的表达的任何变化，这导致植物增加的产量和/或增加的生长。表达可从零(表达的不存在或不可测量到的表达)增加到某个量，或者可从某个量减少到不可测量到的量或零。
表达
术语“表达”或“基因表达”指转录一个或多个特定基因或特定的遗传构建体。特别地，术语“表达”或“基因表达”指将一个或多个基因或遗传构建体转录成结构RNA(rRNA、tRNA)或mRNA，包括或者不包括后者随后翻译成蛋白质。该过程包括转录DNA和加工所得的mRNA产物。
增加的表达/过表达
如本文中所用的术语“增加的表达”或“过表达”意指对于原先野生型 表达水平是额外的任何形式表达。就本发明的目的而言，原先野生型表达水平也可以是零，即，表达的不存在，或不可测量到的表达。在本文中，提及“增加的表达”意为相对于对照植物而言基因表达和/或提及的多肽水平和/或肽活性的增加。与对照植物的表达比较，表达的增加以其递增的优先顺序至少为10％、20％、30％、40％或50％、60％、70％、80％、85％、90％、或95％、96％、97％、98％、99％或者甚至更高。
在本领域内详细记载了用于增加基因或基因产物表达的方法，并且它们包括例如，由适宜启动子驱动的过表达、使用转录增强子或翻译增强子。可以在非异源形式的多核苷酸的适宜位置(典型地是上游)内引入作为启动子或增强子元件的分离核酸，以便上调编码目的多肽的核酸的表达。例如，内源性启动子可以通过突变、缺失和/或置换而在体内改变(见Kmiec，US5,565,350；Zarling等，WO9322443)，或可以将分离的启动子以相对于本发明基因的正确方向及距离引入植物细胞，以便控制基因表达。
如果期望表达多肽，一般期望在多核苷酸编码区的3’末端包含多腺苷酸化区。多腺苷酸化区可来自该天然基因，来自多种其它植物基因，或者来自T-DNA。待被加入的3’末端序列可来自例如胭脂碱合酶或章鱼碱合酶基因，或者来自另一植物基因，或者较不优选地来自任何其它真核基因。
内含子序列也可添加至5′非翻译区(UTR)或部分编码性序列的编码序列上，以增加在胞质溶胶内积累的成熟信息的量。已经显示：将可剪接内含子包含在植物表达构建体和动物表达构建体的转录单元内在mRNA水平及蛋白质水平上增加基因表达至多达1000倍(Buchman和Berg(1988)Mol.Cell biol.8：4395-4405；Callis等(1987)Gens Dev1：1183-1200)。基因表达的此类内含子增强作用典型地在位于转录单元5′端附近时最强烈。使用玉米内含子Adh1-S内含子1、2和6、Bronze-1内含子是本领域已知的。对于一般信息，见：《玉米手册》，第116章，编者Freeling和Walbot，Springer，N.Y.(1994)。
对于多肽的增加表达或过表达，最常见的是编码所述多肽的核酸以有义方向并在具有聚腺苷酸化信号的情况下过表达。在预订的空间和局部分布中，除适合于期望的过表达的启动子外，还可以使用内含子和其他增强元件。
与此相反，作为反义构建体的相同核酸序列的过表达不会导致蛋白质表达的增加，而会降低蛋白质的表达。
减少的表达
本文中提及的“减少的表达”或者“降低或基本去除”的表达意指内源基因表达和/或多肽水平和/或多肽活性相对于对照植物的减少。与对照植物相比，降低或基本去除以递增优选顺序是至少10％、20％、30％、40％或50％、60％、70％、80％、85％、90％或95％、96％、97％、98％、99％或更多的降低。
为了降低或基本去除内源基因在植物中的表达，需要核酸序列的足够长度的基本上连续的核苷酸。为了开展基因沉默，这个长度可以是少至20、19、18、17、16、15、14、13、12、11、10个或更少的核苷酸，或者该长度可以多至整个基因(包括5’和/或3’UTR，部分或全体)。基本上连续的核苷酸片段可以来自编码目的蛋白质的核酸(靶基因)或来自能够编码目的蛋白质的直向同源物、旁系同源物或同源物的任何核酸。优选地，基本上连续的核苷酸区段能够与靶基因(有义链或反义链)形成氢键，更优选地，基本上连续的核苷酸区段以递增优选顺序与靶基因(有义链或反义链)具有50％、60％、70％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％、99％、100％的序列同一性。编码(功能性)多肽的核酸序列不是本文中所讨论用于降低或基本去除内源基因表达的多种方法所需的。
表达的这种降低或基本去除可以使用常规工具和技术完成。用于降低或基本去除内源基因表达的优选方法是通过在植物中引入和表达遗传构建体，将被间隔物(非编码DNA)分隔的核酸作为反向重复序列(部分地或完全地)克隆入此构建体中(在此情况下该核酸是从目的基因或从任何 核酸中衍生的基本上连续的核苷酸的区段，其中所述的任何核酸能够编码任何目的蛋白质之一的直向同源物、旁系同源物或同源物)。
在这样的优选方法中，通过RNA介导的沉默降低或基本去除内源基因表达，其中使用核酸或其部分的反向重复序列(在此情况下是从目的基因或从任何核酸中衍生的基本上连续的核苷酸的区段，其中所述的任何核酸能够编码目的蛋白质的直向同源物、旁系同源物或同源物)，优选能够形成发夹结构。反向重复序列克隆在含有控制序列的表达载体中。非编码DNA核酸序列(间隔物，例如基质结合区片段(MAR)、内含子、聚合接头等等)位于两个反向核酸之间形成反向重复序列。在反向重复序列转录后，形成带有自身互补结构(部分或完全的)的嵌合RNA。这个双链RNA结构被称为发夹RNA(hpRNA)。hpRNA由植物加工成siRNA，其整合入RNA诱导的沉默复合物(RISC)中。RISC进一步切割mRNA转录本，由此大量降低将被翻译成多肽的mRNA转录本的数量。对于更多一般性细节见例如，Grierson等(1998)WO98/53083；Waterhouse等(1999)WO99/53050)。
本发明方法的实施不依赖于在植物中引入和表达遗传构建体(核酸作为反向重复序列克隆至该构建体中)，也可使用数个众所周知的“基因沉默”方法中的任何一个或多个达到相同效果。
用于减少内源基因表达的一个此类方法是RNA介导的基因表达沉默(下调)。在此情况下，沉默由植物中的双链RNA序列(dsRNA)引发，该双链RNA序列与内源靶基因基本相似。这个dsRNA由植物进一步加工成被称为短干扰RNA(siRNA)的约20至约26个核苷酸。siRNA整合入RNA诱导的沉默复合物(RISC)中，该复合物切割内源靶基因的mRNA转录本，由此大量减少将被翻译成多肽的mRNA转录本的数量。优选地，双链RNA序列对应于靶基因。
RNA沉默方法的另一个例子包括在植物内以有义方向引入核酸序列或其部分(在此情况下是从目的基因或从任何核酸中衍生的一段基本上连续的核苷酸区段，其中所述的任何核酸能够编码目的蛋白质的直向 同源物、旁系同源物或同源物)。“有义方向”指与其mRNA转录本同源的DNA序列。因此引入植物的将至少是核酸序列的一个拷贝。附加的核酸序列将降低内源基因的表达，引起通常所说的共遏制现象。因为高转录本水平和共遏制的引发之间正相关，如果数个附加拷贝的核酸序列引入植物中，基因表达的降低将更显著。
RNA沉默方法的另一个例子包括使用反义核酸序列。“反义”核酸序列包含与编码蛋白质的“有义”核酸序列互补的核苷酸序列，也就是，与双链cDNA分子的编码链互补或与mRNA转录本序列互补。反义核酸序列优选与将被沉默的内源基因互补。互补性可位于基因的“编码区”和/或“非编码区”。术语“编码区”指含有翻译成氨基酸残基的密码子的核苷酸序列区。术语“非编码区”指位于编码区侧翼的5′和3′序列，其将被转录却不被翻译成氨基酸(也称为5′和3′非翻译区)。
反义核酸序列可根据Watson和Crick碱基配对的规则进行设计。反义核酸序列可以与整个核酸序列互补(在这种情况下，基本上连续的核苷酸片段可以来自目的基因，或来自能够编码目的蛋白质的直向同源物、旁系同源物或同源物的任何核酸)，也可以是寡核苷酸，其仅与核酸序列(包括mRNA5’和3’UTR)的一部分是反义的。例如，反义寡核苷酸序列可以与编码多肽的mRNA转录本的翻译起始位点周围的区域互补。适合的反义寡核苷酸序列长度在本领域是已知的，可从约50、45、40、35、30、25、20、15或10核苷酸长度或更少起始。本发明的反义核酸序列可使用化学合成以及酶连接反应通过本领域已知的方法构建。例如，反义核酸序列(例如，反义寡核苷酸序列)可以使用天然存在的核苷酸或各种改进的核苷酸(为增加分子的生物稳定性或增加反义和有义核酸序列之间形成的双螺旋的物理稳定性而设计)进行化学合成，例如，可以使用硫代磷酸酯衍生物和吖啶取代的核苷酸。本领域众所周知可用于产生反义核酸序列的改进的核苷酸的例子。已知的核苷酸改进包括甲基化、环化和‘加帽’和一个或多个天然存在核苷酸用类似物如肌苷替换。核苷酸的其它改进是本领域众所周知的。
可使用表达载体生物学产生反义核酸序列，其中核酸序列以反义方向亚克隆进入该表达载体(即，转录自插入核酸的RNA与目的靶核酸是反义方向的)。优选地，植物中反义核酸序列通过稳定整合的核酸构建体(包含启动子、有效连接的反义寡核苷酸和终止子)产生。
本发明方法中用于沉默的核酸分子(无论引入植物或在原位产生)与mRNA转录本和/或编码多肽的基因组DNA杂交或结合，由此抑制蛋白质的表达，例如，通过抑制转录和/或翻译。杂交可以通过常规的核苷酸互补形成稳定的双螺旋，或例如，就结合至DNA双螺旋的反义核酸序列而言，通过双螺旋大沟中的特异性相互作用。反义核酸序列可通过转化或在特异组织位点直接注射引入植物中。备选地，可改进反义核酸序列以靶向被选细胞，随后全身性施用。例如，对于全身施用，可改进反义核酸序列，使它们与表达于被选细胞表面上的受体或抗原特异性结合，例如通过将反义核酸序列连接至与细胞表面受体或抗原结合的肽或抗体。也可使用本文所述的载体将反义核酸序列输送至细胞。
另一方面，反义核酸序列是一种a-异头物核酸序列。a-异头物核酸序列与互补的RNA形成特异性双链杂交，其中(与常见的b-单元相反)链相互之间平行(Gaultier等(1987)Nucl Ac Res15：6625-6641)。反义核酸序列也可包含2′-o-甲基核糖核苷(Inoue等(1987)Nucl Ac Res15，6131-6148)或嵌合的RNA-DNA类似物(Inoue等(1987)FEBS Lett.215，327-330)。
内源基因表达的降低或基本消除也可使用核酶实施。核酶是有核糖核酸酶活性的催化RNA分子，能切割单链的核酸序列，如mRNA，它们与切割的单链核酸序列具有互补区。因此，核酶(例如，锤头核酶(在Haselhoff和Gerlach(1988)Nature334，585-591中描述)可用于催化切割编码多肽的mRNA转录本，由此基本上减少将要被翻译成多肽的mRNA转录本的数量。可以设计对核酸序列具有特异性的核酶(见例如：Cech等美国专利号4,987,071；和Cech等美国专利号5,116,742)。或者，对应于核酸序列的mRNA转录本可用于从RNA分子库中选择具有特定 核糖核酸酶活性的催化RNA(Bartel和Szostak(1993)Science261，1411-1418)。使用核酶用于植物中基因沉默是本领域已知的。(例如，Atkins等(1994)wO94/00012；Lenne等(1995)WO95/03404；Lutziger等(2000)WO00/00619；Prinsen等(1997)WO97/13865和Scott等(1997)WO97/38116)。
基因沉默也可以通过插入诱变(例如T-DNA插入或转座子插入)或通过如Angell和Baulcombe((1999)Plant J.20(3)：357-62)、(Amplicon VIGS WO98/36083)或Baulcombe(WO99/15682)及其它人描述的策略而实现。
如果内源基因上有突变，和/或在随后引入植物中的分离的基因/核酸上有突变，也可以发生基因沉默。降低或基本上消除可由非功能性多肽引起。例如，多肽可结合至多种相互作用的蛋白质；因此一个或多个突变和/或截断可提供一种多肽，该多肽仍能结合至相互作用的蛋白质(如受体蛋白质)，但不可显示其正常功能(如信号配体)。
基因沉默的另一种方法是通过靶向与基因调控区(例如启动子和/或增强子)互补的核酸序列以形成三重螺旋结构，该结构防止基因在靶细胞中转录。见Helene，C.，Anticancer Drug Res.6，569-84，1991；Helene等，Ann.N.Y.Acad.Sci.660，27-361992和Maher，L.J.Bioassays14，807-15，1992。
其它方法，如使用针对内源性多肽的抗体以抑制此多肽在植物中的功能，或干扰所述多肽参与的信号途径，对于技术人员而言是众所周知的。特别地，可预见人造分子可用于抑制靶多肽的生物学功能或用于干扰靶多肽参与的信号通路。
备选地，可以设立筛选程序以鉴定植物群体中基因的天然变体，该变体编码具有降低活性的多肽。此类天然变体也可用于例如实施同源重组。
人工和/或天然的微RNA(miRNA)可以用来敲除基因表达和/或mRNA翻译。内源性miRNA是典型地19-24个核苷酸长度的单链小 RNA。它们的主要功能是调控基因表达和/或mRNA翻译。大多数植物微RNA(miRNA)与它们的靶序列具有完全或近乎完全的互补性。然而，有的天然靶标具有可多达五个错配。它们通过Dicer家族双链特异性核糖核酸酶从更长的非编码RNA(带有特征性折回结构)加工而成。加工时，通过结合到其主要组分(Argonaute蛋白质)将它们整合入RNA诱导的沉默复合物(RISC)中。由于它们与细胞质中的靶核酸(主要是mRNA)进行碱基配对，MiRNA用作RISC的特异性组分。随后的调控事件包括靶mRNA切割和破坏和/或翻译抑制。因此，miRNA过表达的影响常常反映在靶基因减少的mRNA水平中。
典型地21个核苷酸长度的人工微RNA(amiRNA)可以遗传改造以特异性地负调控单个或多个目的基因的基因表达。植物微RNA靶的选择的决定因素是本领域众所周知的。用于靶识别的经验参数已经确定并且可以用来辅助设计特定的amiRNA(Schwab等，Dev.Cell8：517-527，2005)。用于设计并产生amiRNA及其前体的便利工具也是公众可获得的(Schwab等，Plant Cell18：1121-1133，2006)。
为获得最优的性能，用于降低内源基因在植物中表达的基因沉默技术需要使用来自单子叶植物的核酸序列以转化单子叶植物，和使用来自双子叶植物的核酸序列以转化双子叶植物。优选地，将来自任何给定植物物种的核酸序列引入同一个物种内。例如，将来自稻的核酸序列转化至稻植物。然而，并非绝对要求待引入的核酸序列起源于与该核酸序列将要引入的植物相同的植物物种。只要内源性靶基因与待引入的核酸之间存在相当大的同源性就足够了。
上文描述的是用于降低或基本去除内源基因在植物中表达的多种方法的例子。本领域技术人员会轻易地能够调整前述用于沉默的方法以至于例如通过利用合适启动子而实现在整株植物或在其部分中降低内源基因的表达。
转化
如本文中所提及的术语“引入”或“转化”包括将外源性多核苷酸转移 至宿主细胞内，无论用于转化的方法是什么。能够后续克隆性增殖(无论通过器官发生或胚胎发生)的植物组织可以用本发明的遗传构建体转化并且可以从中再生整株植物。选择的具体组织将取决于可用于并且最适于正进行转化的具体物种的克隆性增殖系统。示例性组织靶包括叶盘、花粉、胚、子叶、下胚轴、大配子体、愈伤组织、已有的分生组织(例如顶端分生组织、腋芽和根分生组织)和诱导的分生组织(例如子叶分生组织和下胚轴分生组织)。多核苷酸可以瞬时或稳定地引入宿主细胞并且可以非整合地维持，例如作为质粒。或者，多核苷酸可以整合至宿主基因组内。产生的转化植物细胞随后可以用来以本领域技术人员已知的方式再生出转化植物。
外来基因转移至植物基因组内称作转化。植物物种的转化现在是相当常规的技术。有利地，几种转化方法中的任一方法可以用来将目的基因引入合适的祖先细胞。用于从植物组织或植物细胞中转化并再生出植物所述的方法可以用于瞬时转化或用于稳定转化。转化方法包括使用脂质体、电穿孔法、增加游离DNA摄入的化学品、DNA直接注射至植物、粒子枪轰击法、使用病毒或花粉的转化法和显微注射。转化方法可以选自用于原生质体的钙/聚乙二醇法(Krens，F.A.等，(1982)Nature296，72-74；Negrutiu I等(1987)Plant Mol Biol8：363-373)；原生质体的电穿孔法(Shillito R.D.等(1985)Bio/Technol3，1099-1102)；对植物材料的显微注射(Crossway A等，(1986)Mol.Gen Genet202：179-185)；包被有DNA或RNA的粒子轰击法(Klein TM等，(1987)Nature327：70)、(非整合性)病毒感染法等。转基因植物，包括转基因作物植物，优选地通过农杆菌介导的转化法产生。有利的转化方法是在植物中(in planta)的转化法。为此目的，例如有可能使农杆菌作用于植物种子或有可能用农杆菌接种植物的分生组织。根据本发明已经证明使转化的农杆菌混悬液作用于完整植物或至少作用于花原基是特别有利的。植物随后继续培育直至获得所处理植物的种子(Clough和Bent，Plant J.(1998)16，735-743)。用于农杆菌介导的稻转化的方法包括用于稻转化的公知方法， 如在任一以下文献中描述的那些方法：欧洲专利申请EP1198985A1，Aldemita和Hodges(Planta199：612-617，1996)；Chan等(Plant Mol Biol22(3)：491-506，1993)，Hiei等(Plant J6(2)：271-282，1994)，其公开内容在本文中引入作为参考，如同完全给出那样。在玉米转化的情况下，优选的方法如Ishida等(Nat.Biotechnol14(6)：745-50，1996)或Frame等(Plant Physiol129(1)：13-22，2002)描述，其公开内容在本文中如充分所述那样引入作为参考。所述方法通过举例方式进一步由B.Jenes等，Techniq ues for Gene Transfer，在：Transgenic Plants，第1卷，Engineering and Utilization，编者S.D.Kung和R.Wu，Academic Press(1993)128-143及在Potrykus Annu.Rev.Plant Physiol.Plant Molec.Biol.42(1991)205-225)中描述。待表达的核酸或构建体优选地克隆至适于转化根癌农杆菌(Agrobacterium tumefaciens)的载体中，例如pBin19(Bevan等，Nucl.Acids Res.12(1984)8711)。由这种载体转化的农杆菌随后可以按照已知方式用于转化植物，例如作为模型使用的植物，如拟南芥(拟南芥属于本发明的范围，不视为作物植物)或作物植物如，例如烟草植物，例如通过在农杆菌溶液中浸泡擦伤的叶或切碎的叶并随后将它们在合适的培养基内培育。植物通过根癌农杆菌的转化例如由和Willmitzer在Nucl.Acid Res.(1988)16，9877中描述或尤其从F.F.White，Vectors for Gene Transfer in Higher Plants；在Transgenic Plants，第1卷，Engineering and Utilization，编者S.D.Kung和R.Wu，Academic Press，1993，第15-38页中获知。
除了转化体细胞(其随后必须再生成完整植物)之外，还有可能转化植物分生组织的细胞及特别转化发育成配子的那些细胞。在这种情况下，转化的配子遵循天然的植物发育过程，产生转基因植物。因此，例如拟南芥种子用农杆菌处理并且从发育植物中获得种子，其中一定比例的所述植物受到转化并且因此是转基因的[Feldman，KA和Marks MD(1987)Mol Gen Genet.208：1-9；Feldmann K(1992)。在：编者C Koncz，N-H Chua和J Shell，Methods in Arabidopsis Research.Word Scientific， Singapore，第274-289页]。替代性方法基于反复去掉花序并使莲座中心中的切除部位与转化的农杆菌孵育，因而转化的种子同样可以在较晚的时间点获得(Chang(1994)Plant J.5：551-558；Katavic(1994).Mol Gen Genet，245：363-370)。然而，尤其有效的方法是改进的真空渗入法，如“花浸染”法。在拟南芥真空渗入法的情况下，完整植物在减压下用农杆菌混悬液处理[Bechthold，N(1993).C R Acad Sci Paris Life Sci，316：1194-1199]，而在“花浸染”法的情况下，正在发育的花组织与表面活性剂处理的农杆菌混悬液短暂孵育[Clough，SJ和Bent，AF(1998)The Plant J.16，735-743]。在两种情况下收获了一定比例的转基因种子，并且这些种子可以通过在如上所述的选择条件下培育而与非转基因种子区分。此外，质体的稳定转化是有利的，因为质体在大部分作物中以母体方式遗传，降低或消除了转基因经花粉流动风险。叶绿体基因组的转化一般通过已在Klaus等，2004[Nature Biotechnology22(2)，225-229]中示例性加以展示的方法实现。简而言之，待转化的序列连同可选择标记基因一起克隆至与叶绿体基因组同源的侧翼序列之间。这些同源的侧翼序列指导位点特异性整合至原质体系内。已经对众多不同植物物种描述了质体转化并且综述可以出自Bock(2001)在基础研究和植物生物技术中的转基因质体(Transgenic plastids in basic research and plant biotechnology)，J Mol Biol.2001年9月21日；312(3)：425-38或Maliga，P(2003)质体转化技术商业化进展(Progress towards commercialization of plastid transformation technology)，Trends Biotechnol.21，20-28。进一步生物技术进展最近已经以无标记质体转化体的形式作了报道，所述无标记质体转化体可以通过瞬时共整合的标记基因产生(Klaus等，2004，Nature Biotechnology22(2)，225-229)。
遗传修饰的植物细胞能够通过技术人员熟悉的所有方法再生。合适的方法可见于上述S.D.Kung和R.Wu、Potrykus或者和Willmitzer的出版物。
通常在转化以后，选出存在一个或多个标记的植物细胞或细胞群， 所述标记由与目的基因共转移的植物可表达基因编码，继之将转化的材料再生成整个植物。为选择转化的植物，通常将在转化过程中获得的植物材料置于选择性条件下，从而可将转化的植物与非转化植物区分开来。例如，可以种植以上述方式获得的种子，并在最初的生长期之后，通过喷雾对其进行合适的选择。另一可能方案是将种子(需要时在灭菌之后)种在含有合适选择剂的琼脂板上，从而仅转化的种子能够长成植物。备选地，针对转化的植物筛选可选择标记(如上文所述标记)的存在。
DNA转移和再生之后，还可评价推定转化的植物，例如用Southern分析，评价目的基因的存在、拷贝数和/或基因组构造。备选地或额外地，可用Northern和/或Western分析监测新引入的DNA的表达水平，这两种技术都是本领域普通技术人员所众所周知的。
产生的转化植物可以通过多种方式繁殖，如通过克隆繁殖或经典的育种技术。例如，第一代(或T1)转化的植物可自交，选择纯合的第二代(或T2)转化体，而T2植物可进一步通过经典育种技术繁殖。产生的转化生物体可以有多种形式。例如，它们可以是转化细胞和非转化细胞的嵌合体；克隆的转化体(例如所有细胞经转化含有表达盒)；转化和非转化组织的嫁接体(例如在植物中，转化的根状茎嫁接到非转化的接穗上)。
在该申请的通篇中，由于通过生物技术方法引入构建体或核酸，所以应当将用或者通过所述构建体转化的或者用或通过所述核酸转化的植物、植物部分、种子或植物细胞理解为携带作为转基因的所述构建体或所述核酸的植物、植物部分、种子或植物细胞。因此，植物、植物部分、种子或植物细胞包含所述重组构建体或所述重组核酸。在本申请的含义内，将过去在引入后不再含有所述重组构建体或所述重组核酸的任何植物、植物部分、种子或植物细胞称为失效分离子、失效合子或失效对照，而不认为是用所述构建体或用所述核酸转化的植物、植物部分、种子或植物细胞。
T-DNA激活标签化
T-DNA激活标签化(Hayashi等Science(1992)1350-1353)涉及在目的基因的基因组区域内或基因编码区上游或下游10kb处以如此结构插入T-DNA(通常含有启动子，也可以是翻译增强子或内含子)，使得启动子指导被靶定基因的表达。通常，由靶定基因的天然启动子对所述靶定基因表达的调控作用遭到破坏并且该基因处在新引入的启动子控制下。启动子一般嵌入在T-DNA中。这种T-DNA随机地插入植物基因组，例如通过农杆菌感染，并导致在所插入T-DNA附近的基因的经修饰的表达。因靠近所引入启动子的基因的经修饰的表达，产生的转基因植物表现显性表型。
TILLING
术语“TILLING”是“基因组内定向诱导的局部损伤”的缩写，指用于产生和/或鉴定核酸的诱变技术，其中所述的核酸编码具有修饰的表达和/或活性的蛋白质。TILLING还允许选择携带此类突变变体的植物。这些突变变体可以显示在强度方面或在位置方面或在时间方面经修饰的表达(例如若突变影响启动子)。这些突变变体可以显示比由处于其天然形式的基因所显出活性更高的活性。TILLING将高密度诱变与高通量筛选方法组合。典型地在TILLING中遵循的步骤是：(a)EMS诱变(Redei GP和Koncz C(1992)在Methods in Arabidopsis Research，Koncz C，Chua NH，Schell J编辑，Singapore，World Scientific Publishing Co，第16-82页；Feldmann等，(1994)在Meyerowitz EM，Somerville CR编辑，Arabidopsis.Cold Spring Harbor Laboratory Press，Cold Spring Harbor，NY，第137-172页；Lightner J和Caspar T(1998)在J Martinez-Zapater，J Salinas编者，Methods on Molecular Biology第82卷，Humana Press，Totowa，NJ，第91-104页)；(b)个体的DNA制备和汇集；(c)PCR扩增目的区；(d)变性和退火以允许形成异源双链体；(e)DHPLC，其中将异源双链体在汇集物中的存在检测为色谱图之一额外峰；(f)鉴定突变个体；和(g)对突变PCR产物测序。用于TILLING的方法是本领域众所周知的(McCallum等，(2000)Nat Biotechnol18： 455-457；综述见Stemple(2004)Nat Rev Genet5(2)：145-50)。
同源重组
同源重组允许选择的核酸在基因组中于确定的所选择位置内引入。同源重组是在生物科学中常规地用于低等生物如酵母或苔藓剑叶藓(Physcomitrella)的标准技术。用于在植物中开展同源重组的方法已经不仅对模式植物(Offringa等，(1990)EMBO J9(10)：3077-84)而且对作物植物例如稻(Terada等，(2002)Nat Biotech20(10)：1030-4；Iida和Terada(2004)Curr Opin Biotech15(2)：132-8)进行了描述，并且不论何种目标生物，都存在一般可用的方法(Miller等，Nature Biotechnol.25，778-785，2007)。
产量相关性状
产量相关性状是与植物产量相关的性状或特征。产量相关性状可包括下述非限制性特征列表中的一项或多项：早期开花时间；产量、生物量、种子产量、早期萌发势、绿度指数、增加的生长速率、改进的农学性状(例如增加的对浸没的耐受性(其导致增加的稻产量)、改进的用水效率(WUE)、改进的氮利用效率(NUE)等等)。
应当将术语“一种或多种产量相关性状”理解为指与对照植物比较，一种植物的一种产量相关性状、或2种或3种或4种或5种或6种或7种或8种或9种或10种或10种以上的产量相关性状。
在本文中，提及“增强的产量相关性状”意为相对于对照植物而言，整株植物或者植物的一个或多个部分的产量相关性状(例如早期萌发势和/或生物量)的增加，其可以包括(i)地上部分，优选地地上可收获部分和/或(ii)地下部分，优选地地下可收获部分。
特别地，此类可收获部分是根，例如直根、茎、甜菜块根(beet)、块茎、叶、花或种子，并且本发明方法的实施产生了这样的植物，其相对于对照植物的种子产量而言具有增加的种子产量和/或相对于对照植物的地上生物量而言具有增加的地上生物量，以及特别是相对于对照植 物的茎生物量而言的茎生物量，和/或相对于对照植物的根生物量而言增加的根生物量和/或相对于对照植物的甜菜块根生物量而言增加的甜菜块根生物量。此外，特别考虑了地上部分，特别是茎(特别是甘蔗植物)中和/或地下部分中，特别是根包括直根和块茎中，和/或甜菜块根(特别是糖萝卜(sugar beet))中的糖含量相对于对照植物的对应部分中的糖含量(特别是蔗糖含量)而言是增加的。
产量
术语“产量”通常意指经济价值的可测量结果，典型地与指定作物、与面积并与时间段有关。单个植物部分基于它们的数目、大小和/或重量而直接对产量有贡献，或实际产量是对于某作物而言一年内每平方米的产量，这通过总产量(包括收获的和评价的产量)除以种植的平方米数而确定。
术语植物的“产量”和“植物产量”在本文中可互换使用，并用于表示该植物的营养体生物量如根和/或苗生物量、繁殖器官和/或繁殖体例如植物的种子。
玉米的花是单性的；雄性花序(雄花穗)来源于茎端和雌性花序(穗)产生自腋芽端。雌性花序在中央轴(穗轴)的表面上产生成对的小穗。每个雌性小穗包括两个可育小花，它们中通常有一个在受精后成熟为玉米粒。因此，玉米的产量增加可以表现为下列一种或多种指标：每平方米中已建立植物数的增加、每株植物穗数的增加、行数、每行粒数、粒重、千粒重、玉米穗长度/直径的增加、种子饱满率的增加，种子饱满率是饱满小花(即，含有种子的小花)数除以小花总数并乘以100，及其它。
稻植物中的花序被称为圆锥花序。圆锥花序具有小穗状花序(spikelet)。小穗状花序是圆锥花序的基本单元，并且其由蒂和小花构成。小花生在蒂上，并包括由两个保护性颖覆盖的花：较大的颖(外稃)和较短的颖(内稃)。因此，以稻为例，产量增加本身可以表现为下列 一种或多种指标的增加：每平方米植物数、每株植物圆锥花序(panicle)数、圆锥花序长度、每圆锥花序的小穗状花序数、每圆锥花序的花(或小花)数、种子饱满率的增加(其中种子饱满率是饱满小花(即，含有种子的小花)数除以小花总数并乘以100)、千粒重的增加及其它。
早期开花时间
如本文中所用，具有“早期开花时间”的植物是比对照植物更早开始开花的植物。因此该术语指显示出更早开始开花的植物。植物的开花时间可以通过计数播种和第一个花序出现之间的天数(“开花时间”)评价。植物的“开花时间”可以例如使用如在WO2007/093444中所述的方法测定。
旱期萌发势
“早期萌发势”指活跃、健康、良好平衡的生长(特别是在植物生长早期期间)，并可以因植物适合度增加而产生，其原因在于例如植物更好地适应其环境(即优化能源的使用和苗与根之间的分配)。具有早期萌发势的植物也显示增加的幼苗存活和更好的作物建立，这往往导致高度均匀的田块(作物整齐地生长，即大多数植物在基本上相同的时间上达到发育的各阶段)和往往更好及更高的产量。因而，早期萌发势可以通过测量多种因素如千粒重、发芽百分数、出苗百分数、幼苗生长、幼苗高度、根长度、根及苗生物量和众多其它因素而确定。
增加的生长速率
增加的生长速率可以对于植物的一个或多个部分(包括种子)是特异性的，或可以基本上遍及整株植物。具有增加的生长速率的植物可以具备较短的生活周期。植物的生活周期可以视为意指从干燥成熟种子成长至植物已经产生与起始材料相似的干燥成熟种子的阶段所需要的时间。这个生活周期可以受下列因素影响，如发芽的速度、早期萌发势、生长速率、绿度指数、开花时间和种子成熟速度。生长速率的增加可以在植物生活周期之一或多个阶段上或在基本上整个植物生活周期期间发生。在植物生活周期中的早期期间增加的生长速率可以反映增强的萌发势。 生长速率的增加可以改变植物的收获周期，允许植物较晚播种和/或较早收获，否则这将不可能(相似的作用可以用较早的开花时间获得)。若生长速率充分地增加，可以允许再播种相同植物物种的种子(例如播种并收获稻植物，随后播种并收获其它稻植物，全部均在一个常规生长时段内)。类似地，若生长速率足够地增加，可以允许再播种不同植物物种的种子(例如播种并收获玉米植物，随后例如播种并任选收获大豆、马铃薯或任何其它合适植物)。从相同的根茎中收获额外次数在一些作物植物的情况中也是可能的。改变植物的收获周期可以导致每平方米的年生物量产量的增加(因任何特定植物可以生长并收获的次数(如在一年中)增加)。生长速率的增加也可以允许比其野生型对应物而言在更广泛的地理区域内培育转基因植物，因为对培育作物的区域限制往往由栽种时节(旱季)或在收获时期(晚季)的不利环境条件所决定。若缩短收获周期，则可以避开这类不利条件。生长速率可以通过从生长曲线中得到多种参数而确定，此类参数可以是：T-Mid(植物达到其50％最大尺寸所花费的时间)和T-90(植物达到其90％最大尺寸所花费的时间)，等等。
胁迫抗性
与对照植物相比，无论植物处于非胁迫条件下还是植物暴露于多种胁迫下，都发生产量和/或生长速率的增加。植物典型地通过生长得更慢而对暴露于胁迫作出应答。在严重胁迫条件下，植物甚至可以完全停止生长。另一方面，轻度胁迫在本文中定义为植物暴露于其的任何胁迫，其中所述的胁迫未导致植物完全停止生长而没有恢复生长的能力。与非胁迫条件下的对照植物相比，轻度胁迫在本发明意义中导致受胁迫植物生长降低小于40％、35％、30％或25％，更优选小于20％或15％。由于农业实践(灌溉、施肥、杀虫剂处理)上的进步，在栽培作物植物中并不经常遇到严重胁迫。因此，由轻度胁迫诱导的受损生长往往是农业上不希望的特征。轻度胁迫是植物暴露的常见生物性和/或非生物性(环境)胁迫。非生物胁迫也称为环境胁迫可以因干旱或水涝、厌氧胁迫、盐胁迫、化学毒性、氧化胁迫和热、寒冷或冰冻温度所致。
生物胁迫典型地是由病原体如细菌、病毒、真菌、线虫和昆虫引起的那些胁迫。“生物胁迫”应理解为通过其他活的生物，例如细菌、病毒、真菌、线虫和昆虫、其他动物或其他植物对植物的负面影响。
“非生物胁迫”或可互换的“环境胁迫”可以是由水胁迫(例如因为干旱)、盐胁迫或冰冻胁迫引起的渗透胁迫。非生物胁迫还可以是氧化胁迫或寒冷胁迫。“冰冻胁迫”意指由于冰冻温度(即，在该温度下可获得的水分子冰冻并变成冰的温度)导致的胁迫。“寒冷胁迫”也称为“严寒胁迫(chilling stress)”，其意指寒冷的温度，例如，低于10°的温度，或者优选低于5°的温度，但是在该温度水分子并不冰冻。如在Wang等(Planta(2003)218：1-14)中报道，非生物胁迫导致不利地影响植物生长及生产力的一系列形态学变化、生理学变化、生物化学变化和分子变化。已知干旱、盐度、极端温度和氧化胁迫是相互联系的并可以通过相似机制而诱导生长损害及细胞损害。Rabbani等(Plant Physiol(2003)133：1755-1767)描述了干旱胁迫与高盐度胁迫间极高程度的“交叉对话(cross talk)”。例如，干旱和/或盐化作用主要表现为渗透胁迫，导致细胞内稳态和离子分布的破坏。经常伴随高温或低温、盐度或干旱胁迫的氧化胁迫可以造成功能性蛋白和结构蛋白变性。因此，这些多样的环境胁迫常常激活相似的细胞信号途径和细胞应答，如产生胁迫蛋白质、上调抗氧化物质、积累相容性溶质和生长抑制。如本文中所用的术语“非胁迫”条件是允许植物最佳生长的环境条件。本领域技术人员清楚对于给定地点的正常土壤条件和气候条件。最佳生长下生长的植物(在非胁迫条件下生长)典型地出产以递增优选顺序至少97％、95％、92％、90％、87％、85％、83％、80％、77％或75％的给定环境下这样植物的平均生产。平均生产可以收获和/或季节为基础进行计算。本领域技术人员清楚作物的平均产量生产。
特别地，本发明的方法可在非胁迫条件下进行。在一个例子中，本发明的方法可以在非胁迫条件例如轻度干旱下进行，产生相对对照植物具有增加的产量的植物。
在另一实施方案中，本发明的方法可在胁迫条件，优选在环境胁迫条件下进行。
在一个例子中，本发明的方法可在胁迫条件例如干旱下进行，产生相对对照植物具有增加的产量的植物。
在另一例子中，本发明的方法可在胁迫条件例如养分缺乏下进行，产生相对对照植物具有增加的产量的植物。
养分缺乏可以由养分(例如氮、磷和其它含磷化合物、钾、钙、镁、锰、铁或者硼以及其它)缺少引起。
在另一例子中，本发明的方法可在胁迫条件下例如盐胁迫下进行，产生相对对照植物具有增加的产量的植物。术语盐胁迫不限于常见盐(NaCl)，可以为以下一种或多种：NaCl、KCl、LiCl、MgCl2、CaCl2等等。
在另一例子中，本发明的方法可在胁迫条件下例如寒冷胁迫或冰冻胁迫下进行，产生相对对照植物具有增加的产量的植物。
在其他实施方案中，本发明方法可以在非生物胁迫的任意组合下进行，特别在干旱或盐胁迫的组合下，与任意这些：寒冷胁迫、冷冻胁迫或高温胁迫组合进行。
增加/改进/增强
术语“增加”、“改进”或“增强”在产量相关性状的上下文中是可互换的，并且应当在本申请内容上指与如本文中定义的对照植物相比，产量相关性状增加至少3％、4％、5％、6％、7％、8％、9％或10％、优选至少15％或20％、更优选25％、30％、35％或40％更多。
种子产量
增加的种子产量本身可以表现为下列一种或多种指标：
a)种子生物量(种子总重量)增加，这可以基于单粒种子和/或每株植物和/或每平方米；
b)每株植物增加的花数；
c)增加的种子数目；
d)增加的种子饱满率(其表述为饱满小花数除以小花总数的比率)；
e)增加的收获指数，其表述为可收获部分(如种子)产量除以植物地上部分的生物量的比率；和
f)增加的千粒重(TKW)，其从计数的种子数及其总重量外推而来。增加的TKW可以因增加的种子大小和/或种子重量所致，并且也可以因胚和/或胚乳尺寸的增加所致。
术语“饱满小花”和“饱满种子”可被视为同义词。
种子产量的增加也可以表现为种子大小和/或种子体积的增加。此外，种子产量的增加本身也可以表现为种子面积和/或种子长度和/或种子宽度和/或种子周长的增加。
绿度指数
如本文所用的“绿度指数”根据植物的数字图像计算。对于图像中属于植物目标的每一个像素，计算绿色值相对于红色值(在用于编码颜色的RGB模型中)之比。绿度指数表达为绿红比超过给定阈值的像素百分比。在正常生长条件下、在盐胁迫生长条件下、及在养分利用度下降的生长条件下，测量开花前末次成像时的植物绿度指数。相反，在干旱胁迫生长条件下，测量干旱后首次成像时的植物绿度指数。
生物量
如本文中所用的术语“生物量”意图指植物或植物部分的总重量。可以将总重量测量为干重、鲜重或湿重。在定义生物量的情况下，在植物的一个或多个部分的生物量之间可以进行区分，所述植物的一个或多个部分可以包括下述的一种或多种：
-地上部分，例如但不限于苗生物量、种子生物量、叶生物量等等；-地上可收获部分，例如但不限于苗生物量、种子生物量、叶生物量、茎生物量、setts等等；
-地下部分，例如但不限于根生物量、块茎、鳞茎等等；
-地下可收获部分，例如但不限于根生物量、块茎、鳞茎等等；
-部分插入地下或者与地面接触的可收获部分，例如但不限于甜菜块根和植物的其他下胚轴区域、根茎、匍匐茎或匍匐初生主根(creeping rootstalk)；
-营养生物量例如根生物量、苗生物量等等；
-繁殖器官，和
-繁殖体，例如种子。
在本申请通篇优选的实施方案中，应将任何涉及“根”的生物量或可收获部分或作为增加的糖含量的器官理解为涉及部分插入地下或与地面物理接触的可收获部分(例如但并不限于甜菜块根和植物的其他下胚轴区域、根茎、匍匐茎或匍匐初生主根，但不包括叶)，以及地下可收获部分(例如但不限于根、直根、块茎或鳞茎)。
标记辅助的育种
这种育种程序有时需要通过使用例如EMS诱变法对植物作诱变处理而引入等位基因变异；备选地，该程序可以从非故意引起的所谓“自然”起源的等位变体集合开始。随后进行等位变体的鉴定，例如通过PCR法。此后是用于选择所讨论序列的优选等位变体且其导致增加的产量的步骤。典型地通过监测含有所讨论序列的不同等位变体的植物的生长性能而实施选择。可以在温室中或田间监测生长性能。其它任选步骤包括将鉴定到有优选等位变体的植物与另一种植物杂交。这可以用来例如产生目标表型特征的组合。
在(遗传作图)中用作探针
编码目的蛋白质的核酸用于遗传和物理作图，该基因仅需要具有至少15个核苷酸长度的核酸序列。这些核酸可以用作限制性片段长度多态性(RFLP)标记。限制性消化的植物基因组DNA的Southern印迹(Sambrook J，Fritsch EF和Maniatis T(1989)Molecular Cloning，A Laboratory Manual)可以用编码目的蛋白质的核酸序列来探测。产生的条带图谱随后可以使用计算机程序如MapMaker(Lander等(1987) Genomics1：174-181)进行遗传分析以构建遗传图。此外，这些核酸可以用来探测含有经限制性内切核酸酶处理的一组个体的基因组DNA的Southern印迹，其中所述的一组个体代表具有确定的遗传杂交的亲代和后代。DNA多态性的分离被标出并用来计算编码目的蛋白质的核酸在使用这个群体先前所获得的遗传图中的位置(Botstein等(1980)Am.J.Hum.Genet.32：314-331)。
在Bernatzky和Tanksley(1986)Plant Mol.Biol.Reporter4：37-41中描述了植物基因衍生的探针的产生和其在遗传作图中的用途。众多出版物描述了使用以上所提及的方法学或其改进方法对特定cDNA克隆的遗传作图。例如，F2互交群、回交群、随机交配群、近等基因系和其它个体的组可以用于作图。此类方法学是本领域技术人员众所周知的。
所述核酸探针也可以用于物理作图(即序列在物理图上的排列；见Hoheisel等在：Non-mammalian Genomic Analyasis：A Practical Guide，Academic press1996，第319-346页及其中引用的参考文献)。
在另一实施方案中，核酸探针可以在直接荧光原位杂交(FISH)作图(Trask(1991)Trends Genet.7：149-154)中使用。尽管当前的FISH作图法支持使用大型克隆(几个kb至几百个kb；见Laan等(1995)Genome Res.5：13-20)，然而灵敏度的改进可以允许使用更短探针进行FISH作图。
用于遗传作图及物理作图的多种基于核酸序列扩增的方法可以使用所述核酸序列而实施。例子包括等位基因特异的扩增(Kazazian(1989)J.Lab.Clin.Med11：95-96)、PCR扩增片段的多态性(CAPS；Sheffield等(1993)Genomics16：325-332)、等位基因特异性连接(Landegren等(1988)Science241：1077-1080)、核苷酸延伸反应(Sokolov(1990)Nucleic Acid Res.18：3671)、放射杂交作图(Walter等(1997)Nat.Genet.7：22-28)和Happy作图(Dear和Cook(1989)Nucleic Acid Res.17：6795-6807)。对于这些方法，使用核酸的序列来设计并产生在扩增反应或在引物延伸反应中使用的引物对。此类引物的设计是本领域技术人员众所周知的。 在使用基于PCR遗传作图的方法中，可能必须鉴定在对应于当前核酸序列的整个区域内作图亲代间的DNA序列差异。然而，这对于作图法而言通常不是必需的。
植物
如本文中所用的术语“植物”包括整株植物、植物的祖先及后代和植物部分，包括种子、苗、茎、叶、根(包括块茎)、花和组织及器官，其中每种所提及对象包含目的基因/核酸。术语“植物”也包括植物细胞、悬浮培养物、愈伤组织、胚、分生组织区、配子体、孢子体、花粉和小孢子，同样每种提及的对象包含目的基因/核酸。
特别有用于本发明方法中的植物包括属于植物界(Viridiplantae)超家族的全部植物，特别是单子叶植物和双子叶植物，包括选自以下的饲用或饲料豆类、观赏植物、粮食作物、树或灌木：槭树属物种(Acer spp.)、猕猴桃属物种(Actinidia spp.)、秋葵属物种(Abelmoschus spp.)、剑麻(Agave sisalana)、冰草属物种(Agropyron spp.)、匍匐剪股颖(Agrostis stolonifera)、葱属物种(Allium spp.)、苋属物种(Amaranthus spp.)、欧洲海滨草(Ammophila arenaria)、凤梨(Ananas comosus)、番荔枝属物种(Annona spp.)、芹菜(Apium graveolens)、落花生属物种(Arachis spp.)、木波罗属物种(Artocarpus spp.)、石刁柏(Asparagus officinalis)、燕麦属物种(Avena spp.)(例如燕麦(Avena sativa)、野燕麦(Avena fatua)、比赞燕麦(Avena byzantina)、Avena fatua var.sativa、杂种燕麦(Avena hybrida))、阳桃(Averrhoa carambola)、莿竹属物种(Bambusa sp.)、冬瓜(Benincasa hispida)、巴西栗(Bertholletia excelsea)、甜菜(Betavulgaris)、芸苔属物种(Brassica spp.)(例如欧洲油菜(Brassica napus)、芜青物种(Brassica rapa ssp.)[低芥酸油菜(canola)、油菜(oilseed rape)、蔓青(turnip rape)])、Cadaba farinosa、茶(Camellia sinensis)、美人蕉(Canna indica)、大麻(Cannabis sativa)、辣椒属物种(Capsicum spp.)、天麻苔草(Carex elata)、番木瓜(Carica papaya)、大果假虎刺(Carissa macrocarpa)、山核桃属物种(Carya spp.)、红花(Carthamus tinctorius)、 栗属物种(Castanea spp.)、美洲木棉(Ceiba pentandra)、苦苣(Cichorium endivia)、樟属物种(Cinnamomum spp.)、西瓜(Citrullus lanatus)、柑桔属物种(Citrus spp.)、椰子属物种(Cocos spp.)、咖啡属物种(Coffea spp.)、芋头(Colocasia esculenta)、非洲梧桐属物种(Cola spp.)、黄麻属物种(Corchorus sp.)、芫荽(Coriandrum sativum)、榛属物种(Corylus spp.)、山楂属物种(Crataegus spp.)、番红花(Crocus sativus)、南瓜属物种(Cucurbita spp.)、香瓜属物种(Cucumis spp.)、菜蓟属物种(Cynara spp.)、胡萝卜(Daucas carota)、山马蝗属物种(Desmodium spp.)、龙眼(Dimocarpus longan)、薯蓣属物种(Dioscorea spp.)、柿树属物种(Diospyros spp.)、稗属物种(Echinochloa spp.)、油棕属(Elaeis)(例如油棕(Elaeis guineensis)、美洲油棕(Elaeis oleifera))、穇子(Eleusine coracana)、Eragrostis tef、蔗茅属物种(Erianthus sp.)、枇杷(Eriobotrya japonica)、桉属物种(Eucalyptus sp.)、红仔果(Eugenia uniflora)、荞麦属物种(Fagopyrum spp.)、水青冈属物种(Fagus spp.)、苇状羊茅(Festuca arundinacea)、无花果(Ficus carica)、金桔属物种(Fortunella spp.)、草莓属物种(Fragaria spp.)、银杏(Ginkgo biloba)、大豆属物种(Glycine spp.)(例如大豆(Glycine max)、大豆(Soja hispida)或大豆(Soja max))、陆地棉(Gossypium hirstum)、向日葵属物种(Helianthus spp.)(例如向日葵(Helianthus annuus))、长管萱草(Hemerocallis fulva)、木槿属物种(Hibiscus spp.)、大麦属物种(Hordeum spp.)(例如大麦(Hordeum vulgare))、甘薯(Ipomoea batatas)、核桃属物种(Juglans spp.)、莴苣(Lactuca sativa)、山黧豆属物种(Lathyrus spp.)、兵豆(Lens culinaris)、亚麻(Linum usitatissimum)、荔枝(Litchi chinensis)、百脉根属物种(Lotus spp.)、棱角丝瓜(Luffa acutangula)、羽扇豆属物种(Lupinus spp.)、Luzula sylvatica、番茄属物种(Lycopersicon spp.)(例如番茄(Lycopersicon esculentum)、Lycopersicon lycopersicum、Lycopersicon pyriforme)、硬皮豆属物种(Macrotyloma spp.)、苹果属物种(Malus spp.)、凹缘金虎尾(Malpighia emarginata)、牛油果(Mammea americana)、芒果(Mangifera  indica)、木薯属物种(Manihot spp.)、人心果(Manilkara zapota)、紫苜蓿(Medicago sativa)、草木樨属物种(Melilotus spp.)、薄荷属物种(Mentha spp.)、芒(Miscanthus sinensis)、苦瓜属物种(Momordica spp.)、黑桑(Morus nigra)、芭蕉属物种(Musa spp.)、烟草属物种(Nicotiana spp.)、木犀榄属物种(Olea spp.)、仙人掌属物种(Opuntia spp.)、鸟足豆属物种(Ornithopus spp.)、稻属物种(Oryza spp.)(例如稻、阔叶稻(Oryza latifolia))、稷(Panicum miliaceum)、柳枝稷(Panicum virgatum)、鸡蛋果(Passiflora edulis)、欧防风(Pastinaca sativa)、狼尾草属物种(Pennisetum sp.)、鳄梨属物种(Persea spp.)、芹菜(Petroselinum crispum)、虉草(Phalaris arundinacea)、菜豆属物种(Phaseolus spp.)、猫尾草(Phleum pratense)、刺葵属物种(Phoenix spp.)、南方芦苇(Phragmites australis)、酸浆属物种(Physalis spp.)、松属物种(Pinus spp.)、阿月浑子(Pistacia vera)、豌豆属物种(Pisum spp.)、早熟禾属物种(Poa spp.)、杨属物种(Populus spp.)、牧豆草属物种(Prosopis spp.)、李属物种(Prunus spp.)、番石榴属物种(Psidium spp.)、石榴(Punica granatum)、西洋梨(Pyrus communis)、栎属物种(Quercus spp.)、萝卜(Raphanus sativus)、波叶大黄(Rheum rhabarbarum)、茶藨子属物种(Ribes spp.)、蓖麻(Ricinus communis)、悬钩子属物种(Rubus spp.)、甘蔗属物种(Saccharum spp.)、柳属物种(Salix sp.)、接骨木属物种(Sambucus spp.)、黑麦(Secale cereale)、胡麻属物种(Sesamum spp.)、白芥属物种(Sinapis sp.)、茄属物种(Solanum spp.)(例如马铃薯(Solanum tuberosum)、红茄(Solanum integrifolium)或番茄(Solanum lycopersicum))、高粱(Sorghum bicolor)、菠菜属物种(Spinacia spp.)、蒲桃属物种(Syzygmm spp.)、万寿菊属物种(Tagetes spp.)、酸豆(Tamarindus indica)、可可树(Theobroma cacao)、车轴草属物种(Trifolium spp.)、Tripsacum dactyloides、黑小麦物种(Triticale sp.)、Triticosecale rimpaui、小麦属物种(Triticum spp.)(例如普通小麦(Triticum aestivum)、硬粒小麦(Triticum durum)、圆柱小麦(Triticum  turgidum)、Triticum hybernum、马卡小麦(Triticum macha)、普通小麦(Triticum sativum)、Triticum monococcum或普通小麦(Triticum vulgare))、小金莲花(Tropaeolum minus)、金莲花(Tropaeolum majus)、越桔属物种(Vaccinium spp.)、野碗豆属物种(Vicia spp.)、豇豆属物种(Vigna spp.)、香堇(Viola odorata)、葡萄属物种(Vitis spp.)、玉蜀黍(Zea mays)、Zizania palustris、枣属物种(Ziziphus spp.)等等。
优选的植物是禾本科(poaceae)。最优选的植物是甘蔗，优选地蔗糖属(saccharum)。最优选地，植物选自斑茅(Saccharum arundinaceum)、Saccharum bengalense、肉质花穗野生种(Saccharum edule)、Saccharum munja、甘蔗(Saccharum officinarum)、狭叶斑茅(Saccharum procerum)、沙生蔗茅(Saccharum ravennae)、大茎野生种(Saccharum robustum)、竹蔗(Saccharum sinense)和甜根子草(Saccharum spontaneum)。
关于本发明序列，植物来源的核酸或多肽序列分别具有优化用于在植物中表达的密码子使用，以及在植物中常见的氨基酸和调控位点的使用的特征。植物来源可以是任何植物，但优选地是那些在前面章节中所述的植物。
对照植物
选择合适的对照植物是实验设置的常规部分并且可以包括对应的野生型植物或无目的基因的对应植物。对照植物典型地是与待评价植物属于相同的植物物种或甚至是相同的品种。对照植物也可以是待评价植物的失效合子(nullizygote)。失效合子(也称为失效对照植物)是通过分离丢失转基因的个体。此外，对照植物在与本发明植物的生长条件等同的生长条件下生长。通常，对照植物在等同的生长条件下，并因此在本发明植物的附近，以及在相同的时间生长。如本文中所用的“对照植物”不仅指整株植物，还指植物部分，包括种子及种子部分。
繁殖材料/繁殖体
“繁殖材料”和可互换的“繁殖体”是能发育成完整植物的任意种类 的器官、组织或植物的细胞。“繁殖物种”可以基于营养生殖(也已知为营养繁殖、营养增殖或营养克隆)或者有性生殖。因此，繁殖材料可以是种子或者非生殖器官的一部分，如茎或叶。特别地，关于禾本科，合适的繁殖材料可以是茎的切片，即茎插条(如sett)。
茎杆(Stalk)
“茎杆”是禾本科的茎，并且也已知为“可碾磨的秆(millable cane)”。在禾本科的上下文中，“茎杆”、“茎”、“苗”或“分蘖(Tiller)”可互换使用。
Sett
“Sett”是禾本科的茎的一部分，其适合作为繁殖材料。“Sett”的同义表述是“种子-秆”、“茎插条”、“茎杆部分”和“种子片”。
发明详述
令人吃惊地，现在发现调节编码POI多肽之核酸在植物中的表达产生相对于对照植物而言具有一种或多种增强的产量相关性状的植物。
根据第一个实施方案，本发明提供了在植物中相对于对照植物而言增强一种或多种产量相关性状的方法，所述方法包括调节植物中编码POI多肽之核酸的表达和/或增加POI多肽的表达，和任选地选择具有一种或多种增强的产量相关性状的植物。根据另一个实施方案，本发明提供了产生相对于对照植物而言具有一种或多种增强的产量相关性状的植物的方法，其中所述方法包括调节所述植物中编码如本文中所述的POI多肽之核酸的表达，和任选地选择具有一种或多种增强的产量相关性状的植物的步骤。
用于调节(优选增加)编码POI多肽之核酸的表达和/或增加POI多肽的表达的一种优选方法是通过在植物中分别引入和表达编码POI多肽之核酸，优选地通过重组方法来进行的。
下文中任何地方提到“可用于本发明方法的蛋白质”指本文所定义的POI多肽。下文中任何地方提到“可用于本发明方法的核酸”指能够 编码此POI多肽的核酸。在一个实施方案中，任何地方提及“用于本发明方法”的蛋白质或核酸应理解为指“用于本发明方法、构建体、植物、可收获部分和产品、构建体、植物、可收获部分和产品”的蛋白质或核酸。待引入植物(并因此可用于实施本发明方法)的核酸是编码现将描述的蛋白质类型的任何核酸，下文也称为“POI核酸”或“POI基因”。
如本文中所定义的“POI”或“POI多肽”指在硫缺乏条件下上调的任何多肽。因此，本发明POI多肽称为低硫上调的多肽(LSU多肽)。
在一个实施方案中，本发明LSU蛋白质(即POI多肽)是酸性蛋白质，即其具有7.0以下的等电点值(pI)，优选地等于或小于6.0，更优选地等于或小于5.5和最优选地等于或小于5.0的等电点值(pI)。
在另一个实施方案中，LSU多肽具有等于或小于15000Da，优选地等于或小于14000Da，更优选地等于或小于13000Da，以及甚至更优选地等于或小于12000Da和最优选地等于或小于11000Da的分子量，其中Da是道尔顿的缩写，并且1道尔顿是1u。
在本发明的一个实施方案中，LSU多肽是具有等于或小于125、121、120、115、110、109、108、107、106、105、104、103、102、101、100、99、98、97、96、95、94个氨基酸长度的短的成熟蛋白质。在另一个实施方案中，LSU多肽为至少40、45、50或55个氨基酸长度。在其他实施方案中，编码LSU的核酸具有等于或小于400、390、385、380、375、370、365、360、355、350、345、340、335、330、325、320、315、310、305、303、300、295、294、293、292、291、290、289、288、287、286、285bp的长度。
LSU多肽可以来自任何来源，例如古细菌、细菌、真菌、酵母或植物。在本发明的一个实施方案中，优选的是植物LSU多肽。在将植物LSU多肽用于本发明方法、用途、构建体、载体和产品的实例中，在一个实施方案中，所使用的LSU的来源选自双子叶植物，优选地当单子叶植物的产量相关性状是待调节的时候。
在一个优选的实施方案中，当用InterProScan软件(见Zdobnov  E.M.and Apweiler R.；″InterProScan-an integration platform for the signature-recognition methods in InterPro.″；Bioinformatics，2001，17(9)：847-8；InterPro database，Release36.0，23February，2012；以及http：//www.ebi.ac.uk/Tools/pfa/iprscan/)分析时，LSU多肽没有可检测的特征。对于InterProScan分析和所涉及的数据库，详见实施例4。
在一个实施方案中，LSU多肽(至少以其天然形式)具有核定位信号。用于测量核定位或蛋白质转移至核的工具和技术是本领域熟知的。
又在另一个实施方案中，LSU多肽具有核定位信号和/或卷曲螺旋区，更优选地具有二者。在一个实施方案中，LSU多肽是Lewandowska及其同事在2010年的出版物(Lewandowska M，Wawrzynska A，Moniuszko G，Lukomska J，Zientara K，Piecho M，Hodurek P，Zhukov I，Liszewska F，Nikiforova V，Sirko A.A contribution to identification of novel regulators of plant response to sulfur deficiency：characteristics of a tobacco gene UP9C，its protein product and the effects of UP9C silencing.Mol Plant.2010Mar；3(2)：347-60LSU)的第349页图1A中所示的任意多肽，所述多肽在此处引入作为参考。
如本文中所用的术语“LSU”或“LSU多肽”还意图包括如下文所定义的“LSU多肽”的同源物。
在一个实施方案中，用于本发明方法、构建体、植物、可收获部分和产品的核酸序列为
a.核酸分子，其选自：
i.SEQ IDNO：1、3、5、7、9、11、13、15、17、19、21、23、25、27、29、31、33、35或47(的任意之一)所表示的核酸；
ii.SEQ IDNO：1、3、5、7、9、11、13、15、17、19、21、23、25、27、29、31、33、35或47(的任意之一)所表示的核酸的互补序列；
iii.编码SEQ ID NO：2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36或48(的任意之一)所表示的多肽的核酸，优选地由于遗传密码的简并性，所述分离的核酸可以来源于SEQ ID  NO：2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36或48(的任意之一)所表示的多肽序列，并且还优选地相对于对照植物赋予一种或多种增强的产量相关性状；
iv.核酸，所述核酸以递增的优先顺序与SEQ IDNO：1、3、5、7、9、11、13、15、17、19、21、23、25、27、29、31、33、35或47的任一核酸序列具有至少30％、31％、32％、33％、34％、35％、36％、37％、38％、39％、40％、41％、42％、43％、44％、45％、46％、47％、48％、49％、50％、51％、52％、53％、54％、55％、56％、57％、58％、59％、60％、61％、62％、63％、64％、65％、66％、67％、68％、69％、70％、71％、72％、73％、74％、75％、76％、77％、78％、79％、80％、81％、82％、83％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％或99％的序列同一性，并且还优选地相对于对照植物赋予一种或多种增强的产量相关性状；
v.第一核酸分子，其在严格条件下与(ii)的第二核酸分子杂交，并优选地相对于对照植物赋予一种或多种增强的产量相关性状；
vi.编码多肽的核酸，所述多肽以递增的优先顺序与SEQ ID NO：2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36或48(的任意之一)所表示的氨基酸序列具有至少50％、51％、52％、53％、54％、55％、56％、57％、58％、59％、60％、61％、62％、63％、64％、65％、66％、67％、68％、69％、70％、71％、72％、73％、74％、75％、76％、77％、78％、79％、80％、81％、82％、83％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％或99％的序列同一性，并且还优选地相对于对照植物赋予一种或多种增强的产量相关性状；
b.或者编码多肽的核酸，所述多肽选自：
i.SEQ ID NO：2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36或48(的任意之一)所表示的多肽；
ii.多肽，所述多肽以递增的优选顺序与SEQ ID NO：2、4、6、8、 10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36或48(的任意之一)所表示的氨基酸序列具有至少50％、51％、52％、53％、54％、55％、56％、57％、58％、59％、60％、61％、62％、63％、64％、65％、66％、67％、68％、69％、70％、71％、72％、73％、74％、75％、76％、77％、78％、79％、80％、81％、82％、83％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％或99％的序列同一性，
iii.上述ii的多肽，并且此外或备选地包含一个或多个基序，所述基序以递增的优选顺序与37、38、39、45或46中，优选地SEQ ID NO：37、38或39中，更优选地SEQ ID NO：39中给出的任何一个或多个基序具有至少50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％、99％或者更多的序列同一性，并优选地相对于对照植物赋予一种或多种增强的产量相关性状；
iv.上文(i)或(iii)给出的任何氨基酸序列的衍生物。
优选地，多肽包含如本文中其他地方所定义的一个或多个基序和/或结构域。
如本文中所定义的“LSU多肽”，优选地指包含一个或多个以下基序的多肽：
基序1(SEQ ID NO：37)：
M[KR][KR]E[ML][LQ]Q[LA]W[RE]R[TL][QVR]VAEEAEERLCSQL[AG]ELE[AV]E[SA][LV]DQARDYH[SD]RI[VIL][FS]L[MV][DN][QE]
基序2(SEQ ID NO：38)：
TV[AT]A[ES]E[VE][DE]EL[RK][RK][RK]N[GE]E[LM]E[KR][EA][VL]
基序3(SEQ ID NO：39)：
[VM][AT]EEAEE[RQHS]LCSQL[AG]ELE[AV]E
基序4(SEQ ID NO：45)：
M[KR][SKR]E[ML][LQ][QR][LA]W[RE]R[TL][QVR]VAEEAEERLCSQL[AG]ELE[AV]E[SA][LV][SD][QH]ARD[YC]H[SDA]RI[VIL][FS]L[MV][DN][QE]
基序5(SEQ ID NO：46)：
TV[K或无][ATD][AG][ES]E[VEM][DEM][E或无]L[RK][RK][RK]N[GE]E[LM]E[KR][EA][VL]
如本文中所使用的“LSU”或“LSU多肽”还意图包括入下文所定义的“LSU多肽”的同源物。
基序1、2、4和5是使用MEME算法(Bailey和Elkan，Proceedings of the Second International Conference on Intelligent Systems for Molecular Biology，pp.28-36，AAAI Press，Menlo Park，California，1994)在两步法中获得的。在MEME基序中的每个位置上，显示出在查询序列集中以高于0.2的频率存在的残基。然后，人工编辑基序序列。
基序3人工地产生自序列比对。
方括号内的残基代表可备选的残基。
更优选地，LSU多肽以递增的优选顺序包含至少2个、至少3个、至少4个或全部5个基序。在一个优选的实施方案中，LSU多肽包含选自基序1、基序2和基序3的一个或多个基序。优选地，LSU多肽包含基序1和2或者基序2和3或者基序1和3。
在另一个实施方案中，LSU多肽包含基序3和基序4或者基序3和基序5或者全部基序3、4和5。
在一个实施方案中，基序2的序列具有位置8处的天冬氨酸(D)。在另一个实施方案中，基序4的序列在位置3处具有丝氨酸、在位置7处具有天冬氨酸、在位置35处具有丝氨酸、在位置36处具有组氨酸、在位置40处具有半胱氨酸和在位置42处具有丙氨酸。又在另一个实施方案中，基序5的序列在位置3处具有赖氨酸、在位置4处具有天冬氨酸、在位置5处具有甘氨酸、在位置8和9处具有甲硫氨酸，并且缺失上述基序5的序列的位置10处所示的氨基酸。
在更优选的实施方案中，基序3至5具有图1A中通过相应的短划线标记的SEQ ID NO：2的序列的那些部分或者图1B中通过相应的短划线标记的SEQ ID NO：34的序列的那些部分的序列。在甚至更优选的实施方案中，基序1至3具有图1A中通过短划线标记的SEQ ID NO：2的那些部分的序列。
此外或备选地，LSU蛋白质的同源物以递增的优先顺序与SEQ ID  NO：2所表示的氨基酸具有至少25％、26％、27％、28％、29％、30％、31％、32％、33％、34％、35％、36％、37％、38％、39％、40％、41％、42％、43％、44％、45％、46％、47％、48％、49％、50％、51％、52％、53％、54％、55％、56％、57％、58％、59％、60％、61％、62％、63％、64％、65％、66％、67％、68％、69％、70％、71％、72％、73％、74％、75％、76％、77％、78％、79％、80％、81％、82％、83％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％或99％的整体序列同一性，只要同源蛋白质包含上述任意一个或多个保守基序。整体序列同一性使用全局比对算法来进行确定，如GAP程序(GCG Wisconsin Package，Accelrys)中的Needleman Wunsch算法，优选用默认参数并优选使用成熟蛋白质的序列(即，不考虑分泌信号或转运肽)。
在一个实施方案中，序列同一性水平通过在SEQ ID NO：2的序列的全长上比较多肽序列来测定。
在另一个实施方案中，核酸序列的序列同一性水平通过在SEQ ID NO：1的序列之编码序列的全长上比较核酸序列来测定。
与整体序列同一性相比，当仅考虑保守结构域或基序时，序列同一性通常较高。优选地，LSU多肽中的基序以递增的优先顺序与SEQ ID NO：37至SEQ ID NO：39(基序1至3)所表示的基序中的任何一个或多个具有至少70％、71％、72％、73％、74％、75％、76％、77％、78％、79％、80％、81％、82％、83％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％或99％的序列同一性。
术语“结构域”、“特征序列”和“基序”如本文“定义”章节所定义。
在一个实施方案中，当用于构建系统发生树时，例如图3中描述的，多肽序列与包含由SEQ ID NO：2表示的氨基酸序列的LSU多肽的组聚簇，而不与任何其他组聚簇。
在另一个实施方案中，当用于构建系统发生树时，例如图3中描述的，多肽序列与包含由SEQ ID NO：34表示的氨基酸序列的LSU多肽的组聚簇，而不与任何其他组聚簇。在另一个实施方案中，当用于构建系统发生树时，例如图3中描述的，本发明多肽与离开SEQ ID NO：34的氨基酸序列不超过4个、3个或2个的分层分支点聚簇。
此外，如实施例7和8所述，当根据本发明方法在稻中表达时，LSU多肽产生具有增加的产量相关性状，特别是增加的生物量，特别是增加的地上生物量(重心的高度、GravityYMax&AreaMax)、增加的种子产量(种子的数量和重量、种子的饱满率)和/或增加的早期生长的植物。
本发明通过用SEQ ID NO：1或33所表示的核酸序列(优选SEQ ID NO：1的核酸序列)转化植物进行了阐释，上述核酸序列分别编码SEQ ID NO：2或34，优选SEQ ID NO：2的多肽序列。然而，本发明的实施不限于这些序列；本发明的方法可有利地通过使用本文定义的任何LSU编码核酸或LSU多肽来实施。
编码LSU多肽的核酸的实例在本文实施例章节表A中给出。这样的核酸可用于实施本发明的方法。实施例章节表A中给出的氨基酸序列为SEQ ID NO：2或34，优选地SEQ ID NO：2所示LSU多肽的直向同源物和旁系同源物的示例序列，术语“直向同源物”和“旁系同源物”如本文所定义。可以通过进行如定义章节中所述的所谓交互blast检索容易地鉴定出更多直向同源物和旁系同源物；其中查询序列是SEQ ID NO：1或33，优选SEQ ID NO：1，或者SEQ ID NO：2或34，优选SEQ ID NO：2，二次BLAST(反向BLAST)将针对拟南芥或杨树(polar)，优选拟南芥序列进行。
本发明还提供了此前未知的LSU编码核酸和LSU多肽的用途，用于在植物中赋予相对对照植物而言一种或多种增强的产量相关性状。
根据本发明的其他实施方案，因此提供了用于本发明目的经分离的核酸分子，所述分子选自：
(i)SEQ ID NO：1或33，优选SEQ ID NO：1所表示的核酸；
(ii)SEQ ID NO：1或33，优选SEQ ID NO：1所表示的核酸的互补序列；
(iii)编码LSU多肽的核酸，所述多肽以递增的优先顺序与SEQ ID NO：2或34，优选SEQ ID NO：2所表示的氨基酸序列具有至少40％、45％、50％、51％、52％、53％、54％、55％、56％、57％、58％、59％、60％、61％、62％、63％、64％、65％、66％、67％、68％、69％、70％、71％、72％、73％、74％、75％、76％、77％、78％、79％、80％、81％、82％、83％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％或99％的序列同一性，或者备选地包含一个或多个基序，所述基序以递增的优先顺序与SEQ ID NO：37、38、39、45或46中，优选SEQ ID NO：37、38或39，更优选SEQ ID NO：39中给出的任何一个或多个基序具有小于10个、9个、8个、7个、6个、5个、4个、3个、2个、1个或0个替换，并且还优选地相对于对照植物赋予一种或多种增强的产量相关性状；
(iv)编码LSU多肽的核酸，其以递增的优先顺序与SEQ ID NO：2或34，优选SEQ ID NO：2所表示的氨基酸序列具有至少40％、45％、50％、51％、52％、53％、54％、55％、56％、57％、58％、59％、60％、61％、62％、63％、64％、65％、66％、67％、68％、69％、70％、71％、72％、73％、74％、75％、76％、77％、78％、79％、80％、81％、82％、83％％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％或99％的序列同一性，并另外地包含一个或多个基序，所述基序以递增的优先顺序与SEQ ID NO：37、38、39、45或46中，优选SEQ ID NO：37、38或39，更优选SEQ ID NO：39中给出的任何一个或多个基序具有小于10个、9个、8个、7个、6个、5个、4个、3个、2个、1个或0个替换，并且还优选相对于对照植物赋予一种或多种增强的产量相关性状；和
(V)核酸分子，其在高严格杂交条件下与(i)至(iii)的核酸分子杂交并且优选地相对于对照植物赋予一种或多种增强的产量相关性状。
根据本发明其他实施方案，还提供了用于本发明目的的经分离的多肽，所述多肽选自：
(i)SEQ ID NO：2或34所表示的氨基酸；
(ii)氨基酸序列，其以递增的优先顺序与SEQ ID NO：2或34，优选SEQ ID NO：2所表示的氨基酸序列具有至少40％、45％、50％、51％、52％、53％、54％、55％、56％、57％、58％、59％、60％、61％、62％、63％、64％、65％、66％、67％、68％、69％、70％、71％、72％、73％、74％、75％、76％、77％、78％、79％、80％、81％、82％、83％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％或99％的序列同一性，或者备选地包含一个或多个基序，所述基序以递增的优选顺序与SEQ ID NO：37、38、39、45或46中，优选SEQ ID NO：37、38或39，更优选SEQ ID NO：39中给出的任何一个或多个基序具有小于10个、9个、8个、7个、6个、5个、4个、3个、2个、1个或0个替换，并且还优选地相对于对照植物赋予一种或多种增强的产量相关性状；
(iii)氨基酸序列，其以递增的优先顺序与SEQ ID NO：2或34，优选SEQ ID NO：2所表示的氨基酸序列具有至少40％、45％、50％、51％、52％、53％、54％、55％、56％、57％、58％、59％、60％、61％、62％、63％、64％、65％、66％、67％、68％、69％、70％、71％、72％、73％、74％、75％、76％、77％、78％、79％、80％、81％、82％、83％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％或99％的序列同一性，还包含一个或多个基序，所述基序以递增的优选顺序与SEQ ID NO：37、38、39、45或46中，优选SEQ ID NO：37、38或39，更优选SEQ ID NO：39中给出的任何一个或多个基序具有小于10个、9个、8个、7个、6个、5个、4个、3个、2个、1个或0个替换，并且还优选相对于对照植物赋予一种或多种增强的产量相关性状；
(iv)上文(i)或(ii)给出的任何氨基酸序列的衍生物。
核酸变体也可用于实施本发明的方法。这类核酸变体的例子包括编码实施例章节表A中给出的任一氨基酸序列的同源物和衍生物的核酸，其中术语“同源物”和“衍生物”如本文所定义。同样可用于本发明方法、构建体、植物、可收获部分和产品、构建体、植物、可收获部分和产品的是编码实施例章节表A中给出的任一氨基酸序列的直向同源物或旁系同源物的同源物和衍生物的核酸。可用于本发明方法、构建体、植物、可收获部分和产品的同源物和衍生物与其源自的未修饰蛋白质具有基本上相同的生物活性和功能活性。在实施本发明方法中有用的其他变体是这样的变体，其中已经优化了密码子使用或者其中移除了miRNA靶向位点。
可用于实施本发明方法的其它核酸变体包括编码LSU多肽的核酸的部分，与编码LSU多肽的核酸杂交的核酸，编码LSU多肽的核酸的剪接变体，编码LSU多肽的核酸的等位变体，以及通过基因改组获得的编码LSU多肽的核酸的变体。术语杂交序列、剪接变体、等位变体和基因改组如本文所述。
在本发明的一个实施方案中，本发明核酸序列的功能是当本发明核酸序列在活的植物细胞中转录并翻译时，赋予增加产量或产量相关性状的蛋白质的信息。
编码LSU多肽的核酸无需是全长核酸，因为本发明方法的实施不依赖于全长核酸序列的使用。根据本发明，提供了增强植物中一种或多种产量相关性状的方法，包括在植物中引入(优选通过重组方法)和表达实施例章节表A中给出的任一核酸序列的部分、或者编码实施例章节表A中给出的任何氨基酸序列之直向同源物、旁系同源物或同源物的核酸的部分。
例如，可以通过对核酸进行一个或多个缺失来制备所述核酸的部分。部分可以以分离的形式使用，或者可将其与其它编码(或非编码)序列融合，以便例如产生组合了若干活性的蛋白质。当与其它编码序列融合时，经翻译后所产生的多肽可能比针对该蛋白质部分所预测到的要大。
可用于本发明方法、构建体、植物、可收获部分和产品的部分编码如本文所定义的LSU多肽，并与实施例章节表A中给出的氨基酸序列具有基本上相同的生物活性。优选地，所述部分是实施例章节表A中给出的任一核酸的部分，或是编码实施例章节表A中给出的任一氨基酸序列之直向同源物或旁系同源物的核酸的部分。优选地，该部分长度为至少200、210、240、246、252、258、261、265、268、271、274、277、278、279、280、281、282、283、284、285个连续核苷酸，所述连续核苷酸是实施例章节表A中给出的任一核酸序列或者编码实施例章节表A中给出的任一氨基酸序列之直向同源物或旁系同源物的核酸。最优选地，该部分是核酸SEQ ID NO：1的一部分。优选地，该部分编码这样的氨基酸序列的片段，所述氨基酸序列的片段当用于构建系统发生树(例如图3所示的系统发生树)时，与包含由SEQ ID NO：2或34，优选SEQ ID NO：2所表示的氨基酸序列的LSU多肽的组聚簇，而非与其他组聚簇，和/或包含基序1至5，优选1至3中的一个或多个，更优选包含基序3和/或与SEQ ID NO：2或34，优选与SEQ ID NO：2具有至少80、85、90、91、92、93、94、95、96、97、98、99或100％的序列同一性。
可用于本发明方法、构建体、植物、可收获部分和产品中的另一种核酸变体是能够在降低的严格性条件下、优选在严格条件下与编码如本文中所定义的LSU多肽的核酸的互补序列杂交，或与如本文中所定义的部分进行杂交的核酸。
根据本发明，提供用于增强植物中一种或多种产量相关性状的方法，包括在植物中引入(优选通过重组方法)并表达能够与实施例章节表A中给出的任何一种核酸杂交的核酸，或包括在植物中引入(优选通过重组方法)并表达这样的核酸，其能够与编码在实施例章节表A中给出的任一氨基酸序列之直向同源物、旁系同源物或同源物的核酸序列杂交。
可用于本发明方法、构建体、植物、可收获部分和产品的杂交序列编码如本文所定义的LSU多肽，与实施例章节表A中给出的氨基酸序列具有基本上相同的生物活性。优选地，杂交序列能够与实施例章节表 A中给出的任一核酸的互补序列杂交、或与任一这些序列的部分杂交，其中部分如上文所定义，或者杂交序列能够与编码实施例章节表A中给出的任一氨基酸序列之直向同源物或旁系同源物的核酸的互补序列杂交。最优选地，杂交序列能够与SEQ ID NO：1所示核酸的互补序列或其部分杂交。
优选地，杂交序列编码具有这样的氨基酸序列的多肽，所述氨基酸序列当全长用于构建系统发生树时，(例如图3所示的系统发生树)时，与包含由SEQ ID NO：2或34，优选地与SEQ ID NO：2表示的氨基酸序列的LSU多肽的组聚簇，而非与任何其他组聚簇，和/或包含基序1至5，优选1至3中的一个或多个，更优选包含基序3和/或与SEQ ID NO：2或34，优选与SEQ ID NO：2具有至少80、85、90、91、92、93、94、95、96、97、98、99或100％的序列同一性。
在一个实施方案中，杂交序列能在中等或高严格，优选如上文所定义的高严格条件下，与SEQ ID NO：1或33，优选SEQ ID NO：1所表示的核酸的互补序列或与其部分杂交。在另一个实施方案中，杂交序列能在严格条件下，与SEQ ID NO：1或33，优选SEQ ID NO：1所表示核酸的互补序列杂交。
可用于本发明方法、构建体、植物、可收获部分和产品的另一种核酸变体是编码如上文所定义的LSU多肽的剪接变体，剪接变体如本文所定义。
根据本发明，提供用于增强植物中一种或多种产量相关性状的方法，包括在植物中引入(优选通过重组方法)并表达在实施例章节表A中给出的任何一种核酸序列的剪接变体，或下述核酸的剪接变体，其中所述的核酸编码在实施例章节表A中给出的任一氨基酸序列之直向同源物、旁系同源物或同源物。
优选的剪接变体是SEQ ID NO：1所示核酸的剪接变体，或编码SEQ ID NO：2之直向同源物或旁系同源物的核酸的剪接变体。优选，由剪接变体编码的氨基酸序列，当用于构建系统发生树(例如图3所示的 系统发生树)时，与包含由SEQ ID NO：2或34，优选SEQ ID NO：2表示的氨基酸序列的LSU多肽的组聚簇，而非与其他任何组聚簇，和/或包含基序1至5，优选1至3中的一个或多个，更优选包含基序3和/或与SEQ ID NO：2或34，优选SEQ ID NO：2具有至少80、85、90、91、92、93、94、95、96、97、98、99或100％的序列同一性。
可用于实施本发明方法的另一种核酸变体是编码如上文所定义的LSU多肽的核酸的等位变体，等位变体如本文所定义。
根据本发明，提供用于增强植物中一种或多种产量相关性状的方法，包括在植物中引入(优选通过重组方法)并表达在实施例章节表A中给出的任何一种核酸的等位变体，或包括在植物中引入(优选通过重组方法)并表达下述核酸的等位变体，其中所述的核酸编码在实施例章节表A中给出的任一氨基酸序列之直向同源物、旁系同源物或同源物。
可用于本发明方法、构建体、植物、可收获部分和产品的等位变体编码的多肽与SEQ ID NO：2的LSU多肽及实施例章节表A中所示任一氨基酸具有基本上相同的生物活性。等位变体天然存在，并且这些天然等位基因的使用包含于本发明的方法中。优选，等位变体为SEQ ID NO：1的等位变体，或编码SEQ ID NO：2之直向同源物或旁系同源物的核酸的等位变体。优选，由等位变体编码的氨基酸序列，当用于构建系统发生树(例如图3所示的系统发生树)时，与包含由SEQ ID NO：2或34，优选SEQ ID NO：2表示的氨基酸序列的LSU多肽的组聚簇，而非与其他任何组聚簇，和/或包含基序1至5，优选1至3中的一个或多个，更优选包含基序3和/或与SEQ ID NO：2或34，优选SEQ ID NO：2具有至少80、85、90、91、92、93、94、95、96、97、98、99或100％的序列同一性。
基因改组或定向进化也可用于产生上文所定义的LSU多肽的编码核酸的变体；其中术语“基因改组”如本文所定义。
根据本发明，提供了在植物中增强一种或多种产量相关性状的方法，包括在植物中引入(优选通过重组方法)和表达实施例章节表A中给出 的任一核酸序列的变体，或者包括在植物中引入(优选通过重组方法)和表达编码实施例章节表A中给出的任一氨基酸序列之直向同源物、旁系同源物或同源物的核酸的变体，其中所述变体核酸通过基因改组获得。
优选，通过基因改组获得的变体核酸编码的氨基酸序列当用于构建系统发生树(例如图3所示的系统发生树)时，优选，与包含由SEQ ID NO：2或34，优选SEQ ID NO：2表示的氨基酸序列的LSU多肽的组聚簇，而非与其他任何组聚簇，和/或包含基序1至5，优选1至3中的一个或多个，更优选包含基序3和/或与SEQ ID NO：2或34，优选SEQ ID NO：2具有至少80、85、90、91、92、93、94、95、96、97、98、99或100％的序列同一性。
此外，还可利用定点诱变获得核酸变体。若干方法可用来实现定点诱变，最常见的是基于PCR的方法(Current Protocols in Molecular Biology.Wiley编辑)。
编码LSU多肽的核酸可以来自任何天然或人工来源。可以通过有目的的人工操作对其进行修饰，使之不同于其在组合物和/或基因组环境中的天然形式。优选，LSU多肽编码核酸来自植物，还优选来自双子叶植物，更优选来自十字花科(Brassicaceae)或杨柳科(Salicaceae)，优选十字花科，最优选该核酸来自拟南芥(Arabidopsis thaliana)。
例如，编码SEQ ID NO：4、6或8，优选SEQ ID NO：8的LSU多肽的核酸可以通过使用基于PCR方法的定点诱变，通过改变几个核苷酸，产生自编码SEQ ID NO：2的LSU多肽的核酸(见Current Protocols in Molecular Biology，John Wiley&Sons，N.Y.(1989和每年更新版本))。在本发明方法和构建体和植物中，可将与不同于SEQ ID NO：2的序列一个或几个氨基酸的LSU多肽用于增加植物产量。
在另一个实施方案中，本发明延伸至包含用于本发明方法、构建体、植物、可收获部分和产品的核酸序列的重组染色体DNA，其中由于重组方法，所述核酸存在于染色体DNA中，即所述核酸并不在其天然环境的染色体DNA中。所述重组染色体DNA可以是具有通过重组方法插 入了所述核酸的天然来源的染色体，或者其可以是微型染色体或非天然染色体结构，例如或者人工染色体。可以改变染色体DNA的特性，只要其允许稳定传递给用于本发明方法、构建体、植物、可收获部分和产品的重组核酸的连续世代中，并允许在活的植物细胞中表达所述核酸，产生增加的产量或者增加的产量相关性状的植物细胞或者包含该植物细胞的植物。
在其他实施方案中，本发明重组染色体DNA包含于植物细胞中。在细胞，特别地具有细胞壁的细胞如植物细胞中包含的DNA比裸露的核酸序列可以受到更好的保护而免于降解。对于在宿主细胞，例如植物细胞中包含的DNA构建体而言也是如此。
本发明方法的实施产生具有增强的一种或多种产量相关性状的植物。尤其本发明方法的实施产生相对于对照植物而具有增加的产量、尤其增加的种子产量的植物。在本文中的“定义”部分中更详细地描述了术语“产量”和“种子产量”。
本发明的其他实施方案涉及相对于对照植物而言用于在植物中增强一种或多种产量相关性状的方法，包括通过重组方法在植物中增加表达，优选过表达编码LSU多肽的核酸和/或增加LSU多肽的表达，其中所述LSU多肽是靶向胞质和/或核的15000Da以下的小型酸性蛋白质。
在一个实施方案中，在本文中提及一种或多种增强的产量相关性状意为增加植物的一个或多个部分的生物量(重量)，其包括(i)地上部分和优选地上可收获部分和/或(ii)地下部分优选地下可收获部分。特别地，此类可收获部分是根，如直根、茎、甜菜块根、叶、花或种子，并且本发明方法的实施产生相对于对照植物的种子产量而具有增加的种子产量，和/或相对于对照植物的茎生物量而言具有增加的茎生物量，和/或相对于对照植物的根生物量而言具有增加的根生物量，和/或相对于对照植物的甜菜块根生物量而言具有增加的甜菜块根生物量的植物。此外，更特别地考虑了相对于对照植物的对应部分中的糖含量(特别是蔗糖含量)而言，地上部分，特别是茎(尤其是甘蔗植物)中和/或地下部分， 特别是根包括直根和块茎中和/或甜菜块根(尤其是糖萝卜中)中糖含量(特别是蔗糖含量)是增加的。
本发明提供了增加植物相对于对照植物的产量相关性状-产量、尤其是植物的生物量和/或种子产量的方法，所述方法包括调节植物中如本文所定义的LSU多肽的编码核酸的表达。
根据本发明的一个优选特征，本发明方法的实施产生相对于对照植物而具有增加的生长速率的植物。因而根据本发明，提供增加植物生长速率的方法，所述方法包括调节如本文中所定义的编码LSU多肽的核酸在植物中的表达。
本发明方法的实施产生在非胁迫条件下或者轻度干旱条件下相对于在相当条件下培育的对照植物而言具有增加的产量的植物。因此，根据本发明，提供了增加在非胁迫条件下或者轻度干旱条件下培育的植物的产量的方法，所述方法包括在植物中调节编码LSU多肽的核酸的表达。
本发明方法的实施产生在干旱条件下相对于在相当条件下培育的对照植物而言具有增加的产量的植物。因此，根据本发明，提供了增加在干旱条件下培育的植物的产量的方法，所述方法包括在植物中调节编码LSU多肽的核酸的表达。
本发明方法的实施产生在养分缺乏条件下，特别是氮缺乏条件下相对于在相当条件下培育的对照植物而言具有增加的产量的植物。因此，根据本发明，提供了增加在养分缺乏条件下培育的植物的产量的方法，该方法包括在植物中调节编码LSU多肽的核酸的表达。
本发明方法的实施产生在盐胁迫下相对于在相当条件下培育的对照植物而言具有增加的产量的植物。因此，根据本发明，提供了增加在盐胁迫条件下培育的植物的产量的方法，该方法包括在植物中调节编码LSU多肽的核酸的表达。
本发明还提供遗传构建体和载体，以利于在植物中引入和/或表达编码LUS多肽的核酸。可以将遗传构建体插入适于转化进入植物并适于在转化的细胞中表达目的基因的载体中，该载体可以是可商购的载体。本 发明还提供了如本文所定义的遗传构建体在本发明方法中的用途。
更具体地，本发明提供这样的构建体，其含有：
(a)编码如上文所定义的LUS多肽的核酸；
(b)一个或多个能够驱动(a)中核酸序列表达的控制序列；和任选地，
(c)转录终止序列。
优选，编码LUS多肽的核酸是如上文所定义的。术语“控制序列”和“终止序列”是如本文所定义的。
可将本发明遗传构建体包含于宿主细胞-例如植物细胞-种子、农业作物或植物中。用包含任一上述核酸的遗传构建体如载体或表达盒转化植物或宿主细胞。因此，本发明还提供了用如上所述的构建体转化的植物或宿主细胞。特别地，本发明提供了用如上所述的构建体转化的植物，所述植物具有如本文中所述的增加的产量相关特征。
在一个实施方案中，当将本发明遗传构建体引入到植物(所述植物表达包含于遗传构建体中编码LSU多肽的核酸，并优选产生增加的丰度的LSU多肽)时中，其赋予植物增加的产量或产量相关特性。在另一个实施方案中，本发明遗传构建体赋予包含其中已经引入了构建体的植物细胞的植物(所述植物细胞表达包含于遗传构建体中编码LSU多肽的核酸)增加的产量或产量相关性状。
对于上述核酸，该遗传构建体中的启动子可以是非天然启动子，即启动子并不在其天然环境中调节所述核酸的表达。
在优选的实施方案中，用于本发明方法、构建体、植物、可收获部分和产品的LSU多肽编码核酸与启动子功能性连接，导致在单子叶植物(优选禾本科植物，更优选甘蔗属物种植物)的地上生物量(优选叶和苗，更优选茎)中表达编码LSU多肽的所述核酸。
本发明表达盒或遗传构建体可以包含于宿主细胞、植物细胞、种子、农业产品或植物中。
技术人员充分知晓载体中必须存在的遗传元件，以便成功进行转化、 选择并繁殖含目的序列的宿主细胞。在本发明载体中，将目的序列有效连接于一个或多个控制序列(至少连接于启动子)。
在一个实施方案中，用包含任一上述核酸的表达盒转化本发明植物。技术人员充分知晓表达盒中必须存在的遗传元件，以便成功进行转化、选择并繁殖含目的序列的宿主细胞。在本发明表达盒中，将目的序列有效连接于一个或多个控制序列(至少连接于启动子)。对于上述核酸，在该表达盒中的启动子可以是非天然启动子，即启动子并不在其天然环境中调节所述核酸的表达。
在其他实施方案中，当将本发明表达盒引入到所述植物细胞中，并导致如上所定义的包含在表达盒中的核酸表达时，其赋予活的植物细胞增加的产量或产量相关性状。
本发明表达盒可以包含于宿主细胞、植物细胞、种子、农业产品或植物中。
有利地，任何类型的启动子，不论天然的或合成的，均可用于驱动核酸序列的表达，但是优选启动子是植物来源的。组成型启动子在方法、构建体、植物、可收获植物和产品中是特别有用的。优选，组成型启动子也是中等强度的遍在组成型启动子。多种启动子类型的定义参见本文的“定义”章节。
应该明白，本发明的适用范围不限于SEQ ID NO：1所示LSU多肽的编码核酸，本发明的适用范围也不限于由组成型启动子驱动时编码LSU多肽的核酸的表达。
组成型启动子优选是中等强度的启动子，更优选，选自植物来源的启动子，例如植物染色体来源的启动子，如GOS2启动子或者基本相同强度和具有基本相同的表达模式的启动子(在功能上等同的启动子)，更优选，启动子是来自稻的GOS2启动子。还优选，组成型启动子是由与SEQ ID NO：40基本相似的核酸序列所表示的，最优选，组成型启动子如SEQ ID NO：40所示。组成型启动子的其它实例见本文“定义”章节。
又另一个实施方案涉及用于本发明方法、构建体、植物、可收获部 分和产品并编码本发明LSU多肽的核酸序列，其与如本文中所公开的启动子功能性连接，并且还与以下一种或多种核酸功能性连接：
1)增强核酸表达的核酸(NEENA)：
a.如在国际专利申请公开为WO2011/023537的第27至28页的表1中和/或SEQ ID NO：1至19所公开的增强核酸表达的核酸和/或如在所述国际申请的权利要求1的项目i)-vi)中所定义的增强核酸表达的核酸，所述NEENA在此处引入作为参考；和/或
b.如在国际专利申请公开为WO2011/023539的第27页的表1中和/或SEQ ID NO：1至19所公开的增强核酸表达的核酸和/或如在所述国际申请的权利要求1的项目i)-vi)中所定义的增强核酸表达的核酸，所述NEENA在此处引入作为参考；和/或
c.和/或如包含于或公开于：
i)在2011年7月5日提交的欧洲优先申请EP11172672.5的第27页的表1中和/或SEQ ID NO：1至14937，优选SEQ ID NO：1至5、14936或14937中的增强核酸表达的核酸和/或如定义于在所述欧洲优先申请的权利要求1的项目i)-v)中的增强核酸表达的核酸，所述NEENA在此处引入作为参考；和/或
ii)在2011年7月6日提交的欧洲优先申请EP11172825.9的第27页的表1中和/或SEQ ID NO：1至65560，优选SEQ ID NO：1至3中的增强核酸表达的核酸和/或如定义于在所述欧洲优先申请的权利要求1的项目i)-v)中的增强核酸表达的核酸，所述NEENA在此处引入作为参考；
b)或者具有基本相同的增强作用的等同物；
2)和/或与一个或多个增强可靠性的核酸(Reliability Enhancing Nucleic Acid)(RENA)分子功能性连接
a)如包含于或公开于2011年9月15日提交的欧洲优先申请EP11181420.8第26页的表1和/或SEQ ID NO：1至16或94至116666，优选SEQ ID NO：1至16中的增强可靠性的核酸和/或如定义于在所述欧 洲优先申请的权利要求1的项目a)中的i)-v)中的增强可靠性的核酸，所述RENA在此处引入作为参考；
b)或者具有基本相同的增强作用的等同物。
应将术语“功能性连接”或“功能性连接的”理解为指例如，调控元件(例如启动子)与待表达核酸序列和(根据需要)其他调控元件(例如，终止子、MEENA或RENA)的顺次排列，以使每一调控元件可以实现其预期功能，以允许、修饰、协助或以其他方式影响所述核酸序列的表达。作为同义词，可以使用短语“有效连接”或“有效连接的”。表达可能最终取决于涉及正义或反义RNA的核酸序列的排列。为此，在化学意义上的直接连接并不是必需的。遗传控制序列(例如增强子序列)还可以对更远位置的靶序列或者实际上的其他DNA分子发挥其作用。优选的排列是这样的排列，其中待重组表达的核酸序列位于作用为启动子的序列之后，以使两个序列相互共价连接。启动子序列与待重组表达的核酸序列之间的距离优选为200个碱基对以下，特别优选100个碱基对以下，非常特别优选50个碱基对以下。在优选的实施方案中，待转录的核酸序列位于启动子之后，以使转录开始与本发明嵌合RNA的期望开始同一。可以通过如(例如在Maniatis T，Fritsch EF和Sambrook J(1989)Molecular Cloning：A Laboratory Manual，2nd Ed.，Cold Spring Harbor Laboratory，Cold Spring Harbor(NY)；Silhavy等(1984)Experiments with Gene Fusions，Cold Spring Harbor Laboratory，Cold Spring Harbor(NY)；Ausubel等(1987)Current Protocols in Molecular Biology，Greene Publishing Assoc.and Wiley Interscience；Gelvin等(编辑)(1990)Plant Molecular Biology Manual；Kluwer Academic Publisher，Dordrecht，The Netherlands中)所述的常规重组和克隆技术产生功能性连接和表达构建体。然而，其他序列，例如作为具有限制酶的特定切割位点的接头而发挥作用的或作为信号肽的序列也可以位于两个序列之间。序列的插入也可以导致融合蛋白质的表达。优选，表达构建体(由调控区例如启动子和待表达的核酸序列的连接组成)可以以载体整合形 式存在，并可以例如通过转化而插入到植物基因组中。
本发明优选的实施方案涉及用于本发明、构建体、植物、可收获部分和产品并在上文所述的启动子的控制下编码LSU多肽的核酸分子，其中对于本发明所述编码LSU多肽的核酸分子，NEENA、RENA和/或启动子是异源的。
任选地，可在引入植物的构建体中使用一个或多个终止子序列。优选，构建体包括包含GOS2启动子(与SEQ ID NO：40基本相似)和编码LSU多肽的核酸的表达盒。更优选，构建体包含与LSU编码序列的3’末端连接的玉米醇溶蛋白终止子(t-玉米醇溶蛋白)。最优选，表达盒包含以递增的优先顺序与SEQ ID NO：42(pGOS2：：LSU：：t-玉米醇溶蛋白序列)表示的序列具有至少95％、至少96％、至少97％、至少98％、至少99％的同一性的序列。此外，编码可选择标记的一个或多个序列可存在于被引入植物的构建体上。
根据本发明一种优选的特征，调节的表达是增加的表达。在本领域内详细记载了用于增加核酸或基因或者基因产物表达的方法，并且在定义章节提供了实例。
如上所述，用于调节编码LSU多肽的核酸表达的一种优选方法是通过在植物中引入并表达编码LSU多肽的核酸；然而实施该方法的效果(也就是增强一种或多种产量相关性状)也可使用其它众所周知的技术来实现，包括但不限于T-DNA激活标签、TILLING、同源重组。在定义章节提供了这些技术的描述。
在本发明的一个实施方案中，可将LSU编码核酸和/或LSU多肽在本发明方法、构建体、植物、可收获部分和产品中用于改变与植物构造有关的产量相关性状，例如以改变植物的形态学、改变植物构造、植物的早期发育和/或改变植物的重心的高度。植物构造的改变可以是整体构造、地上构造(例如茎构造)、或者地下构造包括根和甜菜块根或在土壤表面和空气的其他器官的改变。优选地，通过过表达LSU多肽或LSU编码核酸，优选如本文中所定义的SEQ ID NO：1或33，优选SEQ ID NO： 1的核酸、SEQ ID NO：2或34，优选SEQ IDNO：2的多肽或者SEQ ID NOs：1或33或者SEQ ID NO：2或34的同源物，来增加重心高度。
在另一个实施方案中，可将LSU编码核酸和/或LSU多肽在本发明方法、构建体、植物、可收获部分和产品中用于增加产量相关性状。特别地，可以通过LUS编码核酸和/或LSU多肽增加地上生物量、根生物量、甜菜块根的生物量和/或种子的产量。在其他实施方案中，可以增加产量相关性状(例如但不限于地上生物量、根生物量、甜菜块根的生物量和/或种子的产量)，而与对照植物中相应的组合物比较，基本上不会改变本发明转基因植物的氨基酸组成，优选基本上不会改变游离的氨基酸组成，所述产量相关性状任选地具有增加的糖含量。
在其他实施方案中，通过在组成型启动子的控制下，表达LSU编码核酸和/或LSU多肽来增加种子产量，优选如本文中所定义的SEQ ID NO：1或33，优选SEQ ID NO：1的核酸、SEQ ID NO：2或34，优选SEQ IDNO：2的多肽或者SEQ ID NOs：1或33或者SEQ ID NO：2或34的同源物。
本发明还提供产生与对照植物相比具有一种或多种增强的产量相关性状的转基因植物的方法，其包括在植物中引入和表达编码上文所定义的LSU多肽的任何核酸。
更具体地，本发明提供了产生具有一种或多种增强的产量相关性状(特别是增加的生物量和/或种子产量)的转基因植物的方法，所述方法包括：
(i)向植物或植物细胞中引入(优选通过重组方法)和表达LSU多肽的编码核酸或包含LSU多肽的编码核酸的遗传构建体；和
(ii)在促进植物生长和发育的条件下培养植物细胞。优选地，用于产生所述植物的本发明方法的步骤(i)包括通过重组方法引入编码本发明LSU多肽的核酸，并过表达所述核酸和LSU多肽。
通常，步骤(i)导致LSU多肽在植物、一个或多个植物部分、一个或多个植物器官、一个或多个植物组织和/或一个或多个植物细胞中增加的 丰度。
在促进植物生长和发育的条件下培养植物细胞可以或者可以不包括再生和或生长至成熟。
(i)的核酸可以是能编码如本文中所定义的LSU多肽的任一核酸。
可以将核酸直接引入植物细胞或植物本身(包括引入到植物的组织、器官或任何其它部分)。根据本发明一种优选的特征，优选通过转化将核酸引入植物。术语“转化”在本文“定义”章节有更详细的说明。
在一个实施方案中，用于产生相对于对照植物具有一种或多种增强的产量相关性状的转基因植物、转基因植物部分或转基因植物细胞的方法包括从转基因植物中获取setts，并种植setts和培养setts至植物的步骤，其中setts包含编码LSU多肽的外源核酸和与其有效连接的启动子序列。
在一个实施方案中，本发明显然延及由本文所述任何方法产生的任何植物细胞或植物，以及所有的植物部分及其繁殖体。本发明包括可通过根据本发明的方法获得的植物或其部分(包括种子)。植物或其部分包含编码如上文所定义的LSU多肽的核酸转基因。本发明还延及由任何上述方法产生的原代转化或转染的细胞、组织、器官或整个植物的后代，唯一的要求是所述后代呈现出与在本发明方法中亲本产生的基因型和/或表型特征相同的基因型和/或表型特征。
由于本发明一个或多个LSU多肽的增加表达，本发明转基因植物、其部分或转基因植物细胞在环境胁迫条件和/或非胁迫条件下相对于对照植物具有一种或多种增强的产量相关性状，优选相对于对照植物增加的产量，以及更优选增加的种子产量和/或增加的生物量，并且优选包含本发明所述LSU多肽的转基因植物、其部分或转基因植物细胞是本发明的另一个实施方案。
在另一个实施方案中，本发明还延伸至转基因植物细胞和种子，其包含在植物表达盒或植物表达构建体中的本发明核酸分子。
在其他实施方案中，本发明种子重组地包含本发明表达盒、本发明 (表达)构建体、上述核酸和/或上述核酸编码的蛋白质。
本发明其他实施方案延伸至在重组植物表达盒中包含如上所述的核酸的植物细胞。
又在另一个实施方案中，本发明的植物细胞是非繁殖细胞，例如使用标准细胞培养技术(即细胞培养方法，但不包括体外核、细胞器或染色体转移法)，不能将细胞作为整体用于从该细胞中再生整株植物。尽管植物细胞通常具有全能性的特征，但一些植物细胞不能用于从所述细胞中再生或者繁殖完整的植物。在本发明的一个实施方案中，本发明的植物细胞是此类细胞。
在另一个实施方案中，本发明的植物细胞是这样的植物细胞，其不通过光合作用从诸如水、二氧化碳和矿物盐的无机物质中合成糖类和蛋白质而维持自身，即可以认为它们是非植物品种。在其他实施方案中，本发明的植物细胞是非植物品种的且是不繁殖的。
本发明也包括含有编码如上文所定义的LSU多肽的经分离的核酸的宿主细胞。本发明的宿主细胞可以是选自细菌细胞，例如大肠杆菌或农杆菌属(Agrobacterium)物种细胞、酵母细胞、真菌细胞、藻类细胞或蓝藻细胞或者植物细胞的任何细胞。在一个实施方案中，根据本发明的宿主细胞是植物细胞、酵母、细菌或真菌。对于用于本发明方法的核酸或载体、表达盒或构建体或载体，其宿主植物原则上有利地为能够合成在本发明方法中使用的多肽的所有植物。
在一个实施方案中，本发明的植物细胞过表达本发明的核酸分子。
本发明的其他实施方案涉及通过本发明方法可获得的植物、其植物部分(包括种子)或植物细胞，其中所述植物、植物部分或植物细胞包含编码至少一个LSU多肽的一个或多个重组核酸，且优选地与不表达重组核酸的对照植物、其植物部分(包括种子)或植物细胞相比较，重组核酸以增加的丰度编码所述一个或多个LSU多肽。在其他实施方案中，本发明植物、其植物部分，包括种子或植物细胞具有增加表达的本发明LSU多肽。
本发明还包括用于产生产品的方法，包括a)培育本发明的植物和b)从本发明的植物或这些植物的部分(包括茎和/或种子)中或者通过本发明的植物或这些植物的部分(包括茎和/或种子)产生所述产品。在本方法的其他实施方案中，包括步骤a)培育本发明的植物和b)从植物中去除如上所定义的可收获部分和c)从本发明的可收获部分中或者通过本发明的可收获部分产生所述产品。在一个实施方案中，从转基因植物的茎中产生产品。
此类方法的实例是培育本发明的玉米植物，收获玉米棒子并去除籽粒。可以将这些用作为饲料或者加工成淀粉和油作为农业产品。
可以在植物生长的部位处产生产品，或者可以从植物生长的部位中摘除植物或其部分以产生产品。通常，培育植物，从植物中(如果可行，以重复的循环)摘除期望的可收获部分，并从植物的可收获部分中制备产品。每次实行本发明方法仅实行一次培育植物步骤，而允许重复多次产品产生步骤，例如通过重复摘除本发明植物的可收获部分，并根据需要进一步加工这些部分以成为产品。还可以重复本发明的培育植物步骤，并储存植物或可收获部分，直到对积累的植物或植物部分实行一次产品的产生。此外，可以在时间上重叠，甚至在很大程度上同时，或者顺次地进行培育植物和产生产品步骤。通常，在产生产品之间一段时间培育植物。
有利地，本发明方法比已知的方法更有效，因为本发明植物与用于相当方法的对照植物比较，具有增加的产量、产量相关性状和/或对环境胁迫的胁迫耐受性。
在一个实施方案中，用于产生产品的方法包括a)培育本发明的植物，优选植物是甘蔗，b)从本发明的植物中获得茎，和c)将茎切割成片，优选切割成适合于繁殖材料的片，优选切割成setts。
在另一个实施方案中，用于产生产品的方法包括a)培育本发明的植物，优选植物是甘蔗，b)从本发明的植物或其部分中获得茎，和c)从茎中提取汁液，优选甘蔗汁液和/或在汁液提取后提取剩余的纤维，并任选 地d)从茎的汁液中提取糖，优选蔗糖。
本发明还涉及通过如本文中所述的产生方法获得的产品。
在一个实施方案中，通过本发明所述方法产生的产品是植物产品，例如但不限于食物、饲料、食物补充剂、饲料添加剂、纤维、化妆品或药物。将食物视为用于营养或者用于补充营养的组合物。将动物饲料和动物饲料添加剂特别地视为食物。
在另一个实施方案中，将用于生产的本发明方法用于制备农业产品，例如但不限于植物提取物、蛋白质、氨基酸、碳水化合物、脂肪、油、聚合物、维生素等。优选碳水化合物是糖，优选蔗糖。植物产品在很大程度上可以由一种或多种农业产品组成。
又在另一个实施方案中，本发明的多核苷酸序列或多肽序列或构建体包含于农业产品中。
在其他实施方案中，可以将本发明的核酸序列和蛋白质序列用作为产品标记，例如用于通过本发明方法产生的农业产品。可以将此类标记用于鉴定通过有利方法产生的产品，所述有利的方法不仅产生了更有效的方法，并且还由于增加了用于该方法的植物材料或可收获部分的质量，所以改进了产品的质量。可以通过多种本领域已知的方法检测此类标记，例如但不限于用于核酸检测的基于PCR的方法或者用于蛋白质检测的基于抗体的方法。
本发明方法有利地适用于任何植物，特别地如本文中所定义的任何植物。特别用于本发明方法、构建体、植物、可收获部分和产品中的植物包括属于植物界超家族的全部植物，尤其是单子叶植物和双子叶植物，包括饲用或饲料豆类、观赏植物、粮食作物、树或灌木。
根据本发明的实施方案，植物是作物植物。作物植物的例子包括但不限于菊苣、胡箩卜、木薯、三叶草、大豆、甜菜、糖萝卜、向日葵、低芥酸油菜、苜蓿、油菜(rapeseed)、亚麻子、棉花、番茄、马铃薯和烟草。
根据本发明的另一个实施方案，植物是单子叶植物。单子叶植物的 例子包括甘蔗。
根据本发明的另一个实施方案，植物是谷物。谷物的例子包括稻、玉米、小麦、大麦、粟、黑麦、黑小麦、高粱、野小麦(emmer)、德国小麦(spelt)、一粒系小麦(einkorn)、teff、高粱(milo)和燕麦。
在一个实施方案中，用于本发明方法的植物选自玉米、小麦、稻、大豆、棉花、油料油菜(oilseed rape)包括低芥酸油菜、甘蔗、糖萝卜和苜蓿。
有利地，本发明方法比已知方法更有效，因为本发明植物与用于比较方法的对照植物比较具有增加的产量和/或对环境胁迫的耐受性。
在本发明的另一个实施方案中，本发明植物和用于本发明方法的植物是具有增加的生物量和/或增加的茎的糖含量的甘蔗植物。
本发明也延及植物的可收获部分，该植物可收获部分包含编码LSU多肽的重组核酸，这样的可收获部分包括，但不限于种子、叶、果实、花、茎、根、根茎、块茎和鳞茎。特别地，此类可收获部分是根如直根、根茎、果实、茎、甜菜块根、块茎、鳞茎、叶、花和/或种子。优选的可收获部分是茎插条(如甘蔗的setts)。
本发明进一步涉及来自或产生自、优选直接来自或者直接产生自该植物的可收获部分的产品，如干燥颗粒、压缩的茎(pressed stem)、粗粉或粉末、油、脂肪及脂肪酸、淀粉、汁液(sap)、浆液或蛋白质。优选的碳水化合物是糖，优选蔗糖。还优选的产品是例如茎的残留的干燥纤维(如蔗汁去除后，来自甘蔗的甘蔗渣)、糖蜜或滤饼，优选来自甘蔗。在一个实施方案中，例如作为产品的特定质量的指示物，产品包含编码LSU多肽的重组核酸和/或重组LSU多肽。
本发明也包括编码如本文中所述的LSU多肽的核酸的用途和这些LSU多肽的用途，用于增强植物中的任何前述的产量相关性状。例如，编码本文中所述LSU多肽的核酸、或LSU多肽本身可以用于育种程序中，其中鉴定到可以与LSU多肽编码基因遗传连锁的DNA标记。所述核酸/基因或LSU多肽本身可以用来定义分子标记。这种DNA或蛋白质 标记随后可以在育种程序中用来选择具有本发明方法中如上文所定义的增强的产量相关性状的植物。此外，编码LSU多肽的基因/核酸的等位变体也可以用于标记辅助的育种程序中。编码LSU多肽的核酸也可以用作探针以便对基因进行遗传作图和物理作图，所述探针作为所述基因的一部分，及用作与那些基因关联的性状的标记。此类信息可以用于植物育种中，以便开发具有想要表型的株系。
在一个实施方案中，在以下情况下进行了测定序列同一性百分比的任意比较
-分别在SEQ ID NO：1或33的完整编码区上比较核酸的情况下，或
-分别在SEQ ID NO：2或34的全长上比较多肽序列的情况下。
例如，在该实施方案中，50％序列同一性的序列同一性意为在SEQ ID NO：1的完全编码区上，所有碱基的50％在SEQ ID NO：1的序列及相关序列之间是相同的。类似地，在该实施方案中，多肽序列与SEQ ID NO：2的多肽序列是50％相同的，即当从起始甲硫氨酸开始一直比较到SEQ ID NO：2的序列结束时，在所测试的多肽中可见在SEQ ID NO：2中所示序列的氨基酸残基的50％。
在其他实施方案中，在本方法、构建体、植物、可收获部分和产品中所使用的核酸序列是这样的序列，其不是编码选自表A中所列出的蛋白质(除SEQ ID NO：2外)的多核苷酸，以及那些当与编码表A中所列出的蛋白质的序列最佳比对时，具有至少60、70、75、80、85、90、93、95、98或99％核苷酸同一性的序列，但不是编码表A中所列出的蛋白质(除SEQ ID NO：2外)的核苷酸序列。
在下文中，表述“如在权利要求/项目X中所定义”意为指导技术人员应用项目/权利要求X中所公开的定义。例如，“如项目1中所定义的核酸”应理解为将项目1的核酸的定义应用于该核酸。因此，术语“如项目中所定义”或“如权利要求中所定义”可以分别用该项目或权利要求的相应定义取代。
项目
将上文给出的定义和说明加以适当的更改应用于以下项目。
1.用于在植物中相对于对照植物增强一种或多种产量相关性状的方法，包括调节编码LSU多肽的核酸在植物中的表达和/或增加LSU多肽的表达，其中所述多肽由包含选择下述的核酸分子的核酸分子编码：
(i).SEQ IDNO：1、3、5、7、9、11、13、15、17、19、21、23、25、27、29、31、33、35或47(的任意之一)所表示的核酸；
(ii).SEQ IDNO：1、3、5、7、9、11、13、15、17、19、21、23、25、27、29、31、33、35或47(的任意之一)所表示的核酸的互补序列；
(iii).编码SEQ ID NO：2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36或48(的任意之一)所表示的多肽的核酸，优选由于遗传密码的简并性，所述分离的核酸可以来源于SEQ ID NO：2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36或48(的任意之一)所表示的多肽序列，并且还优选相对于对照植物赋予一种或多种增强的产量相关性状；
(iv).核酸，所述核酸以递增的优先顺序与SEQ IDNO：1、3、5、7、9、11、13、15、17、19、21、23、25、27、29、31、33、35或47的任一核酸序列具有至少30％、31％、32％、33％、34％、35％、36％、37％、38％、39％、40％、41％、42％、43％、44％、45％、46％、47％、48％、49％、50％、51％、52％、53％、54％、55％、56％、57％、58％、59％、60％、61％、62％、63％、64％、65％、66％、67％、68％、69％、70％、71％、72％、73％、74％、75％、76％、77％、78％、79％、80％、81％、82％、83％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％或99％的序列同一性，并且还优选相对于对照植物赋予一种或多种增强的产量相关性状；
(v).第一核酸分子，其在严格条件下与(ii)的第二核酸分子杂交，并优选相对于对照植物赋予一种或多种增强的产量相关性状；
(vi).编码所述多肽的核酸，所述多肽以递增的优先顺序与SEQ ID NO：2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36或48(的任意之一)所表示的氨基酸序列具有至少50％、51％、52％、53％、54％、55％、56％、57％、58％、59％、60％、61％、62％、63％、64％、65％、66％、67％、68％、69％、70％、71％、72％、73％、74％、75％、76％、77％、78％、79％、80％、81％、82％、83％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％或99％的序列同一性，并且还优选相对于对照植物赋予一种或多种增强的产量相关性状；
(vii).包含上文(i)至(vi)的特征的任意组合的核酸。
2.用于在植物中相对于对照植物增强一种或多种产量相关性状的方法，包括调节编码LSU多肽的核酸在植物中的表达，其中所述LSU多肽是15000Da以下的小型酸性蛋白质，并任选地包含核定位信号和卷曲螺旋区。
3.项目1或2的任一项的方法，其中所述LSU多肽由项目1的(i)至(vii)之一中定义的核酸编码，并且所述LSU多肽是15000Da以下的小型酸性蛋白质，并任选地包含卷曲螺旋区和核定位信号。
4.项目1、2或3的任一项的方法，其中所述调节的表达通过在植物中引入(优选通过重组方法)和表达编码所述LSU多肽的所述核酸而实现。
5.项目1至4的任一项的方法，其中所述LSU多肽包含一个或多个以下基序：
基序4(SEQ ID NO：45)：
M[KR][SKR]E[ML][LQ][QR][LA]W[RE]R[TL][QVR]VAEEAEERLCSQL[AG]ELE[AV]E[SA][LV][SD][QH]ARD[YC]H[SDA]RI[VIL][FS]L[MV][DN][QE]
基序5(SEQ ID NO：46)：
TV[K或无][ATD][AG][ES]E[VEM][DEM][E或无]L[RK][RK][RK]N[GE]E[LM]E[KR][EA][VL]
基序1(SEQ ID NO：37)：
M[KR][KR]E[ML][LQ]Q[LA]W[RE]R[TL][QVR]VAEEAEERLCSQL[AG]ELE[AV]E[SA][LV]DQARDYH[SD]RI[VIL][FS]L[MV][DN][QE]
基序2(SEQ ID NO：38)：
TV[AT]A[ES]E[VE][DE]EL[RK][RK][RK]N[GE]E[LM]E[KR][EA][VL]
基序3(SEQ ID NO：39)：
[VM][AT]EEAEE[RQHS]LCSQL[AG]ELE[AV]E
6.项目1至5的任一项的方法，其中所述一种或多种增强的产量相关性状包含相对于对照植物增加的产量相关性状，并优选包含相对于对照植物增加的生物量和/或增加的种子产量。
7.项目1-6的任一项的方法，其中所述一种或多种增强的产量相关性状在非胁迫条件下获得。
8.项目1至7的任一项的方法，其中所述一种或多种增强的产量相关性状在干旱胁迫、盐胁迫或氮缺乏条件下获得。
9.项目1至8的任一项的方法，其中所述编码LSU多肽的核酸是植物来源的，优选来自双子叶植物，还优选来自十字花科(Brassicaceae)，更优选来自拟南芥属(Arabidopsis)，最优选来自拟南芥(Arabidopsis thaliana)。
10.项目1至8的任一项的方法，其中所述核酸分子或所述多肽分别是植物来源的，优选来自双子叶植物，还优选来自杨柳科(Salicaceae)，更优选来自杨属(Populus)，最优选来自毛果杨(Populus trichocarpa)。
11.项目1至10的任一项的方法，其中所述编码LSU多肽的核酸编 码表A中列出的任意一种多肽或者是该核酸的一部分，或者是能与该核酸的互补序列杂交的核酸。
12.项目1至11的任一项的方法，其中所述核酸序列编码表A中给出的任一多肽的直向同源物或旁系同源物。
13.项目1至12的任一项的方法，其中所述核酸编码由SEQ ID NO：2或34，优选由SEQ ID NO：2所表示的多肽。
14.项目1至13的任一项的方法，其中所述核酸与组成型启动子，优选与中等强度的组成型启动子，优选与植物启动子，更优选与GOS2启动子，最优选与来自稻的GOS2启动子有效连接。
15.通过项目1至14的任一项的方法获得的植物、其植物部分，包括种子或植物细胞，其中所述植物、植物部分或植物细胞包含如项目1、2至5、9至13的任一项中所定义的编码LSU多肽的重组核酸。
16.构建体，其包含：
(i)项目1、2至5、9至13的任一项中所定义的编码POI的核酸；
(ii)能驱动(i)的核酸序列表达的一个或多个调控序列；和任选地
(iii)转录终止序列。
17.项目16的构建体，其中所述调控序列之一是组成型启动子，优选中等强度的组成型启动子，优选植物启动子，更优选GOS2启动子，最优选来自稻的GOS2启动子。
18.项目16或17的构建体在方法中的用途，所述方法用于制备相对于对照植物具有一种或多种增强的产量相关性状，优选增加的产量，和更优选相对于对照植物增加的种子产量和/或增加的生物量的植物。
19.用项目16或17的构建体转化的植物、植物部分或植物细胞。
20.用于产生转基因植物的方法，所述转基因植物相对于对照植物具有一种或多种增强的产量相关性状，优选相对于对照植物增加的产量，和更优选相对于对照植物增加的种子产量和/或增加的生物量，所述方法包括：
(i)在植物细胞或植物中引入(优选通过重组方法)和表达如项目1、 2至5、9至13的任一项中所定义的编码LSU多肽的核酸；和
(ii)在促进植物生长和发育的条件下培养所述植物细胞或植物。
21.转基因植物或来源于所述转基因植物的转基因植物细胞，所述转基因植物相对于对照植物具有一种或多种增强的产量相关性状，优选相对于对照植物增加的产量，和更优选增加的种子产量和/或增加的生物量，所述转基因植物产生自如项目1、2至5、9至13的任一项中所定义的编码LSU多肽的核酸的受调节的表达。
22.项目15、19或21的转基因植物或其来源的转基因植物细胞，其中所述植物是作物植物，例如双子叶植物如大豆、棉花、油菜包括低芥酸油菜、甜菜、糖萝卜或苜蓿；或者单子叶植物如甘蔗；或谷物如稻、玉米、小麦、大麦、粟、黑麦、黑小麦、高粱、野小麦(emmer)、德国小麦(spelt)、一粒系小麦(einkorn)、teff、高粱(milo)和燕麦。
23.项目21或22的植物的可收获部分，其中所述可收获部分优选是苗生物量和/或种子。
24.来源于或产生自项目21或22的植物和/或来源于项目23的植物的可收获部分的产品。
25.项目1、2至5、9至13的任一项中所定义的编码LSU多肽的核酸的用途，用于在植物中相对于对照植物增强一种或多种产量相关性状，优选用于增加产量，和更优选用于在植物中相对于对照植物增加种子产量和/或用于增加生物量。
26.用于产生产品的方法，包括培养项目15、19、21或22的植物，并从或通过
(i)所述植物；或
(ii)所述植物的一部分，包括种子
产生所述产品的步骤。
27.项目16或17的构建体，所述构建体包含于植物细胞中。
其他实施方案
项目A至W：
A.用于在植物中相对于对照植物增强产量的方法，包括调节编码多肽的核酸在植物中的表达，其中所述多肽包含靶向胞质和/或核，并具有不超过400、350、325、310、300或295个氨基酸长度的多肽，并任选地具有至少一个卷曲螺旋区和核定位信号。
B.项目A的方法，其中所述多肽包含一个或多个以下基序：
基序1(SEQ ID NO：37)：
M[KR][KR]E[ML][LQ]Q[LA]W[RE]R[TL][QVR]VAEEAEERLCSQL[AG]ELE[AV]E[SA][LV]DQARDYH[SD]RI[VIL][FS]L[MV][DN][QE]
基序2(SEQ ID NO：38)：
TV[AT]A[ES]E[VE][DE]EL[RK][RK][RK]N[GE]E[LM]E[KR][EA][VL]
基序3(SEQ ID NO：39)：
[VM][AT]EEAEE[RQHS]LCSQL[AG]ELE[AV]E
基序4(SEQ ID NO：45)：
M[KR][SKR]E[ML][LQ][QR][LA]W[RE]R[TL][QVR]VAEEAEERLCSQL[AG]ELE[AV]E[SA][LV][SD][QH]ARD[YC]H[SDA]RI[VIL][FS]L[MV][DN][QE]
基序5(SEQ ID NO：46)：
TV[K或无][ATD][AG][ES]E[VEM][DEM][E或无]L[RK][RK][RK]N[GE]E[LM]E[KR][EA][VL]
C.项目A或B的方法，其中所述调节的表达通过在植物中引入(优选通过重组方法)和表达编码在硫缺乏条件下具有上调表达的蛋白质(LSU多肽)的核酸而实现。
D.项目A或C的任一项的方法，其中所述多肽由包含选自以下核酸的核酸分子编码：
(i).SEQ ID NO：1、3、5、7、9、11、13、15、17、19、21、23、25、27、29、31、33、35或47(的任意之一)所表示的核酸；
(ii).SEQ ID NO：1、3、5、7、9、11、13、15、17、19、21、23、25、27、29、31、33、35或47(的任意之一)所表示的核酸的互补序列；
(iii).编码SEQ ID NO：2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36或48(的任意之一)所表示的多肽的核酸，优选由于遗传密码的简并性，所述分离的核酸可以来源于SEQ ID NO：2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36或48(的任意之一)所表示的多肽序列，并且还优选相对于对照植物赋予一种或多种增强的产量相关性状；
(iv).核酸，所述核酸以递增的优先顺序与SEQ ID NO：1、3、5、7、9、11、13、15、17、19、21、23、25、27、29、31、33、35或47的任一核酸序列具有至少30％、31％、32％、33％、34％、35％、36％、37％、38％、39％、40％、41％、42％、43％、44％、45％、46％、47％、48％、49％、50％、51％、52％、53％、54％、55％、56％、57％、58％、59％、60％、61％、62％、63％、64％、65％、66％、67％、68％、69％、70％、71％、72％、73％、74％、75％、76％、77％、78％、79％、80％、81％、82％、83％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％或99％的序列同一性，并且还优选相对于对照植物赋予一种或多种增强的产量相关性状；
(v).第一核酸分子，其在严格条件下与(ii)的第二核酸分子杂交，并优选相对于对照植物赋予一种或多种增强的产量相关性状；
(vi).编码所述多肽的核酸，所述多肽以递增的优先顺序与SEQ ID NO：2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24、26、28、30、32、34、36或48(的任意之一)所表示的氨基酸序列具有至少50％、51％、52％、53％、54％、55％、56％、57％、58％、59％、60％、61％、62％、63％、64％、65％、66％、67％、68％、69％、70％、71％、72％、73％、74％、75％、76％、77％、78％、79％、80％、81％、82％、8％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％或99％的序列同一性，并且还优选相对于对照植物赋予一种或多种增强的产量相关性状；
(vii).包含上文(i)至(vi)的特征的任意组合的核酸。
E.项目A至D的任一项的方法，其中所述一种或多种增强的产量相关性状包含相对于对照植物增加的产量，优选种子产量和/或苗生物量。
F.项目A至E的任一项的方法，其中所述一种或多种增强的产量相关性状在非胁迫条件下获得。
G.项目A至E的任一项的方法，其中所述一种或多种增强的产量相关性状在干旱胁迫、盐胁迫或氮缺乏条件下获得。
H.项目A至G的任一项的方法，其中所述核酸与组成型启动子，优选与GOS2启动子，最优选与来自稻的GOS2启动子有效连接。
I.项目A至H的任一项的方法，其中所述核酸分子或所述多肽分别是植物来源的，优选来自双子叶植物，还优选来自杨柳科或十字花科，更优选来自杨属或拟南芥属，甚至更优选来自毛果杨或者拟南芥，最优选来自拟南芥。
J.通过项目A至I的任一项的方法获得的植物或其部分包括种子，其中所述植物或其部分包含如项目A至I的任一项中所定义的编码所述多肽的重组核酸。
K.构建体，其包含：
(i)项目A至H的任一项中所定义的编码所述多肽的核酸；
(ii)能驱动(a)的核酸序列表达的一个或多个调控序列；和任选地
(iii)转录终止序列。
L.项目K的构建体，其中所述调控序列之一是组成型启动子，优选GOS2启动子，最优选来自稻的GOS2启动子。
M.项目K或L的构建体在方法中的用途，所述方法用于制备相对于对照植物具有增强的产量，特别地种子产量和/或苗生物量的植物。
N.用项目K或L的构建体转化的或者通过项目A至9的任一项的方法获得的植物、植物部分或植物细胞，其中所述植物或其部分包含如项目A至J的任一项中所定义的编码所述多肽的重组核酸。
O.用于产生转基因植物的方法，所述转基因植物相对于对照植物具有增加的产量，特别地增加的生物量和/或增加的种子产量，所述方法包 括：
(i)在植物中引入(优选通过重组方法)和表达如项目A至H的任一项中所定义的编码所述多肽的核酸；和
(ii)在促进植物生长和发育的条件下培养所述植物细胞。
P.植物或者来源于或者为所述转基因植物的一部分的转基因植物细胞，所述植物相对于对照植物具有增加的产量、特别地增加的生物量和/或增加的种子产量的植物，所述植物产生自编码所述多肽的核酸的受调节的表达。
Q.用于产生产品的方法，包括培养本发明所述植物，并从或通过
(i)所述植物；或
(ii)所述植物的一部分，包括种子
产生所述产品的步骤。
R.项目J、N或P的植物或来源于其的转基因植物细胞，或者项目Q的方法，其中所述植物是作物植物，优选双子叶植物如糖萝卜、苜蓿、三叶草、菊苣、胡箩卜、木薯、棉花、大豆、低芥酸油菜或者单子叶植物如甘蔗或谷物如稻、玉米、小麦、大麦、粟、黑麦、黑小麦、高粱、野小麦(emmer)、德国小麦(spelt)、secale、一粒系小麦(einkorn)、teff、高粱(milo)和燕麦。
S.项目J的植物的可收获部分，其中所述可收获部分优选是苗和/或根生物量和/或种子。
T.产品，所述产品产生自项目J的植物和/或产生自项目R的植物的可收获部分。
U.项目A至H的任一项中定义的编码多肽的核酸的用途，用于相对于对照植物增加产量，特别是种子产量和/或苗生物量。
v.项目K或L的构建体，所述构建体包含于植物细胞中。
W.重组染色体DNA，所述重组染色体DNA包含项目K或L所述的构建体。
附图说明
图1表示具有保守基序的SEQ ID NO：2和SEQ ID NO：6的结构。基序1至4用序列下的短划线表示(阿拉伯数字表示基序号)。
图2表示对多种LSU多肽的多重比对。SEQ ID NO：2表示A.thaliana_At5g24660.1。其他项目如表A中所命名。
图2(A)显示使用ClustalW(版本2.0.11)的比对。星号表示多种蛋白质序列之间相同的氨基酸，冒号表示高度保守的氨基酸替换，和圆点表示较不保守的氨基酸替换；在其他位置上不存在序列保守性。
图2(B)显示使用MAFFT(Katoh K，Toh H(2008)Recent developments in the MAFFT multiple sequence alignment program.Briefings in Bioinformatics9：286-298)的比对。通过SEQ ID NO：2表示A.thaliana_At5g24660.1。使用GeneDoc(Nicholas等人，1997)可视化比对。以黑色突出显示严格的保守残基；次保守残基以灰色表示。
当使用保守氨基酸时，这些比对(A&B)可以用于定义另外的基序或特征序列。
图3显示LSU多肽的系统发生树。使用MAFFT(Katoh K，Toh H(2008)Recent developments in the MAFFT multiple sequence alignment program.Briefings in Bioinformatics9：286-298)比对蛋白质。使用Dendroscope2.0.1(Huson DH，Richter DC，Rausch C，Dezulian T，Franz M，Rupp R(2007)Dendroscope：An interactiVe Viewer for large phylogenetic trees.BMC Bioinformatics8：Article No.：460)绘制进化树。LSU2(SEQ ID NO：2)在树中对应于A.thaliana_At5g24660.1，并通过箭头标记。通过星号标记杨树LS2(SEQ ID NO：34)，并命名为P.trichocarpa_scaff_XII.354。
图4显示实施例3的MATGAT表。SEQ ID NO：2表示A.thaliana_At5g24660.1。其他项目如表A中所命名。
图5表示用于增加在启动子(pGOS2)控制下的LSU编码核酸在稻中表达的二元载体。启动子例如可以是稻GOS2启动子(pGOS2)。LSU表 示编码LSU多肽的序列，例如SEQ ID NO：1或33。
图6显示使用Vector NTI软件(来自Invitrogen Corporation，美国的版本10)，SEQ ID NO：2和SEQ ID NO：8的比对。相同的氨基酸显示为黑色背景上的白色字体。
实施例
现将参考以下仅用于说明的实施例来描述本发明。以下实施例不旨在限定本发明的范围。
DNA操作：除非另有说明，根据(Sambrook(2001)Molecular Cloning：a laboratory manual，第三版，Cold Spring Harbor Laboratory Press，CSH，New York)或Ausubel等(1994)，Current Protocols in Molecular Biology，Current Protocols第1卷和第2卷中所述标准方案进行重组DNA技术。用于植物分子工作的标准材料和方法描述于BIOS Scientific Publications Ltd(UK)和Blackwell Scientific Publications(UK)出版的由R.D.D Croy编著的Plant Molecular Biology Labfax(1993)中。
实施例1：鉴定与SEQ ID NO：1和SEQ ID NO：2相关的序列。
使用数据库序列检索工具，如基本局部比对工具(BLAST)(Altschul等(1990)J.Mol.Biol.215：403-410；和Altschul等(1997)Nucleic Acids Res.25：3389-3402)在美国国家生物技术信息中心(NCBI)的Entrez核苷酸数据库中所维护的那些序列内鉴定到与SEQ ID NO：1和SEQ ID NO：2相关的序列(全长cDNA、EST或基因组)。该程序用来通过核酸序列或多肽序列与序列数据库比较并通过计算匹配的统计学显著性而找到序列间具有局部相似性的区域。例如，SEQ ID NO：1的核酸所编码的多肽用于TBLASTN算法，采用默认设置并关闭忽略低复杂度序列的过滤。分析的结果通过配对性比较显示，并根据概率评分(E-值)排序，其中该评分反映特定比对结果因偶然而发生的概率(E-值越低，命中的显著性越高)。除了E-值外，比较还通过同一性百分数进行记分。同一性百分数 指两个所比较核酸(或多肽)序列之间在特定长度范围内的相同核苷酸(或氨基酸)数目。在一些情况下，可以调整缺省参数以修改检索的严格性。例如可以提高E值以显示较低严格性的匹配。这样，可以鉴定短的近以精确的匹配。
表A提供了与SEQ ID NO：1和SEQ ID NO：2相关的核酸序列的列表。
表A：POI核酸和多肽的实例：
植物来源核酸SEQ ID NO：蛋白质SEQ ID NO：A.thaliana_AT5G24660.112A.thaliana_AT3G49580.134A.thaliana_AT3G49570.156A.thaliana_AT5G24655.178B.napus TC72185910B.napus_DY0241771112B.napus_TC1001711314B.napus_TC841511516B.napus_TC957881718B.napus_TC1046501920B.napus_TC867202122B.napus_EE4251792324G.max_TC2925112526G.max_TC2871012728M.truncatula_TC1242202930P.trichocarpa_scaff_XV.73132P.trichocarpa_scaff_XII.3543334S.lycopersicum_TC2022033536N.tabacum UP9C4748
序列已经由研究协会例如基因组研究协会(The Institute for Genomic Research，TIGR；以TA开头)暂时组装并对公众公开。例如，还可以使用真核基因直向同源物(Eukaryotic Gene Orthologs，EGO)数据库鉴定这类相关序列，用目的核酸序列或多肽序列进行关键词搜索或通过使用BLAST算法进行。针对特定生物，例如针对某些原核生物，已经创建了具体的核酸序列数据库，例如由联合基因组协会(Joint  Genome Institute)创建的那些。另外，使用专有数据库已允许鉴定新的核酸和多肽序列。
实施例2：LSU多肽序列的比对
使用逐步比对的ClustalW2.0算法(Thompson等人(1997)Nucleic Acids Res25：4876-4882；Chenna等(2003).Nucleic Acids Res31：3497-3500)实施多肽序列的比对，采用标准设定(慢比对，相似矩阵：Gonnet，空位开放罚分10，空位延伸罚分0.2)。进行少量人工编辑以进一步优化比对。LSU多肽被比对于图2中。图2A显示使用CLustalW的比对，图2B显示使用MAFFT(Katoh K，Toh H(2008)Recent developments in the MAFFT multiple sequence alignment program.Briefings in Bioinformatics9：286-298)的比对。通过A.thaliana_At5g24660.1表示SEQ ID NO：2。使用GeneDoc(Nicholas等人，1997)可视化图2B中的比对。以黑色突出显示严格的保守残基；次保守残基以灰色表示。
使用MAFFT(Katoh和Toh(2008)Briefings in Bioinformatics9：286-298)，通过比对POI序列构建LSU多肽的系统发生树(图3)。使用Dendroscope(Huson等(2007)，BMC Bioinformatics8(1)：460)绘制进化树。显示了主要分支的100次自引重复(bootstrap repetitions)后的置信度水平。
实施例3：计算多肽序列之间的全局百分比同一性
使用本领域可获得的方法之一MatGAT(矩阵全局比对工具)软件(BMC Bioinformatics.20034：29.MatGAT：an application that generates similarity/identity matrices using protein or DNA sequences.Campanella JJ，Bitincka L，Smalley J；软件由Ledion Bitincka提供)确定可用于实施本发明方法的全长多肽序列之间全局相似性百分数和同一性百分数。MatGAT软件为DNA序列或蛋白质序列产生相似性/同一性 矩阵，无需数据的预比对。该程序使用Myers和Miller全局比对算法(空位开放罚分12和空位延伸罚分2)执行一系列逐对比对，使用例如Blosum62(对于多肽)计算相似性和同一性并且随后将结果置于距离矩阵中。
对于在多肽序列的全长上的全局相似性和同一性，图4显示了分析的结果。序列相似性在分界线的下半部分中显示，序列同一性在对角分界线的上半部分中显示。用于比对的参数为：评分矩阵：Blosum62、第一空位：12、延伸空位：2。与SEQ ID NO：2比较，用于实施本发明方法的LSU多肽序列之间的序列同一性(以％表示)通常高40％。
实施例4：鉴定可用于实施本发明方法的多肽序列中包含的结构域
蛋白质家族、结构域和位点集成资源(Integrated Resouce of Protein Families，domain and Site，InterPro)数据库是基于文本和序列进行检索的通常所用的特征序列数据库的集成界面。InterPro数据库组合了这些数据库，所述的数据库使用不同方法学和不同程度的有关已充分表征蛋白质的生物学信息以得到蛋白质特征序列。合作数据库包括SWISS-PROT、PROSITE、TrEMBL、PRINTS、ProDom和Pfam、Smart和TIGRFAMs。Pfam是覆盖许多常见蛋白质结构域和家族的，多重序列比对和隐藏的马尔可夫模型(hidden Markov models)的大集合。Pfam托管于大不列颠联合王国的Sanger研究所的服务器。InterPro托管于大不列颠联合王国的欧洲生物信息研究所。
使用如SEQ ID NO：2所表示的多肽序列的InterPro扫描(见Zdobnov E.M.和Apweiler R.；″InterProScan-an integration platform for the signature-recognition methods in InterPro.″；Bioinformatics，2001，17(9)：847-8；InterPro database，Release31.0，9th February2011)，没有检测到结构域或基序。
实施例5：可用于LSU多肽序列的拓扑学预测
TargetP1.1预测真核蛋白质的亚细胞定位。位置分配基于预测到的下述任何N端前序列的存在：叶绿体转运肽(cTP)、线粒体靶向肽(mTP)或分泌途径信号肽(SP)。最终预测所依据的评分并非真的是概率，并且它们未必加起来等于一。然而，具有最高评分的位置根据TargetP是最有可能的，并且评分之间的关系(可靠性类别)可以是预测的肯定性的一个指标。可靠性类别(RC)范围从1至5，其中1表示最强预测。TargetP在丹麦技术大学(Technical University of Denmark)的服务器上维护(见http：//www.cbs.dtu.dk/services/TargetP/&“Locating proteins in the cell using TargetP，SignalP，and related tools”，Olof Emanuelsson，Brunak，Gunnar yon Heij ne，Henrik Niel-sen，Nature Protocols2，953-971(2007))。
对于预测含有N端前序列的序列，也可以预测潜在的切割位点。
选择了众多参数，如生物组(organism group)(非植物或植物)、临界设置(cutoff set)(无、临界的预定义设置或临界的用户指定设置)和对切割位点预测的计算(是或否)。
如SEQ ID NO：2所表示的多肽序列的TargetP1.1分析的结果在表C中显示。已经选择“植物”生物组，未定义临界值并且需要转运肽的预测长度。SEQ ID NO：2所示多肽序列的亚细胞定位可能是细胞质或者细胞核的，没有预测到转运肽。
表C：如SEQ ID NO：2所表示的多肽序列的TargetP1.1分析的结果

众多其它算法可以用来执行此类分析，包括：
·在丹麦技术大学服务器上托管的ChloroP1.1；
·在澳大利亚布里斯班昆士兰大学分子生物科学研究所(Institute for Molecular Bioscience，University of Queensland，Brisbane，Australia)的服务器上托管的蛋白质Prowler亚细胞定位预测程序(Protein Prowler Subcellular Localisation Predictor)第1.2版；
·在加拿大阿尔伯塔省埃德蒙顿市阿尔伯塔大学(University of Alberta，Edmonton，Alberta，Canada)的服务器上托管的PENCE Proteome Analyst PA-GOSUB2.5；
·在丹麦技术大学服务器上托管的TMHMM；
·PSORT(URL：psort.org)。
·PLOC(Park和Kanehisa，Bioinformatics，19，1656-1663，2003)。
实施例6：LSU多肽的功能性测定法
提供了测定法(如果可用)，最容易地是描述来自文献的一种测定法。
实施例7：LSU编码核酸序列的克隆
通过PCR，使用定制的拟南芥幼苗cDNA文库作为模板，扩增核酸序列。用于克隆的cDNA文库定制自在比利时获得的种子生长的拟南芥Col-0幼苗的不同组织(例如叶、根)。在标准条件中使用商购的校正Taq DNA聚合酶，使用在50μl PCR混合物中的200ng模板实施PCR。使用的引物为：prm17615(SEQ ID NO：43；正义，起始密码子为粗体)：
5’ggggacaagtttgtacaaaaaagcaggcttaaacagggaaaggaggaaactat3’和prm176156(SEQ ID NO：44；反义；互补，与终止密码子区和3’UTR的一部分结合，见具有3’UTR的POI的SEQ ID NO：41)：
5’ggggaccactttgtacaagaaagctgggtctaattctacggagaggcaga3’，其包含用于Gateway重组的AttB位点。并使用标准方法纯化扩增的PCR片段。随后实施Gateway方法的第一步骤，即BP反应，在此期间PCR片段与pDONR201质粒发生体内重组以产生根据Gateway命名的“进入克隆”，pLSU。质粒pDONR201作为技术的部分从Invitrogen购买。
含有SEQ ID NO：1的进入克隆随后在LR反应中与一种用于稻转化的目的载体一起使用。这种载体在T-DNA边界内含有作为功能性元件的：植物可选择标记；可筛选标记表达盒；和意图与已经克隆于所述进入克隆内的目的核酸序列用于LR体内重组的Gateway盒。用于组成型表达的稻GOS2启动子(SEQ ID NO：xx)位于这种Gateway盒的上游。启动子-基因-终止子的序列提供为SEQ ID NO：42。
LR重组步骤之后，获得的表达载体pGOS2：：LSU(图5)根据本领域众所周知的方法转化至农杆菌菌株LBA4044中。
相似地，克隆来自杨树的LS2编码序列(SEQ ID NO：33)。用于克隆的cDNA文库定制自毛果杨的不同组织(例如叶、根)。在比利时收集了所使用的毛果杨的幼苗。
实施例8：植物转化
稻转化
含有表达载体的农杆菌用来转化稻植物。将稻的日本(japonica)栽培品种Nipponbare的成熟干燥种子脱壳。通过在70％乙醇中孵育一分钟，随后在次氯酸钠溶液中30至60分钟，优选30分钟(取决于污染的等级)，随后用无菌蒸馏水洗涤3至6次，优选4次而实施消毒。消毒的种子随后在含有2，4-D的培养基(愈伤组织诱导培养基)上发芽。在光照中孵育6天后，用如下所述的农杆菌转化来自小盾片的愈伤组织。
含有表达载体的农杆菌菌株LBA4404用于共培育。农杆菌接种在含有适宜抗生素的AB培养基上并在28℃培养3日。随后将细菌收集并 重悬在液体共培育培养基中至密度(OD600)约1。将愈伤组织在该混悬液内浸泡1至15分钟。愈伤组织随后在滤纸上吸干并转移至固化的共培育培养基上并且在黑暗中于25℃孵育3日。洗去农杆菌后，愈伤组织在光照中于28℃C-32℃在选择剂存在下于含有2，4-D的培养基上培育10至14天(印度稻(indica)的生长时间：3周)。在此时段期间，形成迅速生长的抗性愈伤组织。在这种材料转移至再生培养基，胚发生潜力释放并且苗在随后4至6周发育。将苗从愈伤组织中切下并且在含有生长素的培养基上培育2至3周，将苗从所述的培养基上转移至土壤。硬化的苗在高湿度和短日照下于温室中培育。
根据本领域技术人员公知的技术，还可以以相似的方式，如上所述进行稻栽培品种印度稻的转化。
对一个构建体而言产生约60个独立的T0稻转化体。原代转化体从组织培养箱转移至温室。在定量PCR分析以验证T-DNA插入物的拷贝数后，仅保留表现选择剂耐受性的单拷贝转基因植物用于收获T1种子。种子随后在移植后3至5月收获。本方法以超过50％的比率产生单一基因座转化体(Aldemita和Hodges，1996，Chan等1993，Hiei等1994)。
实施例9：其他作物的转化
玉米转化
玉米(玉蜀黍)的转化根据Ishida等(1996.Nature Biotech14(6)：745-50)描述方法的改进方法进行。在玉米中的转化是基因型依赖的并且仅特定的基因型可适用于转化和再生。近交系A188(明尼苏达大学)或以A188作为亲本的杂种是用于转化的供体材料的良好来源，但是其它基因型也可以成功地使用。在授粉后(DAP)大约11日从玉米植物中收获玉米穗，此时不成熟胚的长度是大约1至1.2mm。不成熟胚与含有表达载体的根癌农杆菌共培育并且转基因植物通过器官发生而回收。切下的胚在愈伤组织诱导培养基上、随后在玉米再生培养基上培育，其中所述的再生培养基含有选择剂(例如咪唑啉酮，但可以使用多种选择标记)。培养 板在25℃于光照下培养2-3周，或直至苗发育。将绿色苗从每个胚转移至玉米生根培养基并在25℃培养2-3周，直至根发育。将生根的苗移植至温室的土壤中。从表现选择剂耐受的并含有单拷贝的T-DNA插入物的植物中产生T1种子。
小麦转化
小麦的转化用Ishida等(1996)Nature Biotech14(6)：745-50描述的方法进行。通常在转化中使用(可从墨西哥CIMMYT获得的)栽培品种Bobwhite。不成熟胚与含有表达载体的根癌农杆菌共培育并且转基因植物通过器官发生而回收。在与农杆菌孵育后，胚在愈伤组织诱导培养基上、随后在再生培养基上体外培育，其中所述的再生培养基含有选择剂(例如咪唑啉酮，但可以使用多种选择标记)。培养平板在25℃于光照下培养2-3周，或直至苗发育。将绿色苗从每个胚转移至生根培养基并在25℃培养2-3周，直至根发育。将生根的苗移植至温室的土壤中。从表现选择剂耐受的并含有单拷贝的T-DNA插入物的植物中产生T1种子。
大豆转化
根据对Texas A&M美国专利5,164,310中所述方法的改进方法转化大豆。几个商业大豆品种对于通过这种方法的转化是可行的。栽培品种Jack(从Illinois种子基金会可获得)通常用于转化。对大豆种子消毒以便体外播种。从7日龄幼苗中切下下胚轴、胚根和一片子叶。进一步培育上胚轴和余下的子叶以发育腋生节。将这些腋生节切下并与含有表达载体的根癌农杆菌孵育。在共培育处理之后，将外植体洗涤并转移至选择培养基。将再生的苗切下并置于苗伸长培养基上。将长度不超过1cm的苗置于生根培养基上直至根发育。将生根的苗移植至温室的土壤中。从表现选择剂耐受的并含有单拷贝T-DNA插入物的植物中产生T1种子。
油菜/低芥酸油菜(rapeseed/canola)转化
使用5-6日龄幼苗的子叶柄和下胚轴作为用于组织培育的外植体并且根据Babic等(1998，Plant Cell Rep17：183-188)转化。商业栽培品种Westar(Agriculture Canada)是用于转化的标准品种，但是也可以使用其 它品种。对低芥酸油菜种子作表面消毒以便体外播种。从体外幼苗中切下具有附着子叶的子叶柄外植体，并通过叶柄外植体的切口端浸入细菌混悬液而接种(含有表达载体的)农杆菌。外植体随后在含有3mg/l BAP、3％蔗糖、0.7％植物琼脂(Phytagar)的MSBAP-3培养基上在23℃，16小时光照下培养2天。在与农杆菌共培育2日后，将叶柄外植体转移至含有的3mg/l BAP、头孢噻肟、羧苄青霉素或特美汀(300mg/l)的MSBAP-3培养基上持续7日，并且随后在含头孢噻肟、羧苄青霉素或特美汀和选择剂的MSBAP-3培养基上培养，直至苗再生。当苗具有5-10mm长度时，将苗切下并转移至苗伸长培养基(含0.5mg/l BAP的MSBAP-0.5)。将长度大约2cm的苗转移至用于根诱导的生根培养基(MS0)。将生根的苗移植至温室的土壤中。从表现选择剂耐受性并含有单拷贝T-DNA插入物的植物中产生T1种子。
苜蓿转化
紫苜蓿(Medicago sativa)的再生性克隆使用(McKersie等，1999Plant Physiol119：839-847)的方法加以转化。苜蓿的再生和转化是基因型依赖性的并且因而需要再生植物。已经描述了获得再生性植物的方法。例如，这些再生性植物可以选自栽培品种Rangelander(Agriculture Canada)或如Brown DCW与A Atanassov(1985.Plant Cell Tissue Organ Culture4：111-112)描述的任何其它商业苜蓿品种。备选地，RA3品种(威斯康星大学(University of Wisconsin))已经被选择用于组织培养中(Walker等，1978Am J Bot65：654-659)。将叶柄外植体与含有表达载体的根癌农杆菌C58C1pMP90(McKersie等，1999Plant Physiol119：839-847)或LBA4404的过夜培养物共培育。外植体在黑暗中在含有288mg/L Pro、53mg/L硫代脯氨酸、4.35g/L K2SO4和100μm乙酰丁香酮的SH诱导培养基上共培育3天。外植体在半强度(half-strength)Murashige-Skoog培养基(Murashige和Skoog，1962)中洗涤并平板接种在不含乙酰丁香酮而含有合适选择剂和合适抗生素以抑止农杆菌生长的相同SH诱导培养基上。在数周后，将体细胞胚转移至不含生长调节剂、 不含抗生素而含有50g/L蔗糖的BOi2Y发育培养基中。体细胞胚随后在半强度Murashige-Skoog培养基上发芽。将生根的幼苗移植至花盆内并且在温室中培育。从表现选择剂耐受性并含有单拷贝T-DNA插入物的植物中产生T1种子。
棉花转化
根据US5,159,135中所述的方法使用根癌农杆菌转化棉花。将棉花种子在3％次氯酸钠溶液中表面灭菌20分钟，并以含有500μg/ml头孢噻肟的蒸馏水洗涤。接着将种子转移至含有50μg/ml苯菌灵的SH培养基中进行发芽。取下4至6日龄幼苗的下胚轴，剪成0.5cm的片并置于0.8％琼脂上。用农杆菌悬液(约108个细胞/ml，从转化有目的基因和适当选择标记的过夜培养物稀释而成)接种下胚轴外植体。室温光照3天后，将组织转移至固体培养基(1.6g/l Gelrite)，其带有包含B5维生素的Murashige和Skoog盐(Gamborg等，Exp.Cell Res.50：151-158(1968))，0.1mg/l2，4-D，0.1mg/l6-糠胺嘌呤和750μg/ml MgCL2，并含有50至100μg/ml头孢噻肟和400-500μg/ml羧苄青霉素以杀死残余细菌。2至3个月(每4至6周继代培养)后分离单个细胞系，并在选择培养基上进一步培养进行组织扩增(30℃，16小时光周期)。接着在非选择培养基上将转化组织再培养2至3个月，以产生体细胞胚。将至少4mm长的表观健康的胚转移至管中，其中含有细蛭石中的SH培养基，并补充有0.1mg/l吲哚乙酸、6糠胺嘌呤和赤霉酸。以16小时光周期在30℃下培养胚，并将2至3叶期的小植株转移至含有蛭石和养分的盆中。植物变硬并接着移至温室中进一步培养。
糖萝卜转化
将糖萝卜(甜菜(Beta vulgaris L.))的种子在70％乙醇中消毒1分钟，然后在20％次氯酸盐漂白剂，例如常规漂白剂(可商购自Clorox，1221Broadway，Oakland，CA94612，美国)中振荡20分钟。用无菌水漂洗种子并风干，然后种植在萌发培养基(包含维生素B5 (Gamborg等人；Nutrient requirements of suspension cultures of soybean root cells.Exp.Cell Res.，第50卷，151-8)，补充了10g/l蔗糖和0，8％琼脂的基于Murashige和Skoog(MS)的培养基(见Murashige，T.和Skoog，.，1962.A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures.Physiol.Plant，vol.15，473-497)上。根据Hussey和Hepher(Hussey，G.和Hepher，A.，1978.Clonal propagation of sugarbeet plants and the formation of polylpoids by tissue culture.Annals of Botany，42，477-9)，将下胚轴组织基本上用于苗培养物的引发，并在23-25℃，维持在补充了30g/l蔗糖加上0,25mg/l苄氨基嘌呤和0,75％琼脂，pH5,8的基于MS的培养基上16小时光周期。
将携带具有可选择标记基因例如nptII的二元质粒的根癌农杆菌菌株用于转化实验。转化前一天，将含抗生素的液体LB培养物培养于摇床上(28℃，150转/分)，直到600nm处光密度(O.D.)达到～1。离心过夜培养的细菌培养物并重悬在包含乙酰丁香酮，pH5,5的接种培养基中(O.D.～1)中。
将苗基本组织剪成薄片(大约1.0cm x1.0cm x2.0mm)。将组织浸没在液体细菌接种培养基中30秒。通过滤纸吸干去除多余的液体。在包含30g/l蔗糖的基于MS的培养基上共培养24-72小时，然后是非选择时期，包括基于MS的培养基、具有1mg/l BAP的30g/l蔗糖诱导苗发育和头孢噻肟消除农杆菌。3-10天后，将外植体转移到具有例如卡那霉素或G418(50-100mg/l基因型依赖的)的类似选择性培养基中。
每2-3周将组织转移到新鲜的培养基中，以维持选择压力。苗的非常快速萌发(3-4天后)表明现存分生组织的再生而不是新发育的转基因分生组织的器官发生。几轮亚培养后，将小苗转移到含有5mg/l NAA和卡那霉素或G418的根诱导培养基中。采取其他步骤，以降低产生嵌合的(部分转基因)转化植物的可能性。将再生苗的组织样品用于DNA分析。
糖萝卜的其他转化方法是本领域已知的，例如Linsey&Gallois (Linsey，K.和Gallois，P.，1990。Transformation of sugarbeet(Beta vulgaris)by Agrobacterium tumefaciens。Journal of Experimental Botany；第41卷，第226期；529-36)的那些转化方法或者公开于国际申请WO9623891A的方法。
甘蔗转化
从6月龄田间生长的甘蔗植物中分离Spindle(见Arencibia A.，等，1998.An efficient protocol for sugarcane(Saccharum spp.L.)transformation mediated by Agrobacterium tumefaciens.Transgenic Research，vol.7，213-22；Enriquez-Obregon G.，等，1998.Herbicide-resistant sugarcane(Saccharum officinarum L.)plants by Agrabacterium-mediated transformation.Planta，vol.206，20-27)。通过浸没在20％次氯酸盐漂白剂例如常规漂白剂(可商购自Clorox，1221Broadway，Oakland，CA94612，美国)中20分钟来消毒材料。将大约0.5cm的横断面顶部朝上放置于培养基中。在23℃，在补充了20g/l蔗糖，500mg/l酪蛋白水解产品，0，8％琼脂和5mg/l2，4-D，包括B5维生素(Gamborg，O.，等，1968.Nutrient requirements of suspension cultures of soybean root cells.Exp.Cell Res.，vol.50，151-8)的基于MS(Murashige，T.和Skoog，.，1962.A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures.Physiol.Plant，vol.15，473-497)的培养基中避光培养植物材料4周。4周后，将培养物转移到相同的新鲜培养基上。
将携带具有可选择标记基因例如hpt的二元质粒的根癌农杆菌菌株用于转化实验。转化前一天，将含抗生素的液体LB培养物培养于摇床上(28℃，150转/分)，直到达到～0,6的600nm处光密度(O.D.)。离心过夜培养的细菌培养物并重悬在包含乙酰丁香酮，pH5,5的基于MS的接种培养基中(O.D.～0,4)。
基于形态学特征(致密结构和黄色)分离甘蔗胚性愈伤组织片段(2-4mm)，并在流动通风橱干燥20分钟，然后浸没在液体细菌接种培养基 中10-20分钟。通过滤纸吸干去除多余的液体。在滤纸上避光进行共培养3-5天，所述滤纸放置于包含1mg/l2，4-D，B5维生素的基于MS的培养基的上部。共培养后，将愈伤组织用无菌水洗涤(ished)，然后在含有500mg/l用于消除农杆菌的头孢噻肟的类似培养基上进行非选择时期培养。3-10天后，将外植体转移到包含1mg/l2，4-D，B5维生素的基于MS的选择性培养基中另外3周，所述选择性培养基具有25mg/l潮霉素(基因型依赖的)。全部处理都在避光条件下，在23℃进行。
在16小时光照光周期下，在包含1mg/l BA和25mg/l潮霉素，缺乏2，4-D的培养基上进一步培养抗性愈伤组织，导致了苗结构的发育。分离苗并在选择性生根培养基(基于MS的包含20g/l蔗糖、20mg/l潮霉素和500mg/l头孢噻肟的培养基)上培养。
将来自再生的苗的组织样品用于DNA分析。
用于甘蔗的其他转化方法是本领域已知的，例如来自公开为WO2010/151634A的国际申请和授权的欧洲专利EP1831378。
对于通过粒子轰击的转化，愈伤组织的诱导和甘蔗的转化可以通过Snyman等的方法实施。(Snyman等，1996，S.Afr.J.Bot62，151-154)。可以在pEmu启动子的控制下(Last等(1991)Theor.Appl.Genet.81，581-588)用表达npt[pi]基因的载体pEmuKN共转化构建体(Beck等Gene19，1982，327-336；Gen-Bank Accession No.V00618)。通过Snyman等2001的方法再生植物(Acta Horticulturae560，(2001)，105-108)。
实施例10：表型评价方法
10.1评价设置
产生大约60个独立的T0稻转化体。原代转化体从组织培养箱转移至温室用于生长和收获T1种子。留下6个事件，其中所述事件的T1后代对转基因的存在/不存在以3：1比例分离。对于这些事件中的每一事件，通过监测目视标记表达而选择含有转基因的大约10株T1幼苗(杂合子和纯合子)和缺少转基因的大约10株T1幼苗(失效合子)。转基因植物和对 应的失效合子在随机位置上并排培育。温室条件是短日照(12小时光照)，在光照下28℃和在黑暗中22℃以及相对湿度70％。定期给生长于非胁迫条件下的植物浇水，以确保水和养分不受限制，从而满足植物完成生长和发育的需要，以完成生长和发育，除非他们用于胁迫筛选。
使植物从播种期直至成熟期通过数字成像箱数次。在每一时间点上，对每株植物从至少6个不同角度拍摄数字图像(2048×1536像素，1600万颜色)。
按照与用于T1代相同的评价方法可以进一步在T2代中评价T1事件，例如使用更少的事件和/或使用每一事件更多的个体。
干旱筛选
在正常培养条件下在盆土中培养T1植物，直至到达抽穗阶段。接着将其转移至停止浇水的“干旱”部分。在随机选择的盆中插入土壤湿度探测器，以检测土壤含水量(SWC)。当SWC降至一定阈值之下时，自动对植物持续再浇水直至再次达到正常水平。接着将植物再转移至正常条件。其余培养(植物成熟、种子收获)与不在非生物胁迫条件下培育的植物相同。如正常条件下培养所详细描述的那样记录生长和收获参数。
氮使用效能筛选
在除营养液以外均为正常的条件下在盆土中培养T1或T2植物。从移植到成熟均使用特定的营养液对盆浇水，其中含有降低的氮(N)含量，通常降低7至8倍。其余培养(植物成熟、种子收获)与不在非生物胁迫条件下培育的植物相同。如正常条件下培养所详细描述的那样记录生长和收获参数。
盐胁迫筛选
在由椰子纤维和烘焙粘土的颗粒(Argex)(3：1比例)构成的基质上培养T1或T2植物。在将小植株移植到温室后的前两周使用正常营养液。 前两周之后，向营养液中加入25mM盐(NaCl)，直至收获植物。如正常条件下培养所详细描述的那样记录生长和收获参数。
10.2统计分析：F检验
使用双因子ANOVA(方差分析)作为统计模型用于植物表型特征的整体评价。对用本发明基因转化的全部事件的全部植物的所有测量参数实施F检验。实施F检验以检查基因对于全部转化事件的作用并验证基因的整体作用(又称作全局基因作用)。用于真实全局基因作用的显著性的阈值对于F检验设置在5％概率水平上。显著性F检验值标示基因作用，意味着不仅仅基因的存在或位置才造成表型上的差异。
10.3测量的参数
从播种期直至成熟期，使植物通过数字成像箱数次。如WO2010/031780中所述，在每一时间点上，对每株植物从至少6个不同角度拍摄数字图像(2048×1536像素，1600万颜色)。将这些测量用于测定不同的参数。
生物量相关的参数测量
植物地上部分面积(或叶生物量)通过计数在来自植物地上部分的数字图像上区别于背景的像素的总数而测定。该值对在相同时间点上从不同角度拍摄的画面进行平均化并且通过校正转化成以平方毫米表达的物理表面值。实验证实以这种方式测量的地上部分植物面积与地上植物部分的生物量相关。地上部分面积是在植物已经达到其最大叶生物量的时间点上所测量的面积。
根生物量的增加被表述为总根生物量(测量为植物寿命中观察到的根的最大的生物量)的增加；或者表述为根/苗指数(测量为根和苗活性生长期中根质量和苗质量的比例)的提高。换言之，将根/苗指数定义为在根和苗的活性生长期中根生长快速性与苗生长快速性的比例。可以使用 如在WO2006/029987中所述的方法测定根生物量。
植物高度的稳健指标是重力的测量，即测定叶生物量的重心的高度(以mm表示)。基于曲线拟合或者，如果拟合不符合要求，基于绝对最大值，其避免了单一直立叶片的影响。
与发育时间相关的参数
早期萌发势是萌发后三周的植物地上面积。早期萌发势通过计数在来自植物地上部分的区别于背景的像素的总数而测定。该值对在相同时间点上从不同角度拍摄的画面进行平均化并且通过校正转化成以平方毫米表达的物理表面值。
AreaEmer是快速早期发育的指标(当与对照植物比较，该值减少时)。其是植物产生30％的最终生物量所需的时间与产生90％的其最终生物量所需的时间之间的比率(以％表示)。
植物的“开花时间”或“开花的时间”可以使用如在WO2007/093444中所述的方法测定。
种子相关参数测量
将成熟的主圆锥花序(primary panicle)收获、计数、装袋、加条形码标记并且随后在干燥箱内在37℃干燥3日。随后将圆锥花序脱粒并且收集及计数全部种子。通常，通过干燥的外层壳覆盖物覆盖种子。使用吹气装置分开饱满粒(husks)(本文中也称为饱满的小花)与空粒。弃去空粒并再次对剩余部分计数。饱满粒在分析天平上称重。
种子的总数通过计数分离步骤后保留下来的饱满粒数而确定。种子总重量通过称量从植物中收获的全部饱满粒而测量。
每株植物的种子(或小花)总数通过计数收获自植物的粒数(无论是否饱满)确定。
根据计数的种子数及其总重量外推得出千粒重(TKW)。
收获指数(HI)在本发明中定义为种子总产量和地上面积(mm2)之间的比值再乘以因子106。
每个圆锥花序的花数在本发明中定义为种子总数与成熟的主圆锥花序数之间的比率。
“种子饱满率”或“种子饱满的比率”在本发明中定义为饱满种子(即含种子的小花)数占种子总数(即小花总数)的比例(以a％表示)。换言之，种子饱满率是充盈了种子的小花的百分数。
实施例11：转基因植物表型评价的结果
11.1非胁迫条件
在测试的至少两个事件中，在来自稻的GOS2启动子的控制下在稻植物中过表达SEQ ID NO：2的LSU产生了极大地增加根生物量、增加每株植物的饱满种子数(nrfilledseed)、增加每株植物可收获的总种子(totalwgseeds)、增加地上生物量(AreaMax)和/或植物的最大高度的T1代。
此外，至少3个事件显示出增加的重心高度(GravityYMax)、增加的饱满的种子(fillrate)和/或增加的开花前绿度(GNbfFlow)。在至少一个事件中观察到的其他作用是增加的早期萌发势(EmeVigor)、改变的根/苗指数、增加的千粒重，以及第一次发芽(flush)中增加的圆锥花序数。关于转基因植物产生的详细内容参见前面的实施例。
在非胁迫条件下转基因稻植物的评价结果显示如下(表D1)。对于地上生物量(AreaMax)、萌发势(早期萌发势)、种子总产量(Totalwgseeds)、种子数、种子饱满率，以及重心的垂直位置(GravityYMax)观察到了超过5％的增加。
表D1：转基因稻植物的数据总结；针对每种参数，为了确认显示了整体百分比增加(T1代)，针对每种参数的p值＜0.05。

以下总结了在非胁迫条件下，评价T1代并表达编码SEQ ID NO：34的LS2多肽的核酸的转基因稻植物的结果。当在非胁迫条件下生长时，在至少一个事件中观察到了种子总重量、植物的小花数、重心的垂直位置(GravityYMax)、第一次flush中圆锥花序数(firstpan)以及种子饱满率的增加。在至少两个事件中，植物的饱满种子数(nrfilledseed)是极大地增加的。此外，表达LS2编码核酸的至少一个事件的植物显示出更快的生长速率，例如播种至植物达到90％其最终生物量(AreaCycle)的时间之间所需的时间(以天表示)更短，和萌发区域(AreaEmer)，植物制造30％的最终生物量所需的时间与制造90％的其最终生物量所需的时间之间的比率(以％表示))的时间之间所需的时间(以天表示)更短。
11.2干旱胁迫条件
在测试的至少两个事件中，在来自稻的GOS2启动子的控制下稻植物中过表达SEQ ID NO：2的LSU产生了极大地增加每株植物的饱满种子数(nrfilledseed)、每株植物可收获的总种子(totalwgseeds)、种子的饱满率(fillrate)和干旱胁迫后增加的植物绿度(如通过干旱处理后，第一次成像中绿色和深绿色像素的比例所测量)，以及植物上每一圆锥花序的小花的平均数增加的T1代(如由在第一次发芽中植物的小花数除 以圆锥花序数所测量的)。每一圆锥花序的小花的平均数的增加归因于第一次发芽中圆锥花序的较少的数量，即较少的圆锥花序产生了与对照植物大约相同的种子数。
此外，至少1个事件显示出增加的地上生物量(AreaMax)、根/苗指数(即在根和苗的活性生长期中根质量和苗质量之间的比率)、收获指数(计算自每株植物可收获的总种子除以地上生物量)、千粒重、增加的重心高度(GravityYMax)。关于转基因植物产生的详细内容参见前面的实施例。
在非胁迫条件下转基因稻植物的评价结果显示如下(表D2)。对于种子总产量(Totalwgseeds)、种子数、种子饱满率和收获指数观察到了超过5％的增加。
表D2：转基因稻植物的数据总结；针对每种参数，为了确认显示了整体百分比增加(T1代)，针对每种参数的p值＜0.05。

实施例12：甘蔗表型评价方法
12.1在温室或田间中，培养产生的转基因甘蔗植物10至15个月。使用植物生长的标准条件。
12.2糖提取方法
收获10至15月龄并具有超出10个节间部分的甘蔗植物的茎杆。去除全部叶子后，从上(＝1)至下(例如＝36)编号茎杆的节间部分。从每一节间部分的中间切取大约1-2g重的茎杆盘(stalk disc)。然后组合3个节间部分的茎杆盘，以产生一个样品并冷冻于液氮中。
对于糖提取，首先在Waring混合器(来自Waring，New Hartford，Connecticut，美国)中将茎杆盘研成粉末。通过在95℃，在10mM磷酸钠缓冲液pH7.0中振荡1小时，来提取糖。然后，通过经过30μm筛子的过滤，去除固体。随后将得到的溶液用于糖测定(见下文)。
12.3鲜重和生物量
培养表达POI多肽的转基因甘蔗植物10至15个月。在每一情况下，去掉转基因株系和野生型甘蔗的甘蔗茎杆的叶子，将茎杆分成3个节间部分的区段，并在密封的50ml塑料容器中，将这些节间部分区段冷冻于液氮中。测定样品的鲜重。如下所述进行用于糖测定目的的提取。
在转基因植物中茎生物量是增加的。
12.4糖测定(葡萄糖、果糖和蔗糖)
通过NAD+(烟酰胺腺嘌呤二核苷酸)转变成NADH(还原型烟酰胺腺嘌呤二核苷酸)，在酶测定法中，光度测量法测定根据上述糖提取方法获得的提取物中葡萄糖、果糖和蔗糖的含量。在还原期间，丢失了烟酰胺环的芳香性，并因此改变了吸收光谱。可以光度测量法检测吸收光谱的这种改变。通过己糖激酶和三磷酸腺苷酸(ATP)，提取物中存在的葡萄糖和果糖转变成葡萄糖-6-磷酸和果糖-6-磷酸。随后葡萄糖-6-磷酸通过葡萄糖-6-磷酸脱氢酶氧化成6-磷酸葡萄糖酸盐。在该反应中，NAD+还原成NADH，并且可以光度测量法测定形成的NADH的量。形成的NADH与提取物中存在的葡萄糖之间的比率为1：1，以致可以使用NADH的摩尔吸收系数(6.31/mmol·cm)，根据NADH含量计算葡萄糖含量。完全氧化葡萄糖-6-磷酸后，在溶液中同样形成的果糖-6-磷酸通过葡糖磷酸异构酶转变成葡萄糖-6-磷酸，并又氧化成6-磷酸葡萄糖酸盐。再次，果糖与形成的NADH量之间的比率为1：1。因此，通过蔗糖酶(Megazyme)切割提取物中存在的蔗糖，以产生葡萄糖和果糖。然后，用上述酶将释放的葡萄糖和果糖在NAD+依赖的反应中转变成6-磷 酸葡萄糖酸盐。1个蔗糖分子转变成6-磷酸葡萄糖酸盐产生了2个NADH分子。同样地，光度测量法测定形成的NADH的量，并使用NADH的摩尔吸收系数，用于计算蔗糖含量。
如上所述，在每一情况下，将甘蔗茎杆分成3个节间部分的区段。从上至下(上＝节间部分1，下＝节间部分21)编号节间部分。在甘蔗野生型植物中，蔗糖含量从节间部分1＝3开始上升，直到节间部分10-12。全部后续的节间部分的蔗糖含量同样高。
在包含POI编码基因的转基因株系中，茎杆中储存的碳水化合物的含量同样地升高。平均储存的碳水化合物含量比甘蔗野生型植物中的蔗糖含量更高。
总之，令人惊奇地，可以观察到蔗糖含量在转基因甘蔗株系的节间部分中要比在野生型中更高。