探测胞嘧啶甲基化模式的高灵敏度方法本发明涉及在DNA样品中探测胞嘧啶甲基化的方法。
近几年中在分子生物学中由于方法的发展而充分研究的观察水平
是基因本身，即这些基因至RNA的翻译和由此产生的蛋白质。在个体
发育过程中，哪些基因何时开启及某些细胞和组织中某些基因激活和
抑制如何得到控制，与基因或基因组甲基化的程度和特性相关。致病
的状态也是以单个基因或基因组的改变了的甲基化模式表达的。
5-甲基胞嘧啶是真核细胞DNA中最经常进行共价修饰的碱基。例
如，它在转录调节中、在遗传印记中和在肿瘤发生中起作用。5-甲基
胞嘧啶作为遗传信息成分的鉴定因而具有相当的重要性。然而5-甲
基胞嘧啶位置不能通过测序来鉴定，这是因为5-甲基胞嘧啶与胞嘧
啶具有相同的碱基配对性质。此外，在PCR扩增的情况下，由5-甲
基胞嘧啶携带的外遗传信息完全丧失了。
其后研究DNA的5-甲基胞嘧啶最经常应用的相对新的方法是基
于亚硫酸氢盐与胞嘧啶的特定反应的，胞嘧啶在随后的碱水解之后转
变为尿嘧啶，尿嘧啶在碱基配对性质上相应于胸腺嘧啶。相反地，5-
甲基胞嘧啶在这些条件下不被改变。因而使最初的DNA进行了如此转
变，使最初不能依靠其杂交性质与胞嘧啶区分的甲基胞嘧啶现在可以
作为单独剩余的胞嘧啶而通过“标准的”分子生物学技术进行探测，例
如通过扩增和杂交或测序。所有这些技术都基于碱基配对，就此碱基
配对得到充分利用。涉及灵敏度的现有技术是通过一种方法定义的，
该方法将所研究的DNA结合到琼脂糖基质上，借此防止了DNA的扩散
和复性(亚硫酸氢盐只能在单链DNA上反应)，且所有的沉淀和纯化
步骤都被快速的透析取代了(Olek A.，Oswald J.，Walter.J.，一
种改良和提高的基于硫酸氢盐的胞嘧啶甲基化分析方法(A modified
and improved method for bisulphate based cytosine
methylation analysis)，Nucleic Acids Res.1996年12月15
日；24(24)：5064-6)。用该方法可研究单独的细胞，这说明了该
方法的潜力。然而至今仅研究了长度为约3000个碱基对的单独区
域，对细胞进行完全研究以进行数千的可能的甲基化分析是不可能
的。然而该方法也不能可靠地分析来自微量样品的非常小的片段，其
尽管基质的扩散保护，但还是损失了。
对探测5-甲基胞嘧啶的其它已知可能性的综述可源自下面的综
述文章：Rein T，DePamphilis ML，Zorbas H，鉴定DNA基因组中
的5-甲基胞嘧啶和相关的修饰(Identifying 5-methylcytosine
and related modifications in DNA genomes)，Nucleic Acids
Res.1998年5月15日；26(10)：2255-64。
至今亚硫酸氢盐技术仅应用于研究中，仅有少数例外(例如，
Zeschnigk M，Lich C，Buiting K，Drfler W，Horsthemke B，用
于基于SNRPN座位的等位甲基化差异对Angelman和Prader-Willi
综合症进行诊断的单管PCR检验(A single-tube PCR test for
the diagnosis of Angelman and Prader-Willi syndrome based
on allelic methylation differences at the SNRPN locus)，
Eur J Hum Genet.1997年3月-4月；5(2)：94-8)。然而，在
亚硫酸氢盐处理之后已知基因的短的特定片段总是得到扩增，并且由
“引物延伸反应”探测了或者经完全测序的(Olek A，Walter J，H19
甲基化印记的植入前个体发生(The preimplantation ontogeny of
the H19 methylation imprint)，Nat.Genet.1997年11月；17
(3)：275-6)或者单独的胞嘧啶位置(Gonzalgo ML，Jones PA，
用甲基化敏感性单一核苷酸引物延伸(Ms-SNuPE)对特定位点上甲基
化差异的快速定量(Rapid quantitation of methylation
differences at specific sites using methylation-sensitive
single nucleotide primer extension(Ms-SNuPE))，Nucleic
Acids Res.1997年6月15日；25(12)：2529-31，WO专利95
00669)或者酶的切割(Xiong Z，Laird PW，COBRA：一种灵敏的定
量DNA甲基化测定(a sensitive and quantitative DNA
methylation assay)，Nucleic Acids Res.1997年6月15日；25
(12)：2532-4)。此外还描述有依靠杂交进行的探测(Olek等
人，WO 99/28498)。
基因组DNA中的5-甲基胞嘧啶测序之前，尿素改进了亚硫酸氢
盐处理的效率(Paulin R，Grigg GW，Davey MW，Piper AA，尿素
改进了硫酸氢盐介导的对基因组DNA中5-甲基胞嘧啶测序的效率
(Urea improves efficiency of bisulphate-mediated
sequencing of 5’-methylcytosine in genomic DNA)，Nucleic
Acids Res.1998年11月1日；26(21)：5009-10)。
其它有关用于在单个基因中探测甲基化的亚硫酸氢盐技术的应用
的出版物为：Grigg G，Clark S，基因组DNA中5-甲基胞嘧啶残基
的测序(Sequencing 5-methylcytosine residues in genomic
DNA)，Bioassays.1994年6月；16(6)：431-6，431；
Zeschnigk M，Schmitz B，Dittrich B，Buiting K，Horsthemke
B，Drfler W，人类基因组中印记的区段：由基因组测序方法确定的
Prader-Willi/Angelman综合症区域中的不同的DNA甲基化模式
(Imprinted segments in the human genome：different DNA
methylation patterns in the Prader-Willi/Angelman syndrome
region as determined by the genomic sequencing method)，
Hum Mol Genet.1997年3月；6(3)：387-95；Feil R，Charlton
J，Bird AP，Walter J，Reik W，单独染色体的甲基化分析：硫酸
氢盐基因组测序改进的规程(Methylation analysis on
individual chromosomes：improved protocol for bisulphate
genomic sequencing)，Nucleic Acids Res.1994年2月25日；
22(4)：695-6；Martin V，Ribieras S，Song-Wang X，Rio MC，
Dante R，基因组测序显示pS2基因的5’区域中的和其在人乳腺癌细
胞系中表达中的DNA甲基化不足之间相关(Genomic sequencing
indicates a correlation between DNA hypomethylation in the
5’region of the pS2 gene and in its expression in human
breast cancer cell lines)，Gene.1995年5月19日；157(1-
2)：261-4；WO 97/46705，WO 95/15373和WO 45560。
另一个已知的方法是所谓的甲基化灵敏性PCR(Herman JG，
Graff JR，Myohanen S，Nelkin BD，Baylin SB，(1996)，甲基
化特异性PCR：CpG岛甲基化状况的新PCR测定(Methylation-
specific PCR：a novel PCR assay for methylation status of
CpG islands)，Proc Natl Acad Sci USA.9月3日；93(18)：
9821-6)。该方法使用了引物，该引物或者仅与序列杂交，所述序列
是由于对相关位置上未甲基化的DNA进行亚硫酸氢盐处理而形成的，
或者相反的引物，该引物仅与核酸结合，所述核酸通过亚硫酸氢盐处
理在相关位置上未甲基化的DNA而形成。利用这些引物，就可以产生
扩增产物，其探测反过来提供了引物所结合的样品中甲基化或非甲基
化位置存在的线索。
一种更新近的方法也是依靠TaqMan PCR对胞嘧啶甲基化进行探
测，该方法以甲基灯(methyl-light)闻名(WO 00/70090)。该方
法可以直接在PCR过程中探测单独的位置或数个位置的甲基化状态，
从而省去了随后对产物的分析。
对寡聚体阵列产品的现有技术综述可获取自发表于1999年1月
的自然基因学(Nature Genetics)上的特刊(Nature Genetics增
刊(Supplement)，21卷，1999年1月)、在此处引用的文献及美
国专利5,994,065中的生产在减低的非特异性背景信号下用于目标分
子如寡核苷酸的固体载体的方法。
多重荧光标记的探针被用于对固定的DNA阵列的扫描。特别适合
于进行荧光标记的是在各个探针的5’-OH简单地引入Cy3和Cy5染
料。杂交的探针的荧光是依靠如聚焦显微镜进行探测的。除许多其它
的之外，染料Cy3和Cy5是商业可购得的。
基质辅助的激光解吸/电离质谱分析(MALDI-TOF)是生物分子分
析的非常有效力的发展(Karas M，Hillenkamp F，分子量超过
10,000道尔顿的蛋白质的激光解吸电离(Laser desorption
ionization of proteins with molecular masses exceeding
10,000 daltons)，Anal Chem.1988年10月15日；60(20)：
2299-301)。将一种分析物包埋入光吸收性基质中。依靠短的激光脉
冲使该基质蒸发，且促使该分析物分子未片段化地迁移到气相中。分
析物的电离是通过与基质分子的碰撞而实现的。施加的电压将离子加
速进入一个无场的飞行管。离子基于其不同的质量而被加速到不同的
程度。较小的离子比较大的离子更快地到达探测器。
MALDI-TOF光谱极其适合于对肽和蛋白质的分析。对核酸的分析
则有些困难(Gut，I.G.和Beck，S.(1995)，DNA和基质辅助的激
光解吸/电离质谱分析(DNA and Matrix Assisted Laser
Desorption Ionization Mass Spectrometry)，Molecular
Biology：Current Innovations and Future Trends 1：147-
157)。对于核酸，灵敏度比肽大约低100倍，且随着增大的片段而
以过大的比例降低。对于具有多负电荷主链的核酸，通过基质的电离
过程基本是低效的。在MALDI-TOF光谱中，对基质的选择起非常重要
的作用。对于肽的解吸，已发现了几个非常有效力的基质，所述基质
产生非常精细的结晶。同时虽然也发现了用于DNA的一些符合要求的
基质，却借此未能减少灵敏度的差异。灵敏度的差异的减少可通过对
DNA进行修饰而使之类似于肽的方法。硫代磷酸核酸可通过简单的烷
基化化学而转变为电荷中性的DNA，所述核酸主链中通常的磷酸被硫
代磷酸替代(Gut，I.G.和Beck，S.(1995)，选择性DNA烷基化和
由质谱探测的程序(A procedure for selective DNA alkylation
and detection by mass spectrometry)，Nucleic Acids Res.
23：1367-1373)。“电荷标记”与该经修饰的DNA的偶联导致灵敏度
的增加，增加量与其对肽的效用一样。“电荷标记”的另一个优点是相
对于杂质分析稳定性的增加，杂质严重妨碍了对未修饰的底物的探
测。
基因组DNA是通过标准方法从细胞、组织或其它检验样品的DNA
中获得的。
所述标准的方法学可发现于参考文献中，如Fritsch和
Maniatis，分子克隆：实验室手册(Molecular Cloning：A
Laboratory Manual)，1989。
因此，在现有技术中迄今已有许多甲基化分析的方法。然而，本
发明将解决现有方法不能解决的问题，即，当其它不同来源的序列同
源DNA片段也存在时以定向的方式扩增所研究的在体液或血清中的
DNA。
所研究的DNA及在下面命名为背景DNA的其它存在的核酸通常是
同样扩增的，这是因为所用的引物不能区别所研究的DNA与背景
DNA。然而，区别这些DNA的一种可能性是通过不同的甲基化模式。
一种现有的方法是甲基化灵敏性PCR，简称MSP(Herman JG，Graff
JR，Myohanen S，Nelkin BD，Baylin SB，(1996)甲基化特异性
PCR：CpG岛甲基化状况的新PCR测定(Methylation-specific PCR：
a novel PCR assay for methylation status of CpG islands)，
Proc Natl Acad Sci USA.9月3日；93(18)：9821-6)。该方法
包含多个步骤。首先，进行了根据现有技术的亚硫酸氢盐处理，再次
导致所有胞嘧啶转变为尿嘧啶而甲基化的胞嘧啶碱基(5-甲基胞嘧
啶)保持不变的情况。在下一个步骤中，人们开始使用引物，该引物
与用亚硫酸氢盐转变的甲基化DNA完全互补，但不与最初以非甲基化
状态存在的相应DNA互补。当用这种引物进行PCR时，这导致最初甲
基化的DNA专一地扩增的事实。同样可能的是使用相反只扩增非甲基
化DNA的引物。这样，如果要分析的DNA及背景DNA存在时，所研究
的DNA片段将选择性地和专一地产生，只要它们与背景DNA鉴于CpG
位置中的甲基化状态有区别。目前现有技术从这样一种所研究的DNA
分子中反向推断所研究的DNA的甲基化状态或其是否存在，其再次原
则上允许如对病人肿瘤病症的诊断，因为已知的是，如肿瘤病人的血
清DNA浓度部分地大幅度增加了。只有源自肿瘤的DNA除背景DNA之
外应被探测到。原则上，在其它体液中的DNA分析是类似的。
然而，此处描述的且认为是最近的现有技术的方法具有一些缺
点。例如，它不可能从所研究的DNA的扩增片段的可探测性中推断血
清中存在的量。虽然最微量的这种DNA都可成功地获得阳性结果，这
在一方面是优点，但如果人们希望判断如肿瘤切除对血清DNA的影响
时，它也可以以非常不适宜的方式起作用。然而，最大的缺点是有许
多甲基化位置存在，其对于所研究的DNA和背景DNA仅在程度上有差
别。明显的是如果人们不希望冒着得到假阳性结果的风险，那么现有
的MSP方法只能在如果人们知道背景DNA与所研究的DNA在目标CpG
位置有明确的或达到100％的差别时才可实施。相反地，在肿瘤组织
中典型地例如95％的肿瘤细胞中在特定位置上呈现甲基化状态，而
其中另外存在的背景DNA却最多只有5％的甲基化状态，这却不可能
用MSP方法得到能提供信息的结果，这是因为依靠PCR对模板DNA的
量化原则上是不可能的或只能靠增加花费来实现。此外该发明是基于
这样的知识，即其经常是DNA片段中的甲基化模式，这对于特定的细
胞类型如肿瘤细胞是典型的。
同样，现有技术包括由Epigenomics发展的方法，该方法在亚硫
酸氢盐处理后同样地扩增所研究的DNA和背景DNA，然后通过杂交技
术和可选择地依靠小测序(mini-sequencing)或其它现有方法来鉴
定包含于片段中先前CpG的位置。这具有获得相对于所研究的甲基化
位置的定量模式的优点，即，成功地获得了对多个位置的甲基化程度
的确定，这例如使得能够在实体瘤的情况下非常精确的分类。然而，
该方法的缺点是它在背景DNA非常占优势的情况下不能提供精确的信
息，这是因为该信息是完全如同所研究的DNA一样扩增的，且两者均
在混合物中进行分析。对实体瘤的分析中不存在该问题，其中所研究
的材料可以定向选择，但是却造成如对血清DNA的分析的困难。
本发明的目的目前是克服现有技术的缺点并将用于对体液和血清
探测的两种方法的优点组合。
该目的是通过创造用于探测DNA样品中胞嘧啶甲基化的方法而解
决的，在该方法中进行了下面的步骤：
将包含所研究的DNA和背景DNA的基因组DNA样品以进行化学处
理，从而使得所有非甲基化的胞嘧啶碱基都转变为尿嘧啶，而5-甲
基胞嘧啶碱基保持不变；
用至少2个引物寡核苷酸和一个聚合酶对经化学处理的DNA样品
进行扩增，其中所研究的DNA相对于背景DNA是优选被作为模板的，
分析扩增产物，并从扩增产物的存在性和/或从对其它位置的分析中
得出所研究的DNA中甲基化状态的结论。
根据本发明优选的是样品从个体的血清或其它体液中获得。
根据本发明进一步优选的是样品从细胞系、血液、痰、粪便、
尿、血清、脑脊液、包埋于石蜡中的组织如来自眼、肠、肾、脑、
心、前列腺、肺、乳房和肝的组织、组织载玻片和其所有可能的组合
中获得。
根据本发明尤其特别优选的是化学处理是用亚硫酸氢盐
(＝Disulfit，Hydrogensulfit)进行的。还优选的是在将DNA包埋
于琼脂糖中之后进行的化学处理。同样且进一步优选的是使DNA双链
体变性的试剂和/或自由基阱存在于化学处理中。
优选扩增是在第二个步骤中至少一种额外的寡核苷酸存在下进行
的，该寡核苷酸结合5’-CG-3’二核苷酸或5’-TG-3’二核苷酸或5’-CA-
3’二核苷酸，其中该额外的寡核苷酸优选地结合背景DNA并对其扩增
产生不利影响。
特别优选的是额外的寡核苷酸或PNA寡聚体在背景DNA上的结合
位点与引物的结合位点重叠，且额外的寡核苷酸阻碍了至少一种引物
寡核苷酸与背景DNA的结合。
再度特别优选的是利用了至少两个额外的寡核苷酸或PNA寡聚
体，其中它们的结合位点再次分别与引物在背景DNA上的结合位点重
叠，且额外的寡核苷酸和/或PNA寡聚体阻碍了这两个引物寡核苷酸
与背景DNA的结合。
此外特别言优选的是额外的寡核苷酸和/或PNA寡聚体之一阻碍
了正向引物的结合，而另一个阻碍了反向引物的结合。
特别优选的是额外的寡核苷酸和/或PNA寡聚体至少以引物寡核
苷酸浓度的5倍存在。
在本发明的另一个特别优选的变体中，额外的寡核苷酸和/或
PNA寡聚体结合背景DNA并因而阻碍了引物寡核苷酸在聚合酶反应中
的完全延伸。其中再度特别优选的是所用的聚合酶不具有5’-3’外切
核酸酶活性。另一个优选的变体是额外的寡核苷酸存在5’末端的修
饰，并因而不能被具有5’-3’外切核酸酶活性的聚合酶显著地破坏。
此外，根据本发明优选的是经化学处理的DNA样品在第二步骤中
使用至少2个引物寡核苷酸和另一个与5’-CG-3’二核苷酸或5’-TG-3’
二核苷酸或5’-CA-3’二核苷酸杂交的寡核苷酸，和至少一个与5’-CG-
3’二核苷酸或5’-TG-3’二核苷酸或5’-CA-3’二核苷酸杂交的报道寡核
苷酸以及一个聚合酶进行扩增；其中该额外的寡核苷酸优选结合背景
DNA并对其扩增产生不利影响，且其中该报道寡核苷酸优选地结合所
研究的DNA并指示其扩增。因而有利的是对于报道寡核苷酸附加地使
用另一个用荧光染料进行标记的寡聚体，其直接在邻近报道寡核苷酸
处进行杂交，且该杂交借助荧光共振能量转移进行探测。进一步有利
的是进行TaqMan测定。同样优选的是进行LightCycler测定。
根据本发明进一步优选的是除引物外所使用的寡核苷酸不能具备
3’-OH功能。此外，优选的是报道寡核苷酸带有至少一个荧光标记。
同样优选的是报道分子通过荧光的增加或减少显示扩增。在此特别有
利的是该荧光的增加和减少也直接用于分析，且所研究的DNA的甲基
化状态可从荧光信号来推断。
根据本发明进一步优选的是背景DNA以所研究的DNA浓度的100
倍存在。进一步优选的是背景DNA以所研究的DNA浓度的1000倍存
在。
此外优选的是该分析或者视情况进一步的分析可依靠与寡聚体阵
列的杂交来进行，其中寡聚体可以是核酸或其杂交性质上相似的分子
如PNA。
根据本发明同样有利的是寡聚体通过12-22个碱基长的区段与所
研究的DNA杂交且它们包括CG、TG或CA二核苷酸。
优选的是所研究的DNA中多于20个甲基化位置的甲基化状态是
在一个实验中探测的。
进一步优选的是所研究的DNA中多于60个甲基化位置的甲基化
状态是在一个实验中探测的。
根据本发明同样优选的是该分析或者视情况的进一步分析是通过
对扩增的所研究的DNA的长度测量来进行的，其中该长度测量的方法
包含凝胶电泳、毛细管凝胶电泳、层析(如HPLC)、质谱分析和其
它适宜的方法。在此同样有利的测序方法包括桑格方法、马吉测序法
和其它方法，如通过杂交的测序(SBH)。
一种根据本发明的方法同样是优选的，其中对每一个或一小组
CpG位置的测序分别用一个单独的引物寡核苷酸进行，且引物延伸仅
构成了一个或几个碱基段，且从引物延伸的类型中推断出所研究的
DNA中相关位置的甲基化状态。
进一步优选的是从不同的经研究的CpG位置的甲基化程度推断病
人的病症或另一种医学状况的存在。
有利的是扩增产物本身是带有可探测的标记的。进一步有利的是
该标记为荧光标记或/和该标记为放射性核素或/和该标记为在质谱仪
中探测的可除去的质量标记。
此外优选的是在扩增中，引物之一是结合在固相上的。
根据本发明，扩增产物是全部在质谱仪上探测的且由此通过其质
量明确地进行特征记录。
本发明的另一个目的还有使用根据本发明的方法对病人或个体进
行不利情形的诊断和/或预诊，其中这些不利情形属于至少一种下面
的种类：非期望的药物作用；癌病症；CNS功能失常、损伤或疾病；
攻击或行为障碍症状；脑损伤的临床、心理学和社会结果；精神病障
碍和个性病症；痴呆和/或有关的症状；心血管疾病、功能失常和损
伤；胃肠道的功能失常、损伤或疾病；呼吸系统的功能失常、损伤或
疾病；受伤、炎症、感染、免疫和/或康复；作为发育过程中畸形的
身体功能失常、损伤或疾病；皮肤、肌肉、结缔组织或骨骼的功能失
常、损伤或疾病；内分泌和代谢功能失常、损伤或疾病；头痛或性功
能失常。
在此根据本发明的方法用于区别细胞类型或组织或者用于研究细
胞分化是有利的。
本发明的目的还有一种试剂盒，该试剂盒包括含有亚硫酸氢盐的
试剂、引物和其它用于产生扩增产物的无3’-OH功能的寡核苷酸，以
及可选择的实施根据本发明测定的说明书。
因而本发明描述了探测基因组DNA样品的甲基化状态的方法。与
以前已知的方法相反，一组CpG位置的甲基化程度是在选择的DNA片
段亚组中确定的，如在血清中，从而在过量的与诊断不相关的背景
DNA存在下该分析也是可能的。
在此优选的方法包含几个步骤，概述如下：
首先，从病人获取血清和/或其它的体液，并且如果需要分离在
其中存在的DNA。随后，在第二个步骤中，进行化学处理，优选的是
用亚硫酸氢盐(＝Hydrogensulfit，Disulfit)的，其中如所有非甲
基化的胞嘧啶碱基转变为尿嘧啶，但甲基化的胞嘧啶碱基(5-甲基胞
嘧啶)则保持不变。在方法的第三个步骤中，开始进行扩增，其中优
选地扩增所研究的DNA而不是或者仅扩增较少量的背景DNA。在随后
的第四个步骤中，对扩增片段的甲基化特征进行分析，且多个先前的
CpG位置的甲基化程度是在扩增产物中确定的。在该方法的第五个步
骤中，病人的病症或另一种医学状况的存在性是从研究的不同CpG位
置的甲基化程度推断的。
本发明的要素是两类CpG位置对分析都起作用且具有相同的贡
献，这将在下面命名为“限定器(Qualifier)”位置和“分类器
(Classifier)”位置。限定器位置在扩增中用作将所研究的DNA与
背景DNA区分开来。这可在技术上在不同的途径中进行，如在下面详
细给出的。然而，这些位置的性质是在所研究的DNA中的甲基化程度
与来自背景DNA的尽可能的不同，且这导致在扩增中对所研究的DNA
的优选。相反地，分类器位置用作从所研究的DNA产生的扩增产物中
通过各自的甲基化程度提取对于诊断很重要的信息。如果进行例如寡
聚体阵列上的分析，多达几百个这样的分类器位置可用于一个分析
中，尽管这经常不是必需的。然而，在这种情况下，不是特定扩增产
物的形成而是在相同产物中CpG位置的分析对于研究结果是重要的。
然而，在一些情况下，将从扩增产物的形成推导出的信息用于分析中
却是可能和有意义的；在这种情况下，几个位置则同时是分类器和限
定器。
该方法的第一步，即获得样品是优选地通过获得体液如痰或血清
而进行的，但明显的是该方法可用来自不同来源的许多类型的样品来
进行，此处列出这些样品，但并不认为是其全部。
优选地，本方法中所用的基因组DNA从DNA样品中获得，其中
DNA的来源包括如细胞系、血液、痰、粪便、尿、血清、脑脊液、包
埋于石蜡中的组织如来自眼、肠、肾、脑、心、前列腺、肺、乳房和
肝的组织、组织载玻片和其所有可能的组合。
在一些情况下，为了避免由于过高的不纯程度而导致的对亚硫酸
氢盐反应和/或随后的PCR的破坏，在亚硫酸氢盐处理之前进行了
DNA的纯化和浓缩。然而，已知的是如源自组织的PCR可以在如蛋白
酶K处理各无需进一步纯化而进行，且按其意义也适用于亚硫酸氢盐
处理和随后的PCR。
化学处理优选通过用亚硫酸氢盐的处理进行，再次优选的是亚硫
酸氢钠(亚硫酸氢铵的适合程度次之)。该反应或者是根据发表的变
体方案进行的，在此DNA优选地包埋在琼脂糖中以使在处理中DNA保
持单链状态，然而或者根据一种新的变体方案，通过在自由基阱和变
性剂存在下进行处理，优选地为乙二醇二烃基醚或如二噁烷。在PCR
反应之前，在琼脂糖的情况下通过洗涤除去试剂或者通过DNA纯化方
法除去(现有技术，沉淀或结合到固相、膜上)，或者简单地通过在
浓度区进行稀释，该方法不会显著影响PCR。
对于第三个步骤，现在基本的是选择限定器位置和适当的方法，
以允许所研究的DNA选择性地扩增。位置的选择是根据下面的前提进
行的，即这些位置应尽可能地鉴于其甲基化相互区别背景DNA和所研
究的DNA。为此，分别确定所研究的肿瘤以及来自健康个体的背景
DNA的相关基因区段的甲基化特点。这些在肿瘤DNA和背景DNA(如
在血清中)具有最大差异的位置是作为限定器位置选择的。这种位置
对于大量基因是已知的，如对于GSTpi、对于HIC-1和MGMT(von
Wronski MA，Harris LC，Tano K，Mitra S，Bigner DD，Brent
TP，(1992)人横纹肌肉瘤细胞系和异种移植中的胞嘧啶甲基化和
O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶表达的抑制(Cytosine methylation
and suppression of O6-methylguanine-DNA methyltransferase
expression in human rhabdomyosarcoma cell lines and
xenografts)，Oncol Res.；4(4-5)：167-74；Esteller M，
Toyota M，Sanchez-Cespedes M，Capella G，Peinado MA，
Watkins DN，Issa JP，Sidransky D，Baylin SB，Herman JG，
(2000)，通过启动子超甲基化的DNA修复基因O6-甲基鸟嘌呤-DNA
甲基转移酶的失活与结肠肿瘤发生中K-ras中G到A的突变有关
(Inactivation of the DNA repair gene O6-methylguanine-DNA
methyltransferase by promoter hypermethylation is
associated with G to A mutations in K-ras in colorectal
tumorigenesis)，Cancer Res.5月1日；60(9)：2368-71)。
现在有多种完全优选的方法，依靠这些方法所研究的DNA可优选地利
用这些限定器位置进行扩增。
首先，可能的是用引物进行相应于MSP的反应，该引物完全与亚
硫酸氢盐处理后相应于所研究的DNA的序列进行杂交，但不与进行类
似处理的背景DNA进行杂交。换句话说，引物与在其中具有一个或多
个限定器位置的DNA区段进行杂交，且只有当最初的DNA中的甲基化
状态相应于对所研究的DNA进行特征记述的时，才可能发生显著程度
的扩增。这原则上是一个简单的变体方案，但它具有限定器位置必须
分别位于DNA片段的一端或两端的缺点，即，分类器位置必须位于限
定器位置之间(然而或者在只有一个限定器位置的情况下，限定器位
置不应该位于分类器位置的中间)。尽管根据本发明优选的是进行这
样的MSP变体方案，但事实上它由此仅能用于比较少的情况中，这是
因为限定器和分类器位置的分布仅在少数情况下是如此理想的。然
而，由于原则上它是易于进行的，所以尽管如此将其列在此处作为优
选。
然而特别优选的是一个变体方案，其中引物不与限定器位置重叠
或与其杂交，而是PCR扩增由至少一种其它的寡核苷酸影响的，该寡
核苷酸不发挥引物的功能，但在限定器位置结合。
这意味着原则上化学处理的DNA如在现有技术中是借助两个引物
扩增。在由两个引物局限的DNA区段中具有一个或多个限定器位置。
现在与标准的PCR相反地，加入了额外的寡核苷酸，该寡核苷酸与在
亚硫酸氢盐处理之前或呈现甲基化或非甲基化的这些限定器位置选择
性地结合。如果所加入的寡核苷酸与限定器位置的结合比与背景DNA
的结合较弱，那么所研究的DNA从而优选地得到扩增。换句话说，加
入的寡核苷酸选择性地阻断了背景DNA的扩增。
优选这些加入的寡核苷酸含有至少一个CG、一个TG或者一个CA
二核苷酸。它们必须额外具有不能被在PCR反应中所用的聚合酶延伸
的性质。这优选地是通过利用3’-脱氧寡核苷酸或然而利用在3’位置
具有其它功能的寡核苷酸如3’-O-乙酰基寡核苷酸来进行的。此外，
必须防止这些寡核苷酸被聚合酶的分解。这优选地用无核酸酶活性的
聚合酶进行，或者优选地用经修饰的寡核苷酸进行，该寡核苷酸如在
5’末端具有硫酯键(Thioatbrücken)并因而对分解有抗性。
另一个特别优选的变体方案是PNA(肽核酸)寡聚体的使用，按
其意义该PNA作为寡核苷酸在实验中使用。PNA寡聚体即不能被聚合
酶分解也不能被聚合酶延伸，从而理想地适合于此方法的变体方案。
设计和合成PNA寡聚体的方法是现有技术。
如上所述，在这种方法中可以使用多个限定器位置和同样多个分
别对于在背景DNA中存在的甲基化状态特定的寡核苷酸。
在所研究的DNA的选择性扩增后，开始优选的是根据本身已知的
方法确定多个限定器位置的甲基化状态。
然而明显的是即使在这种情况下，PCR片段的形成即使在个别
的情况下可具有足够的信息值，同样在MSP的情况下，只要限定器位
置例如在背景DNA中实际上呈现达100％的非甲基化，而在所研究的
DNA中呈现甲基化形式。如果人们开始在PCR中使用寡核苷酸，该寡
核苷酸优选经亚硫酸氢盐处理由非甲基化的背景DNA形成的序列结
合。只要根本上存在至少微量的所研究的DNA，那么在PCR中只有一
种产物形成。这在个别的情况中对于诊断已经可以是足够的了，且在
此它涉及具有如MSP的相似性质的方法。尽管这样一种方法不是直接
优选的，但这样一种方法迄今是未知的，并因此也被认为是本发明的
一个主题。
优选的是在PCR反应中同时产生多个片段，即进行多重PCR。在
其设计中必须注意不仅引物而且其它所用的寡核苷酸都必须不能相互
互补，否则高度的多重性将在这种情况下比通常的情况更加困难。然
而，经亚硫酸氢盐处理的DNA具有优点，基于两个DNA链的不同G和
C含量，正向引物从不能同样发挥反向引物功能，这反过来促进了多
重性并基本弥补了所述缺点。
在最简单的情况下，再次开始探测形成的片段。对此考虑所有可
能已知的分子生物学方法，如凝胶电泳、测序、液相层析或杂交，该
探测在此不分析分类器寡核苷酸。这也可考虑用作对前序方法的质量
控制。如上所述，随后对分类器位置的甲基化程度的分析却是特别优
选的。
优选扩增所研究的DNA的上述方法有利地与探测分类器寡核苷酸
的技术的组合具有大量的可能性。
特别适合的探测技术是与寡聚体阵列的杂交，如引物延伸(小
测序)反应。与寡聚体阵列的杂交可不必进一步修改方案地使用最
近的现有技术(Olek A，Olek S，Walter J；WO专利99 28498)。
然而优选的是使扩增产物与寡聚体阵列杂交，该寡聚体阵列包含一对
固定于固相上的寡核苷酸，分别在亚硫酸氢盐处理和扩增之前，其中
之一每次最优选地与含有最初非甲基化的CpG(分类器位置)的DNA
区段进行杂交，而其中的另一个同样最优选地与最初含有甲基化CpG
的相应区段进行杂交。特别优选的情况是将扩增产物进行荧光或放射
性标记，或者用可除去的质量标记进行标记，从而在杂交之后，结合
到成对的两个寡核苷酸上的片段可基于这些标记进行探测和定量。获
得的是强度比例，从该比例可例如在对用完全甲基化和非甲基化的
DNA的实验进行校正后，确定各个分类器位置的甲基化程度。大量的
片段和分类器位置可同时在这种寡聚体阵列上进行探测(图1)。有
意义的且优选的是该阵列也含有探测限定器位置的寡聚体用于监控实
验，这是因为可确定进入分析的所研究的DNA与背景DNA的比例。
引物延伸反应也可在固定于固相上的寡核苷酸上进行。尽管不是
完全必需的，这些引物的固定是优选的，这是因为通常应该研究多个
扩增产物中许多的分类器位置，且该研究可以以显著更简单的方式在
一个实验中在固相并从而在寡聚体阵列上进行。特别优选的是引物直
接位于一个分类器位置旁，则该延伸只有一个核苷酸。特别优选的是
只将双脱氧胸苷和双脱氧胞苷作为核苷酸加入，且它们分别用一种不
同的荧光染料进行标记，当然，其中也可考虑甚至优选其它不同的标
记，如质量标记。在亚硫酸氢盐处理和扩增之后，先前甲基化的CG
呈现为CG，而以前非甲基化的CG现在呈现为TG。因而引物延伸反应
导致双脱氧胞苷或者导致双脱氧胸苷的插入。各个位置甲基化的程度
可分别从对这两个终止子探测的荧光标记的比例来推断。如果不加入
鸟嘌呤衍生物且由此在TG或CG序列的一个碱基向引物延伸就已经终
止，那么在这种情况下同样可能和优选的是用双脱氧胞苷和双脱氧胸
苷进行引物延伸。此外同样优选的是类似地通过用双脱氧-ATP和双
脱氧-GTP或其衍生物适当地区别CA和CG而对相反链进行分析。
然而本方法的一个特别优选的变体方案是在一个实验中同时探测
限定器位置和分类器位置，这将通过使用TaqMan或LightCycler技
术变体方案来实现。在此相对于用于优选扩增所研究的DNA的寡核苷
酸，额外加入其它经荧光标记的寡核苷酸，且荧光变化的测量是在
PCR反应过程中进行的。由于其主要被用于扩增所研究的DNA，对不
同分类器CpG位置的甲基化状态的信息也主要是直接从该荧光变化中
获得的。由于不同的寡核苷酸各自优选地使用不同的荧光染料，所以
在PCR过程中分别区分不同位置的荧光变化也是可能的。
该依赖于甲基化状态的荧光变化可通过许多方法实现，此处将它
们中的两个以例子的方式进行描述。
首先，可以使用寡核苷酸探针，该探针或者特异性地与通过化学
处理从非甲基化的DNA的相应位置产生的序列结合，或者相应地与通
过化学处理从甲基化的DNA的相应位置产生的序列结合。这些探针特
别优选带有两种荧光染料，即一种猝灭染料和一种荧光染料。两者都
是与相同的寡核苷酸探针连接的。现在，如果PCR反应以所研究的
DNA作为模板来进行，那么这次PCR反应将被荧光标记的寡聚体探针
阻断。然而，由于后者对聚合酶的核酸酶活性没有抗性，所以在PCR
反应过程中，结合到模板DNA上的探针发生了分解，分解与探针和模
板的结合效率相关，这是因为未结合的探针不被聚合酶分解。由于作
为标记的猝灭染料和荧光染料各自分离的事实，通过标记染料的荧光
增加，探针的分解是直接可见的。原则上，在此涉及所谓的TaqMan
测定的变体方案。
依此所测量的是由所研究的DNA的PCR产物形成的，但仅仅当研
究的分类器位置也呈现甲基化状态的情况下，可以通过探针在经化学
处理的DNA上的杂交探测探针。因而含有探针的对照样品是适当且优
选的，其中探针对应地结合其它甲基化状态中的分类器位置。
为了达到区别探针的能力并由此实现多重反应，优选具有不同发
射波长的不同荧光染料与一个猝灭剂一起用于多个探针上。
即使在这样一种测定的情况下，也使用了与限定器位置结合的寡
核苷酸，其防止了背景DNA的显著扩增。所研究的DNA的扩增也可以
以这样一种途径进行分析，即相同的位置也是用上述的探针进行研究
的，且从而扩增是用结合于限定器位置的探针进行探测的。在这种情
况下，特别优选的是不能被分解的寡核苷酸选择性地结合到背景DNA
上，而荧光标记的探针结合到所研究的DNA上。在本方法一个特别优
选的变体方案中，探针和不分解型的寡核苷酸除了优选为一个核碱基
(Nukleobasen)之外具有相同的序列，但在任何情况下都不超过两
个核碱基。
特别优选的还有一个变体方案，其中将多个可甲基化的位置定义
为限定器位置，且分别将至少一个优选结合背景DNA的寡核苷酸及一
个探针用于这些位置。由于在这种情况下背景DNA的扩增将被多个寡
核苷酸抑制，所以该方法特别适用于当背景DNA相对于所研究的DNA
过剩程度特别高的情况下。在许多情况下，在这些变体方案和对于多
个限定器位置存在于一个片段中的情况下，对限定器位置的进一步的
研究将成为多余的，这是因为用现有的设备不能同时探测任意多的不
同染料(多数情况下为4-5种)。因而对于额外的分类器位置的研究
优选地用上述的其它探测技术的一种进行。
同样优选的是多个位置的甲基化程度可同时用一个探针进行研
究。
如果需要对分类器甲基化程度进行更精确的定量，那么可优选地
使用两个相互竞争的具有不同染料的探针，其中之一再次在所研究的
DNA中非甲基化的位置的情况下结合，而另一个优选地相反在甲基化
位置的情况下结合。所研究的位置的甲基化程度可从两种染料增加的
荧光比例来推断。
一个基本上不同的方法最近认为是LightCyclerTM技术，然而其
中在PCR过程中也发生了荧光变化。利用了以下事实，即只有当两个
染料直接相互邻近，即只间距1-5个核苷酸，荧光共振能量转移
(FRET)才能发生于两个染料之间。只有在那时第二个染料才可被第
一个染料的发射所激发且因而反过来发射另一个波长的可被探测到的
光。
在上述甲基化分析的情况下，荧光标记的探针在相关的经化学处
理的DNA的一个分类器位置上杂交，且该探针的结合再次依赖于所研
究的DNA是否在该位置上呈现甲基化或非甲基化的形式。具有另一种
荧光染料的另一种探针直接在邻近该探针处结合。如果另一个可甲基
化的位置存在于各个序列区段，那么后一种结合再次依赖于甲基化而
发生。在扩增过程中，DNA得到了扩增，只要具有对此所要的甲基化
状态，更多的荧光标记的探针就会在邻近各个位置处结合，并且因而
测量到增加的FRET。
在此方法中也同样优选使用多个不同荧光标记探针的多重反应。
此处同样可能和优选对限定器位置进行测量。假定背景DNA在相
关位置呈现非甲基化形式，且在化学处理和扩增之后在这些位置上产
生了TG二核苷酸，同时相反地，甲基化的所研究的DNA产生了CG二
核苷酸，荧光标记的探针将结合含有CG的序列，而未标记的竞争性
寡聚体结合背景DNA相应的TG序列。
在此重要的是非甲基化的寡核苷酸由于其与较短的探针寡核苷酸
相比明显较高的熔点而阻碍了扩增。在这点上，探针与化学处理的背
景DNA结合的寡聚体在这种情况下不是只有少数几个相同的碱基，它
们基本是较长的(5-15个碱基)。同样的，再次可能且优选的是使
用修饰的寡核苷酸和/或PNA。同样在这种情况下，为了避免在PCR
中的延伸，除位于其3’端的引物之外，所有探针和寡核苷酸都是被阻
断的。这可用如磷酸基团来进行。
这两种方法在结果上的主要区别在于，在一种情况下测量了荧光
的降低，而在另一种情况下测量了荧光的增加。在这两种情况下，即
可对限定器位置也可对分类器位置进行测量。
总之，一种探测DNA样品中胞嘧啶甲基化的方法是特别优选的，
在其中进行了下面的步骤：首先对含有所研究的DNA以及背景DNA的
基因组DNA样品以这样一种途径进行了化学处理，使得所有非甲基化
的胞嘧啶碱基都转变为尿嘧啶，而5-甲基胞嘧啶碱基保持不变；然
后将经化学处理的DNA样品用至少两个引物寡核苷酸及一种聚合酶进
行扩增，其中所研究的DNA作为模板比背景DNA更优选，且在下一个
步骤中，对扩增产物进行分析，且从扩增产物的存在性和/或从其它
位置的分析中推断所研究的DNA中的甲基化状态。
在本方法特别优选的变体方案中，样品DNA是从个体的血清或其
它体液中获得的。同样优选的样品是从细胞系、血液、痰、粪便、
尿、血清、脑脊液、包埋于石蜡中的组织如来自眼、肠、肾、脑、
心、前列腺、肺、乳房和肝的组织、组织载玻片和其所有可能的组合
中获得。
在本方法特别优选的变体中，该化学处理是用亚硫酸氢盐
(＝Disulfit，Hydrogensulfit)。优选的是在将DNA包埋于琼脂糖
中之后进行化学处理。同样优选的是在化学处理的情况中存在DNA双
链体变性的试剂和/或自由基阱。
在本方法特别优选的变体中，扩增是在至少一种额外的寡核苷酸
存在下的第二个步骤中进行的，该寡核苷酸结合5’-CG-3’二核苷酸或
5’-TG-3’二核苷酸或5’-CA-3’二核苷酸，其中该额外的寡核苷酸优选
地结合背景DNA并对其扩增产生不利影响。
同样特别优选的是在第二步骤中经化学处理的DNA样品使用至少
2个引物寡核苷酸和另一个与5’-CG-3’二核苷酸或5’-TG-3’二核苷酸
或5’-CA-3’二核苷酸杂交的寡核苷酸，和至少一个与5’-CG-3’二核苷
酸或5’-TG-3’二核苷酸或5’-CA-3’二核苷酸杂交的报道寡核苷酸连同
一个聚合酶一起进行扩增的；其中该额外的寡核苷酸优选结合背景
DNA并对其扩增产生不利影响，且其中该报道寡核苷酸优选地结合所
研究的DNA并指示其扩增。
同样优选的是除报道寡核苷酸之外，使用了另一个用荧光染料进
行标记的寡聚体，该寡聚体直接在邻近报道寡核苷酸处进行杂交且该
杂交可依靠荧光共振能量转移(FRET)进行探测。
对该分析优选进行TaqMan测定。同样优选的是进行
LightCycler测定(如上所述)。
除引物之外所用的寡核苷酸特别优选不具备3’-OH功能可用。此
外报道寡核苷酸特别优选地带有至少一个荧光标记。
同样特别优选的是报道分子通过荧光的增加和减少显示扩增，且
该荧光的增加和减少也直接用于分析，且所研究的DNA的甲基化状态
可从荧光信号来推断。
在本方法特别优选的变体方案中，该分析或进一步的分析是依靠
与寡聚体阵列的杂交来进行的，其中寡聚体可为核酸或在其杂交性质
上相似的分子，如PNA。优选地，该寡聚体经12-22个碱基长的区段
与所研究的DNA进行杂交并包含CG、TG或CA二核苷酸。优选用该方
法在一个实验中探测所研究的DNA中超过20个甲基化位置的甲基化
状态，更优选的是超过60个的甲基化位置。
还有一种方法同样是特别优选的，其中进一步的分析是通过对经
扩增的所研究的DNA的长度测量来进行的，其中该长度测量的方法包
括凝胶电泳、毛细管凝胶电泳、层析(如HPLC)、质谱分析和其它
适当的方法。
还有一种方法同样是特别优选的，其中进一步的分析是通过测序
进行的，其中用于测序的方法包括桑格方法、马吉测序法和其它方法
如通过杂交的测序(SBH)。再次优选的是一种方法，其中对每一个
或一小组CpG位置的测序(根据桑格)分别用一个单独的引物寡核苷
酸来进行的，且引物延伸仅构成了一个或少数的碱基，且所研究的
DNA中相关位置的甲基化状态是从引物延伸的类型中推断的。
在本方法特别优选的变体方案中，病人疾病或其它医学状况的存
在可从经研究的不同CpG位置的甲基化程度来推断。
特别优选的是扩增产物本身带有可探测的标记用于对其进行探
测。这些标记优选涉及荧光标记，放射性核素或在质谱仪中探测的可
除去的质量标记。
此外，一种方法是优选的，其中在扩增中引物之一是结合在固相
上的。
该方法的一个变体方案同样是优选的，其中扩增产物是全部在质
谱仪上探测的且因而通过其质量明确地进行特征记录。
本发明的另一个目的是使用所描述的方法之一对病人或个体进行
不利情形的诊断和/或预诊，其中这些不利情形属于至少一种下面的
种类：非期望的药物相互作用；癌疾病；CNS功能失常、损伤或疾
病；攻击或行为障碍症状；脑损伤的临床、心理学和社会结果；精神
病障碍和个性病症；痴呆和/或有关的症状；心血管疾病、功能失常
和损伤；胃肠道的功能失常、损伤或疾病；呼吸系统的功能失常、损
伤或疾病；受伤、炎症、感染、免疫和/或康复；作为发育过程中畸
形的身体功能失常、损伤或疾病；皮肤、肌肉、结缔组织或骨骼的功
能失常、损伤或疾病；内分泌和代谢功能失常、损伤或疾病；头痛或
性功能失常。
此外，所描述的方法之一用于区别细胞类型或组织或者用于研究
细胞分化是有利的。
本发明的目的还有一种试剂盒，该试剂盒包括含有亚硫酸氢盐的
试剂、引物和其它用于产生扩增产物的无3’-OH功能的寡核苷酸，以
及可选择的实施至少一种所描述的变体方案的说明书。
下面的实施例解释了本发明：
实施例1：在MDR-1基因中使用PNA阻断探针(PCR箝位
(clamping))的MDR1基因的甲基化灵敏性扩增。
a)利用PNA探针(PNA阻断探针)的甲基化特异性PCR，该探针
的结合位点不与引物的相重叠。
首先，PCR条件是对经亚硫酸氢盐处理的DNA限定的，其中可识
别PNA阻断探针对PCR的等位基因特异性影响。在该第一个实验中，
PNA和引物间的结合位点不重叠。
首先，用引物TAAGTATGTTGAAGAAAGATTATTGTAG和
TAAAAACTATCCCATAATAACTCCCAAC测试序列为AAAATGTGTT的11聚体
PNA在PCR中的影响。PNA对PCR反应的影响不能在具有55℃退火温
度的标准PCR条件下进行测量。用于MDR1-片段扩增的标准循环程序
使用下面的程序步骤：
步骤1：T＝96℃ 20分钟
步骤2：T＝96℃ 30秒钟
步骤3：T＝56℃ 1.15分钟
步骤4：T＝72℃ 2.00分钟
步骤2～4进行40个循环。
步骤5：T＝72℃ 15分钟
步骤6：冷却至4℃并维持该温度。
由此，为了获得对扩增的等位基因特异性抑制，必须使引物长
度、退火温度和PNA样品长度最适化。
为了使最适的引物和PNA退火成为可能，用较长的13聚体PNA
AAAGACGTGTTAT测试较短的21聚体引物TAAGTATGTTGAAGAAAGATT和
AATCCCCATAAACTTACCAAA。进一步的实验是用18、19和20聚体引物
进行的，这些引物与上述序列仅区别在3’端的碱基被省略的事实。21
聚体引物是用退火温度的梯度进行检验的。在一个平行的批次中，将
13聚体的PNA AAAGACGTGTTAT或者适合于从非甲基化等位基因生产
的序列的PNA AAAGATGTGTTAT以20-100pmol/μl的不同浓度加入。
在以70和100pmol/μl的浓度加入PNA时且在退火温度49.4℃
和46.7℃下观察到了对PCR的明显影响。该影响在用18聚体引物时
最明显。
至此开始研究的是较低的延伸温度54℃在多大程度上影响了PNA
的抑制影响。
为此目的分别将上述的13聚体PNA或两个13聚体PNA一起以
50和70pmol/μl的浓度加入到PCR批次中。与无PNA的正对照相比
观察到对PCR的明显抑制(图2，琼脂糖凝胶电泳，所用的13聚体
PNA探针的PNA浓度；注释：MDR 1-5 FM：13聚体PNA
AAAGACGTGTTAT；MDR 1-5 FU：13聚体PNA AAAGATGTGTTAT)。该实
验使得检验中所用的DNA在相关位置上主要呈现非甲基化成为显而易
见的，这可通过亚硫酸氢盐测序来证实。因此，在该实验中可显示
PNA阻断探针明显的等位基因特异性，该特异性导致非甲基化片段优
选的扩增。
b)利用PNA探针(PNA阻断探针)的甲基化特异性PCR，其结合
位点与引物的相重叠(“引物排斥”)。
在上述实验中，引物是如此选择的，从而使PNA目标序列大约位
于要扩增的区域的中心。如果引物和PNA序列相互邻接或重叠，那么
该排列则描述为更灵敏的。在PNA序列特异性结合的情况下，在这种
排列下，即使微量的PNA浓度是也可观察到PNA的作用。
在该实验中选择具有序列TTATGTGAATTTTGAAAG的引物，从而使
得它与PNA序列重叠(引物排斥)。将13聚体PNA AAAGACGTGTTAT
和PNA AAAGATGTGTTAT两者以3种不同的浓度加入到反应批次中。
在浓度为25pmol/μl时就观察到了对PCR反应的完全抑制。在
前述的实验中，对PCR的完全抑制只有在两种PNA的加入下当浓度达
到70pmol/μl时才能观察到。
c)非甲基化DNA的相应片断的引物排斥
为了探测序列特异性结合，在进一步的实验中研究了PNA对鉴于
甲基化状态有明显特征的模板的作用。用于本实验的模板DNA相应于
经亚硫酸氢盐处理的完全非甲基化的DNA。
这将用作PCR中的模板。为此使用了下面的程序步骤：
步骤1：T＝96℃ 20分钟
步骤2：T＝96℃ 30秒钟
步骤3：T＝49℃ 1.15分钟
步骤4：T＝54℃ 2.00分钟
步骤2～4进行36个循环。
步骤5：T＝72℃ 15分钟
步骤6：冷却至4℃并维持该温度。
将如上所述的13聚体[PNA]以3个不同的浓度加入到反应批次
中。在这种非甲基化模板的情况下，人们将预期适合于该模板的PNA
MDR1-5-FU(3)将比MDR1-5-FM(3)具有明显更强的影响。图3(注
释参见图2)显示即使对于相当低的PNA浓度事实上也是这样的情
况。
这些结果显示通过特异性结合的PNA的甲基化特异性扩增使得对
PCR反应的抑制成为可能。在具有不与MDR-1互补的PNA的对照实验
中，可显示这在正被讨论的浓度下没有对PCR形成显著的影响。
实施例2：GSTpi基因片段的甲基化灵敏性扩增。
GSTPi基因的特定CpG位置被鉴定为前列腺癌的肿瘤标记。经选
择用于实验的引物对GGAAAGAGGGAAAGGTTTT和
TACTAAAAACTCTAAACCCCAT中的一个引物是这样定位的，以使其精确
地与PNA序列CCCCGAAAACGCG(或CCCTGAAAATGTG)邻接。该PNA序
列含有3个相关的CpG位置，其与那些用于MDR1片段的PNA有区
别。GSTPi片段的所研究及相关CpG呈现“正常的”非甲基化的DNA，
即不是源自肿瘤病人的DNA。对于反应批次给出的具有序列
CCCTGAAAATGTG PNA“GSTP-down”因而应该对PCR反应具有可识别的
影响，而不是相应的PNA“GSTP-up”CCCCGAAAACGCG。
将PNA“GSTP-down”以3个不同的浓度加入到实验批次中。在退
火温度的梯度下进行了检验。
该实验的结果在图4中显示。对PCR的最强的抑制可通过在退火
温度为55℃时PNA(GSTP-down)的加入来确定。与正对照(无PNA
的加入)相比，可认识到PCR反应将通过PNA以20[p]mol/μl的浓
度加入而显著地被抑制。
随后，将PNA“GSTP-up”和“GSTP-down”对以最初样品中非甲基化
DNA和源自前列腺肿瘤组织的甲基化DNA作为模板的扩增的影响进行
比较，以探测序列特异性(和因而最终的甲基化灵敏性)结合。
将非甲基化的DNA和前列腺DNA作为模板用于PCR中。将
PNA“GSTP-up”或“GSTP-down”以3个不同的浓度加入到反应批次中。
“GSTP-down”PNA的加入对下游甲基化的模板具有可见的影响：
当PNA以70pmol/μl的浓度加入时该PCR则被完全抑制。另一方
面，在加入PNA“GSTP-up”的情况下，相反仅可发现PNA对PCR的弱
的抑制影响。
在前列腺组织的检验DNA中加入“GSTP-up”PNA对PCR具有相当
大的抑制影响(图5)。PNA以20pmol/μl的浓度的加入就已经明显
地抑制了PCR。在PNA以50pmol/μl的浓度加入时可确定对PCR的
完全抑制。与此相反，在前列腺DNA中加入“GSTP-down”PNA具有明
显微小的影响。即使PNA以70pmol/μl的浓度加入也不能完全抑制
PCR。
该实验显示，借助阻断性寡聚体探针来选择性地抑制经限定位
置的甲基化或非甲基化等位基因的扩增是可能的。在本发明的意义
上，相关位置可充当限定器位置，即，将选择性地抑制背景DNA的不
想要的甲基化模板的扩增。
实施例3：以GSTPi基因为例使用甲基化特异性抑制PCR的探针
的不同可能性。
图6显示对于给定的模板序列在甲基化灵敏性扩增的意义上如何
排列引物的几种可能性。为了解释，图6a显示在经亚硫酸氢盐处理
之后的模板：DNA1相应于最初甲基化的样品，且DNA2相应于最初非
甲基化的样品。
图6b显示在等位基因特异性PCR或甲基化特异性PCR(MSP)的
意义上引物之一的排列。在这种情况下，利用在所显示的引物的使用
下只有甲基化的DNA1的扩增可以发生。
图6c和6d通过使用简并位置(6c)或者图6d中的通用碱基
(此处为肌苷)显示如何可以相应地使用非甲基化特异性的引物。
图7显示对于给定的模板序列在甲基化灵敏性扩增的意义上如何
排列引物和探针(“封阻剂”)的几种可能性。在这些实施例中，所用
的引物本身不是甲基化特异性的，而该甲基化特异性是单独通过探针
(“封阻剂”)来实现的。分别对DNA1和DNA2使用了特异性探针作为
封阻剂。
在图7a中引物和探针不重叠，但探针直接连接到引物的3’端
了。所示的探针是在3’端进行了修饰的寡核苷酸，其在扩增中自身不
能被延伸。类似地，也可使用PNA，但相应于其熔解温度，在本实施
例中该PNA必须较短。在图7b中使用了相同的引物，但此处的DNA
探针与引物重叠(引物排斥)。
在图7c和7d中，用于简并位置的引物与甲基化特异性探针重
叠。通用的碱基也可类似地用于引物中。
在图8中类似地显示了具有正向和反向引物的实施例，其中使用
了探针，该探针不与任何一个引物重叠。
这些实施例阐明寡聚体探针如何可以用于甲基化特异性扩增的多
种可能性，以抑制背景DNA相对于所分析的DNA的扩增。然而，本发
明的范围将不局限于作为实施例在此处所描述的实施方案。
实施例4：非甲基化和甲基化DNA的制备和亚硫酸氢盐处理
用于甲基化DNA的制备，将人基因组DNA根据生产商的说明书用
S-腺苷甲硫氨酸和CpG甲基化酶(SssI，New England Biolabs)进
行处理。用于非甲基化DNA的制备，将基因片段ELK-1用来自人基因
组DNA的引物GCTCTATGGTCTTGTCTAACCGTA(SEQ-ID：1)和
AGGTGGTGGTGGCGGTGG(SEQ-ID：2)借助PCR进行扩增。将这样制
备的非甲基化和甲基化DNA以及人基因组DNA以这样一种途径用亚硫
酸氢盐(Bisulphit，Hydrogensulfit，Disulfit)进行处理，从而所
有在碱基的5’位置未甲基化的胞嘧啶都被修饰从而产生了在碱基配对
性质上有差异的碱基，然而在5’位置甲基化的胞嘧啶则保持不变。如
果将亚硫酸氢盐在0.1摩尔～6摩尔的浓度范围内用于反应中，则在
非甲基化胞嘧啶碱基中发生加成。此外必须存在变性剂或溶剂及自由
基阱。随后的碱性水解导致非甲基化的胞嘧啶核碱基转变为尿嘧啶。
该转变的DNA用作验证甲基化胞嘧啶。
实施例5：Cy5-标记的基因探针的制备
由经亚硫酸氢盐处理的DNA样品开始，将来自ELK-1基因的启动
子区的长度为595bp的限定片段进行扩增。该扩增是用引物寡核苷
酸ATGGTTTTGTTTAATYGTAGAGTTGTTT(SEQ-ID：3)和
TAAACCCRAAAAAAAAAAACCCAATAT(SEQ-ID：4)进行的。通过使用以
荧光染料Cy5标记的引物寡核苷酸，该片段直接在PCR过程中进行标
记。将经亚硫酸氢盐处理的(1)非甲基化DNA、(2)甲基化DNA或
(3)人基因组DNA用作基质DNA。然后在分开的杂交中研究这3种
不同的DNA片段在特定CpG位置上的甲基化程度。
实施例6：进行杂交并评估经杂交的DNA“芯片”
在实施例5中制备的基因探针在DNA芯片上进行杂交。已预先将
寡核苷酸固定于芯片上。该寡核苷酸序列是源自在实施例2中所述的
基因ELK-1的扩增片段，且具有CG二核苷酸包含与其直接邻近的部
分。寡核苷酸的长度总计14-22个核苷酸，且寡核苷酸中CG二核苷
酸的位置是可变的。杂交之后，对DNA芯片进行扫描(参见图1)，
并用数字对杂交信号进行了评估(数据未显示)。对寡核苷酸
CTACTCAACGAAAACAAA(SEQ-ID：5)和CTACTCAACAAAAACAAA(SEQ-
ID：6)的杂交结果在图1中显示。此处如果位于扩增产物的位置
103的ELK-1片段的胞嘧啶是甲基化的，则CTACTCAACGAAAACAAA
(SEQ-ID：5)优选地进行杂交，而如果该胞嘧啶是非甲基化的，则
CTACTCAACAAAAACAAA(SEQ-ID：6)优选进行杂交。
图1中显示与启动子片段杂交之后的DNA芯片。伪彩色图像是如
扫描后制作的那样显示的。相对与此处显示的黑白图相反，彩色图像
是用扫描仪制得的。不同颜色的强度代表杂交的程度，其中杂交的程
度从红色(这可在图1中识别为浅色的点)减低到蓝色(这可在图1
中识别为深色的点)。
实施例7：模板DNA的制备和确立GSTp1 PCR
将来自外周血的人DNA(Promega，Madison USA)作为模板
DNA，该DNA是未处理的，用酶在体外进行甲基化，并进行了亚硫酸
氢盐处理。用于所有CG二核苷酸的甲基化，根据生产商的说明书，
将150μl反应体积中的6μg DNA与SssI(New England Biolabs，
Frankfurt/Main)进行反应。亚硫酸氢盐处理是根据已公开的方法进
行的(Olek A，Oswald J，Walter J，一种改良提高的基于硫酸氢
盐的胞嘧啶甲基化分析的方法(A modified and improved method
for bisulphate based cytosine methylation analysis)，
Nucleic Acids Res.1996年12月15日；24(24)：5064-6)。
将153-bp长的GSTp1片段(序列Acc.Nr M24485.1中的位置
1242-1393)用亚硫酸氢盐-DNA特异性引物2cf GTTTT(CT)
GTTATTAGTGAGT和2cr TCCTAAATCCCCTAAACC在25μl反应体积中
(1x反应缓冲液，Qiagen；1 U HotstarTaq，Qiagen每种dNTP；
200μM，每一种引物500nM，0.05-10ng经亚硫酸氢盐处理的模板
DNA)进行扩增，其PCR条件如下(95℃-15分钟；46个循环：96℃-
0：45分钟，52℃-0：45分钟，72℃-0：20分钟；72℃-10分钟)
(参见图9和10)。通过对GSTp1片断的测序可显示来自外周血的
人DNA对于这些片段没有甲基化的CG二核苷酸，而在另一方面，经
SssI处理的DNA中，所有CG二核苷酸都呈现甲基化的形式(参见图
9)。对GSTp1片段的测序证实了其它的结果(参见如WO
9955905)，即在GSTp1基因中，与经发表的序列(Genbank Acc No.
M24485.1)相比，存在额外的G核苷酸(在Genbank Acc No.
M24485.1的位置1273和1274间；GSTp1 PCR片段的位置33，参见
图9)。至于PCR的效率，在CpG-甲基化和CpG-非甲基化的模板DNA
之间无差异(参见图10)。
实施例8：甲基化GSTp1片段的选择性扩增。
甲基化GSTp1片段选择性扩增的实验设计示意性地在图11中显
示。GSTp1片段利用引物2cf GTTTT(CT)GTTATTAGTGAGT和2cr
TCCTAAATCCCCTAAACC在非甲基化模板DNA上的扩增是通过2个封阻
剂寡核苷酸(B5+9FT6，GTGAGTATGTGTGGTTTGTGT-P；B15+17RT11，
TAAACCCCCATCCCAAATCTCA-P，参见图11)阻止的，所述封阻剂寡核
苷酸序列相应于非甲基化的经亚硫酸氢盐处理的DNA。这些寡核苷酸
在3’端用磷酸基团是经修饰的以防止其在PCR过程中的延伸。该PCR
是在25μl反应体积中用如下循环程序(95℃-15分钟；46个循环：
96℃-0：45分钟，52℃-0：45分钟，72℃-0：20分钟；72℃-10分
钟)进行的。该PCR批次由如下组成：1x反应缓冲液(Qiagen，
Hilden)；2 U HotstarTaq(Qiagen，Hilden)；每种dNTP200
μM，每种引物500nM，每种封阻剂10μm(B5+9FT6，
GTGAGTATGTGTGGTTTGTGT-P和B15+17RT11，TAAACCCCCATCCCAAA
TCTCA-P)，20ng-20pg经亚硫酸氢盐处理的模板DNA。在这种PCR
条件下，使可能完全抑制在25μg非甲基化模板DNA上GSTp1片段
的扩增(参见图12A，泳道8)。如果PCR是在无封阻剂寡核苷酸时
进行的，那么GSTp1片段即得到了扩增(参见图12，D泳道8)。相
反地，GSTp1-PCR-产物可在具有或不具有封阻剂寡核苷酸的情形下
在100pg甲基化模板DNA上以相同的PCR条件被探测到((参见图
12，C泳道7；F泳道7)。因而PCR的绝对灵敏度至少为100pg甲
基化模板DNA。
为了研究PCR的相对灵敏度，制备了非甲基化和甲基化模板DNA
的混合物，其中非甲基化的与甲基化的DNA的比例为1∶1至
1∶1000。用于这种DNA混合物的制备，将来自外周血的DNA
(Promega，Madison；USA)与经SssI-处理的DNA相应于要获得的
比例进行混合(参见实施例7)，并然后进行亚硫酸氢盐处理。在这
些模板DNA混合物上(25μg总DNA)具有或不具有封阻剂寡核苷酸
进行的PCR的结果显示于图12A、B或图12D、E中。它们显示甲基化
GSTp1基因的拷贝可在200个拷贝的非甲基化GSTp1基因的背景上重
复探测(参见图12，A泳道6；B泳道6)。1∶1000的相对灵敏度通
过进一步使PCR条件最适化是可以达到的(参见图12B，泳道7)。
对具有封阻剂(参见图12，A泳道6)或不具有B封阻剂(参见
图12，D泳道6)的情形下，从DNA混合物中(非甲基化与甲基化
DNA的比例为1∶200)扩增的PCR产物的序列分析显示了预期的结
果。在不具有封阻剂的PCR中产生的PCR产物相应于非甲基化的
GSTp1基因，而相反地，在具有封阻剂寡核苷酸的PCR中产生的
GSTp1基因片段具有甲基化的外遗传状态。
也成功地检验了不相应于相应的GSTp1核苷酸序列的其它3’修
饰，如ddNTP或额外的核苷酸。
实施例9：甲基化的GSTp1片段在LightCycler上的选择性扩
增。
LightCycler(Roche)是进行PCR并同时探测和分析PCR产物
的仪器。该仪器是根据生产商的说明书进行操作的。对PCR的定量和
定性分析是用LightCycler软件3.5版进行的。
甲基化GSTp1基因片段的选择性扩增是在10μl反应体积中(1x
反应缓冲液(Qiagen，Hilden)；5 U HotstarTaq(Qiagen，
Hilden)；每种dNTP250μM，每种引物625nM(2cf GTTTT(CT)
GTTATTAGTGAGT；2cr TCCTAAATCCCCTAAACC)，4μM的封阻剂
(B5+9FT16，GTGAGTATGTGTGGTTTGTGTT-P)，0.25μg/μl BSA
(Sigma，Munich)，250nM锚定寡核苷酸(GSTp1-Fluo，
TTTAGAGTTTTTAGTATGGGGTTAATT-Fluorescein；TibMolBiol，
Berlin)，250nM杂交探针(GSTp1-Red705，Red705-
GTATTAGGTTTGGGTTTTTGGT-P；TibMolBiol，Berlin)和/或GSTp1-
Red650，Red650-TAGTATTAGGTTCGGGTTTTCGG-P，TibMolBiol，
Berlin)，20ng-200pg模板DNA)进行的，使用如下循环程序：
95℃-15分钟；46个循环：变性96℃-4秒钟，退火52℃-30秒钟，
延伸72℃-20秒钟。探测是在每一个循环中通过基因特异性和甲基化
特异性LightCycler探测探针在退火步骤中10秒钟之后进行的。当
甲基化特异性锚定探针GSTp1-Fluo及甲基化特异性探针GSTp1-Red
705或GSTp1-Red650之一两者与PCR片段进行杂交时，对GSTp1-
PCR片段进行探测。
为了检查探测探针的甲基化特异性，将各15 ng的经亚硫酸氢盐
处理的甲基化和非甲基化模板DNA在LightCycler中进行了扩增。为
了进行探测，该PCR含有锚定探针GSTp1-Fluo和杂交探针GSTp1-
Red705和GSTp1-Red650的等摩尔混合物。对于经甲基化的GSTp1
基因的探针GSTp1-Red650的荧光是在LightCycler的F2/F1探测通
道中测量的，而相反地，对于非甲基化的GSTp1基因的探针GSTp1-
Red705是在F3/F1通道中探测的(参见图13)。该实验显示
GSTp1-Red650特异性地探测甲基化的GSTp1基因，而非甲基化的版
本不产生荧光信号(参见图13A)。相反地，探针GSTp1-Red705探
测非甲基化和甲基化的GSTp1基因，但对后者以显著减少的效率进行
探测(参见图13B)。
甲基化GSTp1片段扩增的绝对和相对灵敏度是与实施例8类似地
进行研究的。为了确定绝对灵敏度，在具有或不具有封阻剂寡核苷酸
的情形下，在LightCycler中于不同甲基化量的经亚硫酸氢盐处理的
模板DNA上进行了GSTp1-PCR。除“锚定”探针之外，将杂交探针
GSTp1-Red650用于探测。结果总结于图14中。对“杂交点
(crossing points)”的计算是用LightCycler软件3.5版进行
的，并显示了PCR循环的数目，其中GSTp1 PCR产物可第一次以比负
对照高的信号探测到。这意味着“杂交点”的值越低，GSTp1片段的扩
增越有效。如果未显示“杂交点”，则意味着不可探测到PCR产物。在
所示的实验中，即使在封阻剂存在时，GSTp1也可用75pg甲基化的
亚硫酸氢盐处理的模板DNA进行扩增(参见图14)。
为了确定相对灵敏度，GSTp1的PCR是用具有或不具有封阻剂寡
核苷酸的20ng模板DNA混合物进行的(参见实施例8)(图15)。
为了进行探测，该PCR含有“锚定”探针GSTp1-Fluo和杂交探针
GSTp1-Red705和GSTp1-Red650的等摩尔混合物。对于甲基化的
GSTp1基因的探针GSTp1-Red650的荧光是在LightCycler的F2/F1
探测通道中测量的，而相反地，对于非甲基化的GSTp1基因的探针
GSTp1-Red705是在F3/F1通道中探测的。
确定的“杂交点”显示在具有封阻剂的寡核苷酸的PCR中，一拷贝
的甲基化GSTp1基因可在500个拷贝的非甲基化GSTP1基因的背景中
重复进行探测(参见图15，“旋转位置(rotor position)”17，
F2/F1列)。这相应于40pg甲基化模板DNA的绝对灵敏度。在无封
阻剂寡核苷酸时，只可获得1∶10的相对灵敏度(参见图15，“旋转
位置(rotor position)”3，F2/F1列)。在相同的条件下，具有15
ng非甲基化的经亚硫酸氢盐处理的模板DNA的GSTp1基因的扩增是
完全被抑制的(参见图15，“旋转位置(rotor position)”19和
9，F3/F1列)。
实施例10：甲基化GSTp1片段在TaqMan上的选择性扩增
TaqMan(Applied Biosystems，Weiterstadt)是进行PCR并同
时探测和分析PCR产物的另一种仪器。该仪器是根据生产商的说明书
进行操作的。对PCR的定量和定性分析是用TaqMan软件进行的。
甲基化GSTp1基因片段的选择性扩增是在20μl反应体积中(1x
反应缓冲液(Applied Biosystems)；2 U Amplitaq Gold
(Applied Biosystems)；3.5mM MgCl2，每种dNTP 400μM，每种
引物500nM(2cft，GTTTT(CT)GTTATTAGTGAGTA；2cr
TCCTAAATCCCCTAAACC)，7.5μM封阻剂1(B5+9FT16，
GTGAGTATGTGTGGTTTGTGT-P)，7.5μM封阻剂2(B15+17RT19，
TAAACCCCCATCCCAAATCTC-P)，450nM TaqMan探针(Taq1，Black
hole-TAATTCGTAGTATTAGGTTCGGGTTTTCGGTAGGG-FAM；Biosearch
Technologies)，10ng模板DNA)进行的，使用如下循环程序：
(95℃-10分钟；3个循环：变性96℃-15秒钟，退火60℃-60秒
钟；3个循环：变性96℃-15秒钟，退火58℃-30秒钟，延伸60℃-
30秒钟；3个循环：变性96℃-15秒钟，退火55℃-30秒钟，延伸
60℃-30秒钟；40个循环：变性96℃-15s，退火52℃-30s，延伸
60℃-40s)。探测是在每一个扩增循环中通过基因特异性TaqMan探
针在延伸步骤之后进行的。
为了确定相对灵敏度，GSTp1的PCR是用具有或不具有封阻剂寡
核苷酸的10ng模板DNA混合物进行的(参见实施例8)(图16)。
对“阈值循环”的计算是用TaqMan软件进行的并给出了与
LightCycler的“杂交点”的值可比较的PCR循环的数目，在该数目上
GSTP1 PCR产物可第一次以比负对照高的信号探测到。这意味着“阈
值循环”的值越低，GSTp1片段的扩增越有效。
确定的“阈值循环”的值显示在具有封阻剂的寡核苷酸的PCR中，
一拷贝的甲基化GSTp1基因可在200个拷贝的非甲基化GSTP1基因的
背景中进行探测(参见图16)。这相应于50pg甲基化模板DNA的
绝对灵敏度。在相同的条件下，具有10ng非甲基化的经亚硫酸氢盐
处理的模板DNA的GSTp1基因的扩增是完全被抑制的(参见图
16)。
附图描述：
图10：GSTp1 PCR片段的琼脂糖凝胶。PCR是用10ng、5ng、1
ng、0.5ng和0.1ng的甲基化(A)和非甲基化(B)的经亚硫酸氢
盐处理的模板DNA进行的。
图11：具有引物和封阻剂寡核苷酸位置的GSTp1片段的序列。
图12：GSTp1 PCR片段的琼脂糖凝胶。对甲基化GSTp1基因
(A、B、D、E)扩增的相对灵敏度和甲基化GSTp1基因扩增的绝对灵
敏度(C、F)进行了分析。GSTp1 PCR是在具有封阻剂寡核苷酸
(A、B、C)和不具有封阻剂寡核苷酸(D、E、F)的情形下进行的。
下面是用作模板DNA的：20ng甲基化的经亚硫酸氢盐处理的DNA
(A1、B1、D1、E1、C1、F1、C2、F2)和20ng非甲基化的经亚硫酸
氢盐处理的DNA(A8、B8、D8、E8)；混合比例为1∶2(A2、B2、
D2、E2)、1∶10(A3、B3、D3、E3)、1∶20(A4、B4、D4、E4)、
1∶100(A5、B5、D5、E5)、1∶200(A6、B6、D6、E6)、1∶1000
(A7、B7、D7、E7)的甲基化和非甲基化的经亚硫酸氢盐处理的
DNA；10ng(C3、F3)、2ng(C4、F4)、1ng(C5、F5)、0.2ng
(C6、F6)、0.1ng(C7、F7)、0.02ng(C8、F8)甲基化的经亚
硫酸氢盐处理的DNA和无DNA(A9、D9)。
图13：探测探针的甲基化特异性的分析。该图显示在甲基化的
经亚硫酸氢盐处理的DNA(实线)和非甲基化的经亚硫酸氢盐处理的
DNA(虚线)的GSTp1 PCR中的荧光进程，该进程是用杂交探针
GSTp1-Red650(A)或GSTp1-Red705(B)探测的。
图14：LightCycler上GSTp1 PCR的绝对灵敏度的确定。该
GSTp1 PCR是在具有封阻剂核苷酸(“旋转位置”9、10、11、12、
13、14、15、16、18)和不具有封阻剂寡核苷酸(“旋转位置”1、2、
3、4、5、6、7、8、17)的情形下进行的。下面是用作模板DNA的：
甲基化的经亚硫酸氢盐处理的DNA：7.5ng(“旋转位置”1、9)、
3.7ng(“旋转位置”2、10)、0.75ng(“旋转位置”3、11)、0.37
ng(“旋转位置”4、12)、0.075ng(“旋转位置”5、13)、
0.037ng(“旋转位置”6，14)、0.015ng(“旋转位置”7、15)、
0.0075ng(“旋转位置”8、16)和无DNA(“旋转位置”17、18)。
图15：甲基化GSTp1基因扩增的相对灵敏度的确定。该甲基化
GSTp1基因的扩增是用LightCycler进行的。该探测是用杂交探针
GSTp1-Red650(F2/F1，杂交点)和GSTp1-Red705(F3/F1，杂交
点)进行的。该GSTp1 PCR是在具有封阻剂寡核苷酸(“旋转位置”
11、12、13、14、15、17、18、19、20)和不具有封阻剂寡核苷酸
(“旋转位置”1、2、3、4、5、7、8、9、10)的情形下进行的。下面
是用作模板DNA的：15ng甲基化的经亚硫酸氢盐处理的DNA(“旋转
位置”1、11)和15ng非甲基化的经亚硫酸氢盐处理的DNA(“旋转
位置”10、20)，混合比例为1∶2(“旋转位置”2、12)、1∶10
(“旋转位置”3、13)、1∶20(“旋转位置”4、14)、1∶100(“旋转
位置”5、15)、1∶500(“旋转位置”7、17)、1∶1000(“旋转位
置”8、18)的甲基化和非甲基化的亚硫酸氢盐处理的DNA，和无DNA
(“旋转位置”10、20)。
图16：甲基化GSTp1基因扩增的相对灵敏度的确定。该甲基化
GSTp1基因的扩增是用TaqMan进行的。
序列表
<110>Epigenomics AG
<120>探测胞嘧啶甲基化模式的高灵敏度方法
<130>E01/1289/WO
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ctactcaacg aaaacaaa 18
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ctactcaaca aaaacaaa 18
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<212>DNA
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gttttctgtt attagtgagt 20
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gtattaggtt tgggtttttg gt 22
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<211>23
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<213>人工
<400>16
tagtattagg ttcgggtttt cgg 23
<210>17
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