试剂盒和方法.pdf

上传人:v**** 文档编号:5162892 上传时间:2018-12-21 格式:PDF 页数:42 大小:6.95MB
返回 下载 相关 举报
摘要
申请专利号:

CN201180024021.1

申请日:

2011.05.13

公开号:

CN103038361A

公开日:

2013.04.10

当前法律状态:

授权

有效性:

有权

法律详情:

授权|||专利申请权的转移IPC(主分类):C12Q 1/48变更事项:申请人变更前权利人:P·斯托尔汉德斯克变更后权利人:西森斯公司变更事项:地址变更前权利人:瑞典克尼夫斯塔变更后权利人:瑞典乌普萨拉变更事项:申请人变更前权利人:J·伦纳斯特兰德登记生效日:20150128|||实质审查的生效IPC(主分类):C12Q 1/48申请日:20110513|||公开

IPC分类号:

C12Q1/48; C12N9/12

主分类号:

C12Q1/48

申请人:

P·斯托尔汉德斯克; J·伦纳斯特兰德

发明人:

P·斯托尔汉德斯克; J·伦纳斯特兰德

地址:

瑞典克尼夫斯塔

优先权:

2010.05.14 SE 1050473-6

专利代理机构:

永新专利商标代理有限公司 72002

代理人:

左路;林晓红

PDF下载: PDF下载
内容摘要

本发明涉及包含DNA依赖性DNA聚合酶和至少一种天然的脱氧核苷的试剂盒,并涉及包含DNA依赖性DNA聚合酶和检测系统的试剂盒,所述检测系统包含DNA模板分子、DNA引物分子和荧光部分,所述荧光部分能够被置换出或能够结合至所述DNA依赖性聚合酶合成的dsDNA。其还涉及用于测量样品中脱氧核糖核苷激酶活性的方法,其特征在于;(i)使样品在容器中与反应混合物接触,所述反应混合物包含DNA依赖性DNA聚合酶、至少一种脱氧核糖核苷和检测系统,所述检测系统包含DNA模板分子、DNA引物分子和荧光部分,所述荧光部分能够掺入所述DNA依赖性聚合酶合成的dsDNA、从所述DNA依赖性聚合酶合成的dsDNA中被置换出或结合至所述DNA依赖性聚合酶合成的dsDNA;(ii)孵育所述容器;(iii)测量来自所述荧光部分的信号;和使来自所述荧光部分的信号与所述样品中的脱氧核糖核苷激酶活性相关联。

权利要求书

权利要求书包含DNA依赖性DNA聚合酶和至少一种天然的脱氧核糖核苷的试剂盒。
包含DNA依赖性DNA聚合酶和检测系统的试剂盒,所述检测系统包含DNA模板分子、DNA引物分子和荧光部分,所述荧光部分能够从所述DNA依赖性聚合酶合成的dsDNA中被置换出或结合至所述DNA依赖性聚合酶合成的dsDNA。
权利要求1或2的试剂盒,还包含至少一种磷酸转移酶。
权利要求1至3中任一项的试剂盒,还包括至少一种天然的或修饰的脱氧核糖核苷。
权利要求1至4中任一项的试剂盒,其中所述至少一种天然的脱氧核糖核苷选自脱氧胸苷和/或脱氧胞苷或其混合物。
权利要求1至5中任一项的试剂盒,其中所述至少一种修饰的脱氧核糖核苷选自修饰的胸苷和修饰的胞苷,例如BrdU和/或IdU,或其混合物。
权利要求1至6中任一项的试剂盒,其中所述荧光部分偶联至单链DNA探针。
权利要求7的试剂盒,其中所述荧光部分和一猝灭部分偶联至单链DNA探针。
权利要求2至6中任一项的试剂盒,其中所述荧光部分是双链DNA表面结合或嵌入分子,例如PicoGreen、Eva染料或SYBR GreenI。
权利要求7或8的试剂盒,其中结合至所述单链DNA探针的荧光部分在所述探针处于其完整形式时是猝灭的。
权利要求9的试剂盒,其中所述DNA依赖性DNA聚合酶具有5'至3'核酸外切酶活性,例如Taq DNA聚合酶或Tth聚合酶。
权利要求7或8的试剂盒,其中结合至所述单链DNA探针的荧光部分当处于其完整形式并杂交至其靶模板时达到最大荧光。
用于测量样品中脱氧核糖核苷激酶活性的方法,其特征在于:
a.使样品在容器中与反应混合物接触,所述反应混合物包含DNA依赖性DNA聚合酶、至少一种脱氧核糖核苷和检测系统,所述检测系统包含DNA模板分子、DNA引物分子和荧光部分,所述荧光部分能够掺入所述DNA依赖性聚合酶合成的dsDNA、从所述DNA依赖性聚合酶合成的dsDNA中被置换出或结合至所述DNA依赖性聚合酶合成的dsDNA;
b.孵育所述容器;
c.测量来自所述荧光部分的信号;
d.使来自所述荧光部分的信号与所述样品中的脱氧核糖核苷激酶活性相关联。
权利要求13的方法,其中所述至少一种脱氧核糖核苷是天然的或修饰的脱氧核糖核苷或其混合物。
权利要求13或14中任一项的方法,其中所述至少一种天然脱氧核糖核苷选自脱氧胸苷和/或脱氧胞苷或其混合物。
权利要求13或14中任一项的方法,其中所述至少一种修饰的脱氧核糖核苷选自修饰的胸苷和修饰的胞苷,例如BrdU和/或IdU,或其混合物。
权利要求13至16中任一项的方法,其中所述荧光部分偶联至单链DNA探针。
权利要求13至17中任一项的方法,其中所述荧光部分和一猝灭部分偶联至单链DNA探针。
权利要求13至16中任一项的方法,其中所述荧光部分是双链DNA表面结合或嵌入分子,例如PicoGreen、Eva染料或SYBR Green I。
权利要求13至18中任一项的方法,其中结合至所述单链DNA探针的荧光部分在所述探针处于其完整形式时是猝灭的。
权利要求20的方法,其中所述DNA依赖性DNA聚合酶具有5'至3'核酸外切酶活性,例如Taq DNA聚合酶或Tth聚合酶。
权利要求17或18的方法,其中结合至所述单链DNA探针的荧光部分当处于其完整形式并杂交至其靶模板时达到最大荧光。

说明书

说明书试剂盒和方法
技术领域
本发明涉及实时地均质(即非固相)测定样品中的一或几种脱氧核糖核苷激酶的试剂盒和方法,其用于诊断疾病、失调、感染(病毒性和细菌性)或癌症。
发明背景
脱氧核糖核苷激酶
真核细胞中存在至少三种脱氧核糖核苷激酶,胸苷激酶1和2(TK1和TK2)、脱氧胞苷激酶(dCK)和脱氧鸟苷激酶(dGK)。
存在着编码两种不同胸苷激酶的两种人类基因座。可以在细胞的胞浆中发现胸苷激酶。胸苷激酶2定位于线粒体并参与线粒体DNA合成。TK2具有与胸苷激酶1不同的氨基酸序列、底物特异性和表达谱。
从细胞周期的G1期末期开始和贯穿S期,胸苷激酶1的活性最为明显。TK和dCK负责通过补救途径调节细胞中的TTP和dCTP池。所述TK酶在三磷酸腺苷(ATP)的存在下催化胸苷向单磷酸胸苷(TMP)转化。
在整个细胞周期都发现脱氧胞苷激酶的活性,并且主要在淋巴来源的细胞中鉴定到其活性。TK2定位于线粒体中并与dCK具有对dC几乎相等的亲和力。
疾病的诊断
在20世纪80年代早期,表明胸苷激酶活性不仅可以从受各种肿瘤疾病影响的患者的血清中检测到,而且与健康人类个体(其中通常表现出非常低的TK活性)有广泛的差异。
目前广泛接受使用TK作为血液癌症疾病诊断和预后的单一肿瘤标记物。在某些情况下,TK已显示出直接的诊断能力。
TK和其他脱氧核糖核苷激酶的活性早已与疾病相关联,这由Eriksso等人(2002)和由Topolcan与Holubec(2008)在综述中有所总结。
已将TK2和线粒体疾病相联系。
检测脱氧核糖核苷激酶的测定
放射性底物,如3H‑胸苷,已被广泛用于在过滤结合测定中确定TK和dCK的活性。对于常规的临床诊断,基于放射性的测定不是个有吸引力的选择。
在最近几年中,已作过几种尝试以开发不基于放射性的测定,所有这些测定在一个方面或其他方面更好。以下是在不同的脱氧核糖核苷激酶的检测中所使用的一组方法、测定和试剂组合物。
在EP1385005中,提出基于叠氮胸苷(AZT)的竞争性单磷酸化的不基于放射性的TK活性测定。这项技术已由Diasorin S.r.l.进一步开发成自动的两步骤的发光诊断测定。在该两步的测定中,首先由样品中存在的TK将AZT磷酸化为单磷酸化的AZTMP。接着从缀合至异氨基苯二酰肼(AZTMP ABEI)的AZTMP检测发光,所述缀合至异氨基苯二酰肼的AZTMP与固体表面底物上的TK磷酸化AZTMP竞争结合抗AZTMP抗体。该两步骤测定的主要缺点是动态读取受限。另一缺点是使用修饰的核苷底物代替天然的胸苷。
在WO2009/063254中公开了通过使用单磷酸化的Br‑dU的用于确定样品中TK活性的半均质方法,所述单磷酸化的Br‑dU通过HPLC分离并通过UV检测。该方法的缺点是用修饰的底物进行所述反应和以分离步骤进行检测。
US2008/248472公开了固相测定,其通过试剂混合物中的脱氧核糖核苷激酶互补样品中TK活性以产生Br‑dUTP(天然TTP的衍生物)。随后使用RNA依赖的DNA聚合酶通过引物延伸掺入所述Br‑dUTP。固相结合的RNA模板由单体rA建成,长200‑400个单体,并被连至固相。在ELISA中使用碱性磷酸酶缀合的抗[Br]dU抗体在第二步骤检测掺入的[Br]U来最终确定TK活性。用许多手动交互步骤进行这个两步骤的测定是繁琐的并且执行所述测定花费过长的时间。
尚未提出用于测量样品中dCK活性的可靠的检测。
附图简述
图1显示了产生TTP和dCTP的补救途径
图2显示了根据本发明的方法的检测系统2的原理
图3显示了根据本发明的方法的检测系统3的原理
图4显示了根据本发明的方法的检测系统1的原理
图5通过实时荧光捕获获得的荧光曲线获得实施例3的hrTK1标准点的阈值水平Ct。
图6实施例3的hrTK1标准点的平均Ct值在对数标度上的线性回归。
图7实施例4的hrdCK标准点的平均Ct值在对数标度上的线性回归。
图8实施例7多重hrTK1与hrdCK在对数标度上的线性回归。
图9犬血清样品中的TK1测量和实施例8中使用的hrTK1标准点在对数标度上的线性回归。
图10通过实时荧光捕获获得的线性归一化的荧光曲线获得实施例9的阈值水平Ct。
图11实施例9的致病性犬血清和hrTK1标准点的平均Ct值在对数标度上的线性回归。
图12通过实时荧光捕获获得的线性和动态管归一化的荧光获得实施例10的阈值水平Ct。
图13实施例10的hrTK1标准点的平均Ct值在对数标度上的线性回归。
定义:
本说明书中的所有术语和词语应当按照其正常含义和在相关领域中的使用来解释。为了明确起见,以下更具体地讨论一些术语。
除非另有说明,在整个发明中互换地使用胸苷和脱氧胸苷。
均质测定是非固相测定,其在延伸引物‑模板系统时产生信号,需要最少的引物延伸后操作。这些测定无需分离步骤。所述反应完全在溶液中发生,没有珠或固相附着干扰低亲和力的相互作用。均质测定方法对药物发现中所需的通量和测定小型化是必要的。在任何均质测定中,在测量过程中存在所述测定的所有组分。排除分离步骤是这些测定方法的主要优点,但由于测定成分的非特异性测量这也存在困难(来源:http://www.genomicglossaries.com/content/Assays.asp,2010年4月28日检索)。
脱氧核糖核苷是包括连接至五碳糖脱氧核糖的含氮碱基的分子。脱氧核糖核苷通常被简单地称为结合至脱氧核糖的碱基。天然的脱氧核糖核苷被定义为未修饰的脱氧核糖核苷。这些的实例包括胞苷、尿苷、腺苷、鸟苷、胸苷和肌苷。
天然的脱氧核糖核苷是在野生型活生物体(如人类)中存在的形式的脱氧核糖核苷。
修饰的脱氧核糖核苷也称为核苷类似物,是在葡基胺或核酸碱基(nucleobase)上有任何种类修饰的脱氧核糖核苷。在医药中,几种核苷类似物用作抗病毒剂或抗癌剂。修饰的脱氧核糖核苷的实例是叠氮胸苷(AZT)、溴‑脱氧尿苷(Br‑dU)、碘‑脱氧尿苷、乙烯基‑脱氧胸苷和氟‑脱氧尿苷。
DNA依赖性DNA聚合酶是催化脱氧核糖核苷三磷酸以单链DNA为模板组装为脱氧核糖核酸的酶。在一些文献中,DNA依赖性DNA聚合酶也可称为DNA指导的DNA聚合酶。
DNA依赖性DNA聚合酶可以具有三种不同的酶活性:(a)5'至3'聚合酶活性,在模板DNA指导下催化由脱氧核糖核苷5'‑三磷酸产生的单核苷酸单元添加至引物链的3'‑羟基末端;(b)仅在双链体DNA上的5'至3'核酸外切酶的活性;(c)主要在单链DNA上有活性的3'至5'核酸外切酶,其可以选择性地去除不匹配的末端核苷酸。注意除DNA聚合酶I外,Taq DNA聚合酶和来自Thermus thermofilus的Tth聚合酶是至今鉴定的仅有的具有5'→3'核酸外切酶活性的DNA依赖性聚合酶。
DNA模板分子是作为DNA依赖性DNA聚合酶的模板的ssDNA分子。
DNA引物分子是短的DNA分子,其与DNA模板分子的区段互补并作为DNA依赖性DNA聚合酶的DNA聚合的引物。
完整的形式:当本发明中所使用的DNA探针是根据本发明进行的任何聚合酶反应之前的形式时,称其为完整的形式。
补救合成途径示于图1,是合成TTP和dCTP的途径之一。
TTP和dCTP是胸苷和脱氧胞苷的相应的脱氧核糖核苷三磷酸。这些首先通过在脱氧核糖核苷激酶的帮助下从例如ATP转移一个磷酸基团(会产生相应的单磷酸TMP或dCMP)来产生。
dTMP激酶和胞嘧啶核苷酸(cytidylate)激酶催化形成相应的二磷酸核苷,TDP和dCDP。
核苷二磷酸激酶转变二磷酸盐为最终的三磷酸核苷。
RNA依赖性DNA聚合酶是催化脱氧核糖核苷三磷酸在第一链合成过程中以单链RNA为模板组装为脱氧核糖核酸的酶。
所用的缩写
ATP    腺苷5'‑三磷酸
AZTMP  叠氮‑胸苷单磷酸
BrdU   溴脱氧尿苷
dCDP   脱氧胞苷二磷酸
dCK    脱氧胞苷激酶:EC 2.7.1.21;ATP:胞苷‑5'‑磷酸转移酶
dCMP   脱氧胞苷单磷酸
dCMPK  胞嘧啶核苷酸激酶:EC 2.7.4.14;ATP:dCMP磷酸转移酶
dsDNA  双链DNA
hrdCK  人重组脱氧核糖核苷激酶
hrTK1  人重组胸苷激酶1
MMX    MasterMix[无样品的试剂混合物]
NdPK   核苷二磷酸激酶:EC 2.7.4.6;ATP:核苷二磷酸磷酸转移酶
hrTK1  人重组胸苷激酶1
ssDNA  单链DNA
TDP    脱氧胸腺嘧啶二磷酸
TK     胸苷激酶:EC 2.7.1.21;ATP:胸苷‑5'‑磷酸转移酶
TMPK   dTMP激酶:EC 2.7.4.9;ATP:TMP磷酸转移酶
TMP    脱氧胸苷单磷酸
发明概述
本发明旨在提供用于检测脱氧核糖核苷激酶活性的通用的和改进的方法和试剂盒。本发明人已发现仍有基于活性的脱氧核糖核苷激酶活性测定试剂盒和方法的需要,所述试剂盒和方法不仅可以检测样品中的TK,也可以用于dCK测试(例如在癌症治疗中监测药物抗性的发展),并且其在性能上是稳健的、快速、简单、用户友好而且对临床使用是安全的。
使用dCK作为诊断工具用于癌症疾病管理尚未发现其临床应用。然而,在癌症治疗中使用的几种核苷类似物(例如阿糖胞苷和较新的吉西他汀)是由dCK活化的,因此找到用于简单的确定抗性发展的有效的解决是最重要的,因为已知抗性与dCK缺乏相联系。
本发明在权利要求中总结。
发明详述
Taq DNA聚合酶是来自嗜热水生菌(Thermus aquaticus)的DNA依赖性DNA聚合酶。Taq聚合酶(或简单地Taq)具有65‑75℃的最佳温度区间。所述Taq DNA聚合酶也具有5'至3'核酸酶活性。
出乎意料地发现Taq DNA聚合酶在37℃下对于引物延伸和5'至3'核酸酶活性的剩余活性足以从荧光双重标记的探针(其一标记转移其能量(猝灭)至以热而不是光释放能量的另一标记)释放5'结合的荧光标记物。
与之前提出的对脱氧核糖核苷激酶的检测方法相比,因此可以实时地测量脱氧核糖核苷激酶的活性而不是确定终点的酶活性。
核酸扩增测定系统中的实时检测除具有提高的灵敏度外,还具有快速、提高的分辨率和更好的精度的优点。
也认为对均质脱氧核糖核苷激酶活性测定来说,为了与目前市场上的测定竞争,它必须能够从健康的志愿者(如0.5U/l‑7U/l)中从测定开始的5小时内测量这些活性。
在之前的尝试中,使用Taq DNA聚合酶在37℃下引物延伸和5'‑核酸酶反应不幸地没有获得结果。因此,认为并假设所述Taq DNA聚合酶的引物延伸反应和5'核酸酶反应可以被大肠杆菌的DNA依赖性DNA聚合酶I的相同的活性所替代,从而保持均质测定的实时方面。令人失望的是不能使用该DNA聚合酶I,因为该酶非特异地释放5'结合的荧光团。
因此,再次认为对两种反应只使用一种孵育温度的真正的实时方法必须被放弃而用两步骤的改变温度的方法代替,即(1)TTP或dCTP的产生必须在37℃下发生,(2)所述引物延伸以及5'‑核酸酶荧光团的释放必须在更高的温度下(例如在51℃下)孵育以支持Taq DNA聚合酶的活性。期望这能工作,因为所述Taq DNA聚合酶在51℃下应当保留其最高活性的大约40%。
此外,认为应当保留其工业实用性,因为通过编程实时PCR仪器来执行温度改变,可以使得温度改变的两步骤测定对测试供应商和操作者来说是不可见的。
所以首先构建引物‑模板‑探针系统以协调至用于51℃下杂交的最佳热力学特性。考虑到MgCl2的浓度,计算所述探针的Tm将达到69℃。在第一个尝试中仅测量TK活性,令人惊讶的是37℃温育步骤已产生释放的和归一化的荧光的好的线性图,其来自所包括的两个标准点,即分别来自2000pg、200pg、20pg和2pg hrTK1的活性。获得0.9669的R2值。来自51℃反应的释放的和归一化的荧光的线性图甚至更差,不过仍然可读。因此,得出的结论是用于检测样品中TK的可能的实时测定方法近在咫尺。更令人惊讶的是第一个实验指示在1h内测量低至从正常的健康志愿者的血清样品中发现的TK活性的可能性。这代表从最初的初步说明改进了4h。所述hrTK1的比活性评估为2.1μmol/min/mg。该测定只保留描述实时PCR的线性和平稳(饱和)阶段。在37℃下实时检测TK活性的惊人效果直接解决与两步骤温度改变方法相关的其他两个问题。第一,TK显示特征性的TTP抑制。这可能使两步骤测定难以对含有高TK活性的样品进行,即需要稀释步骤。现在可以将其省略,因为所产生的TTP或dCTP持续地被所述Taq DNA聚合酶通过将TTP或dCTP掺入引物‑模板系统来去除。第二,Taq DNA聚合酶在较高温度(如51℃)下的非常高的聚合速率(在72℃下35‑100nt每秒)可能引起在实时解析测定结果的一些严重的问题,因为较高的TK活性值(甚至低至10U/l)会从测定开始的几分钟内显现从而严重地限制分辨率。同时,由于信号分辨率的需要而仅可以使用有限量的Taq DNA聚合酶U/反应,健康志愿者的活性在能检测到信号前可能需要几小时。总之,公开了非显而易见的发现,现在可以将其变为用于检测脱氧核糖核苷激酶活性的工业可应用的测定和方法,图5。在随后的实验中(实施例3)验证了所述测定的灵敏度。
总之,现已发现天然的底物胸苷(T)和/或脱氧胞苷(dC)或其混合物,和DNA依赖性DNA聚合酶是测量脱氧核糖核苷激酶(如TK或dCK)催化浓度所需要的必要的试剂。这可以在含有用于TK或dCK活性测定的其他已知组分的均质混合物中进行。通过用反应混合物中存在的其他核苷激酶(如dTMP激酶或胞嘧啶核苷酸激酶)和核苷二磷酸激酶的活性互补样品中的TK或dCK催化活性,使得该测定性能稳健、操作快速和简单并且在临床上是安全的。这些试剂可以方便地纳入试剂盒和缓冲液中,用于产生TTP或dCTP,伴随使用引物‑模板‑检测物(detector)系统的引物延伸,各自有固定的浓度。在本文的剩余部分中,无样品的反应混合物中的试剂称为母液混合物(master mix),缩写为MMX。在MMX中也可以包括DNA依赖性DNA聚合酶。表1总结了用于测定脱氧核糖核苷激酶的方法的试剂盒组分的现有技术情况。总之,之前的脱氧核糖核苷激酶试剂盒权利要求没有包括DNA依赖性DNA聚合酶和天然的T和/或dC底物或其混合物,或其使用方法。
表1:现有技术试剂盒组分与本发明比较

用于检测和测量样品中的核酸靶(如来自细菌和病毒)的均质PCR测定已成为临床诊断中极其重要的测定方法。
不同的检测技术已被应用于均质PCR测定。这些包括使用嵌入分子检测物的猝灭技术,和猝灭探针技术如双重标记的FRET核酸探针和利用接触猝灭核酸探针的所谓的分子信标方法。
本发明的实施应用在本领域中公知的分子生物学和酶学的技术。根据本发明,包含DNA依赖性DNA聚合酶和作为底物的天然T或dC的试剂盒可以与几种检测部分组合用于测量样品中TK或dCK的催化浓度。
也可以用磷酸转移酶如TMPK或dCMPK和NdPK完善该试剂盒。这些组分可以方便地衍生自非重组的天然宿主或来自重组酶,所述重组酶由携带互补酶的活性基因的真核或细菌载体系统所表达。
引物‑模板‑探针检测物系统的设计
在本发明的所有的优选方面,设计引物‑模板‑探针系统是重要的。DNA依赖性DNA聚合酶的选择必须匹配所述引物‑模板‑检测物的选择。
本发明不需要如同实时PCR的温度循环改变。然而,使用双重标记的单链的和FRET猝灭的DNA探针作为检测物(图2),容易地实时进行该检测。本文将引物‑模板‑探针系统设计为使所述探针在引物之前杂交至模板,其通过将探针序列构建为达到比所述引物高3℃‑15℃的Tm从而比所述引物更快地结合至所述模板。更加优选的是高5℃‑10℃的Tm。最优选的是高7℃‑9℃的TM。随后TTP或dCTP启动所述引物延伸的先决条件(pre‑requisite)可以包括短的延迟使所述探针优选地在所述引物之前结合至所述模板。在此检测物系统(图2),Taq DNA聚合酶是本发明的最优选的DNA依赖性DNA聚合酶。Taq DNA聚合酶的浓度可以是每反应0.01U‑4U。更优选的为每反应0.1U‑2U。更加优选的是每反应0.3U‑1U的Taq DNA聚合酶。最优选的是每反应0.5U的Taq聚合酶。所述引物的设计必须考虑所述猝灭剂和使用5'核酸酶测定的5'‑荧光团之间的福斯特半径。
使用荧光双重标记的单链DNA探针(其在完整和非杂交形式是猝灭的,如分子信标探针,图3)作为检测物,对杂交步骤利用了相同的温度策略。引物‑模板‑探针系统设计为使所述探针在引物之前杂交至模板,其通过将探针序列构建为达到比所述引物高3℃‑15℃的Tm从而比所述引物更快地结合至所述模板。更加优选的是高5℃‑10℃的Tm。最优选的是高7℃‑9℃的TM。随后TTP或dCTP启动所述引物延伸的先决条件可以包括短的延迟使所述探针优选地在所述引物之前结合至所述模板。为进行根据本发明的如图3中所描述的检测,所述DNA依赖性DNA聚合酶必须具有DNA链置换活性。对本发明的该检测物系统,置换DNA聚合酶的浓度可以根据所使用的DNA聚合酶在每反应0.01U‑5U范围内。更优选的是每反应0.1U‑3U。
对于最后一种检测物系统(图4),通过引物延伸产生的双链DNA允许表面结合或嵌入荧光分子的结合,从而通过结合被检测(图4)。用于该检测系统的DNA聚合酶可以优选地是3'→5'外切‑DNA依赖性DNA聚合酶,例如Klenow外切‑DNA聚合酶。所述DNA聚合酶的浓度可以根据优选的酶为每反应0.01U‑4U。更优选的是每反应0.1U‑2U。
检测来自不同检测物系统的信号
用于信号检测的仪器可以优选地是实时PCR仪器。本发明的方法对所述仪器的加热‑冷却原理或光激发和发射检测原理没有偏好性。
根据本发明的方法可以使用Ct值,其随后转变为催化浓度定义,如每升单位酶活性(U/l)。应当理解根据本发明的方法可以选择Ct值和信号取样中的时间单位。该方法使用约定的催化浓度定义。
优选地由任何检测方法通过关联所述循环数来确定样品中TK或dCK的量,在所述循环数荧光总和的增加或减少(取决于所使用的检测系统)达到可检测阈值水平。
试剂盒设计
所述DNA依赖性DNA聚合酶和天然T或dC底物可以分配至一或多个反应容器。
适于在荧光检测仪器进行本发明的方法的反应容器优选地能够容纳20μl‑200μl的总体积。更加优选的反应容器能够容纳25μl或50μl的体积。根据本发明的方法的反应体积可以优选地在5μl‑100μl范围内。更加优选的反应体积为25μl‑50μl。
使用所述试剂盒的样品处理
在所述MMX添加至反应容器后,将样品添加至所述容器。盖上该容器并放入所述测量仪器并孵育。开始荧光取样并持续选定数目的循环。所述TK/dCK样品可以优选地包括血清或血浆。更优选的是血清和柠檬酸盐血浆。所述反应体积中样品的比例应优选地为1%‑20%。
根据本发明的方法将TTP或dCTP产生与引物延伸和荧光信号显现相偶联,用于检测和确定样品中TK或dCK催化浓度。简而言之,由来自所述样品的TK或dCK与所述试剂盒包含的TMPK或dCMPK以及NdPK互补活性一起产生TTP或dCTP。TMPK或dCMPK以及NdPK优选地以超过样品中TK或dCK的最高疑似浓度(例如>3000U/l)存在于所述反应中。对于NdPK,为由2000pg hrTK1(ca.10000U/l)所代表的催化浓度的1X‑1000X。更优选的是由2000pg hrTK1所代表的催化浓度的50X‑1000X的NdPK的浓度。对于TMPK或dCMPK,优选为由2000pg hrTK1所代表的催化浓度的1X‑1000X。更优选的是由2000pg hrTK1所代表的催化浓度的50X‑100X的浓度。
所述DNA依赖性DNA聚合酶(方便地包含于所述试剂盒)连续地利用TTP或dCTP来根据三种检测系统其中任一种进行引物延伸反应以产生荧光信号,所述荧光信号随后可以与样品中TK或dCK的催化浓度相关联。对所有三种检测系统,优选所述模板在引物结合互补序列下游的模板核苷酸序列中(即在模板序列的5'方向)具有一或多个“A”或“G”,取决于所要测量的脱氧核糖核苷激酶。在检测脱氧鸟苷激酶(dGK)的情况下,所述模板在所述引物下游需要一或多个“C”。为了清楚起见,在此注明每种引物‑探针‑检测物组至少对于模板和旨在检测的脱氧核糖核苷激酶是特异的,与所使用的检测系统无关。使用5'核酸酶检测系统的多重检测(即在相同的反应容器中检测多种脱氧核糖核苷激酶)也需要特异性探针序列和标记。
在一种所述检测系统(图2,也称为检测系统1)中,通过动态猝灭或FRET的作用猝灭来自单链寡核苷酸探针的荧光,所述单链寡核苷酸探针具有5'‑共价结合的荧光团和在3'‑方向共价结合至相同探针的猝灭荧光团。在使用预先确定的量的引物、模板和探针的引物延伸反应期间,通过所述DNA指导的DNA聚合酶的5'→3'核酸外切酶活性从所述探针释放(即水解掉)5'‑共价结合的荧光团。
在另一种检测系统(也称为检测系统2,图4)中,来自嵌入或表面结合的荧光分子(例如但不限于SYBR和Eva Green的荧光在其游离或未结合的状态下被猝灭。在使用预先确定的量的模板和一种引物的引物延伸反应期间,荧光分子被嵌入或表面结合至所产生的双链DNA,在此所述荧光分子开始发荧光。
在第三种检测系统(也称为检测系统3,图3)中,来自单链寡核苷酸探针的荧光通过接触猝灭或静态猝灭作用被猝灭,所述单链寡核苷酸探针包含所谓的分子信标,所述分子信标具有5'‑共价结合荧光团、共价结合至相同探针在所述5'‑结合荧光团的3'‑远端的猝灭荧光团。
在所述孵育和实时循环开始前使所述分子信标探针变性并允许其杂交至靶模板。当杂交至模板时,所述接触猝灭被释放并在零时刻达到最大荧光。在使用预先确定量的引物、模板和探针的引物延伸期间,通过Φ29DNA聚合酶或Bsm大片段DNA聚合酶或Bst大片段DNA聚合酶的作用置换所述探针。后两种DNA聚合酶缺乏3'→5'核酸外切酶活性。当所述分子信标被置换后,其保持它的茎‑环结构形式,接触猝灭相对于每单位时间TTP或dCTP的产生而熄灭荧光。使用Dabcyl吸收来自5'荧光团的荧光。在所有3种检测系统中实时地进行检测
与检测系统1有关的试剂盒可以包含DNA依赖性DNA聚合酶和天然的T或dC底物,或Br‑dU或dC,最优选地为天然的T或dC底物。优选地,所述DNA依赖性DNA聚合酶缺乏3'→5'核酸外切酶。
优选地,该试剂盒包括TMPK或dCMPK,其浓度为0.001ng/反应‑100ng/反应,更优选地0.01ng‑10ng、0.02U/L‑0.002U/LNdPK/反应;0.5mM‑15mM的γ‑磷酸供体(如ATP、UTP、CTP或GTP),更优选地3mM‑6mM,最优选地4mM‑5mM ATP。
引物,长度为10‑20个核苷酸,更优选长度为10‑15个核苷酸。所述引物可以是小沟结合的修饰引物。引物的实例是SEQ ID:9。
模板,50‑1000个核苷酸,更优选地75‑250个核苷酸,具有与所述引物序列互补的3'‑近端序列;优选地所述模板序列在用于检测TK或dCK时,在所述引物结合位点的下游(即所述模板的5'‑方向)1‑10个核苷酸处,更优选地在与所述引物序列互补的3'‑末端的紧接着的下游位置,具有一或多个“A”或“G”。最优选地,一个A或一个G定位于与所述引物序列互补的3'‑末端的紧接着的下游位置。形成其余的模板序列的核苷酸组合物用于检测TK活性时优选地是T、C和G的混合物,用于检测dCK活性时用A代替G,GC比例优选为60%‑40%。模板的实例是SEQ ID:7。
嵌入或表面结合荧光分子,例如SYBR或Eva Green

所述试剂盒还可以包括脱氧核糖核苷三磷酸,dGTP、dATP、TTP和dCTP。
所述试剂盒可以包括酶稳定剂如DTT或DTE,其终浓度为2mM‑8mM;终浓度为0.2%‑1%(W/V)的BSA;Mg2+为MgCl2,其浓度为5mM‑12mM,最优选地为5mM‑10mM。
所述DNA依赖性DNA聚合酶优选地浓度为0.01U/反应‑5U/反应。天然的T或dC底物优选地为0.01mM‑1mM,更优选地为0.1mM。
在涉及利用嵌入分子的检测系统的方法中,MMX和样品的混合物优选地在36℃‑42℃下,更优选地在37℃下孵育30‑220分钟,并通过与荧光捕获循环数(Ct)关联而实时地确定样品中TK或dCK的量,所述荧光捕获循环数(Ct)为归一化的荧光与选定的荧光阈值水平交叉所需要的循环数。接下来拟合阈值Ct交叉点至预先选定的具有已知数量的不同TK U/l或dCK U/l的样品的Ct,其构成相应脱氧核糖核苷激酶的标准曲线(图7)。值外推至包括两至八个不同的TK或dCK催化浓度(优选地1‑3U/l、10‑20U/l、50‑100U/l、100‑500U/l和500‑1500U/l之间的任何浓度)的标准曲线。所述标准曲线包括不同地分配的(assigned)TK或dCK。
用于使用检测系统2检测TK或dCK的试剂盒可以包含DNA依赖性DNA聚合酶和天然的T或dC底物,或BrdU或dC。最优选的为天然的T或dC底物。优选地所述DNA依赖性DNA聚合酶缺乏3'→5'核酸外切酶,但具有5'→3'核酸外切酶活性,例如Taq DNA聚合酶或TthDNA聚合酶。
优选地所述试剂盒包括TMPK或dCMPK,其浓度为0.001ng/反应‑100ng/反应,更优选地为0.01ng‑10ng、0.02U/l‑0.002U/l NdPK。γ‑磷酸供体是必需的,如ATP、UTP、CTP或GTP,其浓度为0.5mM‑15mM,更优选地为4mM‑6mM。最优选5mM ATP。
所述试剂盒中可以包括长度为10‑20个核苷酸的引物。引物示例于SEQID:2和SEQ ID:5中。最优选的引物长度为10‑15个核苷酸。所述引物可以是小沟结合的修饰引物。
所述试剂盒中可以包括用于检测系统2中的长度为25‑200个核苷酸的模板。模板的实例如SEQ ID:1和SEQ ID:4中所示。所述模板包括与所述引物互补的3'‑序列和下游(即朝向所述模板5'末端)的与双重标记核酸探针互补的序列。所述模板序列可以包含定位于所述引物3'‑末端下游1‑10个核苷酸处,更优选地紧接所述引物3'‑末端下游的一或多个“A”或“G”。形成其余模板序列的核苷酸组合物优选地是T、C、G和A的混合物,其GC比例优选为60%‑40%。探针(长10‑30个核苷酸,例如SEQ ID:3或SEQ ID:6)共价地由本领域中已知在功能上兼容的荧光团和猝灭剂对标记。例如对于TK特异性模板,所述探针的5'结合的荧光团可以包含6‑FAM荧光标记而3'‑远端核苷酸可以携带BHQ1猝灭荧光团标记(Biosearch Technologies Inc.)。对于dCK特异性模板,所述探针可以携带TET荧光团标记代替6‑FAM以及携带结合至3'‑远端核苷酸的BHQ1荧光团。6‑FAM和TET之间的光谱差异足够大(11nm)使得即使在以多重形式运行时可以区别两种荧光团发射的光。该试剂盒中可以包括核苷酸TTP、dCTP、dGTP和dATP。该试剂盒可以包括2mM‑10mM终浓度的酶稳定试剂(如DTT或DTE);终浓度0.2%‑1%(W/V)的BSA;浓度为40mM‑100mM,最优选地50mM的单价阳离子作为盐(如KCl的K‑);浓度为5mM‑14mM,最优选地7mM‑12mM的二价阳离子(如MgCl2或MgSO4的Mg2+)。
所述DNA依赖性DNA聚合酶优选地以每反应0.01U‑2U的浓度存在。所述T或BrdU或dC底物或天然的T或dC底物优选地以0.01mM‑1mM,更优选地为0.1mM的浓度存在。
使用这些试剂盒组分的图2中所描述的方法包括优选地在33℃‑42℃下,更优选在37℃下孵育所述样品和MMX 30‑200分钟,并实时连续地捕获和测量来自所述检测物的信号的增加。优选地通过关联归一化荧光(即已从总荧光中扣除开始荧光捕获后的至少前五个捕获循环中的背景荧光后的来自样品的剩余荧光)与选定的荧光阈值水平交叉所需要的荧光捕获循环数(Ct),或关联达到相同阈值所需要的时间来确定样品中TK或dCK的量。将所述样品的阈值Ct拟合至标准曲线,所述标准曲线构建自预先选定的已知TK或dCK催化浓度(以U/l表示)的标准物。阈值水平的确定可以在运行前通过设置固定的阈值实现,或在运行完成后通过设置包括最低脱氧核糖核苷激酶活性的对照(例如含有0U/l的阴性对照)在运行最后一分钟交叉的阈值水平来实现。
使用图3中所描绘的检测系统3用于检测TK或dCK的试剂盒可以包含DNA依赖性DNA聚合酶和天然底物T或dC或BrdU或dC,最优选地包含T或dC天然底物。优选地,所述DNA依赖性DNA聚合酶是置换活性聚合酶,例如Φ29 DNA聚合酶或来自史氏芽芽胞杆菌(Bacillus smithii)的Bsm DNA聚合酶的大片段(K.K.DNAFORM)或来自脂肪嗜热芽孢杆菌(Bacillus stearothermophilus)的Bst DNA聚合酶大片段(New England Biolabs Inc.)。优选地所述试剂盒包括TMPK或dCMPK,其浓度为0.001ng/反应‑100ng/反应,更优选地为0.01ng‑10ng、0.02U/l‑0.002U/l NdPK。γ‑磷酸供体是必需的,如ATP、UTP、CTP或GTP,其浓度为2mM‑8mM,更优选地为4mM‑6mM。最优选的是浓度为4mM的ATP。
所述试剂盒中可以包括长7‑20个核苷酸的引物。引物的实例示于SEQID:9。所述引物序列可以是小沟结合的修饰引物。最优选的引物长度为10‑16个核苷酸。
所述试剂盒中可以包括长度为30‑1000个核苷酸的模板。模板序列的实例示于SEQ ID:8。所述模板包括与所述引物互补的3'‑序列和下游(即朝向所述模板5'末端)的与双重标记核酸探针互补的序列。所述模板序列可以包含定位于所述引物3'‑末端下游1‑10个核苷酸处,更优选地在所述引物3'‑末端下游2‑4个核苷酸处,更加优选地紧接所述引物3'‑末端下游的一或多个“A”或“G”。形成其余模板序列的核苷酸组合物优选地是T、C、G和A的混合物,GC的比例优选为60%‑40%。所述试剂盒可以含有分子信标探针。所述探针的结构示例于图3中。所述探针可以包含5'‑共价结合的荧光团和朝向3'‑末端的猝灭剂荧光团。优选地,所述猝灭剂是接触猝灭剂荧光团(如Dabcyl)并根据接触猝灭原理起作用。探针序列的实例示于SEQ ID:10。形成其余模板序列的核苷酸组合物优选地是T、C和G或A的混合物,GC的比例优选为60%‑40%。
该试剂盒的其他组分可以是TTP、dCTP、dGTP、dATP或其他修饰的核苷酸;终浓度2mM‑8mM的酶稳定试剂(如DTT或DTE);终浓度0.2%‑1%(W/V)的BSA;浓度为5mM‑100mM,最优选地10mM的单价阳离子作为盐(如KCl的K‑);浓度为5mM‑12mM,最优选地5mM‑10mM的二价阳离子(如MgCl2或MgSO4的Mg2+)。
该试剂盒可以含有具有DAN链置换特性的DNA聚合酶,例如BSMDNA聚合酶的大片段。更优选的是具有链置换特性并缺乏3'→5'核酸外切酶活性的DNA依赖性DNA聚合酶。所述置换DNA依赖性DNA聚合酶优选地为0.01U‑2U/反应的浓度。所述T或BrdU或dC底物或天然的T或dC底物优选地为0.01mM‑1mM,更优选地为0.1mM。
使用这些试剂盒组分的图3中所描述的方法包括优选地在33℃‑42℃下,更优选在37℃下孵育所述样品和MMX并实时连续地测量荧光的减少。优选地通过关联归一化荧光(即已从总荧光中扣除开始后的至少前5‑18个循环的背景荧光后的来自样品的剩余荧光)与选定的阈值水平交叉所需要的荧光捕获循环数(Ct),或关联达到相同阈值所需要的时间来确定样品中TK或dCK的量。将所述样品的阈值Ct拟合至标准曲线,所述标准曲线构建自预先选定的已知TK或dCK催化浓度(以U/l表示)的标准物。
WO10036359中描述了用于聚合酶活性测定的试剂盒。WO10036359中的方法和试剂盒没有讨论如何检测有血清的样品中的聚合酶活性。存在对可以检测有血清的样品中的聚合酶活性的试剂盒的需要。
实施例
以下应用于本文本节中所描述的所有检测系统。
‑对实施例1之后的所有实施例,反应管和PCR仪器是相同的。
‑对实施例1之后的所有实施例,缓冲液混合物是相同的。
‑MMX定义为包含除所要测试的含有脱氧核糖核苷激酶的样品(包括脱氧核糖核苷激酶已被缓冲液替代的阴性对照)的所有组分。
‑样品可以是重组或纯化的脱氧核糖核苷激酶或包含脱氧核糖核苷激酶的血清或血浆。
‑对所有样品,在表2中所描述的缓冲液中稀释脱氧核糖核苷激酶。
‑不论何种检测系统,反应体积都为25μL。
‑不论使用何种检测系统,所有样品以三个重复运行。
实施例1:
根据检测系统1的hrTK1标准曲线。
构建代表200pg、20pg和2pg的hrTK1的hrTK1催化活性值的标准曲线。包括0pg标准点作为阴性对照并用于确定归一化荧光的阈值水平。hrTK1的比活性为2.1μmol/min/mg。每个标准点以三个重复运行。在TK稀释缓冲液中稀释hrTK1(表2)。

表2.TK稀释缓冲液。
简单地,制备酶混合物以含有每个标准点的hrTK1以及:稀释500X的酵母NdPK(获得每反应0.01单位的最终催化浓度)和稀释50X的TMPK(等于每反应36ng)。所述酵母NdPK和重组TMPK的比活性估计分别为5.4μmol/min/mg和3μmol/min/mg。根据表4制备缓冲液‑、底物‑和寡核苷酸混合物。室温下在1.5ml聚丙烯微离心管中通过混合缓冲液‑、底物‑和寡核苷酸混合物(表3)以及0.8U的Klenow外切‑DNA聚合酶制备每个标准点的3.2*25μl MMX(包括0pg hrTK1阴性对照)。

表3.根据检测系统1用于测定TK的MMX和酶混合物。
在所述无模板对照MMX中包括200pg酶混合物。以一式三份分配25μl至100μl PCR管(Qiagen GmbH)。盖上管并放入Rotor‑Gene Q 3000(Qiagen GmbH)实时PCR仪器。运行谱为:(1)在42℃保持2分钟,(2)在35℃保持1分钟,(3)在37℃保持15分钟,(4)循环:37℃30秒→37℃信号采集30秒,信号采集至/FAM通道(在470nm下激发,在510nm下检测)。每个循环重复90次。总的测定时间为108min。
结果
从循环1进行荧光归一化。针对0pg的hrTK1在90个循环(分钟)后的交叉选择阈值。在此实施例中,得到0.000归一化荧光单位的阈值。在X‑轴上给出来自各标准点(以pg脱氧核糖核苷激酶给出)的活性。每个标准点带有pg(X);Ct(y)值。获得0.965的R2值,表明所述标准曲线可以用于确定样品中的TK U/l的量。
实施例2
根据检测系统1的来自hrdCK的dCK标准曲线。
构建代表来自20000pg、2000pg、200pg、20pg和2pg的酶的hrdCK催化活性的标准曲线。包括0pg标准点作为hrdCK阴性对照并用于确定归一化荧光的阈值水平。简单地说,制备酶混合物以含有hrTK1的每个标准点;NdPK如实施例1而dCMPK稀释50X(等于每反应48ng的酶,表4)。估计重组dCMPK的比活性为35μmol/min/mg。室温下在1.5ml聚丙烯微离心管中通过混合缓冲液‑、底物‑和寡核苷酸混合物(表3)以及0.8U的Klenow外切‑片段DNA聚合酶来制备每个标准点的3.2*25μl MMX(包括0pg hrdCK阴性对照)。MMX制备与实施例1是相同的,除了在所述MMX中用TTP替代dCTP。寡核苷酸混合物根据表4。

表4:用于根据图4测量hrdCK催化浓度的寡核苷酸和酶混合物,与实施例1不同。
最后添加来自各个标准点的酶混合物。在所述NTC MMX中包括2000pg hrdCK的酶混合物。接着,分配25μl至三个独立的PCR管。
盖上管并放入实时PCR仪器。循环谱为:(1)在42℃保持2分钟,(2)在35℃保持1分钟,(3)在37℃保持15分钟,(4)循环:37℃30秒→37℃下信号采集30秒,信号采集至SYBR/FAM通道(在470nm下激发,在510nm下检测)。每个循环重复90次。总的测定时间108min。
结果
从循环1归一化荧光。选择90分钟后的0pg为阈值。设置阈值为0.017归一化荧光单位。在X‑轴上给出来自各个标准点(以pg脱氧核糖核苷激酶给出)的活性。每个标准点带有pg(X);Ct(y)值(图4)。
实施例3
根据检测系统2的hrTK1标准曲线。
构建代表200pg、20pg和2pg的hrTK1的催化活性的标准曲线。包括0pg标准点作为阴性对照。简单地,制备酶混合物以包含所述hrTK1标准点;NdPK和TMPK如实施例1。如实施例1制备MMX,除了0.4U的Taq DNA聚合酶替代Klenow DNA聚合酶而所述寡核苷酸根据表5。最后添加各个标准点的酶混合物至每个专门的MMX。在所述NTC中包括200pg酶混合物。从每个标准点混合物分配25μl至3个PCR管。盖上管并放入PCR仪器。循环谱为:(1)在42℃保持1分钟,(2)在35℃保持1分钟,(3)循环:37℃30秒→37℃信号采集30秒,信号采集至SYBRFAM通道(激发波长在510nm处检测波长为470nm)。每个1min循环重复60次。总的测定时间为65分钟。

表5:用于根据检测系统2测定hrTK1的寡核苷酸和DNA聚合酶,不同于实施例1。
结果
图12描绘了从该实验获得的原始的荧光。标准归一化原始荧光,即从循环1开始仅计算最先的五个循环并线性化,如图5。为了确定相对于各标准点(在X‑轴上)的Ct的数目,选择2pg大约60分钟后作为阈值水平。发现该阈值为0.12的归一化荧光单位(Y‑轴)。使用内置的软件Rotor‑Gene v.6.01对所选定的阈值确定Ct值。每个标准点Ct(Y轴)的平均值和pg hrTK1值(X轴)的对数回归图给出0.98的R2值,表明使用所获得的标准曲线来确定真实的样品单位活性值的有效性。测定的精度表现(CV%)结果总结如下,见表6。注意Ct值对应所述反应中皮克的hrTK的活性。知道该特定构建的比活性为2.1μmol/min/mg酶可以推断实际的催化浓度。然而,由于仍没有针对TK活性的标准来符合国际单位的定义,即1U=1μmol/min/l,为了简化的原因,在该实施例中只给出相应的“皮克”活性。

表6.hrTK1标准点‑性能特性
实施例4
根据检测系统2的来自HrdCK的dCK标准曲线。
构建代表20000pg、2000pg、200pg、20pg和2pg的酶的HrdCK催化活性值的标准曲线。包括0pg标准点作为阴性对照。简单地,制备包含所述标准点的酶混合物;NdPK和dCMPK如在实施例1和2中给出。室温下在1.5ml聚丙烯微离心管中通过混合缓冲液‑、底物‑和寡核苷酸混合物(表7)以及0.4U的Taq DNA聚合酶来制备针对每个标准点的3.2*25μlMMX(包括0pg dCK阴性对照)。注意所述寡核苷酸用在下面在表7中给出的替代。最后添加来自各个标准点的酶混合物至所述MMX。在所述NTCMMX中包括20000pg酶混合物。分配25μl的MMX和标准点混合物至3个PCR管。盖上管并放入实时PCR仪器。循环谱为:(1)在42℃保持1分钟,(2)在35℃保持1分钟,(3)循环:37℃30秒→37℃信号采集30秒,信号采集至JOE通道(在530nm下激发,在555nm下检测)。每个循环重复60次。总的测定时间为65分钟。

表7:用于根据检测系统2测定dCK催化浓度的MMX。
结果
如实施例3中所描述的获得对于每个标准点pg dCK值的Ct值。线性荧光的对数回归给出0.98的R2值,表明使用所述标准曲线确定来自真实临床样品的dCK活性值的有效性。精度表现结果总结于表8中。对数标度上的线性回归如图7中所示。

表8:hrdCK标准点‑精度表现
实施例5
根据检测系统3的hrTK1标准曲线。
构建代表200pg、20pg和2pg酶的hrTK1催化活性值的标准曲线。简单地,制备针对各核苷酸激酶的酶混合物以包含所述核苷酸标准点以及如实施例3中所述的NdPK和TMPK。根据实施例3制备3.2*25μl MMX,有如下例外:DNA依赖性DNA聚合酶和寡核苷酸用下面表9中所给出的替代。

表9.用于根据检测系统3确定hrTK1的MMX,不同于实施例3。
最后添加来自各个标准点的酶混合物至各个MMX。在NTC中包括200pg酶混合物。盖上管并放入实时PCR仪器。循环谱为:(1)在42℃保持1分钟,(2)在35℃保持1分钟,(3)在37℃保持15分钟,(4)循环:30秒→37℃信号采集30秒,信号采集至FAM通道,重复90次。总的测定时间108分钟。选择90分钟的0pg为阈值。
结果
图x描绘了来自被置换的FAM/DABCYL分子信标探针的原始荧光的实时减少。设置阈值为0.012归一化荧光单位。图14显示了获自3个标准点的Ct值的平均值的对数回归。R2值为0.96。所述线性荧光的对数回归给出0.98的R2值,表明使用所述标准曲线确定来自真实临床样品的dCK活性值的有效性。
实施例6
根据检测系统3的hrdCK标准曲线。
构建代表2000pg、200pg、20pg和2pg的酶的hrdCK催化活性值的标准曲线。包括0pg标准点作为阴性对照并用于设置阈值归一化荧光值。简单地,制备针对各核苷酸激酶的酶混合物,其包含所述核苷酸标准点以及根据实施例2和4的NdPK和dCMPK。根据实施例5制备3.2*25μlMMX,除了所述寡核苷酸根据下面的表10。

表10:用于根据检测系统3确定hrdCK催化浓度的MMX,不同于实施例2和4。
最后添加来自各核苷酸和各标准点的酶混合物至各MMX。在NTCMMX中包括200pg酶混合物。从每个标准点分配25μl至3个100μl PCR管,盖上管并放入实时PCR仪器。循环谱为:(1)在42℃保持1分钟,(2)在35℃保持1分钟,(3)循环:37℃30s→37℃信号采集30s,信号采集至JOE通道。每个循环重复90次。总的测定时间为108分钟。
结果
从循环1归一化荧光信号。选择90分钟后的0pg作为阈值。对数回归来自4个标准点的平均Ct值。R2值为0.96。
实施例7
使用有不用量的各脱氧核糖核苷激酶的混合物的根据检测系统2的hrTK1和hrdCK多重测定
从有不同hrTK1和hrdCK催化活性值(下面表11中给出)的混合物构建标准曲线。简单地,制备酶混合物,其包含每个标准点hrTK1/hrdCK点以及根据实施例1和2的NdPK、TMPK和dCMPK。根据实施例3制备MMX,除了以下例外:包括来自实施例4的寡核苷酸而NdPK为0.02U/反应。

表11:TK和dCK多重混合物
最后添加各酶混合物至每个MMX。管加盖并放入实时PCR仪器。循环谱为:(1)在42℃保持2分钟,(2)在35℃保持1分钟,(3)在37℃保持15分钟,(4)循环:37℃30s→37℃信号采集30s,信号分别获得至FAM/SYBR通道和JOE通道。每个循环重复90次。总的测定时间为108分钟。从循环1开始归一化。90分钟后的0pg TK选择为阈值。
结果
图8显示了来自所述多重实验的在对数标度上的线性回归结果。Y‑轴上是需要用于检测的Ct的数目。X‑轴是来自各脱氧核糖核苷激酶的绝对的“pg”活性。该结果清楚地表明任一脱氧核糖核苷激酶的量对其他的引物延伸效率没有影响。两种脱氧核糖核苷激酶所包含的不同的斜率可能由于这些酶可能表现出的不同的比活性。
实施例8
根据检测系统2测定犬血清样品中的野生型TK催化浓度并与TK‑REA方法相关联。
根据检测系统2测试之前诊断有恶性肿瘤疾病的犬血清样品的hrTK1催化浓度。之前已通过TK‑REA方法测量了每份血清。标准曲线包括200pg、20pg和2pg的hrTK1的催化活性。根据实施例2进行该实验,有以下例外:1)血清样品用TK稀释缓冲液替代hrTK1并添加血清至5%的终浓度,即在每个反应中包括1.25μl的血清(每MMX/酶混合物4μl的血清);2)循环谱根据实施例1。从循环1归一化。90分钟后的0pg TK选择为阈值。
结果
使用Rotor‑Gene v.6.1软件(Qiagen GmbH)获得每个标准点和血清样品的Ct。对所述样品和标准曲线进行对数标度上的线性回归,如图9。可以立即看到2个血清不能拟合最初获得的TK‑REA U/l值。具有“〉80”的值的第三个血清也不能拟合,因为这不可能拟合至所述线。因此,认为这三个血清为“异常值(outlier)”,构建不包括这三个血清的回归线。所述标准点的方程和所述血清标本不包括三个异常值(“>80”、33.2和9.8TK‑REA U/l)的方程,对于所述曲线的斜率相差只有2.4Ct。显然两条曲线享有相同的斜率。在本实施例中使用根据本发明的方法估计来自血清的U/l,仅使用针对所述血清点的回归线方程进行,即方程y=‑10,79Ln(x)+93,784。通过使用方程U/l=e^((11.79ln(pg(x))+21.085)/10.67)相对于所述标准点回归曲线给出的“pg”的TK活性量来解决关联pg hrTK1至所述血清样品的回归线。在图9中,由[“pg”TK(X);Ct(Y)]代表每个标准点而由[“TK‑REA U/l”TK(X);Ct(Y)]代表每个血清。对每条曲线给出R2值。图9中的“OL”表示异常值血清。来自图9的结果与精度数据列于表12和13。有趣的是,可以使用根据本发明的方法不需要稀释而通过外推至延长的血清回归线估计“>80U/l”样品为具有450U/l TK‑REA相应单位。

表12:对hrTK1的pg量估计的TK‑REA U/l值和标准点精度数据


表13:犬血清TK‑REA U/l值与使用具有测试精度数据(测定内CV%)的根据检测系统2的方法的标准曲线获得的值的关联。
实施例9
使用SYBR Green I技术原理,即检测系统1测定掺入血清的hrTK1样品。
使用SYBR Green技术原理测试来自犬的血清,之前已使用Diasorins.r.l.(Saluggia Italy)的TK‑REA产品测量过所述血清。掺入10%来自血液供体的人正常血清的标准曲线样品(代表来自40pg、20pg、4pg、2pg和0pg的hrTK1的催化活性)与所述血清样品(最终10%)并排测量。包括0pg掺入的标准样品作为阴性对照和归一化荧光的阈值决定因素。简单地,制备酶混合物为含有0.002U NdPK和18ng每反应的dTMP激酶、各hrTK1标准点样品或各血清样品。根据表3制备缓冲液‑、底物‑和寡核苷酸混合物。室温下在1.5ml聚丙烯微离心管中通过混合水、混合物与0.5U的Klenow外切‑DNA聚合酶(Fermentas AG)来制备针对每个样品的MMX。使用MMX200pg hrTK1的所述酶混合物标准点样品作为无模板对照(NTC)。


表14:使用SYBER Green I技术原理,即根据检测系统1测定掺入血清的hrTK1的MMX。
分配样品,盖上管并放入实时PCR仪器。运行谱为:(1)在40℃保持1分钟,(2)在30℃保持1分钟,(3)在35℃保持10分钟,(4)循环:37℃30秒→37℃信号采集30秒,信号采集至SYBR通道(在470nm下激发,在510nm下检测)。每个循环重复60次。
结果
从循环1使用标准归一化获得荧光归一化并进行线性化,如图10(即使用来自最初五个循环的平均荧光来确定背景荧光,根据软件提供商从随后的循环获得的荧光推断所述背景荧光)。NTC阈值(截断值(cutoff))是具有最高荧光增加的样品的4%。使用内置的软件Rotor‑Gene v.6.01(Corbett Research,Australia)对所选择的阈值确定Ct值。选择0pg的hrTK1在大约56个循环(Ct)后交叉的值为阈值。在此实施例中,得到0.03295归一化荧光单位的阈值。图11描绘了所获得的Ct值在对数标度上的线性回归。来自各样品的活性以pg的hrTK1或TK‑REA U/l在X‑轴上给出。每个样品点带有pg/TK‑REA U/l(X);Ct(y)值。对所述掺入血清的hrTK1标准点样品获得线性回归和0.9688的R2分值,表明该相关性足够好以确定样品中的TK U/l的量。对两个独立的回归曲线应用学生t检验以进一步确定斜率之间的关系。由于小的数据集,手工计算所述t‑检验。用相等方差而不相等样本大小进行该检验。对该数据集的0.07分值表明很可能可以认为所述斜率是相等的。
实施例10
使用链置换技术原理,即根据检测系统3获得的hrTK1标准曲线。
构建代表来自80pg、40pg、20pg、8pg和0pg的HrdCK的催化活性值的标准曲线。简单地,如实施例2和表7中所描述的制备针对每个标准点的MMX。

表15:根据置换原理用于测定hrTK1的MMX
在所述NTC中包括80pg含有hrTK1的酶混合物。分配样品,盖上管并放入实时PCR仪器。循环谱为:(1)在42℃保持1分钟,(2)在35℃保持1分钟,(3)在37℃保持15分钟,(4)循环:37℃30s→37℃信号采集30s,信号采集至FAM通道,重复90次。总的测定时间108分钟。90分钟的0pg选择为阈值。
结果
图12描绘了实时的来自被置换的FAM分子信标发夹探针的归一化荧光的减少。所使用的归一化方法是根据软件提供商说明(Corbett‑Research)的动态管归一化。设置阈值在‑(负)0.02118归一化荧光单位。图13显示了从六个标准点获得的平均Ct值在对数标度上的线性回归。R2值为0.9422,表明可以应用所述标准曲线来确定来自血清或血浆的临床样品中的TK活性。
参考文献
Eriksson S,Munch‑Petersen B,Johansson K,Eklund H.Structure and function of cellular deoxyribonucleoside kinases.Cell Mol Life Sci.200259(8):1327‑46.
Topolcan O and Holubec L.Jr.The role of thymidine kinase in cancer diseases.Expert.Opin.Med.Diagn.20082(2):129‑141
Patents:US2008/0248472,EP1385005,WO2009/063254

试剂盒和方法.pdf_第1页
第1页 / 共42页
试剂盒和方法.pdf_第2页
第2页 / 共42页
试剂盒和方法.pdf_第3页
第3页 / 共42页
点击查看更多>>
资源描述

《试剂盒和方法.pdf》由会员分享,可在线阅读,更多相关《试剂盒和方法.pdf(42页珍藏版)》请在专利查询网上搜索。

1、(10)申请公布号 CN 103038361 A (43)申请公布日 2013.04.10 CN 103038361 A *CN103038361A* (21)申请号 201180024021.1 (22)申请日 2011.05.13 1050473-6 2010.05.14 SE C12Q 1/48(2006.01) C12N 9/12(2006.01) (71)申请人 P斯托尔汉德斯克 地址 瑞典克尼夫斯塔 申请人 J伦纳斯特兰德 (72)发明人 P斯托尔汉德斯克 J伦纳斯特兰德 (74)专利代理机构 永新专利商标代理有限公司 72002 代理人 左路 林晓红 (54) 发明名称 试剂盒和。

2、方法 (57) 摘要 本发明涉及包含 DNA 依赖性 DNA 聚合酶和 至少一种天然的脱氧核苷的试剂盒, 并涉及包含 DNA 依赖性 DNA 聚合酶和检测系统的试剂盒, 所 述检测系统包含 DNA 模板分子、 DNA 引物分子和 荧光部分, 所述荧光部分能够被置换出或能够结 合至所述 DNA 依赖性聚合酶合成的 dsDNA。其还 涉及用于测量样品中脱氧核糖核苷激酶活性的方 法, 其特征在于 ; (i) 使样品在容器中与反应混合 物接触, 所述反应混合物包含 DNA 依赖性 DNA 聚 合酶、 至少一种脱氧核糖核苷和检测系统, 所述检 测系统包含DNA模板分子、 DNA引物分子和荧光部 分, 所。

3、述荧光部分能够掺入所述 DNA 依赖性聚合 酶合成的dsDNA、 从所述DNA依赖性聚合酶合成的 dsDNA 中被置换出或结合至所述 DNA 依赖性聚合 酶合成的 dsDNA ; (ii) 孵育所述容器 ; (iii) 测量 来自所述荧光部分的信号 ; 和使来自所述荧光部 分的信号与所述样品中的脱氧核糖核苷激酶活性 相关联。 (30)优先权数据 (85)PCT申请进入国家阶段日 2012.11.14 (86)PCT申请的申请数据 PCT/SE2011/050605 2011.05.13 (87)PCT申请的公布数据 WO2011/142719 EN 2011.11.17 (51)Int.Cl.。

4、 权利要求书 2 页 说明书 22 页 序列表 4 页 附图 13 页 (19)中华人民共和国国家知识产权局 (12)发明专利申请 权利要求书 2 页 说明书 22 页 序列表 4 页 附图 13 页 1/2 页 2 1. 包含 DNA 依赖性 DNA 聚合酶和至少一种天然的脱氧核糖核苷的试剂盒。 2.包含DNA依赖性DNA聚合酶和检测系统的试剂盒, 所述检测系统包含DNA模板分子、 DNA引物分子和荧光部分, 所述荧光部分能够从所述DNA依赖性聚合酶合成的dsDNA中被置 换出或结合至所述 DNA 依赖性聚合酶合成的 dsDNA。 3. 权利要求 1 或 2 的试剂盒, 还包含至少一种磷酸转。

5、移酶。 4.权利要求1至3中任一项的试剂盒, 还包括至少一种天然的或修饰的脱氧核糖核苷。 5. 权利要求 1 至 4 中任一项的试剂盒, 其中所述至少一种天然的脱氧核糖核苷选自脱 氧胸苷和 / 或脱氧胞苷或其混合物。 6. 权利要求 1 至 5 中任一项的试剂盒, 其中所述至少一种修饰的脱氧核糖核苷选自修 饰的胸苷和修饰的胞苷, 例如 BrdU 和 / 或 IdU, 或其混合物。 7. 权利要求 1 至 6 中任一项的试剂盒, 其中所述荧光部分偶联至单链 DNA 探针。 8. 权利要求 7 的试剂盒, 其中所述荧光部分和一猝灭部分偶联至单链 DNA 探针。 9. 权利要求 2 至 6 中任一项。

6、的试剂盒, 其中所述荧光部分是双链 DNA 表面结合或嵌入 分子, 例如 PicoGreen、 Eva 染料或 SYBR GreenI。 10.权利要求7或8的试剂盒, 其中结合至所述单链DNA探针的荧光部分在所述探针处 于其完整形式时是猝灭的。 11. 权利要求 9 的试剂盒, 其中所述 DNA 依赖性 DNA 聚合酶具有 5 至 3 核酸外切酶活 性, 例如 Taq DNA 聚合酶或 Tth 聚合酶。 12.权利要求7或8的试剂盒, 其中结合至所述单链DNA探针的荧光部分当处于其完整 形式并杂交至其靶模板时达到最大荧光。 13. 用于测量样品中脱氧核糖核苷激酶活性的方法, 其特征在于 : 。

7、a.使样品在容器中与反应混合物接触, 所述反应混合物包含DNA依赖性DNA聚合酶、 至 少一种脱氧核糖核苷和检测系统, 所述检测系统包含 DNA 模板分子、 DNA 引物分子和荧光部 分, 所述荧光部分能够掺入所述 DNA 依赖性聚合酶合成的 dsDNA、 从所述 DNA 依赖性聚合酶 合成的 dsDNA 中被置换出或结合至所述 DNA 依赖性聚合酶合成的 dsDNA ; b. 孵育所述容器 ; c. 测量来自所述荧光部分的信号 ; d. 使来自所述荧光部分的信号与所述样品中的脱氧核糖核苷激酶活性相关联。 14. 权利要求 13 的方法, 其中所述至少一种脱氧核糖核苷是天然的或修饰的脱氧核糖 。

8、核苷或其混合物。 15.权利要求13或14中任一项的方法, 其中所述至少一种天然脱氧核糖核苷选自脱氧 胸苷和 / 或脱氧胞苷或其混合物。 16.权利要求13或14中任一项的方法, 其中所述至少一种修饰的脱氧核糖核苷选自修 饰的胸苷和修饰的胞苷, 例如 BrdU 和 / 或 IdU, 或其混合物。 17. 权利要求 13 至 16 中任一项的方法, 其中所述荧光部分偶联至单链 DNA 探针。 18. 权利要求 13 至 17 中任一项的方法, 其中所述荧光部分和一猝灭部分偶联至单链 DNA 探针。 19.权利要求13至16中任一项的方法, 其中所述荧光部分是双链DNA表面结合或嵌入 分子, 例如。

9、 PicoGreen、 Eva 染料或 SYBR Green I。 权 利 要 求 书 CN 103038361 A 2 2/2 页 3 20.权利要求13至18中任一项的方法, 其中结合至所述单链DNA探针的荧光部分在所 述探针处于其完整形式时是猝灭的。 21. 权利要求 20 的方法, 其中所述 DNA 依赖性 DNA 聚合酶具有 5 至 3 核酸外切酶活 性, 例如 Taq DNA 聚合酶或 Tth 聚合酶。 22.权利要求17或18的方法, 其中结合至所述单链DNA探针的荧光部分当处于其完整 形式并杂交至其靶模板时达到最大荧光。 权 利 要 求 书 CN 103038361 A 3 1。

10、/22 页 4 试剂盒和方法 技术领域 0001 本发明涉及实时地均质(即非固相)测定样品中的一或几种脱氧核糖核苷激酶的 试剂盒和方法, 其用于诊断疾病、 失调、 感染 ( 病毒性和细菌性 ) 或癌症。 0002 发明背景 0003 脱氧核糖核苷激酶 0004 真核细胞中存在至少三种脱氧核糖核苷激酶, 胸苷激酶1和2(TK1和TK2)、 脱氧胞 苷激酶 (dCK) 和脱氧鸟苷激酶 (dGK)。 0005 存在着编码两种不同胸苷激酶的两种人类基因座。 可以在细胞的胞浆中发现胸苷 激酶。胸苷激酶 2 定位于线粒体并参与线粒体 DNA 合成。TK2 具有与胸苷激酶 1 不同的氨 基酸序列、 底物特异。

11、性和表达谱。 0006 从细胞周期的 G1 期末期开始和贯穿 S 期, 胸苷激酶 1 的活性最为明显。TK 和 dCK 负责通过补救途径调节细胞中的 TTP 和 dCTP 池。所述 TK 酶在三磷酸腺苷 (ATP) 的存在下 催化胸苷向单磷酸胸苷 (TMP) 转化。 0007 在整个细胞周期都发现脱氧胞苷激酶的活性, 并且主要在淋巴来源的细胞中鉴定 到其活性。TK2 定位于线粒体中并与 dCK 具有对 dC 几乎相等的亲和力。 0008 疾病的诊断 0009 在 20 世纪 80 年代早期, 表明胸苷激酶活性不仅可以从受各种肿瘤疾病影响的患 者的血清中检测到, 而且与健康人类个体 ( 其中通常。

12、表现出非常低的 TK 活性 ) 有广泛的差 异。 0010 目前广泛接受使用 TK 作为血液癌症疾病诊断和预后的单一肿瘤标记物。在某些 情况下, TK 已显示出直接的诊断能力。 0011 TK和其他脱氧核糖核苷激酶的活性早已与疾病相关联, 这由Eriksso等人(2002) 和由 Topolcan 与 Holubec(2008) 在综述中有所总结。 0012 已将 TK2 和线粒体疾病相联系。 0013 检测脱氧核糖核苷激酶的测定 0014 放射性底物, 如 3H- 胸苷, 已被广泛用于在过滤结合测定中确定 TK 和 dCK 的活性。 对于常规的临床诊断, 基于放射性的测定不是个有吸引力的选择。

13、。 0015 在最近几年中, 已作过几种尝试以开发不基于放射性的测定, 所有这些测定在一 个方面或其他方面更好。以下是在不同的脱氧核糖核苷激酶的检测中所使用的一组方法、 测定和试剂组合物。 0016 在 EP1385005 中, 提出基于叠氮胸苷 (AZT) 的竞争性单磷酸化的不基于放射性的 TK 活性测定。这项技术已由 Diasorin S.r.l. 进一步开发成自动的两步骤的 发光诊断测定。在该两步的测定中, 首先由样品中存在的 TK 将 AZT 磷酸化为单磷酸化的 AZTMP。接着从缀合至异氨基苯二酰肼 (AZTMP ABEI) 的 AZTMP 检测发光, 所述缀合至异氨 基苯二酰肼的 。

14、AZTMP 与固体表面底物上的 TK 磷酸化 AZTMP 竞争结合抗 AZTMP 抗体。该两 步骤测定的主要缺点是动态读取受限。另一缺点是使用修饰的核苷底物代替天然的胸苷。 说 明 书 CN 103038361 A 4 2/22 页 5 0017 在 WO2009/063254 中公开了通过使用单磷酸化的 Br-dU 的用于确定样品中 TK 活 性的半均质方法, 所述单磷酸化的 Br-dU 通过 HPLC 分离并通过 UV 检测。该方法的缺点是 用修饰的底物进行所述反应和以分离步骤进行检测。 0018 US2008/248472 公开了固相测定, 其通过试剂混合物中的脱氧核糖核苷激酶互补 样品。

15、中 TK 活性以产生 Br-dUTP( 天然 TTP 的衍生物 )。随后使用 RNA 依赖的 DNA 聚合酶通 过引物延伸掺入所述 Br-dUTP。固相结合的 RNA 模板由单体 rA 建成, 长 200-400 个单体, 并被连至固相。在 ELISA 中使用碱性磷酸酶缀合的抗 BrdU 抗体在第二步骤检测掺入的 BrU来最终确定TK活性。 用许多手动交互步骤进行这个两步骤的测定是繁琐的并且执行 所述测定花费过长的时间。 0019 尚未提出用于测量样品中 dCK 活性的可靠的检测。 0020 附图简述 0021 图 1 显示了产生 TTP 和 dCTP 的补救途径 0022 图 2 显示了根据。

16、本发明的方法的检测系统 2 的原理 0023 图 3 显示了根据本发明的方法的检测系统 3 的原理 0024 图 4 显示了根据本发明的方法的检测系统 1 的原理 0025 图 5 通过实时荧光捕获获得的荧光曲线获得实施例 3 的 hrTK1 标准点的阈值水平 Ct。 0026 图 6 实施例 3 的 hrTK1 标准点的平均 Ct 值在对数标度上的线性回归。 0027 图 7 实施例 4 的 hrdCK 标准点的平均 Ct 值在对数标度上的线性回归。 0028 图 8 实施例 7 多重 hrTK1 与 hrdCK 在对数标度上的线性回归。 0029 图 9 犬血清样品中的 TK1 测量和实施。

17、例 8 中使用的 hrTK1 标准点在对数标度上的 线性回归。 0030 图 10 通过实时荧光捕获获得的线性归一化的荧光曲线获得实施例 9 的阈值水平 Ct。 0031 图 11 实施例 9 的致病性犬血清和 hrTK1 标准点的平均 Ct 值在对数标度上的线性 回归。 0032 图12通过实时荧光捕获获得的线性和动态管归一化的荧光获得实施例10的阈值 水平 Ct。 0033 图 13 实施例 10 的 hrTK1 标准点的平均 Ct 值在对数标度上的线性回归。 0034 定义 : 0035 本说明书中的所有术语和词语应当按照其正常含义和在相关领域中的使用来解 释。为了明确起见, 以下更具体。

18、地讨论一些术语。 0036 除非另有说明, 在整个发明中互换地使用胸苷和脱氧胸苷。 0037 均质测定是非固相测定, 其在延伸引物 - 模板系统时产生信号, 需要最少的引物 延伸后操作。这些测定无需分离步骤。所述反应完全在溶液中发生, 没有珠或固相附着 干扰低亲和力的相互作用。均质测定方法对药物发现中所需的通量和测定小型化是必要 的。在任何均质测定中, 在测量过程中存在所述测定的所有组分。排除分离步骤是这些测 定方法的主要优点, 但由于测定成分的非特异性测量这也存在困难 ( 来源 : http:/www. 年 4 月 28 日检索 )。 说 明 书 CN 103038361 A 5 3/22。

19、 页 6 0038 脱氧核糖核苷是包括连接至五碳糖脱氧核糖的含氮碱基的分子。 脱氧核糖核苷通 常被简单地称为结合至脱氧核糖的碱基。 天然的脱氧核糖核苷被定义为未修饰的脱氧核糖 核苷。这些的实例包括胞苷、 尿苷、 腺苷、 鸟苷、 胸苷和肌苷。 0039 天然的脱氧核糖核苷是在野生型活生物体(如人类)中存在的形式的脱氧核糖核 苷。 0040 修饰的脱氧核糖核苷也称为核苷类似物, 是在葡基胺或核酸碱基 (nucleobase) 上有任何种类修饰的脱氧核糖核苷。在医药中, 几种核苷类似物用作抗病毒剂或抗癌剂。 修饰的脱氧核糖核苷的实例是叠氮胸苷 (AZT)、 溴 - 脱氧尿苷 (Br-dU)、 碘 -。

20、 脱氧尿苷、 乙烯 基 - 脱氧胸苷和氟 - 脱氧尿苷。 0041 DNA 依赖性 DNA 聚合酶是催化脱氧核糖核苷三磷酸以单链 DNA 为模板组装为脱氧 核糖核酸的酶。在一些文献中, DNA 依赖性 DNA 聚合酶也可称为 DNA 指导的 DNA 聚合酶。 0042 DNA依赖性DNA聚合酶可以具有三种不同的酶活性 : (a)5至3聚合酶活性, 在模 板 DNA 指导下催化由脱氧核糖核苷 5- 三磷酸产生的单核苷酸单元添加至引物链的 3- 羟 基末端 ; (b) 仅在双链体 DNA 上的 5 至 3 核酸外切酶的活性 ; (c) 主要在单链 DNA 上有活 性的 3 至 5 核酸外切酶, 其。

21、可以选择性地去除不匹配的末端核苷酸。注意除 DNA 聚合酶 I 外, Taq DNA 聚合酶和来自 Thermus thermofilus 的 Tth 聚合酶是至今鉴定的仅有的具有 5 3 核酸外切酶活性的 DNA 依赖性聚合酶。 0043 DNA 模板分子是作为 DNA 依赖性 DNA 聚合酶的模板的 ssDNA 分子。 0044 DNA 引物分子是短的 DNA 分子, 其与 DNA 模板分子的区段互补并作为 DNA 依赖性 DNA 聚合酶的 DNA 聚合的引物。 0045 完整的形式 : 当本发明中所使用的 DNA 探针是根据本发明进行的任何聚合酶反应 之前的形式时, 称其为完整的形式。 。

22、0046 补救合成途径示于图 1, 是合成 TTP 和 dCTP 的途径之一。 0047 TTP 和 dCTP 是胸苷和脱氧胞苷的相应的脱氧核糖核苷三磷酸。这些首先通过在 脱氧核糖核苷激酶的帮助下从例如 ATP 转移一个磷酸基团 ( 会产生相应的单磷酸 TMP 或 dCMP) 来产生。 0048 dTMP激酶和胞嘧啶核苷酸(cytidylate)激酶催化形成相应的二磷酸核苷, TDP和 dCDP。 0049 核苷二磷酸激酶转变二磷酸盐为最终的三磷酸核苷。 0050 RNA 依赖性 DNA 聚合酶是催化脱氧核糖核苷三磷酸在第一链合成过程中以单链 RNA 为模板组装为脱氧核糖核酸的酶。 0051 。

23、所用的缩写 0052 ATP 腺苷 5- 三磷酸 0053 AZTMP 叠氮 - 胸苷单磷酸 0054 BrdU 溴脱氧尿苷 0055 dCDP 脱氧胞苷二磷酸 0056 dCK 脱氧胞苷激酶 : EC 2.7.1.21 ; ATP: 胞苷 -5- 磷酸转移酶 0057 dCMP 脱氧胞苷单磷酸 0058 dCMPK 胞嘧啶核苷酸激酶 : EC 2.7.4.14 ; ATP:dCMP 磷酸转移酶 说 明 书 CN 103038361 A 6 4/22 页 7 0059 dsDNA 双链 DNA 0060 hrdCK 人重组脱氧核糖核苷激酶 0061 hrTK1 人重组胸苷激酶 1 0062 M。

24、MX MasterMix 无样品的试剂混合物 0063 NdPK 核苷二磷酸激酶 : EC 2.7.4.6 ; ATP: 核苷二磷酸磷酸转移酶 0064 hrTK1 人重组胸苷激酶 1 0065 ssDNA 单链 DNA 0066 TDP 脱氧胸腺嘧啶二磷酸 0067 TK 胸苷激酶 : EC 2.7.1.21 ; ATP: 胸苷 -5- 磷酸转移酶 0068 TMPK dTMP 激酶 : EC 2.7.4.9 ; ATP:TMP 磷酸转移酶 0069 TMP 脱氧胸苷单磷酸 0070 发明概述 0071 本发明旨在提供用于检测脱氧核糖核苷激酶活性的通用的和改进的方法和试剂 盒。本发明人已发现。

25、仍有基于活性的脱氧核糖核苷激酶活性测定试剂盒和方法的需要, 所 述试剂盒和方法不仅可以检测样品中的 TK, 也可以用于 dCK 测试 ( 例如在癌症治疗中监测 药物抗性的发展 ), 并且其在性能上是稳健的、 快速、 简单、 用户友好而且对临床使用是安全 的。 0072 使用 dCK 作为诊断工具用于癌症疾病管理尚未发现其临床应用。然而, 在癌症治 疗中使用的几种核苷类似物 ( 例如阿糖胞苷和较新的吉西他汀 ) 是由 dCK 活化的, 因此找 到用于简单的确定抗性发展的有效的解决是最重要的, 因为已知抗性与 dCK 缺乏相联系。 0073 本发明在权利要求中总结。 0074 发明详述 0075 。

26、Taq DNA 聚合酶是来自嗜热水生菌 (Thermus aquaticus) 的 DNA 依赖性 DNA 聚合 酶。Taq 聚合酶 ( 或简单地 Taq) 具有 65-75的最佳温度区间。所述 Taq DNA 聚合酶也具 有 5 至 3 核酸酶活性。 0076 出乎意料地发现Taq DNA聚合酶在37下对于引物延伸和5至3核酸酶活性的 剩余活性足以从荧光双重标记的探针 ( 其一标记转移其能量 ( 猝灭 ) 至以热而不是光释放 能量的另一标记 ) 释放 5 结合的荧光标记物。 0077 与之前提出的对脱氧核糖核苷激酶的检测方法相比, 因此可以实时地测量脱氧核 糖核苷激酶的活性而不是确定终点的酶。

27、活性。 0078 核酸扩增测定系统中的实时检测除具有提高的灵敏度外, 还具有快速、 提高的分 辨率和更好的精度的优点。 0079 也认为对均质脱氧核糖核苷激酶活性测定来说, 为了与目前市场上的测定竞争, 它必须能够从健康的志愿者 ( 如 0.5U/l-7U/l) 中从测定开始的 5 小时内测量这些活性。 0080 在之前的尝试中, 使用 Taq DNA 聚合酶在 37下引物延伸和 5- 核酸酶反应不幸 地没有获得结果。因此, 认为并假设所述 Taq DNA 聚合酶的引物延伸反应和 5 核酸酶反应 可以被大肠杆菌的 DNA 依赖性 DNA 聚合酶 I 的相同的活性所替代, 从而保持均质测定的实 。

28、时方面。 令人失望的是不能使用该DNA聚合酶I, 因为该酶非特异地释放5结合的荧光团。 0081 因此, 再次认为对两种反应只使用一种孵育温度的真正的实时方法必须被放弃而 说 明 书 CN 103038361 A 7 5/22 页 8 用两步骤的改变温度的方法代替, 即 (1)TTP 或 dCTP 的产生必须在 37下发生, (2) 所述引 物延伸以及 5- 核酸酶荧光团的释放必须在更高的温度下 ( 例如在 51下 ) 孵育以支持 Taq DNA 聚合酶的活性。期望这能工作, 因为所述 Taq DNA 聚合酶在 51下应当保留其最 高活性的大约 40%。 0082 此外, 认为应当保留其工业实。

29、用性, 因为通过编程实时 PCR 仪器来执行温度改变, 可以使得温度改变的两步骤测定对测试供应商和操作者来说是不可见的。 0083 所以首先构建引物 - 模板 - 探针系统以协调至用于 51下杂交的最佳热力学特 性。考虑到 MgCl2的浓度, 计算所述探针的 Tm 将达到 69。在第一个尝试中仅测量 TK 活 性, 令人惊讶的是 37温育步骤已产生释放的和归一化的荧光的好的线性图, 其来自所包 括的两个标准点, 即分别来自 2000pg、 200pg、 20pg 和 2pg hrTK1 的活性。获得 0.9669 的 R2 值。来自 51反应的释放的和归一化的荧光的线性图甚至更差, 不过仍然可。

30、读。因此, 得 出的结论是用于检测样品中 TK 的可能的实时测定方法近在咫尺。更令人惊讶的是第一个 实验指示在 1h 内测量低至从正常的健康志愿者的血清样品中发现的 TK 活性的可能性。这 代表从最初的初步说明改进了 4h。所述 hrTK1 的比活性评估为 2.1mol/min/mg。该测定 只保留描述实时 PCR 的线性和平稳 ( 饱和 ) 阶段。在 37下实时检测 TK 活性的惊人效果 直接解决与两步骤温度改变方法相关的其他两个问题。第一, TK 显示特征性的 TTP 抑制。 这可能使两步骤测定难以对含有高 TK 活性的样品进行, 即需要稀释步骤。现在可以将其 省略, 因为所产生的 TTP。

31、 或 dCTP 持续地被所述 Taq DNA 聚合酶通过将 TTP 或 dCTP 掺入引 物 - 模板系统来去除。第二, Taq DNA 聚合酶在较高温度 ( 如 51 ) 下的非常高的聚合速 率(在72下35-100nt每秒)可能引起在实时解析测定结果的一些严重的问题, 因为较高 的 TK 活性值 ( 甚至低至 10U/l) 会从测定开始的几分钟内显现从而严重地限制分辨率。同 时, 由于信号分辨率的需要而仅可以使用有限量的 Taq DNA 聚合酶 U/ 反应, 健康志愿者的 活性在能检测到信号前可能需要几小时。 总之, 公开了非显而易见的发现, 现在可以将其变 为用于检测脱氧核糖核苷激酶活性。

32、的工业可应用的测定和方法, 图5。 在随后的实验中(实 施例 3) 验证了所述测定的灵敏度。 0084 总之, 现已发现天然的底物胸苷 (T) 和 / 或脱氧胞苷 (dC) 或其混合物, 和 DNA 依 赖性 DNA 聚合酶是测量脱氧核糖核苷激酶 ( 如 TK 或 dCK) 催化浓度所需要的必要的试剂。 这可以在含有用于 TK 或 dCK 活性测定的其他已知组分的均质混合物中进行。通过用反应 混合物中存在的其他核苷激酶 ( 如 dTMP 激酶或胞嘧啶核苷酸激酶 ) 和核苷二磷酸激酶的 活性互补样品中的 TK 或 dCK 催化活性, 使得该测定性能稳健、 操作快速和简单并且在临床 上是安全的。 。

33、这些试剂可以方便地纳入试剂盒和缓冲液中, 用于产生TTP或dCTP, 伴随使用 引物 - 模板 - 检测物 (detector) 系统的引物延伸, 各自有固定的浓度。在本文的剩余部分 中, 无样品的反应混合物中的试剂称为母液混合物 (master mix), 缩写为 MMX。在 MMX 中也 可以包括 DNA 依赖性 DNA 聚合酶。表 1 总结了用于测定脱氧核糖核苷激酶的方法的试剂盒 组分的现有技术情况。总之, 之前的脱氧核糖核苷激酶试剂盒权利要求没有包括 DNA 依赖 性 DNA 聚合酶和天然的 T 和 / 或 dC 底物或其混合物, 或其使用方法。 0085 表 1: 现有技术试剂盒组分。

34、与本发明比较 0086 说 明 书 CN 103038361 A 8 6/22 页 9 0087 用于检测和测量样品中的核酸靶 ( 如来自细菌和病毒 ) 的均质 PCR 测定已成为临 床诊断中极其重要的测定方法。 0088 不同的检测技术已被应用于均质 PCR 测定。这些包括使用嵌入分子检测物的猝灭 技术, 和猝灭探针技术如双重标记的 FRET 核酸探针和利用接触猝灭核酸探针的所谓的分 子信标方法。 0089 本发明的实施应用在本领域中公知的分子生物学和酶学的技术。根据本发明, 包 含 DNA 依赖性 DNA 聚合酶和作为底物的天然 T 或 dC 的试剂盒可以与几种检测部分组合用 于测量样品中。

35、 TK 或 dCK 的催化浓度。 0090 也可以用磷酸转移酶如 TMPK 或 dCMPK 和 NdPK 完善该试剂盒。这些组分可以方便 地衍生自非重组的天然宿主或来自重组酶, 所述重组酶由携带互补酶的活性基因的真核或 细菌载体系统所表达。 0091 引物 - 模板 - 探针检测物系统的设计 0092 在本发明的所有的优选方面, 设计引物 - 模板 - 探针系统是重要的。DNA 依赖性 DNA 聚合酶的选择必须匹配所述引物 - 模板 - 检测物的选择。 0093 本发明不需要如同实时 PCR 的温度循环改变。然而, 使用双重标记的单链的和 FRET 猝灭的 DNA 探针作为检测物 ( 图 2)。

36、, 容易地实时进行该检测。本文将引物 - 模板 - 探 针系统设计为使所述探针在引物之前杂交至模板, 其通过将探针序列构建为达到比所述引 物高 3 -15的 Tm 从而比所述引物更快地结合至所述模板。更加优选的是高 5 -10 的 Tm。最优选的是高 7 -9的 TM。随后 TTP 或 dCTP 启动所述引物延伸的先决条件 (pre-requisite) 可以包括短的延迟使所述探针优选地在所述引物之前结合至所述模板。 在此检测物系统 ( 图 2), Taq DNA 聚合酶是本发明的最优选的 DNA 依赖性 DNA 聚合酶。Taq DNA 聚合酶的浓度可以是每反应 0.01U-4U。更优选的为每。

37、反应 0.1U-2U。更加优选的是每 反应 0.3U-1U 的 Taq DNA 聚合酶。最优选的是每反应 0.5U 的 Taq 聚合酶。所述引物的设 计必须考虑所述猝灭剂和使用 5 核酸酶测定的 5- 荧光团之间的福斯特半径。 0094 使用荧光双重标记的单链 DNA 探针 ( 其在完整和非杂交形式是猝灭的, 如分子信 标探针, 图 3) 作为检测物, 对杂交步骤利用了相同的温度策略。引物 - 模板 - 探针系统 设计为使所述探针在引物之前杂交至模板, 其通过将探针序列构建为达到比所述引物高 说 明 书 CN 103038361 A 9 7/22 页 10 3 -15的 Tm 从而比所述引物更。

38、快地结合至所述模板。更加优选的是高 5 -10的 Tm。 最优选的是高 7 -9的 TM。随后 TTP 或 dCTP 启动所述引物延伸的先决条件可以包括短 的延迟使所述探针优选地在所述引物之前结合至所述模板。为进行根据本发明的如图 3 中 所描述的检测, 所述 DNA 依赖性 DNA 聚合酶必须具有 DNA 链置换活性。对本发明的该检测 物系统, 置换 DNA 聚合酶的浓度可以根据所使用的 DNA 聚合酶在每反应 0.01U-5U 范围内。 更优选的是每反应 0.1U-3U。 0095 对于最后一种检测物系统 ( 图 4), 通过引物延伸产生的双链 DNA 允许表面结合或 嵌入荧光分子的结合,。

39、 从而通过结合被检测 ( 图 4)。用于该检测系统的 DNA 聚合酶可以优 选地是 3 5 外切 -DNA 依赖性 DNA 聚合酶, 例如 Klenow 外切 -DNA 聚合酶。所述 DNA 聚 合酶的浓度可以根据优选的酶为每反应 0.01U-4U。更优选的是每反应 0.1U-2U。 0096 检测来自不同检测物系统的信号 0097 用于信号检测的仪器可以优选地是实时 PCR 仪器。本发明的方法对所述仪器的加 热 - 冷却原理或光激发和发射检测原理没有偏好性。 0098 根据本发明的方法可以使用 Ct值, 其随后转变为催化浓度定义, 如每升单位酶活 性 (U/l)。应当理解根据本发明的方法可以。

40、选择 Ct 值和信号取样中的时间单位。该方法使 用约定的催化浓度定义。 0099 优选地由任何检测方法通过关联所述循环数来确定样品中TK或dCK的量, 在所述 循环数荧光总和的增加或减少 ( 取决于所使用的检测系统 ) 达到可检测阈值水平。 0100 试剂盒设计 0101 所述 DNA 依赖性 DNA 聚合酶和天然 T 或 dC 底物可以分配至一或多个反应容器。 0102 适 于 在 荧 光 检 测 仪 器 进 行 本 发 明 的 方 法 的 反 应 容 器 优 选 地 能 够 容 纳 20l-200l 的总体积。更加优选的反应容器能够容纳 25l 或 50l 的体积。根据 本发明的方法的反应。

41、体积可以优选地在 5l-100l 范围内。更加优选的反应体积为 25l-50l。 0103 使用所述试剂盒的样品处理 0104 在所述 MMX 添加至反应容器后, 将样品添加至所述容器。盖上该容器并放入所述 测量仪器并孵育。开始荧光取样并持续选定数目的循环。所述 TK/dCK 样品可以优选地包 括血清或血浆。更优选的是血清和柠檬酸盐血浆。所述反应体积中样品的比例应优选地为 1%-20%。 0105 根据本发明的方法将TTP或dCTP产生与引物延伸和荧光信号显现相偶联, 用于检 测和确定样品中TK或dCK催化浓度。 简而言之, 由来自所述样品的TK或dCK与所述试剂盒 包含的 TMPK 或 dC。

42、MPK 以及 NdPK 互补活性一起产生 TTP 或 dCTP。TMPK 或 dCMPK 以及 NdPK 优选地以超过样品中 TK 或 dCK 的最高疑似浓度 ( 例如 3000U/l) 存在于所述反应中。对 于 NdPK, 为由 2000pg hrTK1(ca.10000U/l) 所代表的催化浓度的 1X-1000X。更优选的是由 2000pg hrTK1 所代表的催化浓度的 50X-1000X 的 NdPK 的浓度。对于 TMPK 或 dCMPK, 优选 为由2000pg hrTK1所代表的催化浓度的1X-1000X。 更优选的是由2000pg hrTK1所代表的 催化浓度的 50X-10。

43、0X 的浓度。 0106 所述 DNA 依赖性 DNA 聚合酶 ( 方便地包含于所述试剂盒 ) 连续地利用 TTP 或 dCTP 来根据三种检测系统其中任一种进行引物延伸反应以产生荧光信号, 所述荧光信号随后可 说 明 书 CN 103038361 A 10 8/22 页 11 以与样品中 TK 或 dCK 的催化浓度相关联。对所有三种检测系统, 优选所述模板在引物结合 互补序列下游的模板核苷酸序列中 ( 即在模板序列的 5 方向 ) 具有一或多个 “A” 或 “G” , 取决于所要测量的脱氧核糖核苷激酶。在检测脱氧鸟苷激酶 (dGK) 的情况下, 所述模板在 所述引物下游需要一或多个 “C”。

44、 。为了清楚起见, 在此注明每种引物 - 探针 - 检测物组至少 对于模板和旨在检测的脱氧核糖核苷激酶是特异的, 与所使用的检测系统无关。使用 5 核 酸酶检测系统的多重检测(即在相同的反应容器中检测多种脱氧核糖核苷激酶)也需要特 异性探针序列和标记。 0107 在一种所述检测系统 ( 图 2, 也称为检测系统 1) 中, 通过动态猝灭或 FRET 的作用 猝灭来自单链寡核苷酸探针的荧光, 所述单链寡核苷酸探针具有 5- 共价结合的荧光团和 在 3- 方向共价结合至相同探针的猝灭荧光团。在使用预先确定的量的引物、 模板和探针 的引物延伸反应期间, 通过所述 DNA 指导的 DNA 聚合酶的 5。

45、 3 核酸外切酶活性从所述 探针释放 ( 即水解掉 )5- 共价结合的荧光团。 0108 在另一种检测系统 ( 也称为检测系统 2, 图 4) 中, 来自嵌入或表面结合的荧光分 子 ( 例如但不限于 SYBR和 Eva Green的荧光在其游离或 未结合的状态下被猝灭。在使用预先确定的量的模板和一种引物的引物延伸反应期间, 荧 光分子被嵌入或表面结合至所产生的双链 DNA, 在此所述荧光分子开始发荧光。 0109 在第三种检测系统(也称为检测系统3, 图3)中, 来自单链寡核苷酸探针的荧光通 过接触猝灭或静态猝灭作用被猝灭, 所述单链寡核苷酸探针包含所谓的分子信标, 所述分 子信标具有 5- 。

46、共价结合荧光团、 共价结合至相同探针在所述 5- 结合荧光团的 3- 远端 的猝灭荧光团。 0110 在所述孵育和实时循环开始前使所述分子信标探针变性并允许其杂交至靶模板。 当杂交至模板时, 所述接触猝灭被释放并在零时刻达到最大荧光。在使用预先确定量的引 物、 模板和探针的引物延伸期间, 通过 29DNA 聚合酶或 Bsm 大片段 DNA 聚合酶或 Bst 大片 段 DNA 聚合酶的作用置换所述探针。后两种 DNA 聚合酶缺乏 3 5 核酸外切酶活性。当 所述分子信标被置换后, 其保持它的茎 - 环结构形式, 接触猝灭相对于每单位时间 TTP 或 dCTP 的产生而熄灭荧光。使用 Dabcyl。

47、 吸收来自 5 荧光团的荧光。在所有 3 种检测系统中 实时地进行检测 0111 与检测系统 1 有关的试剂盒可以包含 DNA 依赖性 DNA 聚合酶和天然的 T 或 dC 底 物, 或 Br-dU 或 dC, 最优选地为天然的 T 或 dC 底物。优选地, 所述 DNA 依赖性 DNA 聚合酶缺 乏 3 5 核酸外切酶。 0112 优选地, 该试剂盒包括 TMPK 或 dCMPK, 其浓度为 0.001ng/ 反应 -100ng/ 反应, 更 优选地 0.01ng-10ng、 0.02U/L-0.002U/LNdPK/ 反应 ; 0.5mM-15mM 的 - 磷酸供体 ( 如 ATP、 UT。

48、P、 CTP 或 GTP), 更优选地 3mM-6mM, 最优选地 4mM-5mM ATP。 0113 引物, 长度为 10-20 个核苷酸, 更优选长度为 10-15 个核苷酸。所述引物可以是小 沟结合的修饰引物。引物的实例是 SEQ ID:9。 0114 模板, 50-1000 个核苷酸, 更优选地 75-250 个核苷酸, 具有与所述引物序列互补的 3- 近端序列 ; 优选地所述模板序列在用于检测 TK 或 dCK 时, 在所述引物结合位点的下游 (即所述模板的5-方向)1-10个核苷酸处, 更优选地在与所述引物序列互补的3-末端的 紧接着的下游位置, 具有一或多个 “A” 或 “G” 。最优选地, 一个 A 或一个 G 定位于与所述引 说 明 书 CN 103038361 A 11 9/22 页 12 物序列互补的 3- 末端的紧接着的下游位置。形成其余的模板序列的核苷酸组合物用于检 测 TK 活性时优选地是 T、 C 和 G 的混合物, 用于检测 dCK 活性时用 A 代替 G, GC 比例优选为 60%-40%。模板的实例是 SEQ ID:7。 0115 嵌入或表面结合荧光分子, 例如。

展开阅读全文
相关资源
猜你喜欢
相关搜索

当前位置:首页 > 化学;冶金 > 生物化学;啤酒;烈性酒;果汁酒;醋;微生物学;酶学;突变或遗传工程


copyright@ 2017-2020 zhuanlichaxun.net网站版权所有
经营许可证编号:粤ICP备2021068784号-1