感染熊蜂的微孢子虫的分子检测技术.pdf

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摘要
申请专利号:

CN200910158234.8

申请日:

20090723

公开号:

CN101603093B

公开日:

20120509

当前法律状态:

有效性:

失效

法律详情:

IPC分类号:

C12Q1/68,C12R1/90

主分类号:

C12Q1/68,C12R1/90

申请人:

中国农业科学院蜜蜂研究所

发明人:

李继莲,彭文君,吴杰,陈文锋,安建东,黄家兴,罗术东

地址:

100093 北京市海淀区香山北沟1号

优先权:

CN200910158234A

专利代理机构:

北京路浩知识产权代理有限公司

代理人:

王加岭

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内容摘要

感染熊蜂的微孢子虫的分子检测技术。属于动物检验检疫技术领域,具体地说涉及一种准确、快速的检测进出口熊蜂上的微孢子虫的分子检验技术领域。本发明的特征是:采用Chelex-100法提取DNA,用特异性引物进行一次PCR,扩增出540bp的微孢子虫SSUrRNA基因片段,然后用限制性内切酶Afa?I对PCR产物进行酶切,利用2.0%琼脂糖凝胶电泳检测酶切产物,直接根据酶切产物片断的长度,即可检测出寄生在熊蜂身上的微孢子虫的种类,本发明可应用于国内外进出口熊蜂的病原物微孢子虫的检验检疫。

权利要求书

1.一种检验检疫熊蜂的病原微孢子虫的分子检测方法,其特征在于:1)采用Chelex-100法提取DNA;2)用特异引物SSUrRNA-fl:5’-CACCAGGTTGATTCTGCCT-3’和SSUrRNA-r1b:5’-TGTTCGTCCAGTCAGGGTCGTCA-3’PCR扩增微孢子虫540bp的SSUrRNA基因片段;3)用限制性内切酶Afa I酶切PCR产物,利用2.0%琼脂糖凝胶电泳检测酶切产物,根据酶切产物片断的长度,判断微孢子虫种类,所述微孢子虫为中蜂微孢子虫(Nosema ceranae)、熊蜂微孢子虫(Nosema bombi)和/或鳞翅目卷蛾科微孢子虫(Nosema thomsoni)。

说明书

技术领域

本发明涉及一种动物检验检疫技术领域,特别是涉及一种准确、快速的检验进出口熊蜂 上的微孢子虫分子检验技术领域。

背景技术

微孢子虫是普遍分布于自然界,种群数量庞大的专性细胞内寄生的原虫类寄生物,有极 为广泛的寄主,包括脊椎动物与无脊椎动物,是经济昆虫、鱼类、兔类、产毛动物、啮齿类 及灵长类的致病病原。熊蜂是一类重要的经济授粉昆虫,也受到微孢子虫的危害,因此,微 孢子虫成为熊蜂进出口检验检疫的重要病原物之一。

熊蜂微孢子虫检验通常采用镜检法和常规的分子检验法。镜检法是将被检样品研磨后, 滴加蒸馏水,取1-2滴在载玻片上,于光学显微镜下观察,极易漏检。常规分子检验法是采 用酚氯仿提取DNA,设计特异性引物进行PCR扩增反应,克隆测序。这种方法比镜检法更 灵敏准确,不易漏检,但是酚氯仿提取DNA需要5个小时,操作步骤多,易污染,所用有 机试剂大部分对人有害,而且克隆测序耗时、费用较高。

Klee等(Klee J.,Besana A.M.,Genersch E.,et al.Widespread dispersal of the microsporidian Nosema ceranae,an emergent pathogen of western honey bee,Apis mellifera.J.Invertebr.Pathol.,2007,96(1):1~10.)采用聚合酶链式反应-限制性片段 长度多态(PCR-RFLP)分析技术来鉴定微孢子虫种类,用Nde I和Msp I、Pac I三种限 制性内切酶对意大利蜜蜂(N.apis)、中华蜜蜂(N.ceranae)和熊蜂微孢子虫(N.bombi)的 部分SSUrRNA基因片段(引物:SSU-res-f1:5’-GCCTGACGTAGACGCTATTC-3’,SSU-res-r1: 5’-GTATTACCGCGGCTGCTGG-3’)进行酶切,用Nde I、Msp I酶切N.apis,Msp I酶切 N.bombi,Pac I、Msp I酶切N.ceranae,利用琼脂糖凝胶电泳分离酶切产物,根据产物片断 的长度来鉴定种类。但是此方法需用三种酶,费用高,而且双酶切时其中一种酶的酶切效率 会降低,造成部分酶切不完全。其次,用此方法不能鉴定出感染熊蜂的另外一种微孢子虫 N.thomsoni。

发明内容

本发明所要解决的技术问题是提供一种准确、灵敏、快速的检验检疫进出口熊蜂上的微 孢子虫的方法,而且费用较适中,使用的大部分检测试剂对人无害。

为了解决上述技术问题,本发明在比较了感染熊蜂的三种微孢子虫N.ceranae、N.bombi、 N.thomsoni的SSUrRNA基因序列后,建立了一种基于单一限制性内切酶分析三种微孢子虫 SSUrRNA基因片段的快速检验鉴定感染熊蜂的微孢子虫种类的方法。

首先采用Chelex-100法提取DNA,用特异性引物(SSUrRNA-f1: 5’-CACCAGGTTGATTCTGCCT-3;SSUrRNA-r1b:5’-TGTTCGTCCAGTCAGGGTCGTCA-3’) 扩增出540bp的微孢子虫SSUrRNA基因片段,然后用限制性内切酶Afa I对PCR产物进行 酶切,利用2.0%琼脂糖凝胶电泳检测酶切产物,直接根据酶切产物片断的长度和条带数来检 验鉴定种类。

按照本发明,AfaI对PCR产物酶切的结果如下:

N.ceranae在500bp、50bp附近产生两条带。

N.bombi在350bp、150bp、50bp附近产生三条带。

N.thomsoni在350bp、100bp、50bp附近产生三条带。

N.ceranae和N.bombi在500bp、350bp、150bp、50bp附近产生四条带。

N.ceranae和N.thomsoni在500bp、350bp、100bp、50bp附近产生四条带。

N.bombi和N.thomsoni在350bp、150bp、100bp、50bp附近产生四条带。

本发明技术使用Chelex-100法提取DNA简便快速,只需30min左右,并且提取过程始 终在同一试管中进行,减少DNA的损失,避免污染,而且Chelex-100是一种以亚氨二乙酸 为吸附因子的苯乙烯和苯二乙烯共聚物,对人无害。只用一种限制性内切酶酶切,琼脂糖凝 胶电泳检测酶切产物,直接根据产物片断的长度和条带数就可以检验出熊蜂是否感染了微孢 子虫,感染了几种微孢子虫,并可以鉴定出微孢子虫的种类,费用低,简单,准确,快速。

附图说明

通过以下实例结合附图所作的详细描述,可以更清楚地理解本发明的目的、优点及特征。 实例仅用于说明本发明而不用于限制本发明的范围。

图1微孢子虫SSUrRNA基因片段的Afa I酶切位点:不同微孢子虫用引物 SSUrRNA-f1/SSUrRNA-r1b扩增出540bp的SSUrRNA基因片段,扩增产物的Afa I酶切位点 分析。其中括号内为微孢子虫SSUrRNA基因的GenBank登录号。

图2 PCR产物的琼脂糖凝胶电泳条带:不同微孢子虫用引物SSUrRNA-f1/SSUrRNA-r1b 扩增产物的2%琼脂糖凝胶电泳检测结果。其中M:DNA Marker;N:阴性对照(未感染微 孢子虫的熊蜂基因组DNA);泳道1:N.ceranae;泳道2:N.bombi;泳道3:N.thomsoni; 泳道4:N.ceranae和N.bombi;泳道5:N.ceranae和N.thomsoni;泳道6:N.bombi和N. thomsoni。

图3酶切产物的琼脂糖凝胶电泳条带:不同微孢子虫用引物SSUrRNA-f1/SSUrRNA-r1b 扩增的产物的Afa I酶切产物的2%琼脂糖凝胶电泳检测结果。其中M:DNAMarker;N:阴 性对照(未感染微孢子虫的熊蜂基因组DNA);泳道1-6表示同图3;泳道7:PCR产物。

图4不同熊蜂寄主来源的微孢子虫PCR产物的琼脂糖凝胶电泳条带:不同熊蜂寄主来源 的微孢子虫用引物SSUrRNA-f1/SSUrRNA-r1b扩增产物的2%琼脂糖凝胶电泳检测结果。其 中M:DNA Marker;N:阴性对照(未感染微孢子虫的熊蜂基因组DNA);泳道1:Bombus friseanus;泳道2:Bombus ladakhensis;泳道3-7:Bombus terrestris;泳道8-10:Bombus festivus。

图5不同熊蜂寄主来源的微孢子虫酶切产物的琼脂糖凝胶电泳条带:不同熊蜂寄主来源 的微孢子虫用引物SSUrRNA-f1/SSUrRNA-r1b扩增产物经Afa I酶切的2%琼脂糖凝胶电泳检 测结果。M、N、泳道1-10表示同图4,11:PCR产物。

具体实施方式

实施例1

三种微孢子虫检验及种类鉴定

以纯化的N.ceranae、N.bombi、N.thomsoni三种微孢子虫及两两混合为样本,采用本发 明的Chelex-100法分别提取DNA,用特异性引物(SSUrRNA-f1: 5’-CACCAGGTTGATTCTGCCT-3’,SSUrRNA-r1b:5’-TGTTCGTCCAGTCAGGGTCGTCA-3’) 进行扩增,扩增产物再经Afa I酶切,酶切产物用2%琼脂糖凝胶电泳检测结果。

PCR反应体系:

25μl反应体系中加入5μl的5×GoTaq Buffer、1.5 μl的MgCl2(25mM)(Promega),2.0 μl的dNTPs(200μM)(TaKaRa),SSUrRNA-f1、SSUrRNA-r1b引物各1μl(10μM),0.625 U/管的GoTaq DNA聚合酶,5μl的模板DNA(约5ng/μl),9.375μl的ddH2O。95℃预变性 4min后进入循环:95℃变性1min,64℃退火1min,72℃延伸1min,40个循环,最后72℃ 延伸10min。取5μl扩增产物经2%琼脂糖凝胶电泳检测,扩增结果见说明书附图中的图2PCR 产物的琼脂糖凝胶电泳条带。

PCR产物酶切反应体系:

在20μl反应体系中加入1μl Afa I(TaKaRa),2μl 10×T Buffer,2μl 0.1%BSA,15μl 的PCR产物,37℃酶切3h:

酶切结果与本发明内容中所述的酶切结果一致,见说明书附图中的图3酶切产物的琼脂糖 凝胶电泳条带。表明使用本发明可用于检验并鉴定N.ceranae、N.bombi、N.thomsoni三种微 孢子虫。

实施例2

国内外熊蜂的微孢子虫的检验及种类鉴定

采用本发明方法,对来自瑞士的5只熊蜂Bombus terrestris和国内的1只熊蜂Bombus ladakhensis、3只Bombus festivus、1只Bombus friseanus进行微孢子虫的检验及微孢子虫的种 类鉴定。

PCR反应体系及PCR产物酶切反应体系同实例1,PCR扩增产物和酶切产物均采用2% 琼脂糖凝胶电泳检测,见说明书附图中的图4不同熊蜂寄主来源的微孢子虫PCR产物的琼脂 糖凝胶电泳条带。

酶切产物经2%琼脂糖凝胶电泳检测发现来自瑞士的5只熊蜂和国内的5只熊蜂都感染了 微孢子虫,各自酶切产物电泳产生的条带如下:1:500bp、50bp附近产生两条带;2:350bp、 100bp、50bp附近产生三条带;3-9:350bp、150bp、50bp附近产生三条带;10:500bp、 50bp附近产生两条带。见说明书附图中的图5不同熊蜂寄主来源的微孢子虫酶切产物的琼脂 糖凝胶电泳条带。据此判断微孢子虫的种类为:1:N.ceranae;2:N.thomsoni;3-9:N.bombi; 10:N.ceranae。

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1、(10)授权公告号 CN 101603093 B (45)授权公告日 2012.05.09 CN 101603093 B *CN101603093B* (21)申请号 200910158234.8 (22)申请日 2009.07.23 C12Q 1/68(2006.01) C12R 1/90(2006.01) (73)专利权人 中国农业科学院蜜蜂研究所 地址 100093 北京市海淀区香山北沟 1 号 (72)发明人 李继莲 彭文君 吴杰 陈文锋 安建东 黄家兴 罗术东 (74)专利代理机构 北京路浩知识产权代理有限 公司 11002 代理人 王加岭 CN 101313667 A,2008.1。

2、2.03, 全文 . 李继莲等.熊蜂 (Bombus lucorum)微孢子虫 的初步研究 .蜂蜜杂志 .2004,( 第 1 期 ),3-4. 李继莲等 . 熊蜂微孢子虫对熊蜂的危害 . 蜜 蜂杂志 .2007,( 第 9 期 ),5-8. (54) 发明名称 感染熊蜂的微孢子虫的分子检测技术 (57) 摘要 感染熊蜂的微孢子虫的分子检测技术。属于 动物检验检疫技术领域, 具体地说涉及一种准确、 快速的检测进出口熊蜂上的微孢子虫的分子检 验技术领域。本发明的特征是 : 采用 Chelex-100 法提取 DNA, 用特异性引物进行一次 PCR, 扩增出 540bp的微孢子虫SSUrRNA基因。

3、片段, 然后用限制 性内切酶 Afa I 对 PCR 产物进行酶切, 利用 2.0 琼脂糖凝胶电泳检测酶切产物, 直接根据酶切产 物片断的长度, 即可检测出寄生在熊蜂身上的微 孢子虫的种类, 本发明可应用于国内外进出口熊 蜂的病原物微孢子虫的检验检疫。 (51)Int.Cl. (56)对比文件 审查员 黄丽君 (19)中华人民共和国国家知识产权局 (12)发明专利 权利要求书 1 页 说明书 3 页 附图 3 页 CN 101603093 B1/1 页 2 1. 一种检验检疫熊蜂的病原微孢子虫的分子检测方法, 其特征在于 : 1) 采用 Chelex-100 法 提 取 DNA ; 2) 用 。

4、特 异 引 物 SSUrRNA-fl : 5 -CACCAGGTTGATTCTGCCT-3和 SSUrRNA-r1b : 5 -TGTTCGTCCAGTCAGGGTCGTCA-3 PCR 扩 增 微 孢 子 虫 540bp 的 SSUrRNA 基因片段 ; 3) 用限制性内切酶 Afa I 酶切 PCR 产物, 利用 2.0琼脂糖凝胶电泳检测酶 切产物, 根据酶切产物片断的长度, 判断微孢子虫种类, 所述微孢子虫为中蜂微孢子虫 (Nosema ceranae)、 熊蜂微孢子虫 (Nosema bombi) 和 / 或鳞翅目卷蛾科微孢子虫 (Nosema thomsoni)。 权 利 要 求 书。

5、 CN 101603093 B1/3 页 3 感染熊蜂的微孢子虫的分子检测技术 技术领域 0001 本发明涉及一种动物检验检疫技术领域, 特别是涉及一种准确、 快速的检验进出 口熊蜂上的微孢子虫分子检验技术领域。 背景技术 0002 微孢子虫是普遍分布于自然界, 种群数量庞大的专性细胞内寄生的原虫类寄生 物, 有极为广泛的寄主, 包括脊椎动物与无脊椎动物, 是经济昆虫、 鱼类、 兔类、 产毛动物、 啮 齿类及灵长类的致病病原。熊蜂是一类重要的经济授粉昆虫, 也受到微孢子虫的危害, 因 此, 微孢子虫成为熊蜂进出口检验检疫的重要病原物之一。 0003 熊蜂微孢子虫检验通常采用镜检法和常规的分子检。

6、验法。 镜检法是将被检样品研 磨后, 滴加蒸馏水, 取 1-2 滴在载玻片上, 于光学显微镜下观察, 极易漏检。常规分子检验法 是采用酚氯仿提取 DNA, 设计特异性引物进行 PCR 扩增反应, 克隆测序。这种方法比镜检法 更灵敏准确, 不易漏检, 但是酚氯仿提取 DNA 需要 5 个小时, 操作步骤多, 易污染, 所用有机 试剂大部分对人有害, 而且克隆测序耗时、 费用较高。 0004 Klee 等 (Klee J., Besana A.M., Genersch E., et al.Widespread dispersal of themicrosporidian Nosema cerana。

7、e, an emergent pathogen of western honey bee, Apismellifera.J.Invertebr.Pathol., 2007, 96(1) : 1 10.) 采 用 聚 合 酶 链 式 反 应 - 限制性片段长度多态 (PCR-RFLP) 分析技术来鉴定微孢子虫种类, 用 Nde I 和 Msp I、 Pac I 三种限制性内切酶对意大利蜜蜂 (N.apis)、 中华蜜蜂 (N.ceranae) 和熊蜂微孢子虫 (N.bombi) 的部分 SSUrRNA 基因片段 ( 引物 : SSU-res-f1 : 5 -GCCTGACGTAGACGCTATT。

8、C-3 , SSU-res-r1 : 5 -GTATTACCGCGGCTGCTGG-3 ) 进行酶切, 用 Nde I、 Msp I 酶切 N.apis, Msp I 酶切 N.bombi, Pac I、 Msp I 酶切 N.ceranae, 利用琼脂糖凝胶电泳分离酶切产物, 根据产 物片断的长度来鉴定种类。 但是此方法需用三种酶, 费用高, 而且双酶切时其中一种酶的酶 切效率会降低, 造成部分酶切不完全。 其次, 用此方法不能鉴定出感染熊蜂的另外一种微孢 子虫 N.thomsoni。 发明内容 0005 本发明所要解决的技术问题是提供一种准确、 灵敏、 快速的检验检疫进出口熊蜂 上的微孢子。

9、虫的方法, 而且费用较适中, 使用的大部分检测试剂对人无害。 0006 为了解决上述技术问题, 本发明在比较了感染熊蜂的三种微孢子虫 N.ceranae、 N.bombi、 N.thomsoni 的 SSUrRNA 基因序列后, 建立了一种基于单一限制性内切酶分析三种 微孢子虫 SSUrRNA 基因片段的快速检验鉴定感染熊蜂的微孢子虫种类的方法。 0007 首 先 采 用 Chelex-100 法 提 取 DNA,用 特 异 性 引 物 (SSUrRNA-f1 : 5 -CACCAGGTTGATTCTGCCT-3 ; SSUrRNA-r1b : 5 -TGTTCGTCCAGTCAGGGTCGT。

10、CA-3 ) 扩 增 出 540bp 的微孢子虫 SSUrRNA 基因片段, 然后用限制性内切酶 Afa I 对 PCR 产物进行酶切, 利 用 2.0琼脂糖凝胶电泳检测酶切产物, 直接根据酶切产物片断的长度和条带数来检验鉴 说 明 书 CN 101603093 B2/3 页 4 定种类。 0008 按照本发明, AfaI 对 PCR 产物酶切的结果如下 : 0009 N.ceranae 在 500bp、 50bp 附近产生两条带。 0010 N.bombi 在 350bp、 150bp、 50bp 附近产生三条带。 0011 N.thomsoni 在 350bp、 100bp、 50bp 附。

11、近产生三条带。 0012 N.ceranae 和 N.bombi 在 500bp、 350bp、 150bp、 50bp 附近产生四条带。 0013 N.ceranae 和 N.thomsoni 在 500bp、 350bp、 100bp、 50bp 附近产生四条带。 0014 N.bombi 和 N.thomsoni 在 350bp、 150bp、 100bp、 50bp 附近产生四条带。 0015 本发明技术使用 Chelex-100 法提取 DNA 简便快速, 只需 30min 左右, 并且提取过 程始终在同一试管中进行, 减少DNA的损失, 避免污染, 而且Chelex-100是一种以。

12、亚氨二乙 酸为吸附因子的苯乙烯和苯二乙烯共聚物, 对人无害。 只用一种限制性内切酶酶切, 琼脂糖 凝胶电泳检测酶切产物, 直接根据产物片断的长度和条带数就可以检验出熊蜂是否感染了 微孢子虫, 感染了几种微孢子虫, 并可以鉴定出微孢子虫的种类, 费用低, 简单, 准确, 快速。 附图说明 0016 通过以下实例结合附图所作的详细描述, 可以更清楚地理解本发明的目的、 优点 及特征。实例仅用于说明本发明而不用于限制本发明的范围。 0017 图 1 微孢子虫 SSUrRNA 基因片段的 Afa I 酶切位点 : 不同微孢子虫用引物 SSUrRNA-f1/SSUrRNA-r1b 扩增出 540bp 的。

13、 SSUrRNA 基因片段, 扩增产物的 Afa I 酶切位点 分析。其中括号内为微孢子虫 SSUrRNA 基因的 GenBank 登录号。 0018 图 2 PCR 产物的琼脂糖凝胶电泳条带 : 不同微孢子虫用引物 SSUrRNA-f1/ SSUrRNA-r1b 扩增产物的 2琼脂糖凝胶电泳检测结果。其中 M : DNA Marker ; N : 阴性对 照 ( 未感染微孢子虫的熊蜂基因组 DNA) ; 泳道 1 : N.ceranae ; 泳道 2 : N.bombi ; 泳道 3 : N.thomsoni ; 泳道 4 : N.ceranae 和 N.bombi ; 泳道 5 : N.c。

14、eranae 和 N.thomsoni ; 泳道 6 : N.bombi 和 N.thomsoni。 0019 图 3 酶切产物的琼脂糖凝胶电泳条带 : 不同微孢子虫用引物 SSUrRNA-f1/ SSUrRNA-r1b 扩增的产物的 Afa I 酶切产物的 2琼脂糖凝胶电泳检测结果。其中 M : DNAMarker ; N : 阴性对照 ( 未感染微孢子虫的熊蜂基因组 DNA) ; 泳道 1-6 表示同图 3 ; 泳道 7 : PCR 产物。 0020 图 4 不同熊蜂寄主来源的微孢子虫 PCR 产物的琼脂糖凝胶电泳条带 : 不同熊蜂 寄主来源的微孢子虫用引物 SSUrRNA-f1/SSUr。

15、RNA-r1b 扩增产物的 2琼脂糖凝胶电泳 检测结果。其中 M : DNA Marker ; N : 阴性对照 ( 未感染微孢子虫的熊蜂基因组 DNA) ; 泳道 1 : Bombusfriseanus ; 泳道 2 : Bombus ladakhensis ; 泳道 3-7 : Bombus terrestris ; 泳道 8-10 : Bombus festivus。 0021 图 5 不同熊蜂寄主来源的微孢子虫酶切产物的琼脂糖凝胶电泳条带 : 不同熊蜂寄 主来源的微孢子虫用引物SSUrRNA-f1/SSUrRNA-r1b扩增产物经Afa I酶切的2琼脂糖凝 胶电泳检测结果。M、 N、 。

16、泳道 1-10 表示同图 4, 11 : PCR 产物。 具体实施方式 说 明 书 CN 101603093 B3/3 页 5 0022 实施例 1 0023 三种微孢子虫检验及种类鉴定 0024 以 纯 化 的 N.ceranae、 N.bombi、 N.thomsoni 三 种 微 孢 子 虫 及 两 两 混 合 为 样 本, 采 用 本 发 明 的 Chelex-100 法 分 别 提 取 DNA, 用 特 异 性 引 物 (SSUrRNA-f1 : 5 -CACCAGGTTGATTCTGCCT-3 , SSUrRNA-r1b : 5 -TGTTCGTCCAGTCAGGGTCGTCA-3。

17、 ) 进行扩 增, 扩增产物再经 Afa I 酶切, 酶切产物用 2琼脂糖凝胶电泳检测结果。 0025 PCR 反应体系 : 0026 25l 反 应 体 系 中 加 入 5l 的 5GoTaq Buffer、 1.5 l 的 MgCl2(25mM) (Promega), 2.0l 的 dNTPs(200M)(TaKaRa), SSUrRNA-f1、 SSUrRNA-r1b 引物各 1l(10M), 0.625U/ 管的 GoTaq DNA 聚合酶, 5l 的模板 DNA( 约 5ng/l), 9.375l 的 ddH2O。95预变性 4min 后进入循环 : 95变性 1min, 64退火 。

18、1min, 72延伸 1min, 40 个 循环, 最后72延伸10min。 取5l扩增产物经2琼脂糖凝胶电泳检测, 扩增结果见说明 书附图中的图 2PCR 产物的琼脂糖凝胶电泳条带。 0027 PCR 产物酶切反应体系 : 0028 在 20l 反应体系中加入 1l Afa I(TaKaRa), 2l 10T Buffer, 2l 0.1 BSA, 15l 的 PCR 产物, 37酶切 3h : 0029 酶切结果与本发明内容中所述的酶切结果一致, 见说明书附图中的图 3 酶切 产物的琼脂糖凝胶电泳条带。表明使用本发明可用于检验并鉴定 N.ceranae、 N.bombi、 N.thomso。

19、ni 三种微孢子虫。 0030 实施例 2 0031 国内外熊蜂的微孢子虫的检验及种类鉴定 0032 采用本发明方法, 对来自瑞士的 5 只熊蜂 Bombus terrestris 和国内的 1 只熊蜂 Bombusladakhensis、 3只Bombus festivus、 1只Bombus friseanus进行微孢子虫的检验及 微孢子虫的种类鉴定。 0033 PCR 反应体系及 PCR 产物酶切反应体系同实例 1, PCR 扩增产物和酶切产物均采用 2琼脂糖凝胶电泳检测, 见说明书附图中的图4不同熊蜂寄主来源的微孢子虫PCR产物的 琼脂糖凝胶电泳条带。 0034 酶切产物经 2琼脂糖凝。

20、胶电泳检测发现来自瑞士的 5 只熊蜂和国内的 5 只熊 蜂都感染了微孢子虫, 各自酶切产物电泳产生的条带如下 : 1 : 500bp、 50bp 附近产生两条 带 ; 2 : 350bp、 100bp、 50bp 附近产生三条带 ; 3-9 : 350bp、 150bp、 50bp 附近产生三条带 ; 10 : 500bp、 50bp 附近产生两条带。见说明书附图中的图 5 不同熊蜂寄主来源的微孢子虫酶切 产物的琼脂糖凝胶电泳条带。据此判断微孢子虫的种类为 : 1 : N.ceranae ; 2 : N.thomsoni ; 3-9 : N.bombi ; 10 : N.ceranae。 说 明 书 CN 101603093 B1/3 页 6 图 1 微孢子虫 SSUrRNA 基因片段的 AfaI 酶切位点 图 2 PCR 产物的琼脂糖凝胶电泳条带 说 明 书 附 图 CN 101603093 B2/3 页 7 图 3 酶切产物的琼脂糖凝胶电泳条带 图 4 不同熊蜂寄主来源的微孢子虫 PCR 产物的琼脂糖凝胶电泳条带 说 明 书 附 图 CN 101603093 B3/3 页 8 图 5 不同熊蜂寄主来源的微孢子虫 酶切产物的琼脂糖凝胶电泳条带 说 明 书 附 图 。

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