β-丙氨酸的生物合成方法 (一)技术领域
本发明涉及β-丙氨酸的生物合成方法，特别是在微生物酶的作用下合成β-丙氨酸的合成方法。
(二)背景技术
β-丙氨酸，又名β-氨基丙酸。1972年由Ross和Monroe在尿嘧啶的降解产物中发现。它是一种非蛋白质的氨基酸，是自然界中唯一的β型氨基酸。β-丙氨酸主要的生理活性作用是合成泛酸、辅酶A。现代医学研究发现，在哺乳动物的神经系统中，它可作为大脑中神经传递者；具离子通道的激活作用；可治疗由组织缺氧引起地肝损伤。
在精细化工领域β-丙氨酸用于合成聚合β-丙氨酸，电镀缓冲剂，染料等生产。聚合β-丙氨酸在水处理工业中用作絮凝剂；在医药工业中，β-丙氨酸是可用作许多药物的中间体，例泛酸钙，系维生素b族物质，是多种代谢环节中，包括碳水化合物、蛋白质、脂肪及上皮功能维持正常所必需的辅酶a的组分部分。肌肽是一种十分有效的伤口愈合剂。N-(2，5-二氯-4-氰硫基苯)-β-丙氨酸是一种有效的抗真菌剂，β-丙氨酸具有较宽广的应用领域和市场前景。
目前β-丙氨酸采用化学合成法生产。化学合成法有三种工艺：(1)丙稀腈法：此法丙稀腈经与氨在二苯胺和叔丁醇溶液中反应，生产β-氨基丙腈，再进行碱解即得；此法的缺点是产物中存在有40％以上的NaCl和杂质，需要反复纯化，反应过程中产生的NH3污染大气；(2)β-氨基丙腈法：β-氨基丙腈与氢氧化钡反应生成β-氨基丙酸钡和氮气，通入CO2，钡盐析出，产生β-氨基丙酸，钡离子用树脂去除，此法的缺点是生产成本高；(3)琥珀酰亚胺降解法：琥珀酰亚胺在碱性氯酸钠溶液中生成β-氨基丙酸，反应液用盐酸调pH，用3倍量的95％乙醇使无机盐析出，滤液用4倍量的蒸馏水稀释，离子交换树脂交换，交换液脱色，浓缩结晶，此法需大量的乙醇，生产成本高，生产场地安全性要求高。总之化学合成法的原料、中间体及副产物有毒，对环境污染严重。
(三)发明内容
本发明的目的是提供一种β-丙氨酸的生物合成方法，以克服现有β-丙氨酸的化学合成方法对环境易造成污染且成本高的不足。
本发明达到发明目的所采用的技术方案是：
一种β-丙氨酸的生物合成方法，所述的方法是用可产生氨基化酶的微生物分别在含丙烯酸的种子培养基和含丙烯酸的发酵培养基中培养出相应的氨基化酶，将所述的氨基化酶加入转化液中，所述的转化液为含有1％～50％(g/ml)丙烯酸的氨水溶液，在酶的作用下合成β-丙氨酸，经脱氨、纯化得β-丙氨酸产品。转化液的pH保持在2.0～9.6，在20～80℃条件下搅拌转化反应2-40小时，然后转化液经脱氨、离子交换、纯化得到β-丙氨酸纯品。
所述的转化反应器在密闭环境下进行。
所述的微生物为藤黄八叠球菌或大肠杆菌。
所述的种子培养基为：终浓度百分含量(g/ml)0.01～10％丙烯酸，0.1～10％牛肉膏，0.1～2.0％玉米浆，0.1～10％蛋白胨，0.0.1～0.1％KH2PO4，0.011～0.15％MgSO4，0.05～0.5％NaCl，调pH3.0～9.5；
所述的发酵培养基为：终浓度百分含量(g/ml)0.01～10％丙烯酸，0.1～2.0％玉米浆，0.1～10％蛋白胨，0.0.1～0.1％KH2PO4，0.011～0.15％MgSO4，0.05～0.5％NaCl，调pH3.0～9.5。
所述的转化液可以是氨水及下式之一：
①磷酸缓冲液；②柠檬酸缓冲液；③醋酸缓冲液；④蒸馏水。
通常选用0.2M磷酸缓冲液，pH5.7～8.0；0.1M柠檬酸缓冲液，pH3.0～6.6；0.2M醋酸缓冲液，pH3.6～5.8。
所述的方法按如下步骤进行：
(1)将藤黄八叠球菌或大肠杆菌菌种接入种子培养基中，25～40℃，150～300r/min摇床培养16～40小时，然后以1％～20％的接种量转入发酵培养基，20～60℃，100～300r/min发酵16～60小时；
(2)发酵液按1％～50％的比例加入转化液，转化液中丙稀酸浓度1％～50％(g/ml)，用氨水控制转化液的pH为2.0～9.6，25～40℃下搅拌转化4～20小时，用高锰酸钾滴定丙烯酸含量，当丙烯酸量保持1～4小时不变时终止反应；
(3)反应后转化液经脱氨、离子交换，纯化得β-丙氨酸产品。
所述的所述的方法中的步骤(3)具体为：反应后转化液3000r/min25分钟，离心去除菌体，上清液减压脱氨浓缩，进行离子交换分离纯化，分步收集的液体用茚三酮显色，显色的收集液再脱色浓缩结晶，即可得β-丙氨酸样品。
所述的转化液为终浓度(g/ml)为0.03的丙烯酸，0.22×10-3的MgSO4.7H2O，余量为蒸馏水，用氨水调pH7.2～7.5。
所述的所述的方法按如下步骤进行：
(1)将藤黄八叠球菌或大肠杆菌菌种接入种子培养基中，30～35℃，200～300r/min摇床培养16～20小时，然后以1％～20％的接种量转入发酵培养基，30～35℃，150～300r/min发酵16～20小时；
(2)发酵液按1％～50％的比例加入转化液，转化液中丙稀酸浓度(g/ml)1％～50％，用氨水控制转化液的pH为4.0～8.0，30～35℃下搅拌转化6～10小时，用高锰酸钾滴定丙烯酸含量，当丙烯酸量保持1～4小时不变时终止反应。
所述方法按如下步骤进行：
(1)将藤黄八叠球菌或大肠杆菌菌种接入种子培养基中，30℃，200r/min摇床培养24小时，然后以1％～20％的接种量转入发酵培养基，30～35℃，200r/min发酵16～20小时；
(2)发酵液按1％～50％的比例加入转化液，30～35℃下搅拌转化8小时，每2小时测一次pH值，用氨水调至pH7.2～7.5，用高锰酸钾滴定丙烯酸含量，当丙烯酸量保持1～4小时不变时终止反应；
(3)反应后转化液3000r/min 25分钟，离心去除菌体，上清液减压脱氨浓缩，进行离子交换分离纯化，分步收集的液体用茚三酮显色，显色的收集液再脱色浓缩结晶，即可得β-丙氨酸样品。
上述步骤中，所述的种子培养基为：终浓度(g/ml)为1.1％的玉米浆，0.02％的MgSO4.7H2O，0.1％的KH2PO4，0.145％的氯化钠，0.5％的牛肉膏，121℃灭菌20min，0.8％的丙烯酸，余量为水，用氨水调pH7.0；所述的种子培养基为：终浓度(g/ml)为1.1％的玉米浆，0.02％的MgSO4.7H2O，0.1％的KH2PO4，0.145％的氯化钠，121℃灭菌20min，0.8％的丙烯酸，余量为水，用氨水调pH7.0；所述的转化液为终浓度(g/ml)为0.03％的丙烯酸，0.22×10-3的MgSO4.7H2O，余量为水，用氨水调pH7.2～7.5。
培养基中采用MgSO4.7H2O，可提高菌体产酶的活性。
本发明所述的β-丙氨酸的生物合成方法的有益效果主要体现在：(1)用微生物酶做催化剂，反应效率高，且无污染；(2)反应原料易得，步骤简单，成本低；(3)产物纯度高。
(四)附图说明
图1为α-丙氨酸标准样品高效液相色谱图；
图2为β-丙氨酸标准样品高效液相色谱图；
图3为实施例1制得β-丙氨酸样品高效液相色谱图；
图4为实施例1所得样品红外图谱；
图5为Aldrich Condensed Phase数据库对样品红外图谱的匹配图；
图6为β-丙氨酸标准样品核磁共振图谱；
图7为实施例1所得样品核磁共振图谱；
图8、图9为纸层析结果示意图。其中：a1、a2分别代表大肠杆菌产生的酶转化的结果；d1、d2分别代表藤黄八叠球菌产生的酶转化的结果；d3为实施例1发酵液离心后的上清液；α代表α-丙氨酸标样；β代表β-丙氨酸标样。
(五)具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明作进一步描述：
实施例1：β-丙氨酸的生物合成
种子培养基：玉米浆1.1g，MgSO4.7H2O 0.02g，KH2PO4 0.1g，氯化钠0.145g，牛肉膏0.5g，水100mL 121℃灭菌20min，丙烯酸0.8g，氢氧化钠调pH7.0；
发酵培养基：玉米浆1.1g，MgSO4.7H2O 0.02g，KH2PO4 0.1g，氯化钠0.145g，水100mL121℃灭菌20min，丙烯酸0.8g，氢氧化钠调pH7.0；
转化液：丙烯酸15g，MgSO4.7H2O 0.11g，氨水调pH7.5，0.2M磷酸缓冲液定容500mL。
藤黄八叠球菌斜面菌种接入种子培养基，200r/min，30℃摇床培养24h。以20％的接种量转入发酵培养基，30℃，200r/min摇床培养18小时得发酵液。发酵液按50％的比例加入转化液，转化液中丙烯液浓度3％，用氨水控制转化液的pH为7.5，为防止丙烯酸和氨水的挥发，转化反应器密闭，在30℃条件下搅拌转化8小时，反应后转化液3000r/min25分钟，离心去除菌体，上清液减压脱氨浓缩，进行离子交换分离纯化，分步收集的液体用茚三酮显色，显色的收集液再脱色浓缩结晶，得纯度90％的β-丙氨酸样品。转化率达60％。
实施例2：β-丙氨酸的生物合成
种子培养基：玉米浆0.5g，MgSO4.7H2O 0.02g，KH2PO4 0.05g，氯化钠0.10g，牛肉膏0.8g，水100mL121℃灭菌20min，丙烯酸0.08g，盐酸调pH6.5；
发酵培养基：玉米浆0.5g，MgSO4.7H2O 0.02g，KH2PO4 0.05g，氯化钠0.10g，水100mL 121℃灭菌20min，丙烯酸0.08g，盐酸调pH6.5；转化液：丙烯酸10g，MgSO4.7H2O 0.10g，氨水调pH4.8，0.2M醋酸缓冲液定容500mL。
藤黄八叠球菌斜面菌种接入种子培养基，100r/min，25℃摇床培养20h。以15％的接种量转入发酵培养基，25℃，100r/min摇床培养16小时。发酵液按40％的比例加入转化液，转化液中丙烯液浓度2％，用氨水控制转化液的pH为4.8，为防止丙烯酸和氨水的挥发，转化反应器密闭，在25℃条件下搅拌转化10小时，反应后转化液3000r/min 25分钟，离心去除菌体，上清液减压脱氨浓缩，进行离子交换分离纯化，分步收集的液体用茚三酮显色，显色的收集液再脱色浓缩结晶，得纯度95％的β-丙氨酸样品。转化率达54％。
实施例3：β-丙氨酸的生物合成
种子培养基：玉米浆1.8g，MgSO4.7H2O 0.02g，KH2PO4 0.05g，氯化钠0.45g，牛肉膏6.5g，水100mL121℃灭菌20min，丙烯酸7.5g，盐酸调pH5.5；
发酵培养基：玉米浆1.8g，MgSO4.7H2O 0.02g，KH2PO4 0.05g，氯化钠0.45g，水100mL 121℃灭菌20min，丙烯酸7.5g，盐酸调pH5.5；
转化液：丙烯酸200g，MgSO4.7H2O 0.12g，氨水调pH6.0，0.1M柠檬酸缓冲液定容500mL。
大肠杆菌斜面菌种接入种子培养基，300r/min，55℃摇床培养18h。以15％的接种量转入发酵培养基，55℃，300r/min摇床培养16小时。发酵液按50％的比例加入转化液，转化液中丙烯液浓度45％，用氨水控制转化液的pH为6.0，为防止丙烯酸和氨水的挥发，转化反应器密闭，在55℃条件下搅拌转化3小时，反应后转化液3000r/min25分钟，离心去除菌体，上清液减压脱氨浓缩，进行离子交换分离纯化，分步收集的液体用茚三酮显色，显色的收集液再脱色浓缩结晶，得纯度80％的β-丙氨酸样品。转化率达50％。
实施例4：β-丙氨酸的生物合成
种子培养基：玉米浆1.0g，MgSO4.7H2O 0.02g，KH2PO4 0.04g，氯化钠0.30g，牛肉膏8.5g，121℃灭菌20min，丙烯酸4.5g，水100mL氢氧化钠调pH9.0；
发酵培养基：玉米浆1.0g，MgSO4.7H2O 0.02g，KH2PO4 0.04g，氯化钠0.30g，121℃灭菌20min，丙烯酸4.5g，氢氧化钠调pH9.0；
转化液：丙烯酸90g，MgSO4.7H2O 0.10g，氨水调pH9.0蒸馏水定容500mL。
大肠杆菌斜面菌种接入种子培养基，250r/min，20℃摇床培养50h。以20％的接种量转入发酵培养基，20℃，250r/min摇床培养45小时。发酵液按30％的比例加入转化液，转化液中丙烯液浓度18％，用氨水控制转化液的pH为8.5，为防止丙烯酸和氨水的挥发，转化反应器密闭，在20℃条件下搅拌转化36小时，反应后转化液3000r/min 25分钟，离心去除菌体，上清液减压脱氨浓缩，进行离子交换分离纯化，分步收集的液体用茚三酮显色，显色的收集液再脱色浓缩结晶，得纯度98％的β-丙氨酸样品。转化率达58％。
实施例5：β-丙氨酸含量测定
(1)高效液相色谱：
分别取实施例1所得冷冻干燥结晶样品、β-丙氨酸标准样品(1mg/ml)、a-丙氨酸标准样品，进行高效液相色谱分析：
柱型号：SB-804
柱温：30℃
梯度方式：恒流0.5ml/min
检测器：蒸发光
计算方法：面积归一法
实施例1所得冷冻干燥结晶样品色谱图如图3所示，β-丙氨酸标准样品色谱图如图2所示，a-丙氨酸标准样品色谱图如图1所示。结果分析分别见表1、表2、表3：
表1 a-丙氨酸标准样品高效液相色谱图分析结果峰号 保留时间 峰高 峰面积 含量 1 0.115 1700.250 9173.483 0.108 2 0.198 2242.083 17262.813 0.203 3 0.432 3032.417 21173.766 0.249 4 0.640 2788.000 21139.232 0.249 5 0.773 2755.333 9991.200 0.117 6 0.865 2226.750 8519.967 0.100 7 0.965 3270.750 21364.021 0.251
8 1.182 3619.917 29223.500 0.344 9 1.248 3740.583 12792.467 0.150 10 1.357 3751.167 18715.045 0.220 11 1.407 3987.667 16780.637 0.197 12 1.540 3523.000 21033.518 0.247 13 1.615 3364.250 9596.650 0.113 14 1.673 4364.333 31716.250 0.373 15 1.890 4975.500 34103.246 0.401 16 1.982 5831.917 29109.287 0.342 17 2.048 5970.583 30176.578 0.355 18 2.140 5566.000 18443.570 0.217 19 2.223 5668.833 46070.266 0.542 20 2.673 15945.038 99602.148 1.171 21 2.840 20433.115 258071.953 3.034 22 3.023 12299.400 195660.094 2.300 23 3.323 9029.139 46897.672 0.551 24 3.432 9028.489 56445.047 0.664 25 3.648 10352.188 119731.188 1.408 26 3.915 14876.512 313796.500 3.689 27 4.182 8518.835 78775.023 0.926 28 4.390 4813.432 15380.441 0.181 29 4.682 358473.063 4979341.000 58.544 30 5.265 48932.336 871589.500 10.248 31 5.848 5542.605 68417.617 0.804 32 6.015 5505.682 24397.492 0.287 33 6.232 5706.382 20933.061 0.246 34 6.532 5929.121 30912.625 0.363 35 6.815 5376.652 77384.391 0.910 36 6.898 6045.690 47495.656 0.558 37 7.098 5652.183 43641.211 0.513 38 7.232 5115.844 40899.234 0.481 39 7.382 4447.713 54353.414 0.639 40 7.715 5312.868 65990.922 0.776 41 7.848 4530.529 40760.832 0.479 42 8.032 4402.814 35346.094 0.416 43 8.232 3960.306 72598.391 0.854 44 8.582 3259.668 25392.615 0.299 45 8.915 3930.822 39040.234 0.459 46 9.282 4098.391 63817.641 0.750 47 9.398 4061.845 38422.938 0.452 48 9.615 3826.545 35873.441 0.422 49 9.782 3313.622 34588.539 0.407 50 9.982 3736.115 21026.479 0.247 51 10.165 3137.399 54667.484 0.643
52 10.632 2731.215 29320.207 0.345 53 10.898 1963.538 25650.387 0.302 54 11.532 2010.431 32923.195 0.387 55 11.698 2279.508 20862.555 0.245 56 12.065 1601.778 18898.500 0.222
表2 β-丙氨酸标准样品高效液相色谱图分析结果峰号 保留时间 峰高 峰面积 含量 1 0.148 1620.605 7669.391 0.051 2 0.282 1628.560 4879.640 0.033 3 0.340 1543.165 4407.230 0.029 4 0.432 3639.259 26543.029 0.177 5 0.607 3168.075 15925.931 0.106 6 0.732 2634.658 13466.766 0.090 7 0.815 2313.380 8296.318 0.055 8 0.907 3570.474 24290.539 0.162 9 1.098 3372.034 20468.037 0.137 10 1.182 3394.756 16484.279 0.110 11 1.265 4131.478 32089.504 0.214 12 1.490 3742.526 29959.570 0.200 13 1.640 4657.226 25467.473 0.170 14 1.715 4494.575 29704.072 0.198 15 1.840 3825.158 18772.084 0.125 16 1.990 4783.857 25627.811 0.171 17 2.048 6351.462 48346.859 0.323 18 2.190 5200.790 33594.852 0.224 19 2.798 25601.000 542744.813 3.623 20 3.198 11669.000 56640.898 0.378 21 3.265 12421.000 77564.297 0.518 22 3.373 9851.000 36196.500 0.242 23 3.532 15168.000 186700.500 1.246 24 3.865 52416.000 893984.625 5.967 25 4.232 13667.000 90115.203 0.601 26 4.365 9453.000 32023.500 0.214 27 4.582 20791.000 341163.594 2.277 28 4.815 13829.000 69644.898 0.465 29 4.915 13089.000 57102.000 0.381 30 5.182 359788.000 5718041.000 38.167 31 5.765 18524.000 145309.000 0.970 32 5.932 19685.000 253335.094 1.691 33 6.165 18268.000 267904.906 1.788 34 6.432 16684.000 136319.203 0.910 35 6.682 16339.000 219523.094 1.465 36 6.848 15023.000 182350.703 1.217
37 7.098 13854.000 281462.406 1.879 38 7.415 11235.000 132027.797 0.881 39 7.682 8414.000 58167.602 0.388 40 7.882 7673.000 102299.797 0.683 41 8.148 6974.000 87284.898 0.583 42 8.482 5290.000 70697.797 0.472 43 8.648 4604.000 42188.898 0.282 44 8.832 5878.000 62213.898 0.415 45 9.115 5856.000 82054.203 0.548 46 9.332 5525.000 41471.602 0.277 47 9.548 5619.000 65698.398 0.439 48 9.748 6327.000 61195.699 0.408 49 10.065 7273.000 133415.703 0.891 50 10.498 7218.000 194430.594 1.298 51 10.765 7322.000 53504.602 0.357 52 10.932 8172.000 112392.898 0.750 53 11.198 7430.000 75472.703 0.504 54 11.565 8074.000 147993.203 0.988 55 13.132 24336.000 1533847.375 10.238 56 13.265 25553.000 1915890.500 12.788 57 15.098 3757.000 35430.199 0.236
表3实施例1所得冷冻干燥结晶样品色谱图分析结果峰号 保留时间 峰高 峰面积 含量 1 0.148 1773.279 4766.188 0.151 2 0.248 263.117 611.053 0.019 3 0.365 2013.094 15522.643 0.493 4 0.540 2494.060 9551.315 0.303 5 0.623 2865.759 11462.492 0.364 6 0.732 3419.166 17714.973 0.562 7 0.848 2730.143 4609.992 0.146 8 0.873 3493.853 17039.363 0.541 9 1.040 4184.249 29474.188 0.936 10 1.182 4889.936 25402.732 0.806 11 1.315 3437.053 19189.893 0.609 12 1.398 3782.751 15066.446 0.478 13 1.523 4666.298 37167.727 1.180 14 1.615 4304.566 28442.961 0.903 15 1.782 3579.962 18023.635 0.572 16 1.882 4538.800 22384.160 0.711 17 1.948 4830.358 19291.045 0.612 18 2.040 5244.626 22746.883 0.722 19 2.107 5127.185 22914.973 0.727 20 2.182 4870.313 38164.719 1.211
21 2.665 17708.121 120517.172 3.826 22 2.815 21484.361 304087.438 9.653 23 3.123 10663.078 80574.320 2.558 24 3.215 8990.669 59610.180 1.892 25 3.332 8201.968 55128.859 1.750 26 3.557 10006.328 130379.930 4.139 27 3.890 19144.752 196313.453 6.232 28 3.957 17696.637 144151.938 4.576 29 4.140 9008.820 77547.383 2.462 30 4.357 5270.945 22487.828 0.714 31 4.598 18404.777 298696.219 9.482 32 4.923 4441.966 18031.266 0.572 33 5.198 40545.738 652815.188 20.723 34 5.648 5116.462 42712.152 1.356 35 5.832 3115.645 15211.271 0.483 36 5.998 3035.357 26278.145 0.834 37 6.132 2960.126 25354.783 0.805 38 6.415 2715.136 47526.852 1.509 39 6.748 3114.560 21373.900 0.678 40 6.948 2982.214 39188.758 1.244 41 7.215 3223.753 27249.039 0.865 42 7.465 3376.821 35140.613 1.115 43 7.682 2475.946 45255.887 1.437 44 7.982 2393.428 11981.143 0.380 45 8.115 2250.197 16028.441 0.509 46 8.315 2179.851 15155.613 0.481 47 8.448 2509.621 10761.125 0.342 48 8.598 1820.861 12903.803 0.410 49 8.815 2087.987 28550.764 0.906 50 9.082 2143.526 9677.630 0.307 51 9.215 2031.295 11242.437 0.357 52 9.415 2903.949 25617.553 0.813 53 9.698 2247.959 29371.543 0.932 54 10.032 1954.383 22529.953 0.715 55 10.265 1828.980 18145.275 0.576 56 10.465 752.634 5603.715 0.178 57 10.665 1785.288 16379.523 0.520 58 11.132 1058.714 15166.057 0.481 59 11.632 1392.571 16915.742 0.537 60 11.998 1212.154 13116.923 0.416 61 12.132 1277.385 5894.876 0.187
(2)红外光谱
取实施例1所得样品进行红外光谱分析，红外图谱如图4所示，图5为Aldrich Condensed Phase数据库对样品红外图谱的匹配图；
分析结果见表4：
表4实施例1所得样品红外分析结果指数(index)配合度(match)化合物名称(Compound Name)1 9821 86.55 β-丙氨酸2 9399 54.13 醋酸铯3 9918 51.48 L-胱氨酸4 2092 48.91 醋酸四乙基铵5 9916 47.98 甲硫氨酸6 9730 46.31 巯基醋酸钠盐7 9834 46.13 L-亮氨酸8 9783 45.64 硫代苹果酸钠9 9836 45.60 L-异亮氨酸10 9833 45.60 D-亮氨酸
(3)核磁共振谱
分别取实施例1所得样品、β-丙氨酸标准样品进行核磁共振谱检测；β-丙氨酸标准样品核磁共振图谱如图6所示，实施例1所得样品核磁共振图谱如图7所示。
(4)纸层析
分别取实施例1～4所得样品进行纸层析，以α-丙氨酸和β-丙氨酸标准样品为对照，实验结果见图8、图9。其中：a1、a2分别代表实施例3、4大肠杆菌产生的酶转化的结果；d1、d2分别代表实施例1、2藤黄八叠球菌产生的酶转化的结果；d3为实施例1发酵液离心后的上清液，α代表α-丙氨酸标样；β代表β-丙氨酸标样。结果表明a1、a2中含β-丙氨酸，d1、d2中也含β-丙氨酸，而d3中不含β-丙氨酸。
(5)结论：
根据以上检测数据，分析表明所制得产物成分为β-丙氨酸。