提高小麦纹枯病抗性的方法.pdf

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摘要
申请专利号:

CN201010241551.9

申请日:

2010.07.30

公开号:

CN101942452A

公开日:

2011.01.12

当前法律状态:

授权

有效性:

有权

法律详情:

授权|||实质审查的生效IPC(主分类):C12N 15/29申请日:20100730|||公开

IPC分类号:

C12N15/29; C12N15/82; C12Q1/68; A01H5/00; A01G1/00

主分类号:

C12N15/29

申请人:

江苏省农业科学院

发明人:

周淼平; 姚金保; 任丽娟; 杨学明; 马鸿翔

地址:

210014 江苏省南京市玄武区钟灵街50号

优先权:

专利代理机构:

南京经纬专利商标代理有限公司 32200

代理人:

孙忠浩

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内容摘要

本发明涉及一种提高小麦纹枯病抗性的方法,是利用一对特定引物通过PCR方法由拟南芥基因组DNA克隆出拟南芥NPR1基因的克隆片段SEQ ID No:1,并构建拟南芥NPR1基因的表达载体;再通过基因枪法将拟南芥NPR1基因的表达载体导入受体小麦幼胚细胞;经过愈伤诱导、植株再生,获得转基因待选植株;然后对转基因待选植株进行分子检测,获得阳性转基因植株;将阳性转基因植株通过自交和PCR筛选,获得T2代转基因纯合株系;最后对T2代转基因纯合株系后代进行纹枯病抗性筛选,获得纹枯病抗性提高的转基因植株。其优点是:与常规的种质培育方法相比,具有针对性强、培育周期短、对重要农艺性状影响小的特点。

权利要求书

1: 一种提高小麦纹枯病抗性的方法, 是通过 PCR 方法由拟南芥基因组 DNA 克隆出拟南 芥 NPR1 基因, 其特征在于 : a) 利用一对引物 SEQ ID NO : 2 和 SEQ ID NO : 3 通过 PCR 方法由拟南芥基因组 DNA 克 隆出拟南芥 NPR1 基因的克隆片段 SEQ ID NO : 1, 并构建拟南芥 NPR1 基因的表达载体 ; b) 通过基因枪法将拟南芥 NPR1 基因的表达载体导入受体小麦幼胚细胞 ; 对所述的小 麦幼胚细胞进行愈伤诱导、 植株再生, 获得转基因待选植株 ; c) 对转基因待选植株进行分子检测, 获得阳性转基因植株 ; d) 阳性转基因植株通过自交和 PCR 筛选, 获得 T2 代转基因纯合株系 ; e) 对 T2 代转基因纯合株系后代进行纹枯病抗性筛选, 获得纹枯病抗性提高的转基因植 株。
2: 根据权利要求 1 所述的提高小麦纹枯病抗性的方法, 其特征在于 : 构建拟南芥 NPR1 基因的表达载体是指 : 将上、 下游分别附加限制性内切酶 SmaI 和 SacI 酶切识别 DNA 序列的 克隆片段 SEQ ID NO : 1 采用 SmaI 和 SacI 酶切后, 回收 2010bp 片段 ; 以 pAHC25 为基础质 粒, 采用限制性内切酶 SmaI 和 SacI 对 pAHC25 质粒 DNA 进行酶切, 回收 7.8Kb 左右 DNA 酶 切大片段, 以 T4DNA 连接酶与回收的附加 SmaI 和 SacI 酶切位点的 SEQ ID NO : 1 的 2010bp 片段连接, 转化大肠杆菌, 对抗 100mg/L 氨苄青霉素的阳性克隆进行扩增并提取质粒, 采用 测序和酶切的方法验证连接的正确性, 获得的质粒命名为 pAC-NPR1 即为拟南芥 NPR1 基因 的表达载体。
3: 根据权利要求 1 所述的提高小麦纹枯病抗性的方法, 其特征在于 : 对转基因待选植 株进行分子检测, 获得阳性转基因植株是指 : 对待选植株通过一对引物 SEQ IDNO : 4 和 SEQ ID NO : 5 进行 PCR 筛选获得大小为 745bp 的扩增片段, 通过另一对引物 SEQ ID NO : 6 和 SEQ ID NO : 7 进行 PCR 筛选获得大小为 721bp 的扩增片段, 对所述的两个扩增片段通过电泳图 检测, 同时含有拟南芥 NPR1 基因的这两条扩增片段的植株被确定为阳性转基因植株。
4: 根据权利要求 1 所述的提高小麦纹枯病抗性的方法, 其特征在于 : 对 T2 代转基因纯 合株系后代进行纹枯病抗性筛选是指 : 在小麦拔节期对被测后代采用牙签接菌法接种纹枯 病致病菌株 R46, 于小麦乳熟期调查纹枯病发病情况, 计算株系平均病情指数, 根据病情指 数判定小麦植株的纹枯病抗性。

说明书


提高小麦纹枯病抗性的方法

    【技术领域】
     本发明涉及一种增加小麦的纹枯病抗性的方法, 属于小麦育种和分子生物学领域。 背景技术
     小 麦 纹 枯 病, 又 称 麦 尖 眼 点 病 (Wheat sharp eyespot), 是由禾谷丝核菌 (Rhizoctonia cerealis Vander hoeven) 和立枯丝核菌 (Rhizoctonia solani Kuhn) 引 起的一种重要的世界性土传真菌病害, 早在 1934 年国外即有报道。1973 年, 我国也发现此 病。20 世纪 80 年代以来, 随着施肥水平的不断提高, 耕作制度的改变和感病品种的大面积 推广, 纹枯病已成为我国长江流域麦区的主要病害, 并逐渐蔓延到黄淮麦区, 近年来以鲁、 豫、 陕、 苏、 皖等麦区发生较为严重 ( 姚金保, 姚国才, 杨学明, 钱存鸣 . 中国小麦抗纹枯病育 种研究进展 .《江苏农业学报》 , 2007, 23(3) : P.248-251)。小麦纹枯病一般病田病株率为 10-20%, 重病田块可达 60-80%以上, 由此造成的产量损失严重, 轻的减产 5-10%, 重的减 产 40%, 甚至颗粒无收, 并且小麦纹枯病发病越早, 损失越重 ( 张会云, 陈荣振, 冯国华, 刘 东涛, 王静, 王晓军, 楼辰军, 张凤 . 中国小麦纹枯病的研究现状与展望 .《麦类作物学报》 , 2007, 27(6) : P.1150-1153)。
     目前, 我国小麦纹枯病的防治依然以化学防治为主, 化学防治不仅增加农本, 而且 会造成环境污染, 化防的效果还直接受到施药的时期、 天气等诸多环境因素的影响。 培育并 推广小麦纹枯病抗病品种无疑是控制该病害最经济和最有效的途径。 但多年的种质材料鉴 定研究也发现, 在已经筛选的近千份材料中, 没有发现对该病害免疫的小麦品种 ( 系 ), 高 抗的材料也较少。对主要纹枯病抗源的抗性遗传和抗病 QTL( 数量性状位点 ) 分析结果表 明, 小麦纹枯病抗性是由主基因和微效基因共同作用的数量性状, 并且存在复杂的基因互 作 ( 汤颋, 任丽娟, 蔡士宾, 吴纪中, 陆维忠, 陈建民, 马鸿翔 . 小麦 ARz 抗纹枯病的 QTL 定位 研究 . 《麦类作物学报》 , 2004, 24(4) : P.11-16 ; 吴纪中, 颜伟, 蔡士宾, 任丽娟, 汤颋 . 小麦纹 枯病抗性的主基因 + 多基因遗传分析 . 《江苏农业学报》 , 2005, 21(1) : P.6-11 ; 张小村, 李斯 深, 赵新华, 范玉顶, 李瑞军 . 小麦纹枯病抗性的 QTL 分析和抗病基因的分子标记 . 《植物遗 传资源学报》 , 2005, 6(3) : P.276-279 ; 任丽娟, 张旭, 周淼平, 陆维忠, 马鸿翔 . 小麦抗纹枯 病和赤霉病 QTL 定位研究, 麦类作物学报, 2007, 27(3) : P.416-420)。 由于遗传方式的复杂, 给常规育种带来诸多困难, 如周期性强、 预见性差等, 直接影响了小麦纹枯病抗性改良的进 度。
     近年来, 转基因技术由于周期短、 可用的抗性基因多、 针对性强等优点, 已经成为 来自于小麦近缘种中间偃麦草的乙烯反应 提高作物抗病能力的新手段。采用这一方法, 因子 (ERF) 基因已经被导入小麦并获得纹枯病抗性显著提高的转基因小麦植株 (Chen L, Zhang Z-Y, Liang H-X, Du L-P, Xu H-J and Xin Z-Y.Overexpression of TiERF1 enhances resistance to sharp eyespot in transgenic wheat.Journal of Experimental Botany, 2008, 59 : P.4195-4204)。NPR1 基因 (nonexpressor of pathogenesis-related genes) 是植物普遍存在 的系统获得抗性 (systemic acquired resistance, SAR) 途径中的主要调控基因, 其功能 定位在 SAR 信号转导级联反应中的水杨酸 (salicylic acid, SA) 积累和随后的 SAR 基因 表达之间。研究表明, 拟南芥 AtNPR1 基因编码一个锚蛋白重复序列 ANK(Ankyrin Rpeat Domain) 和一个 BTB/POZ(Broad-Complex, Tramtrack, and Bric-a-brac/Pox virus and Zinc Finger) 结构域, 这两个结构域参与蛋白质之间的相互作用 (Cao H, Glazebrook J, Clarke JD, Volko S and Dong X.The Arabidopsis NPR1 gene that controls systemic acquired resistance encodes a novel protein containing ankyrin repeats, Cell, 1997, 88 : P.57-63)。在非诱导状态下, AtNPR1 蛋白通过分子间二硫键形成寡聚体, 位于细 胞质内。一旦发生 SAR 诱导, SA 的积累使细胞内还原势增加, NPR1 寡聚体中的二硫键被还 原形成单体, 并通过位于 NPR1 蛋白 C- 末端的核定位序列的作用, 使 NPR1 单体转移到细胞 核内, 进而激活 PR( 如 PR-1, PR-2 等 ) 基因, 最后导致 SAR, 使植物产生广谱抗性。除 SA 途 径外, NPR1 在茉莉酮酸 (Jasmonic acid, JA)、 乙烯 (Ethylene, ET) 等信号传导途径以及不 依赖 SA 但依赖 ET 和 JA 介导 ISR(induced systemic resistance) 中也起着重要作用, 是 调节和平衡不同抗病信号传导途径的关键因子。 研究发现, 过量表达 NPR1 能提高植物对多种病原菌的抗性, (Lin W-C, Lu C-F, Wu J-W, Cheng M-L, Lin Y-M, Yang N-S, Black L, Green SK, Wang J-F and Cheng C-P. Transgenic tomato plants expressing the Arabidopsis NPR1 gene display enhanced resistance to a spectrum of fungal and bacterial diseases.Transgenic Res, 2004, 13 : P.567-581) 将拟南芥 AtNPR1 基因导入番茄发现, 转基因番茄具有广谱抗性, 不仅抗 番茄花叶病毒 (tomato mosaic virus, ToMV), 而且对其他 8 种重要的热带细菌和真菌病 害也产生很高的抗性。转 NPR1 基因的水稻植株也可以提高对白叶枯病菌 (Xanthomonas oryzae pv.Oryzae) 的抗性 (Chern M, Fitzgerald HA, Canlas PE, Navarre DA and Ronald PC.Overexpression of a Rice NPR1 Homolog Leads to Constitutive Activation of Defense Response and Hypersensitivity to Light.MPMI, 2005, 18(6) : P.511-520)。
     在上述诸多文献中, 并没有涉及采用基因工程方法将拟南芥 NPR1 基因导入普通 小麦, 提高了小麦的纹枯病抗性。
     发明内容 本发明目的在于 : 针对目前小麦纹枯病抗性种质资源贫乏状况, 提供一种采用转 基因方法将抗小麦纹枯病病原菌的拟南芥 NPR1 基因导入感纹枯病的小麦品种, 从而提高 小麦的纹枯病抗性。
     本发明目的是这样实现的 : 一种提高小麦纹枯病抗性的方法, 是通过 PCR 方法由 拟南芥基因组 DNA 克隆出拟南芥 NPR1 基因, 其特征在于 :
     a) 利用一对引物 SEQ ID NO : 2 和 SEQ ID NO : 3 通过 PCR 方法由拟南芥基因组 DNA 克隆出拟南芥 NPR1 基因的克隆片段 SEQ ID NO : 1, 并构建拟南芥 NPR1 基因的表达载体 ;
     b) 通过基因枪法将拟南芥 NPR1 基因的表达载体导入受体小麦幼胚细胞 ; 对所述 的小麦幼胚细胞进行愈伤诱导、 植株再生, 获得转基因待选植株 ;
     c) 对转基因待选植株进行分子检测, 获得阳性转基因植株 ;
     d) 阳性转基因植株通过自交和 PCR 筛选, 获得 T2 代转基因纯合株系 ;
     e) 对 T2 代转基因纯合株系后代进行纹枯病抗性筛选, 获得纹枯病抗性提高的转基 因植株。
     在本发明中 : 构建拟南芥 NPR1 基因的表达载体是指 : 将上、 下游分别附加限制性 内切酶 SmaI 和 SacI 酶切识别 DNA 序列的克隆片段 SEQ ID NO : 1 采用 SmaI 和 SacI 酶切 后, 回收 2010bp 片段 ; 以 pAHC25 为基础质粒, 采用限制性内切酶 SmaI 和 SacI 对 pAHC25 质 粒 DNA 进行酶切, 回收 7.8Kb 左右 DNA 酶切大片段, 以 T4DNA 连接酶与回收的附加 SmaI 和 SacI 酶切位点的 SEQ ID NO : 1 的 2010bp 片段连接, 转化大肠杆菌, 对抗 100mg/L 氨苄青霉 素的阳性克隆进行扩增并提取质粒, 采用测序和酶切的方法验证连接的正确性, 获得的质 粒命名为 pAC-NPR1 即为拟南芥 NPR1 基因的表达载体。
     在本发明中 : 对转基因待选植株进行分子检测, 获得阳性转基因植株是指 : 对待 选植株通过一对引物 SEQ ID NO : 4 和 SEQ ID NO : 5 进行 PCR 筛选获得大小为 745bp 的扩增 片段, 通过另一对引物 SEQ ID NO : 6 和 SEQ ID NO : 7 进行 PCR 筛选获得大小为 721bp 的扩 增片段, 对所述的两个扩增片段通过电泳图检测, 同时含有拟南芥 NPR1 基因的这两条扩增 片段的植株被确定为阳性转基因植株。
     在本发明中 : 对 T2 代转基因纯合株系后代进行纹枯病抗性筛选是指 : 在小麦拔节 期对被测后代采用牙签接菌法接种纹枯病致病菌株 R46, 于小麦乳熟期调查纹枯病发病情 况, 计算株系平均病情指数, 根据病情指数判定小麦植株的纹枯病抗性。
     在本发明中 : 纹枯病发病情况的分级标准是 :
     0级: 无病症 ;
     1级: 叶鞘有典型的纹枯病病斑, 但不侵茎 ;
     2级: 病菌侵人茎秆, 病斑宽度环茎不超过茎秆周长的 1/2 ;
     3级: 病菌侵人茎秆, 茎秆上病斑环茎宽度在 1/2-3/4 茎秆周长之间 ;
     4级: 病菌侵人茎秆, 茎秆上病斑绕茎秆 3/4 以上, 或茎秆已软腐 ;
     5级: 枯孕穗或枯白穗
     病情指数按以下公式计算 :
     病情指数= [( ∑各级病株数 × 各级代表值 )/( 总株数 × 最高级代表值 )]×100
     纹枯病抗性判定标准 : 病情指数≤ 20 为 “高抗” ; 20 <病情指数≤ 50 为 “抗病” ; 50 <病情指数≤ 80 为 “感病” ; 80 <病情指数≤ 100 为 “高感” 。
     本发明的优点在于 : 与常规的种质培育方法相比, 选取的目的基因对纹枯病病原 菌的生长有抑制作用, 针对性强 ; 由转化植株到纯合的转基因株系时间短并且对受体亲本 的重要农艺性状影响小, 培育的周期短、 减少对重要农艺性状选育所需的人工经验的依赖 性。 附图说明
     图 1pAHC25 的示意图 ; 图 2 拟南芥 NPR1 基因的表达载体的示意图 ; 图 3 部分转基因待选植株 NPR1 基因的 PCR 检测的电泳图。具体实施方式
     实施例 1 :
     表达载体的构建 :
     (1) 以 GenBank U76707.1 中的拟南芥 NPR1 基因的 mRNA 序列为基础, 设计一对引 物 SEQ ID NO : 2 和 SEQ ID NO : 3:
     上游引物 SEQ ID NO : 2 为 5’ ACCCGGGATGGACACCACCATTGAT 3’ ;
     下游引物 SEQ ID NO : 3 为 5’ AGAGCTCTCACCGACGATGAGAGA 3’ 。
     通过 PCR 方法由拟南芥基因组 DNA 克隆出 NPR1 基因克隆片段 SEQ ID NO : 1, 该基 因全长 2002bp :
     atggacacca ccattgatgg attcgccgat tcttatgaaa tcagcagcac tagtttcgtc 60
     gctaccgata acaccgactc ctctattgtt tatctggccg ccgaacaagt actcaccgga 120
     cctgatgtat ctgctctgca attgctctcc aacagcttcg aatccgtctt tgactcgccg 180
     gatgatttct acagcgacgc taagcttgtt ctctccgacg gccgggaagt ttctttccac 240
     cggtgcgttt tgtcagcgag aagctctttc ttcaagagcg ctttagccgc cgctaagaag 300
     gagaaagact ccaacaacac cgccgccgtg aagctcgagc ttaaggagat tgccaaggat 360
     tacgaagtcg agaccgccgc cggccggcgg gaattaatta aaaaacaaaa tttatcatca ttatactcaa aagagattat agcttgttaa agaaacatgt tgcttttgaa catattgcaa ataggaatcc tgatactatc ccgcactcat aatgcaagca gagaacaaat tgacgctgct cacaagctgc tcgagcctga tcagaatcct ctcacccact gttttgttac cttcccgcgcgtttcgattc ctaaaggagt tggatttcat ctctctatca ctaaatgatc gaggcactta gcttgctaat tgtcaagtct agagataatt ctcgaatgta agaggatcae tgtgaagacc gaggggatat tctattggaa gatcgcaaaa ttctctcaaa tcctagagat cgatcttgaa aatggagatc ccgtctcact agaagagcat tcatcggact ttgctgtctg tgttcggcagggttgtgact ttctgaatgc gttggaggtt ggtatggatt tttaaacatg ttggacgttg atatgtggta aatgtagata gatagacgta cataaggcac accaatctag gcaacagatc acggtgcttc aaaggtgcaa caagccacta ggccgactat gttcctccct aatagagttg gccgaaatga ggtacgaaga caaagtagac ccttatcaca accttgtttt tgctcgacca6gttttggctt atgtttacag cagcagagtg gcagacgaga attgctgcca cgtggcttgc ctctatttgg ctttcatctt caagatccct ctcacccact tcatcggact ccttatcaca gttttgttac ttgctgtctg accttgtttt tagacaaagt tgttatagag gacacattgg aagcttgtat gaagctattg gatagatgta tggttagtct tgaaaagtca ttgccggaag aagagcttgg tttggaggta cctaaagtaa ttgactcgga tgatattgag ttagtcaagt atgatgcgtg tgctcttcat ttcgctgttg ttttaaaact tgatcttgcc gatgtcaacc atgttgctgc gatgcggaag gagccacaat gtgcatcaga agcaactttg gaaggtagaa tggcggttga atgtaataat atcccggagc gtgtagaaat actagagcaa gaagacaaac cttttgcagt ggcggccgat gaattgaaga cacttgctca acgtcttttt ccaacggaag agggaacatg tgagttcata gtgactagcc gaacatcacc gggtgtaaag atagcacctt taaaagcgct ttctaaaacc ggtatggatt aaaaacaaaa ctaaatgatc tttaaacatg tttatcatca gtggaactcg ggaaacgatt gattatgaac tgtgaggact tgactcaact420 480 540 600 660 720 780 840 900 960 1020 1080 1140 1200 1260 1320 1380 1440 1500 1560 1620 1680 1740 ggcttgcgga gaagacgaca ctgctgagaa acgactacaa aagaagcaaa ggtacatgga 1860
     aatacaagag acactaaaga aggcctttag tgaggacaat ttggaattag gaaattcgtc 1920
     cctgacagat tcgacttctt ccacatcgaa atcaaccggt ggaaagaggt ctaaccgtaa 1980
     actctctcat cgtcgtcggt ga 2002
     与拟南芥 NPR1 基因的 mRNA 序列相比, 含 2 个内含子, 分别位于 NPR1 基因核苷酸 序列的 562-671 位和 1612-1721 位, 克隆片段采用限制性内切酶 SmaI 和 SacI 酶切后, 回收 2010bp 片段。
     (2) 以 pAHC25( 图 1) 为基础质粒, 采用限制性内切酶 SmaI 和 SacI 对 pAHC25 质粒 DNA 进行酶切, 切除质粒含有的 GUS 基因, 0.8%琼脂糖电泳, 回收 7.8Kb 左右 DNA 酶切大片段。
     (3) 将步骤 (1) 和 (2) 回收的片段采用 T4DNA 连接酶 16℃连接过夜 (25ul 反应体 系含 1×T4DNA 连接酶缓冲液, 质粒大片段 0.3pmol, NPR1 基因片段 0.03pmol, 350uT4DNA 连 接酶, 连接产物转化大肠杆菌 DH5α 感受态细胞 ( 转化方法参照 《分子克隆实验指南》 第二 版, P55-56 页, 科学出版社, 1992), 转化后的大肠杆菌 DH5α 细胞悬液涂布含 100mg/L 氨苄 青霉素的平板, 对抗氨苄青霉素的阳性克隆进行扩增并提取质粒, 采用测序和酶切的方法 验证连接的正确性, 获得的质粒即为 pAC-NPR1 表达载体 ( 见图 2)。 实施例 2
     表达载体的转化 :
     以扬麦 12 为受体, 采用基因枪转基因方法将构建的表达载体导入受体小麦幼胚 细胞, 通过愈伤诱导、 植株再生获得转基因待选植株 ( 参照周淼平等, 小麦基因枪法转化技 术的改进, 江苏农业学报, 1999, 15(1) : 62-64)。
     待选植株进行分子检测 : 对待选植株进行 PCR 筛选, 拟南芥 NPR1 基因的 PCR 检测 分别采用两对引物检测, 一对引物 SEQ ID NO : 4 和 SEQ ID NO : 5 为 5’ GAAGGTAGAACCGCACTC 3’ 和 5’ GTCGAATCTGTCAGGGAC 3’ , 扩增条件 : 95℃ 3 分钟 ; 94℃ 1 分钟, 55℃ 45 秒, 72℃ 45 秒, 共 30 个循环 ; 最后 72℃延伸 5 分钟, 扩增片段大小为 745bp ; 另一对引物 SEQ ID NO : 6 和 SEQ ID NO : 7 为 5’ CGATTCGGTTGTGACTGTTT3’ 和 5’ CCCTCGGATTCCTATGGTTG 3’ , 扩增条 件: 95℃ 3 分钟 ; 94℃ 1 分钟, 55℃ 45 秒, 72℃ 45 秒, 共 30 个循环 ; 最后 72℃延伸 5 分钟。 扩增片段大小为 721bp, 检测电泳图见附图 3。获得整合并表达拟南芥 NPR1 基因的阳性转 基因植株。
     在图 3 中,
     1 道为 M : DNA 分子量标准, 条带从上到下分别为 2000bp、 1000bp、 750bp 和 500bp。
     在 2-9 道中 :
     CK+ : 质粒 pAC-NPR1 ;
     CK- : 未转基因扬麦 12 对照 ;
     94 和 95 : 均为转基因扬麦 12 的待选植株。
     其中 : 2-5 道为引物 SEQ ID NO : 4 和 SEQ ID NO : 5 扩增结果 ;
     6-9 道为引物 SEQ ID NO : 6 和 SEQ ID № : 7 扩增结果。
     通过自交和进一步 PCR 筛选 ( 重复本实施例的 PCR 筛选 ), 获得 T2 代转基因纯合 株系。
     实施例 3
     纹枯病抗性筛选 :
     纹枯病致病力菌株 R46, 江苏省农业科学院植物保护研究所提供。
     接种方法 : 采用牙签接菌法 ( 具体鉴定方法参照蔡士宾等, 小麦抗纹枯病种质创 新及 QTL 定位的初步研究, 《中国农业科学》 , 2006, 39(5) : P.928-934)。
     接种前的准备 : 将长 1.0cM 左右的牙签水浸 30 分钟后, 铺于烧杯底部, 加入适量 PDA 培养基, 经高温湿热灭菌后, 接种具有较强致病力的纹枯菌菌丝块, 25 ℃恒温培养 30 天, 待菌丝密集布满短牙签表面。
     筛选过程
     小麦拔节期将经上述方法处理的牙签嵌入到小麦植株贴近地面的基部第 1 ~ 2 叶 鞘之间, 每株系接种 15 个茎秆, 喷雾保湿 7 天。于小麦乳熟期调查纹枯病发病情况, 计算株 系平均病情指数, 根据病情指数判定小麦植株的纹枯病抗性。
     病情严重度判定标准如下 : 0级: 无病症 ; 1级: 叶鞘有典型的纹枯病病斑, 但不侵 茎; 2级: 病菌侵人茎秆, 病斑宽度环茎不超过茎秆周长的 1/2 ; 3级: 病菌侵人茎秆, 茎秆上 病斑环茎宽度在 1/2-3/4 茎秆周长之间 ; 4级: 病菌侵人茎秆, 茎秆上病斑绕茎秆 3/4 以上, 或茎秆已软腐 ; 5级: 枯孕穗或枯白穗。 病情指数按以下公式计算 :
     病情指数= [( ∑各级病株数 × 各级代表值 )/( 总株数 × 最高级代表值 )]×100
     纹枯病抗性判定标准 : 病情指数≤ 20 为 “高抗” ; 20 <病情指数≤ 50 为 “抗病” ; 50 <病情指数≤ 80 为 “感病” ; 80 <病情指数≤ 100 为 “高感” 。
     纹枯病抗性鉴定结果见表 1, , 在表 1 中, NPR-3、 NPR-5、 NPR-6、 NPR-7、 NPR-11、 NPR-16、 NPR-19、 NPR-26、 NPR-31、 NPR-35、 NPR-36、 NPR-37 为导入拟南芥 NPR1 基因的 12 个 T2 代纯合株系。受体对照亲本扬麦 12 的病情指数为 56.4, 属感病类型, 12 个导入拟南芥 NPR1 基因的 T2 代纯合株系的平均病情指数在 28.2-48.2 之间, 都属于抗病类型, 表明由于 拟南芥 NPR1 基因的导入, 使转基因植株的纹枯病抗性得到提高。
     表 1 扬麦 12 转基因 T2 代纯合株系的纹枯病抗性鉴定结果
     本发明涉及一种增加小麦的纹枯病抗性的方法, 属于小麦育种和分子生物学领域。 背景技术
     小 麦 纹 枯 病, 又 称 麦 尖 眼 点 病 (Wheat sharp eyespot), 是由禾谷丝核菌 (Rhizoctonia cerealis Vander hoeven) 和立枯丝核菌 (Rhizoctonia solani Kuhn) 引 起的一种重要的世界性土传真菌病害, 早在 1934 年国外即有报道。1973 年, 我国也发现此 病。20 世纪 80 年代以来, 随着施肥水平的不断提高, 耕作制度的改变和感病品种的大面积 推广, 纹枯病已成为我国长江流域麦区的主要病害, 并逐渐蔓延到黄淮麦区, 近年来以鲁、 豫、 陕、 苏、 皖等麦区发生较为严重 ( 姚金保, 姚国才, 杨学明, 钱存鸣 . 中国小麦抗纹枯病育 种研究进展 .《江苏农业学报》 , 2007, 23(3) : P.248-251)。小麦纹枯病一般病田病株率为 10-20%, 重病田块可达 60-80%以上, 由此造成的产量损失严重, 轻的减产 5-10%, 重的减 产 40%, 甚至颗粒无收, 并且小麦纹枯病发病越早, 损失越重 ( 张会云, 陈荣振, 冯国华, 刘 东涛, 王静, 王晓军, 楼辰军, 张凤 . 中国小麦纹枯病的研究现状与展望 .《麦类作物学报》 , 2007, 27(6) : P.1150-1153)。
     目前, 我国小麦纹枯病的防治依然以化学防治为主, 化学防治不仅增加农本, 而且 会造成环境污染, 化防的效果还直接受到施药的时期、 天气等诸多环境因素的影响。 培育并 推广小麦纹枯病抗病品种无疑是控制该病害最经济和最有效的途径。 但多年的种质材料鉴 定研究也发现, 在已经筛选的近千份材料中, 没有发现对该病害免疫的小麦品种 ( 系 ), 高 抗的材料也较少。对主要纹枯病抗源的抗性遗传和抗病 QTL( 数量性状位点 ) 分析结果表 明, 小麦纹枯病抗性是由主基因和微效基因共同作用的数量性状, 并且存在复杂的基因互 作 ( 汤颋, 任丽娟, 蔡士宾, 吴纪中, 陆维忠, 陈建民, 马鸿翔 . 小麦 ARz 抗纹枯病的 QTL 定位 研究 . 《麦类作物学报》 , 2004, 24(4) : P.11-16 ; 吴纪中, 颜伟, 蔡士宾, 任丽娟, 汤颋 . 小麦纹 枯病抗性的主基因 + 多基因遗传分析 . 《江苏农业学报》 , 2005, 21(1) : P.6-11 ; 张小村, 李斯 深, 赵新华, 范玉顶, 李瑞军 . 小麦纹枯病抗性的 QTL 分析和抗病基因的分子标记 . 《植物遗 传资源学报》 , 2005, 6(3) : P.276-279 ; 任丽娟, 张旭, 周淼平, 陆维忠, 马鸿翔 . 小麦抗纹枯 病和赤霉病 QTL 定位研究, 麦类作物学报, 2007, 27(3) : P.416-420)。 由于遗传方式的复杂, 给常规育种带来诸多困难, 如周期性强、 预见性差等, 直接影响了小麦纹枯病抗性改良的进 度。
     近年来, 转基因技术由于周期短、 可用的抗性基因多、 针对性强等优点, 已经成为 来自于小麦近缘种中间偃麦草的乙烯反应 提高作物抗病能力的新手段。采用这一方法, 因子 (ERF) 基因已经被导入小麦并获得纹枯病抗性显著提高的转基因小麦植株 (Chen L, Zhang Z-Y, Liang H-X, Du L-P, Xu H-J and Xin Z-Y.Overexpression of TiERF1 enhances resistance to sharp eyespot in transgenic wheat.Journal of Experimental Botany, 2008, 59 : P.4195-4204)。NPR1 基因 (nonexpressor of pathogenesis-related genes) 是植物普遍存在 的系统获得抗性 (systemic acquired resistance, SAR) 途径中的主要调控基因, 其功能 定位在 SAR 信号转导级联反应中的水杨酸 (salicylic acid, SA) 积累和随后的 SAR 基因 表达之间。研究表明, 拟南芥 AtNPR1 基因编码一个锚蛋白重复序列 ANK(Ankyrin Rpeat Domain) 和一个 BTB/POZ(Broad-Complex, Tramtrack, and Bric-a-brac/Pox virus and Zinc Finger) 结构域, 这两个结构域参与蛋白质之间的相互作用 (Cao H, Glazebrook J, Clarke JD, Volko S and Dong X.The Arabidopsis NPR1 gene that controls systemic acquired resistance encodes a novel protein containing ankyrin repeats, Cell, 1997, 88 : P.57-63)。在非诱导状态下, AtNPR1 蛋白通过分子间二硫键形成寡聚体, 位于细 胞质内。一旦发生 SAR 诱导, SA 的积累使细胞内还原势增加, NPR1 寡聚体中的二硫键被还 原形成单体, 并通过位于 NPR1 蛋白 C- 末端的核定位序列的作用, 使 NPR1 单体转移到细胞 核内, 进而激活 PR( 如 PR-1, PR-2 等 ) 基因, 最后导致 SAR, 使植物产生广谱抗性。除 SA 途 径外, NPR1 在茉莉酮酸 (Jasmonic acid, JA)、 乙烯 (Ethylene, ET) 等信号传导途径以及不 依赖 SA 但依赖 ET 和 JA 介导 ISR(induced systemic resistance) 中也起着重要作用, 是 调节和平衡不同抗病信号传导途径的关键因子。 研究发现, 过量表达 NPR1 能提高植物对多种病原菌的抗性, (Lin W-C, Lu C-F, Wu J-W, Cheng M-L, Lin Y-M, Yang N-S, Black L, Green SK, Wang J-F and Cheng C-P. Transgenic tomato plants expressing the Arabidopsis NPR1 gene display enhanced resistance to a spectrum of fungal and bacterial diseases.Transgenic Res, 2004, 13 : P.567-581) 将拟南芥 AtNPR1 基因导入番茄发现, 转基因番茄具有广谱抗性, 不仅抗 番茄花叶病毒 (tomato mosaic virus, ToMV), 而且对其他 8 种重要的热带细菌和真菌病 害也产生很高的抗性。转 NPR1 基因的水稻植株也可以提高对白叶枯病菌 (Xanthomonas oryzae pv.Oryzae) 的抗性 (Chern M, Fitzgerald HA, Canlas PE, Navarre DA and Ronald PC.Overexpression of a Rice NPR1 Homolog Leads to Constitutive Activation of Defense Response and Hypersensitivity to Light.MPMI, 2005, 18(6) : P.511-520)。
     在上述诸多文献中, 并没有涉及采用基因工程方法将拟南芥 NPR1 基因导入普通 小麦, 提高了小麦的纹枯病抗性。
    发明内容 本发明目的在于 : 针对目前小麦纹枯病抗性种质资源贫乏状况, 提供一种采用转 基因方法将抗小麦纹枯病病原菌的拟南芥 NPR1 基因导入感纹枯病的小麦品种, 从而提高 小麦的纹枯病抗性。
     本发明目的是这样实现的 : 一种提高小麦纹枯病抗性的方法, 是通过 PCR 方法由 拟南芥基因组 DNA 克隆出拟南芥 NPR1 基因, 其特征在于 :
     a) 利用一对引物 SEQ ID NO : 2 和 SEQ ID NO : 3 通过 PCR 方法由拟南芥基因组 DNA 克隆出拟南芥 NPR1 基因的克隆片段 SEQ ID NO : 1, 并构建拟南芥 NPR1 基因的表达载体 ;
     b) 通过基因枪法将拟南芥 NPR1 基因的表达载体导入受体小麦幼胚细胞 ; 对所述 的小麦幼胚细胞进行愈伤诱导、 植株再生, 获得转基因待选植株 ;
     c) 对转基因待选植株进行分子检测, 获得阳性转基因植株 ;
     d) 阳性转基因植株通过自交和 PCR 筛选, 获得 T2 代转基因纯合株系 ;
     e) 对 T2 代转基因纯合株系后代进行纹枯病抗性筛选, 获得纹枯病抗性提高的转基 因植株。
     在本发明中 : 构建拟南芥 NPR1 基因的表达载体是指 : 将上、 下游分别附加限制性 内切酶 SmaI 和 SacI 酶切识别 DNA 序列的克隆片段 SEQ ID NO : 1 采用 SmaI 和 SacI 酶切 后, 回收 2010bp 片段 ; 以 pAHC25 为基础质粒, 采用限制性内切酶 SmaI 和 SacI 对 pAHC25 质 粒 DNA 进行酶切, 回收 7.8Kb 左右 DNA 酶切大片段, 以 T4DNA 连接酶与回收的附加 SmaI 和 SacI 酶切位点的 SEQ ID NO : 1 的 2010bp 片段连接, 转化大肠杆菌, 对抗 100mg/L 氨苄青霉 素的阳性克隆进行扩增并提取质粒, 采用测序和酶切的方法验证连接的正确性, 获得的质 粒命名为 pAC-NPR1 即为拟南芥 NPR1 基因的表达载体。
     在本发明中 : 对转基因待选植株进行分子检测, 获得阳性转基因植株是指 : 对待 选植株通过一对引物 SEQ ID NO : 4 和 SEQ ID NO : 5 进行 PCR 筛选获得大小为 745bp 的扩增 片段, 通过另一对引物 SEQ ID NO : 6 和 SEQ ID NO : 7 进行 PCR 筛选获得大小为 721bp 的扩 增片段, 对所述的两个扩增片段通过电泳图检测, 同时含有拟南芥 NPR1 基因的这两条扩增 片段的植株被确定为阳性转基因植株。
     在本发明中 : 对 T2 代转基因纯合株系后代进行纹枯病抗性筛选是指 : 在小麦拔节 期对被测后代采用牙签接菌法接种纹枯病致病菌株 R46, 于小麦乳熟期调查纹枯病发病情 况, 计算株系平均病情指数, 根据病情指数判定小麦植株的纹枯病抗性。
     在本发明中 : 纹枯病发病情况的分级标准是 :
     0级: 无病症 ;
     1级: 叶鞘有典型的纹枯病病斑, 但不侵茎 ;
     2级: 病菌侵人茎秆, 病斑宽度环茎不超过茎秆周长的 1/2 ;
     3级: 病菌侵人茎秆, 茎秆上病斑环茎宽度在 1/2-3/4 茎秆周长之间 ;
     4级: 病菌侵人茎秆, 茎秆上病斑绕茎秆 3/4 以上, 或茎秆已软腐 ;
     5级: 枯孕穗或枯白穗
     病情指数按以下公式计算 :
     病情指数= [( ∑各级病株数 × 各级代表值 )/( 总株数 × 最高级代表值 )]×100
     纹枯病抗性判定标准 : 病情指数≤ 20 为 “高抗” ; 20 <病情指数≤ 50 为 “抗病” ; 50 <病情指数≤ 80 为 “感病” ; 80 <病情指数≤ 100 为 “高感” 。
     本发明的优点在于 : 与常规的种质培育方法相比, 选取的目的基因对纹枯病病原 菌的生长有抑制作用, 针对性强 ; 由转化植株到纯合的转基因株系时间短并且对受体亲本 的重要农艺性状影响小, 培育的周期短、 减少对重要农艺性状选育所需的人工经验的依赖 性。 附图说明
    
    
    图 1pAHC25 的示意图 ; 图 2 拟南芥 NPR1 基因的表达载体的示意图 ; 图 3 部分转基因待选植株 NPR1 基因的 PCR 检测的电泳图。具体实施方式
     实施例 1 :
     表达载体的构建 :
     (1) 以 GenBank U76707.1 中的拟南芥 NPR1 基因的 mRNA 序列为基础, 设计一对引 物 SEQ ID NO : 2 和 SEQ ID NO : 3:
     上游引物 SEQ ID NO : 2 为 5’ ACCCGGGATGGACACCACCATTGAT 3’ ;
     下游引物 SEQ ID NO : 3 为 5’ AGAGCTCTCACCGACGATGAGAGA 3’ 。
     通过 PCR 方法由拟南芥基因组 DNA 克隆出 NPR1 基因克隆片段 SEQ ID NO : 1, 该基 因全长 2002bp :
     atggacacca ccattgatgg attcgccgat tcttatgaaa tcagcagcac tagtttcgtc 60
     gctaccgata acaccgactc ctctattgtt tatctggccg ccgaacaagt actcaccgga 120
     cctgatgtat ctgctctgca attgctctcc aacagcttcg aatccgtctt tgactcgccg 180
     gatgatttct acagcgacgc taagcttgtt ctctccgacg gccgggaagt ttctttccac 240
     cggtgcgttt tgtcagcgag aagctctttc ttcaagagcg ctttagccgc cgctaagaag 300
     gagaaagact ccaacaacac cgccgccgtg aagctcgagc ttaaggagat tgccaaggat 360
    
    
    
    
    
    
    
    
    
    
    
    
    
    
    
    
    
    
    
    
    
    
    
    tacgaagtcg agaccgccgc cggccggcgg gaattaatta aaaaacaaaa tttatcatca ttatactcaa aagagattat agcttgttaa agaaacatgt tgcttttgaa catattgcaa ataggaatcc tgatactatc ccgcactcat aatgcaagca gagaacaaat tgacgctgct cacaagctgc tcgagcctga tcagaatcct ctcacccact gttttgttac cttcccgcgcgtttcgattc ctaaaggagt tggatttcat ctctctatca ctaaatgatc gaggcactta gcttgctaat tgtcaagtct agagataatt ctcgaatgta agaggatcae tgtgaagacc gaggggatat tctattggaa gatcgcaaaa ttctctcaaa tcctagagat cgatcttgaa aatggagatc ccgtctcact agaagagcat tcatcggact ttgctgtctg tgttcggcagggttgtgact ttctgaatgc gttggaggtt ggtatggatt tttaaacatg ttggacgttg atatgtggta aatgtagata gatagacgta cataaggcac accaatctag gcaacagatc acggtgcttc aaaggtgcaa caagccacta ggccgactat gttcctccct aatagagttg gccgaaatga ggtacgaaga caaagtagac ccttatcaca accttgtttt tgctcgacca6gttttggctt atgtttacag cagcagagtg gcagacgaga attgctgcca cgtggcttgc ctctatttgg ctttcatctt caagatccct ctcacccact tcatcggact ccttatcaca gttttgttac ttgctgtctg accttgtttt tagacaaagt tgttatagag gacacattgg aagcttgtat gaagctattg gatagatgta tggttagtct tgaaaagtca ttgccggaag aagagcttgg tttggaggta cctaaagtaa ttgactcgga tgatattgag ttagtcaagt atgatgcgtg tgctcttcat ttcgctgttg ttttaaaact tgatcttgcc gatgtcaacc atgttgctgc gatgcggaag gagccacaat gtgcatcaga agcaactttg gaaggtagaa tggcggttga atgtaataat atcccggagc gtgtagaaat actagagcaa gaagacaaac cttttgcagt ggcggccgat gaattgaaga cacttgctca acgtcttttt ccaacggaag agggaacatg tgagttcata gtgactagcc gaacatcacc gggtgtaaag atagcacctt taaaagcgct ttctaaaacc ggtatggatt aaaaacaaaa ctaaatgatc tttaaacatg tttatcatca gtggaactcg ggaaacgatt gattatgaac tgtgaggact tgactcaact420 480 540 600 660 720 780 840 900 960 1020 1080 1140 1200 1260 1320 1380 1440 1500 1560 1620 1680 1740 ggcttgcgga gaagacgaca ctgctgagaa acgactacaa aagaagcaaa ggtacatgga 1860
     aatacaagag acactaaaga aggcctttag tgaggacaat ttggaattag gaaattcgtc 1920
     cctgacagat tcgacttctt ccacatcgaa atcaaccggt ggaaagaggt ctaaccgtaa 1980
     actctctcat cgtcgtcggt ga 2002
     与拟南芥 NPR1 基因的 mRNA 序列相比, 含 2 个内含子, 分别位于 NPR1 基因核苷酸 序列的 562-671 位和 1612-1721 位, 克隆片段采用限制性内切酶 SmaI 和 SacI 酶切后, 回收 2010bp 片段。
     (2) 以 pAHC25( 图 1) 为基础质粒, 采用限制性内切酶 SmaI 和 SacI 对 pAHC25 质粒 DNA 进行酶切, 切除质粒含有的 GUS 基因, 0.8%琼脂糖电泳, 回收 7.8Kb 左右 DNA 酶切大片段。
     (3) 将步骤 (1) 和 (2) 回收的片段采用 T4DNA 连接酶 16℃连接过夜 (25ul 反应体 系含 1×T4DNA 连接酶缓冲液, 质粒大片段 0.3pmol, NPR1 基因片段 0.03pmol, 350uT4DNA 连 接酶, 连接产物转化大肠杆菌 DH5α 感受态细胞 ( 转化方法参照 《分子克隆实验指南》 第二 版, P55-56 页, 科学出版社, 1992), 转化后的大肠杆菌 DH5α 细胞悬液涂布含 100mg/L 氨苄 青霉素的平板, 对抗氨苄青霉素的阳性克隆进行扩增并提取质粒, 采用测序和酶切的方法 验证连接的正确性, 获得的质粒即为 pAC-NPR1 表达载体 ( 见图 2)。 实施例 2
     表达载体的转化 :
     以扬麦 12 为受体, 采用基因枪转基因方法将构建的表达载体导入受体小麦幼胚 细胞, 通过愈伤诱导、 植株再生获得转基因待选植株 ( 参照周淼平等, 小麦基因枪法转化技 术的改进, 江苏农业学报, 1999, 15(1) : 62-64)。
     待选植株进行分子检测 : 对待选植株进行 PCR 筛选, 拟南芥 NPR1 基因的 PCR 检测 分别采用两对引物检测, 一对引物 SEQ ID NO : 4 和 SEQ ID NO : 5 为 5’ GAAGGTAGAACCGCACTC 3’ 和 5’ GTCGAATCTGTCAGGGAC 3’ , 扩增条件 : 95℃ 3 分钟 ; 94℃ 1 分钟, 55℃ 45 秒, 72℃ 45 秒, 共 30 个循环 ; 最后 72℃延伸 5 分钟, 扩增片段大小为 745bp ; 另一对引物 SEQ ID NO : 6 和 SEQ ID NO : 7 为 5’ CGATTCGGTTGTGACTGTTT3’ 和 5’ CCCTCGGATTCCTATGGTTG 3’ , 扩增条 件: 95℃ 3 分钟 ; 94℃ 1 分钟, 55℃ 45 秒, 72℃ 45 秒, 共 30 个循环 ; 最后 72℃延伸 5 分钟。 扩增片段大小为 721bp, 检测电泳图见附图 3。获得整合并表达拟南芥 NPR1 基因的阳性转 基因植株。
     在图 3 中,
     1 道为 M : DNA 分子量标准, 条带从上到下分别为 2000bp、 1000bp、 750bp 和 500bp。
     在 2-9 道中 :
     CK+ : 质粒 pAC-NPR1 ;
     CK- : 未转基因扬麦 12 对照 ;
     94 和 95 : 均为转基因扬麦 12 的待选植株。
     其中 : 2-5 道为引物 SEQ ID NO : 4 和 SEQ ID NO : 5 扩增结果 ;
     6-9 道为引物 SEQ ID NO : 6 和 SEQ ID № : 7 扩增结果。
     通过自交和进一步 PCR 筛选 ( 重复本实施例的 PCR 筛选 ), 获得 T2 代转基因纯合 株系。
     实施例 3
     纹枯病抗性筛选 :
     纹枯病致病力菌株 R46, 江苏省农业科学院植物保护研究所提供。
     接种方法 : 采用牙签接菌法 ( 具体鉴定方法参照蔡士宾等, 小麦抗纹枯病种质创 新及 QTL 定位的初步研究, 《中国农业科学》 , 2006, 39(5) : P.928-934)。
     接种前的准备 : 将长 1.0cM 左右的牙签水浸 30 分钟后, 铺于烧杯底部, 加入适量 PDA 培养基, 经高温湿热灭菌后, 接种具有较强致病力的纹枯菌菌丝块, 25 ℃恒温培养 30 天, 待菌丝密集布满短牙签表面。
     筛选过程
     小麦拔节期将经上述方法处理的牙签嵌入到小麦植株贴近地面的基部第 1 ~ 2 叶 鞘之间, 每株系接种 15 个茎秆, 喷雾保湿 7 天。于小麦乳熟期调查纹枯病发病情况, 计算株 系平均病情指数, 根据病情指数判定小麦植株的纹枯病抗性。
     病情严重度判定标准如下 : 0级: 无病症 ; 1级: 叶鞘有典型的纹枯病病斑, 但不侵 茎; 2级: 病菌侵人茎秆, 病斑宽度环茎不超过茎秆周长的 1/2 ; 3级: 病菌侵人茎秆, 茎秆上 病斑环茎宽度在 1/2-3/4 茎秆周长之间 ; 4级: 病菌侵人茎秆, 茎秆上病斑绕茎秆 3/4 以上, 或茎秆已软腐 ; 5级: 枯孕穗或枯白穗。 病情指数按以下公式计算 :
     病情指数= [( ∑各级病株数 × 各级代表值 )/( 总株数 × 最高级代表值 )]×100
     纹枯病抗性判定标准 : 病情指数≤ 20 为 “高抗” ; 20 <病情指数≤ 50 为 “抗病” ; 50 <病情指数≤ 80 为 “感病” ; 80 <病情指数≤ 100 为 “高感” 。
     纹枯病抗性鉴定结果见表 1, , 在表 1 中, NPR-3、 NPR-5、 NPR-6、 NPR-7、 NPR-11、 NPR-16、 NPR-19、 NPR-26、 NPR-31、 NPR-35、 NPR-36、 NPR-37 为导入拟南芥 NPR1 基因的 12 个 T2 代纯合株系。受体对照亲本扬麦 12 的病情指数为 56.4, 属感病类型, 12 个导入拟南芥 NPR1 基因的 T2 代纯合株系的平均病情指数在 28.2-48.2 之间, 都属于抗病类型, 表明由于 拟南芥 NPR1 基因的导入, 使转基因植株的纹枯病抗性得到提高。
     表 1 扬麦 12 转基因 T2 代纯合株系的纹枯病抗性鉴定结果
    
    以上各实施例不是对本发明的具体限制。8101942452 A CN 101942457
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资源描述

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1、10申请公布号CN101942452A43申请公布日20110112CN101942452ACN101942452A21申请号201010241551922申请日20100730C12N15/29200601C12N15/82200601C12Q1/68200601A01H5/00200601A01G1/0020060171申请人江苏省农业科学院地址210014江苏省南京市玄武区钟灵街50号72发明人周淼平姚金保任丽娟杨学明马鸿翔74专利代理机构南京经纬专利商标代理有限公司32200代理人孙忠浩54发明名称提高小麦纹枯病抗性的方法57摘要本发明涉及一种提高小麦纹枯病抗性的方法,是利用一对特定引。

2、物通过PCR方法由拟南芥基因组DNA克隆出拟南芥NPR1基因的克隆片段SEQIDNO1,并构建拟南芥NPR1基因的表达载体;再通过基因枪法将拟南芥NPR1基因的表达载体导入受体小麦幼胚细胞;经过愈伤诱导、植株再生,获得转基因待选植株;然后对转基因待选植株进行分子检测,获得阳性转基因植株;将阳性转基因植株通过自交和PCR筛选,获得T2代转基因纯合株系;最后对T2代转基因纯合株系后代进行纹枯病抗性筛选,获得纹枯病抗性提高的转基因植株。其优点是与常规的种质培育方法相比,具有针对性强、培育周期短、对重要农艺性状影响小的特点。51INTCL19中华人民共和国国家知识产权局12发明专利申请权利要求书1页说。

3、明书6页序列表2页附图2页CN101942457A1/1页21一种提高小麦纹枯病抗性的方法,是通过PCR方法由拟南芥基因组DNA克隆出拟南芥NPR1基因,其特征在于A利用一对引物SEQIDNO2和SEQIDNO3通过PCR方法由拟南芥基因组DNA克隆出拟南芥NPR1基因的克隆片段SEQIDNO1,并构建拟南芥NPR1基因的表达载体;B通过基因枪法将拟南芥NPR1基因的表达载体导入受体小麦幼胚细胞;对所述的小麦幼胚细胞进行愈伤诱导、植株再生,获得转基因待选植株;C对转基因待选植株进行分子检测,获得阳性转基因植株;D阳性转基因植株通过自交和PCR筛选,获得T2代转基因纯合株系;E对T2代转基因纯合。

4、株系后代进行纹枯病抗性筛选,获得纹枯病抗性提高的转基因植株。2根据权利要求1所述的提高小麦纹枯病抗性的方法,其特征在于构建拟南芥NPR1基因的表达载体是指将上、下游分别附加限制性内切酶SMAI和SACI酶切识别DNA序列的克隆片段SEQIDNO1采用SMAI和SACI酶切后,回收2010BP片段;以PAHC25为基础质粒,采用限制性内切酶SMAI和SACI对PAHC25质粒DNA进行酶切,回收78KB左右DNA酶切大片段,以T4DNA连接酶与回收的附加SMAI和SACI酶切位点的SEQIDNO1的2010BP片段连接,转化大肠杆菌,对抗100MG/L氨苄青霉素的阳性克隆进行扩增并提取质粒,采用。

5、测序和酶切的方法验证连接的正确性,获得的质粒命名为PACNPR1即为拟南芥NPR1基因的表达载体。3根据权利要求1所述的提高小麦纹枯病抗性的方法,其特征在于对转基因待选植株进行分子检测,获得阳性转基因植株是指对待选植株通过一对引物SEQIDNO4和SEQIDNO5进行PCR筛选获得大小为745BP的扩增片段,通过另一对引物SEQIDNO6和SEQIDNO7进行PCR筛选获得大小为721BP的扩增片段,对所述的两个扩增片段通过电泳图检测,同时含有拟南芥NPR1基因的这两条扩增片段的植株被确定为阳性转基因植株。4根据权利要求1所述的提高小麦纹枯病抗性的方法,其特征在于对T2代转基因纯合株系后代进行。

6、纹枯病抗性筛选是指在小麦拔节期对被测后代采用牙签接菌法接种纹枯病致病菌株R46,于小麦乳熟期调查纹枯病发病情况,计算株系平均病情指数,根据病情指数判定小麦植株的纹枯病抗性。权利要求书CN101942452ACN101942457A1/6页3提高小麦纹枯病抗性的方法技术领域0001本发明涉及一种增加小麦的纹枯病抗性的方法,属于小麦育种和分子生物学领域。背景技术0002小麦纹枯病,又称麦尖眼点病WHEATSHARPEYESPOT,是由禾谷丝核菌RHIZOCTONIACEREALISVANDERHOEVEN和立枯丝核菌RHIZOCTONIASOLANIKUHN引起的一种重要的世界性土传真菌病害,早在。

7、1934年国外即有报道。1973年,我国也发现此病。20世纪80年代以来,随着施肥水平的不断提高,耕作制度的改变和感病品种的大面积推广,纹枯病已成为我国长江流域麦区的主要病害,并逐渐蔓延到黄淮麦区,近年来以鲁、豫、陕、苏、皖等麦区发生较为严重姚金保,姚国才,杨学明,钱存鸣中国小麦抗纹枯病育种研究进展江苏农业学报,2007,233P248251。小麦纹枯病一般病田病株率为1020,重病田块可达6080以上,由此造成的产量损失严重,轻的减产510,重的减产40,甚至颗粒无收,并且小麦纹枯病发病越早,损失越重张会云,陈荣振,冯国华,刘东涛,王静,王晓军,楼辰军,张凤中国小麦纹枯病的研究现状与展望麦类。

8、作物学报,2007,276P11501153。0003目前,我国小麦纹枯病的防治依然以化学防治为主,化学防治不仅增加农本,而且会造成环境污染,化防的效果还直接受到施药的时期、天气等诸多环境因素的影响。培育并推广小麦纹枯病抗病品种无疑是控制该病害最经济和最有效的途径。但多年的种质材料鉴定研究也发现,在已经筛选的近千份材料中,没有发现对该病害免疫的小麦品种系,高抗的材料也较少。对主要纹枯病抗源的抗性遗传和抗病QTL数量性状位点分析结果表明,小麦纹枯病抗性是由主基因和微效基因共同作用的数量性状,并且存在复杂的基因互作汤颋,任丽娟,蔡士宾,吴纪中,陆维忠,陈建民,马鸿翔小麦ARZ抗纹枯病的QTL定位研。

9、究麦类作物学报,2004,244P1116;吴纪中,颜伟,蔡士宾,任丽娟,汤颋小麦纹枯病抗性的主基因多基因遗传分析江苏农业学报,2005,211P611;张小村,李斯深,赵新华,范玉顶,李瑞军小麦纹枯病抗性的QTL分析和抗病基因的分子标记植物遗传资源学报,2005,63P276279;任丽娟,张旭,周淼平,陆维忠,马鸿翔小麦抗纹枯病和赤霉病QTL定位研究,麦类作物学报,2007,273P416420。由于遗传方式的复杂,给常规育种带来诸多困难,如周期性强、预见性差等,直接影响了小麦纹枯病抗性改良的进度。0004近年来,转基因技术由于周期短、可用的抗性基因多、针对性强等优点,已经成为提高作物抗病。

10、能力的新手段。采用这一方法,来自于小麦近缘种中间偃麦草的乙烯反应因子ERF基因已经被导入小麦并获得纹枯病抗性显著提高的转基因小麦植株CHENL,ZHANGZY,LIANGHX,DULP,XUHJANDXINZYOVEREXPRESSIONOFTIERF1ENHANCESRESISTANCETOSHARPEYESPOTINTRANSGENICWHEATJOURNALOFEXPERIMENTALBOTANY,2008,59P41954204。说明书CN101942452ACN101942457A2/6页40005NPR1基因NONEXPRESSOROFPATHOGENESISRELATEDGENE。

11、S是植物普遍存在的系统获得抗性SYSTEMICACQUIREDRESISTANCE,SAR途径中的主要调控基因,其功能定位在SAR信号转导级联反应中的水杨酸SALICYLICACID,SA积累和随后的SAR基因表达之间。研究表明,拟南芥ATNPR1基因编码一个锚蛋白重复序列ANKANKYRINRPEATDOMAIN和一个BTB/POZBROADCOMPLEX,TRAMTRACK,ANDBRICABRAC/POXVIRUSANDZINCFINGER结构域,这两个结构域参与蛋白质之间的相互作用CAOH,GLAZEBROOKJ,CLARKEJD,VOLKOSANDDONGXTHEARABIDOPSI。

12、SNPR1GENETHATCONTROLSSYSTEMICACQUIREDRESISTANCEENCODESANOVELPROTEINCONTAININGANKYRINREPEATS,CELL,1997,88P5763。在非诱导状态下,ATNPR1蛋白通过分子间二硫键形成寡聚体,位于细胞质内。一旦发生SAR诱导,SA的积累使细胞内还原势增加,NPR1寡聚体中的二硫键被还原形成单体,并通过位于NPR1蛋白C末端的核定位序列的作用,使NPR1单体转移到细胞核内,进而激活PR如PR1,PR2等基因,最后导致SAR,使植物产生广谱抗性。除SA途径外,NPR1在茉莉酮酸JASMONICACID,JA、乙。

13、烯ETHYLENE,ET等信号传导途径以及不依赖SA但依赖ET和JA介导ISRINDUCEDSYSTEMICRESISTANCE中也起着重要作用,是调节和平衡不同抗病信号传导途径的关键因子。0006研究发现,过量表达NPR1能提高植物对多种病原菌的抗性,LINWC,LUCF,WUJW,CHENGML,LINYM,YANGNS,BLACKL,GREENSK,WANGJFANDCHENGCPTRANSGENICTOMATOPLANTSEXPRESSINGTHEARABIDOPSISNPR1GENEDISPLAYENHANCEDRESISTANCETOASPECTRUMOFFUNGALANDBACT。

14、ERIALDISEASESTRANSGENICRES,2004,13P567581将拟南芥ATNPR1基因导入番茄发现,转基因番茄具有广谱抗性,不仅抗番茄花叶病毒TOMATOMOSAICVIRUS,TOMV,而且对其他8种重要的热带细菌和真菌病害也产生很高的抗性。转NPR1基因的水稻植株也可以提高对白叶枯病菌XANTHOMONASORYZAEPVORYZAE的抗性CHERNM,FITZGERALDHA,CANLASPE,NAVARREDAANDRONALDPCOVEREXPRESSIONOFARICENPR1HOMOLOGLEADSTOCONSTITUTIVEACTIVATIONOFDEFEN。

15、SERESPONSEANDHYPERSENSITIVITYTOLIGHTMPMI,2005,186P511520。0007在上述诸多文献中,并没有涉及采用基因工程方法将拟南芥NPR1基因导入普通小麦,提高了小麦的纹枯病抗性。发明内容0008本发明目的在于针对目前小麦纹枯病抗性种质资源贫乏状况,提供一种采用转基因方法将抗小麦纹枯病病原菌的拟南芥NPR1基因导入感纹枯病的小麦品种,从而提高小麦的纹枯病抗性。0009本发明目的是这样实现的一种提高小麦纹枯病抗性的方法,是通过PCR方法由拟南芥基因组DNA克隆出拟南芥NPR1基因,其特征在于0010A利用一对引物SEQIDNO2和SEQIDNO3通过P。

16、CR方法由拟南芥基因组DNA克隆出拟南芥NPR1基因的克隆片段SEQIDNO1,并构建拟南芥NPR1基因的表达载体;0011B通过基因枪法将拟南芥NPR1基因的表达载体导入受体小麦幼胚细胞;对所述的小麦幼胚细胞进行愈伤诱导、植株再生,获得转基因待选植株;0012C对转基因待选植株进行分子检测,获得阳性转基因植株;说明书CN101942452ACN101942457A3/6页50013D阳性转基因植株通过自交和PCR筛选,获得T2代转基因纯合株系;0014E对T2代转基因纯合株系后代进行纹枯病抗性筛选,获得纹枯病抗性提高的转基因植株。0015在本发明中构建拟南芥NPR1基因的表达载体是指将上、下。

17、游分别附加限制性内切酶SMAI和SACI酶切识别DNA序列的克隆片段SEQIDNO1采用SMAI和SACI酶切后,回收2010BP片段;以PAHC25为基础质粒,采用限制性内切酶SMAI和SACI对PAHC25质粒DNA进行酶切,回收78KB左右DNA酶切大片段,以T4DNA连接酶与回收的附加SMAI和SACI酶切位点的SEQIDNO1的2010BP片段连接,转化大肠杆菌,对抗100MG/L氨苄青霉素的阳性克隆进行扩增并提取质粒,采用测序和酶切的方法验证连接的正确性,获得的质粒命名为PACNPR1即为拟南芥NPR1基因的表达载体。0016在本发明中对转基因待选植株进行分子检测,获得阳性转基因植。

18、株是指对待选植株通过一对引物SEQIDNO4和SEQIDNO5进行PCR筛选获得大小为745BP的扩增片段,通过另一对引物SEQIDNO6和SEQIDNO7进行PCR筛选获得大小为721BP的扩增片段,对所述的两个扩增片段通过电泳图检测,同时含有拟南芥NPR1基因的这两条扩增片段的植株被确定为阳性转基因植株。0017在本发明中对T2代转基因纯合株系后代进行纹枯病抗性筛选是指在小麦拔节期对被测后代采用牙签接菌法接种纹枯病致病菌株R46,于小麦乳熟期调查纹枯病发病情况,计算株系平均病情指数,根据病情指数判定小麦植株的纹枯病抗性。0018在本发明中纹枯病发病情况的分级标准是00190级无病症;002。

19、01级叶鞘有典型的纹枯病病斑,但不侵茎;00212级病菌侵人茎秆,病斑宽度环茎不超过茎秆周长的1/2;00223级病菌侵人茎秆,茎秆上病斑环茎宽度在1/23/4茎秆周长之间;00234级病菌侵人茎秆,茎秆上病斑绕茎秆3/4以上,或茎秆已软腐;00245级枯孕穗或枯白穗0025病情指数按以下公式计算0026病情指数各级病株数各级代表值/总株数最高级代表值1000027纹枯病抗性判定标准病情指数20为“高抗”;20病情指数50为“抗病”;50病情指数80为“感病”;80病情指数100为“高感”。0028本发明的优点在于与常规的种质培育方法相比,选取的目的基因对纹枯病病原菌的生长有抑制作用,针对性强。

20、;由转化植株到纯合的转基因株系时间短并且对受体亲本的重要农艺性状影响小,培育的周期短、减少对重要农艺性状选育所需的人工经验的依赖性。附图说明0029图1PAHC25的示意图;0030图2拟南芥NPR1基因的表达载体的示意图;0031图3部分转基因待选植株NPR1基因的PCR检测的电泳图。说明书CN101942452ACN101942457A4/6页6具体实施方式0032实施例10033表达载体的构建00341以GENBANKU767071中的拟南芥NPR1基因的MRNA序列为基础,设计一对引物SEQIDNO2和SEQIDNO30035上游引物SEQIDNO2为5ACCCGGGATGGACACC。

21、ACCATTGAT3;0036下游引物SEQIDNO3为5AGAGCTCTCACCGACGATGAGAGA3。0037通过PCR方法由拟南芥基因组DNA克隆出NPR1基因克隆片段SEQIDNO1,该基因全长2002BP0038ATGGACACCACCATTGATGGATTCGCCGATTCTTATGAAATCAGCAGCACTAGTTTCGTC600039GCTACCGATAACACCGACTCCTCTATTGTTTATCTGGCCGCCGAACAAGTACTCACCGGA1200040CCTGATGTATCTGCTCTGCAATTGCTCTCCAACAGCTTCGAATCCGTCTTTGAC。

22、TCGCCG1800041GATGATTTCTACAGCGACGCTAAGCTTGTTCTCTCCGACGGCCGGGAAGTTTCTTTCCAC2400042CGGTGCGTTTTGTCAGCGAGAAGCTCTTTCTTCAAGAGCGCTTTAGCCGCCGCTAAGAAG3000043GAGAAAGACTCCAACAACACCGCCGCCGTGAAGCTCGAGCTTAAGGAGATTGCCAAGGAT3600044TACGAAGTCGGTTTCGATTCGGTTGTGACTGTTTTGGCTTATGTTTACAGCAGCAGAGTG4200045AGACCGCCGCCTAAAGGAG。

23、TTTCTGAATGCGCAGACGAGAATTGCTGCCACGTGGCTTGC4800046CGGCCGGCGGTGGATTTCATGTTGGAGGTTCTCTATTTGGCTTTCATCTTCAAGATCCCT5400047GAATTAATTACTCTCTATCAGGTATGGATTCTCACCCACTTCATCGGACTCCTTATCACA6000048AAAAACAAAACTAAATGATCTTTAAACATGGTTTTGTTACTTGCTGTCTGACCTTGTTTT6600049TTTATCATCAGAGGCACTTATTGGACGTTGTAGACAAAGTTGTTATAGAGG。

24、ACACATTGG7200050TTATACTCAAGCTTGCTAATATATGTGGTAAAGCTTGTATGAAGCTATTGGATAGATGTA7800051AAGAGATTATTGTCAAGTCTAATGTAGATATGGTTAGTCTTGAAAAGTCATTGCCGGAAG8400052AGCTTGTTAAAGAGATAATTGATAGACGTAAAGAGCTTGGTTTGGAGGTACCTAAAGTAA9000053AGAAACATGTCTCGAATGTACATAAGGCACTTGACTCGGATGATATTGAGTTAGTCAAGT9600054TGCTTTTGAAAGAGGA。

25、TCAEACCAATCTAGATGATGCGTGTGCTCTTCATTTCGCTGTTG10200055CATATTGCAATGTGAAGACCGCAACAGATCTTTTAAAACTTGATCTTGCCGATGTCAACC10800056ATAGGAATCCGAGGGGATATACGGTGCTTCATGTTGCTGCGATGCGGAAGGAGCCACAAT11400057TGATACTATCTCTATTGGAAAAAGGTGCAAGTGCATCAGAAGCAACTTTGGAAGGTAGAA12000058CCGCACTCATGATCGCAAAACAAGCCACTATGGCGGTTGAATGT。

26、AATAATATCCCGGAGC12600059AATGCAAGCATTCTCTCAAAGGCCGACTATGTGTAGAAATACTAGAGCAAGAAGACAAAC13200060GAGAACAAATTCCTAGAGATGTTCCTCCCTCTTTTGCAGTGGCGGCCGATGAATTGAAGA13800061TGACGCTGCTCGATCTTGAAAATAGAGTTGCACTTGCTCAACGTCTTTTTCCAACGGAAG14400062CACAAGCTGCAATGGAGATCGCCGAAATGAAGGGAACATGTGAGTTCATAGTGACTAGCC15000063TCGA。

27、GCCTGACCGTCTCACTGGTACGAAGAGAACATCACCGGGTGTAAAGATAGCACCTT15600064TCAGAATCCTAGAAGAGCATCAAAGTAGACTAAAAGCGCTTTCTAAAACCGGTATGGATT16200065CTCACCCACTTCATCGGACTCCTTATCACAAAAAACAAAACTAAATGATCTTTAAACATG16800066GTTTTGTTACTTGCTGTCTGACCTTGTTTTTTTATCATCAGTGGAACTCGGGAAACGATT17400067CTTCCCGCGCTGTTCGGCAGTGCTCGACCAGA。

28、TTATGAACTGTGAGGACTTGACTCAACT1800说明书CN101942452ACN101942457A5/6页70068GGCTTGCGGAGAAGACGACACTGCTGAGAAACGACTACAAAAGAAGCAAAGGTACATGGA18600069AATACAAGAGACACTAAAGAAGGCCTTTAGTGAGGACAATTTGGAATTAGGAAATTCGTC19200070CCTGACAGATTCGACTTCTTCCACATCGAAATCAACCGGTGGAAAGAGGTCTAACCGTAA19800071ACTCTCTCATCGTCGTCGGTGA200200。

29、72与拟南芥NPR1基因的MRNA序列相比,含2个内含子,分别位于NPR1基因核苷酸序列的562671位和16121721位,克隆片段采用限制性内切酶SMAI和SACI酶切后,回收2010BP片段。00732以PAHC25图1为基础质粒,采用限制性内切酶SMAI和SACI对PAHC25质粒DNA进行酶切,切除质粒含有的GUS基因,08琼脂糖电泳,回收78KB左右DNA酶切大片段。00743将步骤1和2回收的片段采用T4DNA连接酶16连接过夜25UL反应体系含1T4DNA连接酶缓冲液,质粒大片段03PMOL,NPR1基因片段003PMOL,350UT4DNA连接酶,连接产物转化大肠杆菌DH5感。

30、受态细胞转化方法参照分子克隆实验指南第二版,P5556页,科学出版社,1992,转化后的大肠杆菌DH5细胞悬液涂布含100MG/L氨苄青霉素的平板,对抗氨苄青霉素的阳性克隆进行扩增并提取质粒,采用测序和酶切的方法验证连接的正确性,获得的质粒即为PACNPR1表达载体见图2。0075实施例20076表达载体的转化0077以扬麦12为受体,采用基因枪转基因方法将构建的表达载体导入受体小麦幼胚细胞,通过愈伤诱导、植株再生获得转基因待选植株参照周淼平等,小麦基因枪法转化技术的改进,江苏农业学报,1999,1516264。0078待选植株进行分子检测对待选植株进行PCR筛选,拟南芥NPR1基因的PCR检。

31、测分别采用两对引物检测,一对引物SEQIDNO4和SEQIDNO5为5GAAGGTAGAACCGCACTC3和5GTCGAATCTGTCAGGGAC3,扩增条件953分钟;941分钟,5545秒,7245秒,共30个循环;最后72延伸5分钟,扩增片段大小为745BP;另一对引物SEQIDNO6和SEQIDNO7为5CGATTCGGTTGTGACTGTTT3和5CCCTCGGATTCCTATGGTTG3,扩增条件953分钟;941分钟,5545秒,7245秒,共30个循环;最后72延伸5分钟。扩增片段大小为721BP,检测电泳图见附图3。获得整合并表达拟南芥NPR1基因的阳性转基因植株。0079。

32、在图3中,00801道为MDNA分子量标准,条带从上到下分别为2000BP、1000BP、750BP和500BP。0081在29道中0082CK质粒PACNPR1;0083CK未转基因扬麦12对照;008494和95均为转基因扬麦12的待选植株。0085其中25道为引物SEQIDNO4和SEQIDNO5扩增结果;008669道为引物SEQIDNO6和SEQID7扩增结果。0087通过自交和进一步PCR筛选重复本实施例的PCR筛选,获得T2代转基因纯合株系。0088实施例3说明书CN101942452ACN101942457A6/6页80089纹枯病抗性筛选0090纹枯病致病力菌株R46,江苏省。

33、农业科学院植物保护研究所提供。0091接种方法采用牙签接菌法具体鉴定方法参照蔡士宾等,小麦抗纹枯病种质创新及QTL定位的初步研究,中国农业科学,2006,395P928934。0092接种前的准备将长10CM左右的牙签水浸30分钟后,铺于烧杯底部,加入适量PDA培养基,经高温湿热灭菌后,接种具有较强致病力的纹枯菌菌丝块,25恒温培养30天,待菌丝密集布满短牙签表面。0093筛选过程0094小麦拔节期将经上述方法处理的牙签嵌入到小麦植株贴近地面的基部第12叶鞘之间,每株系接种15个茎秆,喷雾保湿7天。于小麦乳熟期调查纹枯病发病情况,计算株系平均病情指数,根据病情指数判定小麦植株的纹枯病抗性。00。

34、95病情严重度判定标准如下0级无病症;1级叶鞘有典型的纹枯病病斑,但不侵茎;2级病菌侵人茎秆,病斑宽度环茎不超过茎秆周长的1/2;3级病菌侵人茎秆,茎秆上病斑环茎宽度在1/23/4茎秆周长之间;4级病菌侵人茎秆,茎秆上病斑绕茎秆3/4以上,或茎秆已软腐;5级枯孕穗或枯白穗。0096病情指数按以下公式计算0097病情指数各级病株数各级代表值/总株数最高级代表值1000098纹枯病抗性判定标准病情指数20为“高抗”;20病情指数50为“抗病”;50病情指数80为“感病”;80病情指数100为“高感”。0099纹枯病抗性鉴定结果见表1,在表1中,NPR3、NPR5、NPR6、NPR7、NPR11、N。

35、PR16、NPR19、NPR26、NPR31、NPR35、NPR36、NPR37为导入拟南芥NPR1基因的12个T2代纯合株系。受体对照亲本扬麦12的病情指数为564,属感病类型,12个导入拟南芥NPR1基因的T2代纯合株系的平均病情指数在282482之间,都属于抗病类型,表明由于拟南芥NPR1基因的导入,使转基因植株的纹枯病抗性得到提高。0100表1扬麦12转基因T2代纯合株系的纹枯病抗性鉴定结果01010102以上各实施例不是对本发明的具体限制。说明书CN101942452ACN101942457A1/2页900010002序列表CN101942452ACN101942457A2/2页10序列表CN101942452ACN101942457A1/2页11图1图2说明书附图CN101942452ACN101942457A2/2页12图3说明书附图CN101942452A。

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