昆虫病毒多角体实现外源蛋白高效包裹的方法.pdf

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摘要
申请专利号:

CN201310595964.0

申请日:

20131122

公开号:

CN103614417A

公开日:

20140305

当前法律状态:

有效性:

有效

法律详情:

IPC分类号:

C12N15/866,C12N7/01,C12R1/93

主分类号:

C12N15/866,C12N7/01,C12R1/93

申请人:

江西省科学院微生物研究所

发明人:

袁林,郭建军,杨一兵,魏国汶

地址:

330029 江西省南昌市上坊路108号

优先权:

CN201310595964A

专利代理机构:

杭州中成专利事务所有限公司

代理人:

金祺

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内容摘要

本发明公开了一种昆虫病毒多角体实现外源蛋白高效包裹的方法,将家蚕质型多角体病毒(BmCPV)的多角体基因(polyhedrin)以及目的蛋白基因分别构建至pFastBac Dual载体上的PH和P10启动子下面,通过重组获得同时表达多角体和目的蛋白的杆状病毒。本发明利用杆状病毒表达系统,同时将质型多角体蛋白基因和目的蛋白基因分别构建到pFastBacTMDual载体的PH与p10启动子下,并在目的蛋白与信号肽之间引入柔性链接肽,通过与病毒骨架重组,获得重组杆状病毒。通过该单一病毒感染Sf9或Sf21昆虫细胞,直接可以在细胞内产生所需要的包裹型蛋白,并且这种重组型的病毒也同样可以获得扩增。

权利要求书

1.昆虫病毒多角体实现外源蛋白高效包裹的方法,其特征是:将家蚕质型多角体病毒(BmCPV)的多角体基因(polyhedrin)以及目的蛋白基因分别构建至pFastBac Dual载体上的PH和P10启动子下面,通过重组获得同时表达多角体和目的蛋白的杆状病毒。 2.根据权利要求1所述的昆虫病毒多角体实现外源蛋白高效包裹的方法,其特征是:在目的蛋白基因前面加入81-90bp H1定位信号序列以及6-12个GGS(甘氨酸-甘氨酸-丝氨酸)柔性连接肽。 3.根据权利要求2所述的昆虫病毒多角体实现外源蛋白高效包裹的方法,其特征是:所述方法通过构建的重组杆状病毒在昆虫细胞sf9或甜菜夜蛾上实现目的蛋白的包装过程。 4.根据权利要求1、2或3所述的昆虫病毒多角体实现外源蛋白高效包裹的方法,其特征是:由H1信号肽与柔性连接肽构成的引导基因的序列为SEQ ID NO2所述。 5.根据权利要求4所述的昆虫病毒多角体实现外源蛋白高效包裹的方法,其特征是:H1(信号肽)+Flexible peptide(柔性链接肽)+eGFP的序列为SEQ ID NO4所述。 6.根据权利要求4所述的昆虫病毒多角体实现外源蛋白高效包裹的方法,其特征是:重组质粒为Bacmid-polyhedrin-eGFP。 7.利用如权利要求1~6任一所述方法制备而得的病毒,其特征是:所述病毒直接感染sf9或sf21细胞,在细胞内直接产生多角体包裹型的目的蛋白,每个细胞内含10-50个多角体,直径在1-2μm,并且病毒液能继续用于感染细胞或注射甜菜夜蛾。 8.根据权利要求7所述的病毒,其特征是:该病毒直接可以注射4-5龄甜菜夜蛾,3-5天后甜菜夜蛾发生液化,每头幼虫可以产生1-2亿个多角体包裹的目的蛋白,直径在1-2μm。 9.根据权利要求8所述的病毒,其特征是:所述的目的蛋白为多角体包裹型,具有生物学功能,并且为单基因编码的蛋白质。

说明书

技术领域

本发明属于生物技术领域,涉及一种对蛋白质进行包裹的方法。

背景技术

昆虫病毒多角体(polyhedra)是指昆虫病毒在感染宿主细胞后产生的多面体粒子,其主 要用来包裹病毒粒子。它的功能是保护包裹的病毒颗粒免受不良环境的破坏,比如:高温、 干燥、辐射等,以及它对各种蛋白分解酶也有抗性,并且在酸性条件下极其稳定,而在碱性 环境下易溶解并释放出病毒粒子[1]。依据多角体在细胞内形成的部位可以分为核型多角体或 质型多角体。近来国内外的研究发现质型多角体可以包裹异源蛋白,比如:Ijiri等人将蛋白激 酶C(protein kinase C)包裹进入了质型多角体中,并发现包裹型的蛋白激酶C相对于没有经 过包裹的蛋白有更强生物学活性和持续的药物缓释效果[2];被多角体包裹的表皮生长因子 (epidermal growth factor)不仅药效延长了,而且其能抵抗高强度的射线破坏[3];曹翠平等 人利用多角体包埋外源蛋白时发现,经过包埋的EGFP蛋白(绿色荧光蛋白)放置2个月后仍 能检测到绿色荧光,而干燥处理30min后同样能检测到蛋白活性[4]。这些研究表明多角体是 耐酸、抗辐射、抗干燥并具有包裹异源活性蛋白特性的优良载体。

目前国外文献报道中关于多角体包裹目的蛋白的技术手段多是通过构建两个重组杆状病 毒,即一个专一表达质型多角体病毒多角体蛋白(包裹蛋白)的杆状病毒,另一个专一表达 目的蛋白的杆状病毒,通过调节两种病毒的比例混合感染Sf9昆虫细胞,再从细胞中分离出多 角体。该种方法不适合从昆虫细胞中收集大量的多角体,由于很多细胞在混合感染的时候只 感染了一种病毒,所以会形成较多空多角体,以至于包裹效率低。国内学者主要通过家蚕 Bacmid表达系统,采用家蚕本身的多角体蛋白包裹目的蛋白,这种方案产生的多角体量大, 并且可以通过家蚕本身生产,但采用家蚕本身多角体包裹的目的蛋白并不专一,其中包裹了 大量家蚕病毒粒子,不适合现在国际上通过多角体专一包裹目的蛋白的发展趋势,也不能应 用于现代医药蛋白或疫苗抗原的包裹需求。

在细胞内实现多角体对目的蛋白的包裹过程需要一个信号肽蛋白的辅助,目前的技术手 段基本上采用在目的蛋白的N端加上一段VP3蛋白N末端42-93个氨基酸或者H1螺旋作为信号 肽,由于这些蛋白结构比较大,可能会影响很多目的蛋白的正确折叠过程,造成目的蛋白失 去生物学活性。

大多数的生物活性蛋白,如:GM-CSF、干扰素、白介素、亚单位疫苗等,目前主要以 注射给药,治疗不方便,也难以长期给药,由其是养殖场。我们尚未见到利用昆虫生产多角 体包裹药物方面的研究报道。

上文中涉及的参考文献如下:

[1]Belloncik,S.and H.Mori,Cypoviruses.The insect viruses,1998:p.337-369.(Belloncik,S. and H.Mori,质型多角体病毒。昆虫病毒杂志,1998:p.337-369)。

[2]Ijiri,H.,et al.,Immobilization of protein kinase C into cypovirus polyhedra.Journal of  insect biotechnology and sericology.79(1):p.1-1.(H.;Hamada,N.;Kotani,E.;Mori,H.固定蛋白 激酶C到质型多角体上。昆虫生物技术与蚕学杂志。2010.79(1):p.1-1.)。

[3]Ijiri,H.,et al.,Structure-based targeting of bioactive proteins into cypovirus polyhedra and  application to immobilized cytokines for mammalian cell culture.Biomaterials,2009.30(26):p. 4297-4308.(Coulibalyb,Gento Nishimura等。基于结构的定点固定生物活性蛋白至质型多 角体上并应用固定的化的细胞因子培养哺乳动物细胞培养。生物材料杂志,2009,30(26): p.4297-4308.)。

[4]曹翠平,郭爱芹等.利用BmNPV多角体包埋外源蛋白的观察.蚕业科学,2009.35(004): p.790-795。

发明内容

本发明所要解决的技术问题是提供一种多角体高效专一包裹目的蛋白的方法。

为了解决上述技术问题,本发明提供一种昆虫病毒多角体实现外源蛋白高效包裹的方 法:将家蚕质型多角体病毒(BmCPV)的多角体基因(polyhedrin)以及目的蛋白基因分别 构建至pFastBac Dual载体上的PH和P10启动子下面,通过重组获得同时表达多角体和目的蛋 白的杆状病毒。

作为本发明的昆虫病毒多角体实现外源蛋白高效包裹的方法的改进:在目的蛋白基因前 面加入81-90bp H1定位信号序列以及6-12个GGS(甘氨酸-甘氨酸-丝氨酸)柔性连接肽。

作为本发明的昆虫病毒多角体实现外源蛋白高效包裹的方法的进一步改进:该方法通过 构建的重组杆状病毒在昆虫细胞sf9或甜菜夜蛾上实现目的蛋白的包装过程。

作为本发明的昆虫病毒多角体实现外源蛋白高效包裹的方法的进一步改进:由H1信号 肽与柔性连接肽构成的引导基因的序列为SEQ ID NO2所述。

作为本发明的昆虫病毒多角体实现外源蛋白高效包裹的方法的进一步改进:H1(信号 肽)+Flexible peptide(柔性链接肽)+eGFP的序列为SEQ ID NO4所述。

本发明还同时提供了利用上述方法制备而得的病毒,所述病毒直接感染sf9或sf21细胞, 在细胞内直接产生多角体包裹型的目的蛋白,每个细胞内含10-50个多角体,直径在1-2μm, 并且病毒液能继续用于感染细胞或注射甜菜夜蛾。

作为本发明的病毒的改进:该病毒直接可以注射4-5龄甜菜夜蛾,3-5天后甜菜夜蛾发生 液化,每头幼虫可以产生1-2亿个多角体包裹的目的蛋白,直径在1-2μm。

作为本发明的病毒的进一步改进:所述的目的蛋白为多角体包裹型,具有生物学功能, 并且为单基因编码的蛋白质。

本发明的目的之一是提供该重组病毒的制备方法。

本发明是按下述方案实现的:以绿色荧光蛋白eGFP作为包装的模式目的蛋白,通过全 基因合成技术分别合成质型多角体蛋白polyhedrin基因、引导肽基因(含H1信号肽+柔性连接 肽)、eGFP基因(序列分别为序列表中的SEQ ID NO1、SEQ ID NO2、SEQ ID NO3)。

本发明具体为通过甜菜夜蛾昆虫或者细胞实现昆虫病毒多角体对其他目的蛋白进行高效 包裹,采用该方法可以大幅度提高多角体对目的蛋白的包裹效率,不仅可以在体外培养的昆 虫细胞sf9和sf21内包裹,也可以在甜菜夜蛾体内大量包裹。该技术可以应用于蛋白类药物 或疫苗抗原的包裹技术领域。

由于多角体这种蛋白包装材料具有很好的抗酸、耐高温等特点,所以将其用于那些具有 用量小、活性高、易失活的蛋白进行包装可能对提高其稳定性以及口服给药方面会是一个突 破;亚单位疫苗,一般是某种病原的一段肽或蛋白成分,直接通过口服很引起动物粘膜免疫 反应,因为口服后很容易被消化系统的酶降解,所以包裹技术为亚单位疫苗直接通过口服引 起动物粘膜和全身性免疫反应提供了新的途径。因此,本研究内容对于拓展蛋白类药物或亚 单位疫苗在临床上的应用范围以及为今后开发更多的口服蛋白药物提供技术支持,具有重要 的实际应用价值。

本发明的发明点具体为:

1、构建了一种新型杆状病毒,该病毒具有在昆虫细胞Sf9内同时表达多角体蛋白与目的 蛋白,并且目的蛋白是被多角体完全包裹,该多角体在细胞内大小为1-2μm,每个细胞内可 以产生50-200个该颗粒.(国内外包装主要采用分别表达多角体蛋白与目的蛋白的两种杆状病 毒混合感染制备包裹目的蛋白的多角体。我们的发明改进后,将多角体蛋白与目的蛋白同时 放在一种杆状病毒中,简化了其方法,提高了包装效率)。

2、构建了一种新型杆状病毒,该病毒具有感染甜菜夜蛾昆虫的能力,能在其体内产生大 量的多角体颗粒,并且目的蛋白被多角体包裹。其在细胞内的大小与分布同感染Sf9细胞结 果类似。(目前国内外在昆虫上实现多角体包裹目的蛋白上没有报道。我们的发明提供的该新 型杆状病毒实现了在甜菜夜蛾昆虫上多角体对目的蛋白的包裹过程。)

3、构建了一种新型杆状病毒,该病毒具有同时表达多角体蛋白与目的蛋白的能力,特点: (1)多角体蛋白基因插入到载体pFastBac Dual质粒,由载体上Polyhedrin promoter启动;(2) 目的蛋白基因插入到载体pFastBac Dual质粒,由载体上P10启动子启动,并且在包裹目的蛋 白的N端加上一段引导肽序列,引导肽由信号肽与柔性链接肽组成。

综上所述,本发明利用杆状病毒表达系统,同时将质型多角体蛋白基因和目的蛋白基因 分别构建到pFastBacTMDual载体的PH与p10启动子下,并在目的蛋白与信号肽之间引入柔性 链接肽,通过与病毒骨架重组,获得重组杆状病毒。通过该单一病毒感染Sf9或Sf21昆虫细 胞,直接可以在细胞内产生所需要的包裹型蛋白,并且这种重组型的病毒也同样可以获得扩 增。相对于国外通过两种病毒按照比例进行混合感染相比,具有工艺简单,产生的包裹型蛋 白效率更高,另外在产生包裹型蛋白的同时重组病毒粒子也同样获得了扩增,更适合通过昆 虫细胞发酵大规模制备多角体包裹型蛋白;其次通过上述方法制备的重组杆状病毒可以直接 皮下注射四龄甜菜夜蛾,通过昆虫体细胞来生产更多的多角体包裹型蛋白,其效率高、同时 成本要大大低于通过昆虫细胞发酵过程。

附图说明

下面结合附图对本发明的具体实施方式作进一步详细说明。

图1为方案流程图。

图2为细胞内多角体的产生对比图(200倍数下显微镜拍照);

左图为Bacmid-polyhedrin-eGFP病毒感染,右图为对照细胞。

图3为荧光下观察多角体内的eGFP的包裹情况图(200倍数下显微镜拍照);

A1与A2为细胞内多角体分别在可见光与荧光下拍照的图片,图B1与B2为从细胞中分 离获得的多角体分别在可见光与荧光下拍照的图片。

图4为甜菜夜蛾昆虫感染Bacmid-polyhedrin-eGFP病毒后在其体内产生包含eGFP蛋白 的多角体颗粒结果。

C1为四龄甜菜夜蛾感染Bacmid-polyhedrin-eGFP病毒4天后虫体发生液化结果。

C2为四龄甜菜夜蛾感染Bacmid-polyhedrin-eGFP病毒4天后虫体组织涂片后可见光下对 多角体颗粒镜检结果。(100倍数下显微镜拍照);

C3为四龄甜菜夜蛾感染Bacmid-polyhedrin-eGFP病毒4天后虫体组织涂片后荧光下对多 角体颗粒镜检结果。(100倍数下显微镜拍照);

具体实施方式

实施例方法、

1、材料:

草地贪夜蛾细胞(sf9)、pFastBac Dual质粒、DH10Bac均购自美国Invitrogen公司;

DH5α菌株购自TaKaRa公司;

家蚕质型多角体病毒(Bombyx mori cypovirus,BmCPV)的多角体(polyhedrin)基因 (gb|M19112.1|、如序列表中的NO1所述)、由H1信号肽与柔性连接肽构成的引导基因(如序 列表中的NO2所述,本发明所特设)、eGFP基因(gb|KC710230.1|、如序列表中的NO3所述) 均由上海生物工程公司人工合成;

备注说明:在序列表的NO2中,1-90bp为H1定位信号肽,91-126bp为柔性连接肽(带 下划线)。

高保真Tag酶、各种限制性内切酶、dNTP、酶连试剂盒、DNA胶回收试剂盒等均购自 TaKaRa公司;

Sf-900II SFM无血清培养基、Cellfectin II Reagent转染试剂均购自Invitrogen公司;

2、引物设计与PCR扩增:

根据人工合成的polyhedrin基因设计一对引物,

上游引物P1:5’—CGCGGATCCATGGCAGACGTAGCAGGAAC--3’,带有BamH I酶切位点;

下游引物P2:5’—CCCAAGCTTTCACTGACGGTTACTCAGAG—3’,带有Hind III酶切位点。

依据人工合成的带有H1+柔性连接肽+eGFP的序列设计一对引物:

上游引物P3:5’—TCCCCCGGGATGGCAGACGTAGCAGGAAC—3’,带有Smal I酶切位点;

下游引物P4:5’—CGGGGTACCTTACTTGTACAGCTCGTCCA—3’,带有Kpn I酶切位点。

上述引物均由上海生物工程公司合成。

PCR反应体系为:dNTPs(2mM)2.0μL,引物(10uM)各0.5μL,10×rTaq buffer2.5 μL,模板DNA(20ng/ul)1.0μL,Taq DNA聚合酶(5U/ul)0.2μL,双蒸水补至25μ L。

PCR反应条件为:94℃ 5min’(预变性);94℃ 30s’,55℃ 30s’,72℃ 1min’,共 35个循环;72℃ 10min。

PCR扩增产物通过凝胶回收试剂盒回收PCR产物,于-20℃保存备用。

3、重组转移载体的构建与鉴定:

将凝胶回收的polyhedrin基因和pFastBac Dual质粒经过Bam HI和Hind III双酶切后分别回 收,polyhedrin基因定向克隆于FastBac Dual的PH启动子下游,构建的重组转移载体pFastBac Dual/polyhedrin,转化至DH5α,PCR和酶切鉴定。

将上述pFastBac Dual/polyhedrin质粒和带定位信号肽的eGFP基因的PCR产物经Smal I和 Kpn I双酶切后分别回收,并将引导基因与eGFP基因定向克隆至pFastBac Dual/polyhedrin的 P10启动子下游,构建获得重组转移载体pFastBac Dual/polyhedrin-eGFP,最后转化DH5α,送 上海生物工程公司测序鉴定。

4、重组Bacmid质粒的构建与鉴定:

将pFastBac Dual/polyhedrin-eGFP和对照质粒pFastBac dual分别转化E.coli DH10Bac感受 态细胞,菌液涂于含有X-Gal(40μg/ml)、IPTG(24μg/ml)、卡那霉素(50μg/ml)、庆大霉素 (100μg/ml)和四环素(30μg/ml)的培养基平板上,经蓝白斑筛选,分别挑取白色菌落、 提取质粒,送上海生工测序鉴定,鉴证正确后命名为重组质粒Bacmid-polyhedrin-eGFP。

5重组Bacmid转染sf9细胞及其表达分析:

根据Cellfectin转染试剂说明书,将重组质粒Bacmid-polyhedrin-eGFP(2μg)、Cellfectin 转染试剂(2μL)与100μl不含抗生素无血清昆虫细胞培养基(Gibco sf-900II SFM)混匀, 室温下孵育45min,转染处于对数生长期的sf9细胞,置28℃培养5h后吸去转染混合物, 加入含抗性(青霉素0.008g/100ml,链霉素终浓度0.01g/100ml)和血清的昆虫细胞培养基中 继续培养72h以上,出现病变(即细胞内充满颗粒,细胞附着力减弱,开始脱壁上浮并个别 细胞解体成颗粒状物散落细胞培养液中)后,并观察细胞内多角体的产生以及荧光下观察多 角体内的eGFP的包裹情况并计数,并收集细胞上清为P1代病毒液。以此为毒种,再去感染sf9 细胞以扩增病毒,收获病毒液为P2代病毒。

结果如下:

1)、细胞内多角体的产生如图2所示;该方法获得的Bacmid-polyhedrin-eGFP病毒在细胞 内产生大量的多角体颗粒,图2中,左图为Bacmid-polyhedrin-eGFP病毒感染,通过计数,每 个细胞内可以产生10-50个多角体,右图为对照细胞,细胞内没有发现多角体颗粒。(20倍数 下显微镜拍照)。【对照细胞为正常细胞,细胞内不产生多角体颗粒。】

2)、荧光下观察多角体内的eGFP的包裹情况如图3所示;该方法获得的 Bacmid-polyhedrin-eGFP病毒在细胞内产生大量的多角体颗粒,并且包裹了eGFP目的蛋白, 图A1与A2为细胞内多角体分别在可见光与荧光下拍照图片,图B1与B2为从细胞中分离获得 的多角体分别在可见光与荧光下拍照的图片。图片证明了该方法可以在细胞产生大量的多角 体并且可以高效率的包裹目的蛋白eGFP(20倍数下显微镜拍照)。

6、重组杆状病毒在甜菜夜蛾幼虫中的表达分析

将甜菜夜蛾幼虫虫卵在27℃孵化成幼虫,分装于24孔板内,以人工饲料喂养至四龄时, 每头幼虫注射P2病毒1-3μl,3-4天后收集死亡和液化的幼虫,经过研磨和过滤,直接涂片进 行显微镜拍照观察并对多角体进行计数。

备注说明:

1、人工饲料是指从武汉病毒研究所购买,用于喂养昆虫的饲料。

2、液化是指昆虫发生病变的一种现象,整个虫体水肿并且柔软,用针刺表皮后会流出大 量液体。

结果如下:

该方法获得的Bacmid-polyhedrin-eGFP病毒可以在昆虫甜菜夜蛾上产生大量的多角体颗 粒,并且包裹了eGFP目的蛋白。图C1为注射病毒后虫体液化结果:虫体带绿色;图C2与 C3为液化虫体经过直接涂片后在可见光与荧光下观察结果;结果说明通过该方法获得病毒可 以直接注射甜菜夜蛾来获得包裹型多角体,并且可以在幼虫上产生大量的包裹了eGFP目的 蛋白的多角体,经过计数每头幼虫可以产生约1-2亿个多角体颗粒。(40倍数下显微镜拍照)。

最后,还需要注意的是,以上列举的仅是本发明的若干个具体实施例。显然,本发明不 限于以上实施例,还可以有许多变形。本领域的普通技术人员能从本发明公开的内容直接导 出或联想到的所有变形,均应认为是本发明的保护范围。

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1、(10)申请公布号 CN 103614417 A (43)申请公布日 2014.03.05 CN 103614417 A (21)申请号 201310595964.0 (22)申请日 2013.11.22 C12N 15/866(2006.01) C12N 7/01(2006.01) C12R 1/93(2006.01) (71)申请人 江西省科学院微生物研究所 地址 330029 江西省南昌市上坊路 108 号 (72)发明人 袁林 郭建军 杨一兵 魏国汶 (74)专利代理机构 杭州中成专利事务所有限公 司 33212 代理人 金祺 (54) 发明名称 昆虫病毒多角体实现外源蛋白高效包裹的方。

2、 法 (57) 摘要 本发明公开了一种昆虫病毒多角体实现外 源蛋白高效包裹的方法, 将家蚕质型多角体病毒 (BmCPV) 的多角体基因 (polyhedrin) 以及目的蛋 白基因分别构建至 pFastBac Dual 载体上的 PH 和 P10 启动子下面, 通过重组获得同时表达多角 体和目的蛋白的杆状病毒。本发明利用杆状病毒 表达系统, 同时将质型多角体蛋白基因和目的蛋 白基因分别构建到 pFastBacTMDual 载体的 PH 与 p10 启动子下, 并在目的蛋白与信号肽之间引入 柔性链接肽, 通过与病毒骨架重组, 获得重组杆状 病毒。通过该单一病毒感染 Sf9 或 Sf21 昆虫细 。

3、胞, 直接可以在细胞内产生所需要的包裹型蛋白, 并且这种重组型的病毒也同样可以获得扩增。 (51)Int.Cl. 权利要求书 1 页 说明书 6 页 序列表 2 页 附图 3 页 (19)中华人民共和国国家知识产权局 (12)发明专利申请 权利要求书1页 说明书6页 序列表2页 附图3页 (10)申请公布号 CN 103614417 A CN 103614417 A 1/1 页 2 1. 昆虫病毒多角体实现外源蛋白高效包裹的方法, 其特征是 : 将家蚕质型多角体病毒 (BmCPV) 的多角体基因 (polyhedrin) 以及目的蛋白基因分别构建至 pFastBac Dual 载体上 的 PH。

4、 和 P10 启动子下面, 通过重组获得同时表达多角体和目的蛋白的杆状病毒。 2. 根据权利要求 1 所述的昆虫病毒多角体实现外源蛋白高效包裹的方法, 其特征是 : 在目的蛋白基因前面加入 81-90bp H1 定位信号序列以及 6-12 个 GGS (甘氨酸 - 甘氨酸 - 丝 氨酸) 柔性连接肽。 3. 根据权利要求 2 所述的昆虫病毒多角体实现外源蛋白高效包裹的方法, 其特征是 : 所述方法通过构建的重组杆状病毒在昆虫细胞 sf9 或甜菜夜蛾上实现目的蛋白的包装过 程。 4. 根据权利要求 1、 2 或 3 所述的昆虫病毒多角体实现外源蛋白高效包裹的方法, 其特 征是 : 由 H1 信号。

5、肽与柔性连接肽构成的引导基因的序列为 SEQ ID NO2 所述。 5. 根据权利要求 4 所述的昆虫病毒多角体实现外源蛋白高效包裹的方法, 其特征是 : H1( 信号肽 )+Flexible peptide( 柔性链接肽 )+eGFP 的序列为 SEQ ID NO4 所述。 6. 根据权利要求 4 所述的昆虫病毒多角体实现外源蛋白高效包裹的方法, 其特征是 : 重组质粒为 Bacmid-polyhedrin-eGFP。 7. 利用如权利要求 1 6 任一所述方法制备而得的病毒, 其特征是 : 所述病毒直接感 染 sf9 或 sf21 细胞, 在细胞内直接产生多角体包裹型的目的蛋白, 每个细胞。

6、内含 10-50 个 多角体, 直径在 1-2m, 并且病毒液能继续用于感染细胞或注射甜菜夜蛾。 8. 根据权利要求 7 所述的病毒, 其特征是 : 该病毒直接可以注射 4-5 龄甜菜夜蛾, 3-5 天后甜菜夜蛾发生液化, 每头幼虫可以产生 1-2 亿个多角体包裹的目的蛋白, 直径在 1-2m。 9. 根据权利要求 8 所述的病毒, 其特征是 : 所述的目的蛋白为多角体包裹型, 具有生物 学功能, 并且为单基因编码的蛋白质。 权 利 要 求 书 CN 103614417 A 2 1/6 页 3 昆虫病毒多角体实现外源蛋白高效包裹的方法 技术领域 0001 本发明属于生物技术领域, 涉及一种对蛋。

7、白质进行包裹的方法。 背景技术 0002 昆虫病毒多角体 (polyhedra) 是指昆虫病毒在感染宿主细胞后产生的多面体粒 子, 其主要用来包裹病毒粒子。它的功能是保护包裹的病毒颗粒免受不良环境的破坏, 比 如 : 高温、 干燥、 辐射等, 以及它对各种蛋白分解酶也有抗性, 并且在酸性条件下极其稳定, 而在碱性环境下易溶解并释放出病毒粒子 1。依据多角体在细胞内形成的部位可以分为 核型多角体或质型多角体。近来国内外的研究发现质型多角体可以包裹异源蛋白, 比如 : Ijiri 等人将蛋白激酶 C(protein kinase C) 包裹进入了质型多角体中, 并发现包裹型的 蛋白激酶 C 相对于。

8、没有经过包裹的蛋白有更强生物学活性和持续的药物缓释效果 2 ; 被 多角体包裹的表皮生长因子 (epidermal growth factor) 不仅药效延长了, 而且其能抵抗 高强度的射线破坏 3 ; 曹翠平等人利用多角体包埋外源蛋白时发现, 经过包埋的 EGFP 蛋 白 (绿色荧光蛋白) 放置 2 个月后仍能检测到绿色荧光, 而干燥处理 30min 后同样能检测到 蛋白活性 4。这些研究表明多角体是耐酸、 抗辐射、 抗干燥并具有包裹异源活性蛋白特性 的优良载体。 0003 目前国外文献报道中关于多角体包裹目的蛋白的技术手段多是通过构建两个重 组杆状病毒, 即一个专一表达质型多角体病毒多角体。

9、蛋白 (包裹蛋白) 的杆状病毒, 另一个 专一表达目的蛋白的杆状病毒, 通过调节两种病毒的比例混合感染 Sf9 昆虫细胞, 再从细 胞中分离出多角体。该种方法不适合从昆虫细胞中收集大量的多角体, 由于很多细胞在混 合感染的时候只感染了一种病毒, 所以会形成较多空多角体, 以至于包裹效率低。 国内学者 主要通过家蚕 Bacmid 表达系统, 采用家蚕本身的多角体蛋白包裹目的蛋白, 这种方案产生 的多角体量大, 并且可以通过家蚕本身生产, 但采用家蚕本身多角体包裹的目的蛋白并不 专一, 其中包裹了大量家蚕病毒粒子, 不适合现在国际上通过多角体专一包裹目的蛋白的 发展趋势, 也不能应用于现代医药蛋白。

10、或疫苗抗原的包裹需求。 0004 在细胞内实现多角体对目的蛋白的包裹过程需要一个信号肽蛋白的辅助, 目前的 技术手段基本上采用在目的蛋白的 N 端加上一段 VP3 蛋白 N 末端 42-93 个氨基酸或者 H1 螺旋作为信号肽, 由于这些蛋白结构比较大, 可能会影响很多目的蛋白的正确折叠过程, 造 成目的蛋白失去生物学活性。 0005 大多数的生物活性蛋白, 如 : GM-CSF、 干扰素、 白介素、 亚单位疫苗等, 目前主要以 注射给药, 治疗不方便, 也难以长期给药, 由其是养殖场。我们尚未见到利用昆虫生产多角 体包裹药物方面的研究报道。 0006 上文中涉及的参考文献如下 : 0007 。

11、1 B e l l o n c i k , S . a n d H . M o r i , C y p o v i r u s e s . T h e i n s e c t viruses,1998:p.337-369.(Belloncik,S.and H.Mori, 质型多角体病毒。昆虫病毒杂志, 1998 : p.337-369) 。 说 明 书 CN 103614417 A 3 2/6 页 4 0008 2Ijiri,H.,et al.,Immobilization of protein kinase C into cypovirus polyhedra.Journal of inse。

12、ct biotechnology and sericology.79(1):p.1-1. (H.;Hamada,N.;Kotani,E.;Mori,H. 固定蛋白激酶 C 到质型多角体上。昆虫生物技术与蚕 学杂志。2010.79(1):p.1-1.) 。 0009 3Ijiri,H.,et al.,Structure-based targeting of bioactive proteins into cypovirus polyhedra and application to immobilized cytokines for mammalian cell culture.Biomateri。

13、als,2009.30(26):p.4297-4308. (Coulibalyb,Gento Nishimura 等。 基于结构的定点固定生物活性蛋白至质型多角体上并应用固定的化的细胞因子培养哺 乳动物细胞培养。生物材料杂志, 2009,30(26) : p.4297-4308.) 。 0010 4 曹翠平 , 郭爱芹等 . 利用 BmNPV 多角体包埋外源蛋白的观察 . 蚕业科学, 2009.35(004):p.790-795。 发明内容 0011 本发明所要解决的技术问题是提供一种多角体高效专一包裹目的蛋白的方法。 0012 为了解决上述技术问题, 本发明提供一种昆虫病毒多角体实现外源蛋白。

14、高效包裹 的方法 : 将家蚕质型多角体病毒 (BmCPV) 的多角体基因 (polyhedrin) 以及目的蛋白基因分 别构建至 pFastBac Dual 载体上的 PH 和 P10 启动子下面, 通过重组获得同时表达多角体和 目的蛋白的杆状病毒。 0013 作为本发明的昆虫病毒多角体实现外源蛋白高效包裹的方法的改进 : 在目的蛋白 基因前面加入 81-90bp H1 定位信号序列以及 6-12 个 GGS(甘氨酸 - 甘氨酸 - 丝氨酸) 柔 性连接肽。 0014 作为本发明的昆虫病毒多角体实现外源蛋白高效包裹的方法的进一步改进 : 该方 法通过构建的重组杆状病毒在昆虫细胞 sf9 或甜菜。

15、夜蛾上实现目的蛋白的包装过程。 0015 作为本发明的昆虫病毒多角体实现外源蛋白高效包裹的方法的进一步改进 : 由 H1 信号肽与柔性连接肽构成的引导基因的序列为 SEQ ID NO2 所述。 0016 作为本发明的昆虫病毒多角体实现外源蛋白高效包裹的方法的进一步改进 : H1( 信号肽 )+Flexible peptide( 柔性链接肽 )+eGFP 的序列为 SEQ ID NO4 所述。 0017 本发明还同时提供了利用上述方法制备而得的病毒, 所述病毒直接感染 sf9 或 sf21 细胞, 在细胞内直接产生多角体包裹型的目的蛋白, 每个细胞内含 10-50 个多角体, 直 径在 1-2m。

16、, 并且病毒液能继续用于感染细胞或注射甜菜夜蛾。 0018 作为本发明的病毒的改进 : 该病毒直接可以注射 4-5 龄甜菜夜蛾, 3-5 天后甜菜夜 蛾发生液化, 每头幼虫可以产生 1-2 亿个多角体包裹的目的蛋白, 直径在 1-2m。 0019 作为本发明的病毒的进一步改进 : 所述的目的蛋白为多角体包裹型, 具有生物学 功能, 并且为单基因编码的蛋白质。 0020 本发明的目的之一是提供该重组病毒的制备方法。 0021 本发明是按下述方案实现的 : 以绿色荧光蛋白 eGFP 作为包装的模式目的蛋白, 通 过全基因合成技术分别合成质型多角体蛋白polyhedrin基因、 引导肽基因(含H1信。

17、号肽+ 柔性连接肽 )、 eGFP 基因 (序列分别为序列表中的 SEQ ID NO1、 SEQ ID NO2、 SEQ ID NO3) 。 0022 本发明具体为通过甜菜夜蛾昆虫或者细胞实现昆虫病毒多角体对其他目的蛋白 说 明 书 CN 103614417 A 4 3/6 页 5 进行高效包裹, 采用该方法可以大幅度提高多角体对目的蛋白的包裹效率, 不仅可以在体 外培养的昆虫细胞 sf9 和 sf21 内包裹, 也可以在甜菜夜蛾体内大量包裹。该技术可以应用 于蛋白类药物或疫苗抗原的包裹技术领域。 0023 由于多角体这种蛋白包装材料具有很好的抗酸、 耐高温等特点, 所以将其用于那 些具有用量。

18、小、 活性高、 易失活的蛋白进行包装可能对提高其稳定性以及口服给药方面会 是一个突破 ; 亚单位疫苗, 一般是某种病原的一段肽或蛋白成分, 直接通过口服很引起动物 粘膜免疫反应, 因为口服后很容易被消化系统的酶降解, 所以包裹技术为亚单位疫苗直接 通过口服引起动物粘膜和全身性免疫反应提供了新的途径。因此, 本研究内容对于拓展蛋 白类药物或亚单位疫苗在临床上的应用范围以及为今后开发更多的口服蛋白药物提供技 术支持, 具有重要的实际应用价值。 0024 本发明的发明点具体为 : 0025 1、 构建了一种新型杆状病毒, 该病毒具有在昆虫细胞 Sf9 内同时表达多角体蛋白 与目的蛋白, 并且目的蛋白。

19、是被多角体完全包裹, 该多角体在细胞内大小为 1-2m, 每个细 胞内可以产生 50-200 个该颗粒 . (国内外包装主要采用分别表达多角体蛋白与目的蛋白的 两种杆状病毒混合感染制备包裹目的蛋白的多角体。我们的发明改进后, 将多角体蛋白与 目的蛋白同时放在一种杆状病毒中, 简化了其方法, 提高了包装效率) 。 0026 2、 构建了一种新型杆状病毒, 该病毒具有感染甜菜夜蛾昆虫的能力, 能在其体内 产生大量的多角体颗粒, 并且目的蛋白被多角体包裹。 其在细胞内的大小与分布同感染Sf9 细胞结果类似。 (目前国内外在昆虫上实现多角体包裹目的蛋白上没有报道。我们的发明 提供的该新型杆状病毒实现了。

20、在甜菜夜蛾昆虫上多角体对目的蛋白的包裹过程。 ) 0027 3、 构建了一种新型杆状病毒, 该病毒具有同时表达多角体蛋白与目的蛋白的能 力, 特点 :(1)多角体蛋白基因插入到载体 pFastBac Dual 质粒, 由载体上 Polyhedrin promoter启动 ;(2) 目的蛋白基因插入到载体pFastBac Dual质粒, 由载体上P10启动子启 动, 并且在包裹目的蛋白的 N 端加上一段引导肽序列, 引导肽由信号肽与柔性链接肽组成。 0028 综上所述, 本发明利用杆状病毒表达系统, 同时将质型多角体蛋白基因和目的蛋 白基因分别构建到 pFastBacTMDual 载体的 PH 。

21、与 p10 启动子下, 并在目的蛋白与信号肽之 间引入柔性链接肽, 通过与病毒骨架重组, 获得重组杆状病毒。通过该单一病毒感染 Sf9 或 Sf21 昆虫细胞, 直接可以在细胞内产生所需要的包裹型蛋白, 并且这种重组型的病毒也同 样可以获得扩增。相对于国外通过两种病毒按照比例进行混合感染相比, 具有工艺简单, 产生的包裹型蛋白效率更高, 另外在产生包裹型蛋白的同时重组病毒粒子也同样获得了扩 增, 更适合通过昆虫细胞发酵大规模制备多角体包裹型蛋白 ; 其次通过上述方法制备的重 组杆状病毒可以直接皮下注射四龄甜菜夜蛾, 通过昆虫体细胞来生产更多的多角体包裹型 蛋白, 其效率高、 同时成本要大大低于。

22、通过昆虫细胞发酵过程。 附图说明 0029 下面结合附图对本发明的具体实施方式作进一步详细说明。 0030 图 1 为方案流程图。 0031 图 2 为细胞内多角体的产生对比图 (200 倍数下显微镜拍照) ; 0032 左图为 Bacmid-polyhedrin-eGFP 病毒感染, 右图为对照细胞。 说 明 书 CN 103614417 A 5 4/6 页 6 0033 图 3 为荧光下观察多角体内的 eGFP 的包裹情况图 (200 倍数下显微镜拍照) ; 0034 A1与A2为细胞内多角体分别在可见光与荧光下拍照的图片, 图B1与B2为从细胞 中分离获得的多角体分别在可见光与荧光下拍照。

23、的图片。 0035 图 4 为甜菜夜蛾昆虫感染 Bacmid-polyhedrin-eGFP 病毒后在其体内产生包含 eGFP 蛋白的多角体颗粒结果。 0036 C1为四龄甜菜夜蛾感染Bacmid-polyhedrin-eGFP病毒4天后虫体发生液化结果。 0037 C2 为四龄甜菜夜蛾感染 Bacmid-polyhedrin-eGFP 病毒 4 天后虫体组织涂片后可 见光下对多角体颗粒镜检结果。 (100 倍数下显微镜拍照) ; 0038 C3 为四龄甜菜夜蛾感染 Bacmid-polyhedrin-eGFP 病毒 4 天后虫体组织涂片后荧 光下对多角体颗粒镜检结果。 (100 倍数下显微镜。

24、拍照) ; 具体实施方式 0039 实施例方法、 0040 1、 材料 : 0041 草地贪夜蛾细胞 (sf9) 、 pFastBac Dual 质粒、 DH10Bac 均购自美国 Invitrogen 公 司 ; 0042 DH5 菌株购自 TaKaRa 公司 ; 0043 家蚕质型多角体病毒 (Bombyx mori cypovirus, BmCPV) 的多角体 (polyhedrin) 基 因 (gb|M19112.1|、 如序列表中的NO1所述) 、 由H1信号肽与柔性连接肽构成的引导基因 (如 序列表中的NO2所述, 本发明所特设) 、 eGFP基因 (gb|KC710230.1|、。

25、 如序列表中的NO3所述) 均由上海生物工程公司人工合成 ; 0044 备注说明 : 在序列表的 NO2 中, 1-90bp 为 H1 定位信号肽, 91-126bp 为柔性连接肽 (带下划线) 。 0045 高保真 Tag 酶、 各种限制性内切酶、 dNTP、 酶连试剂盒、 DNA 胶回收试剂盒等均购自 TaKaRa 公司 ; 0046 Sf-900II SFM 无 血 清 培 养 基、 Cellfectin II Reagent 转 染 试 剂 均 购 自 Invitrogen 公司 ; 0047 2、 引物设计与 PCR 扩增 : 0048 根据人工合成的 polyhedrin 基因设计。

26、一对引物, 0049 上游引物 P1:5 CGCGGATCCATGGCAGACGTAGCAGGAAC-3 , 带有 BamH I 酶切位点 ; 0050 下游引物 P2:5 CCCAAGCTTTCACTGACGGTTACTCAGAG3 , 带有 Hind III 酶切位 点。 0051 依据人工合成的带有 H1+ 柔性连接肽 +eGFP 的序列设计一对引物 : 0052 上游引物 P3:5TCCCCCGGGATGGCAGACGTAGCAGGAAC3 , 带有 Smal I 酶切位 点 ; 0053 下游引物 P4:5 CGGGGTACCTTACTTGTACAGCTCGTCCA3 , 带有 Kp。

27、n I 酶切位点。 0054 上述引物均由上海生物工程公司合成。 0055 PCR 反 应 体 系 为 : dNTPs(2mM) 2.0L,引 物 (10uM) 各 0.5L, 10rTaq buffer2.5L, 模板 DNA(20ng/ul) 1.0L, Taq DNA 聚合酶 (5U/ul) 0.2L, 双蒸水补至 说 明 书 CN 103614417 A 6 5/6 页 7 25L。 0056 PCR 反应条件为 : 94 5min (预变性) ; 94 30s , 55 30s , 72 1min , 共 35 个循环 ; 72 10min。 0057 PCR 扩增产物通过凝胶回收试。

28、剂盒回收 PCR 产物, 于 -20保存备用。 0058 3、 重组转移载体的构建与鉴定 : 0059 将凝胶回收的 polyhedrin 基因和 pFastBac Dual 质粒经过 Bam HI 和 Hind III 双酶切后分别回收, polyhedrin 基因定向克隆于 FastBac Dual 的 PH 启动子下游, 构建的 重组转移载体 pFastBacDual/polyhedrin, 转化至 DH5, PCR 和酶切鉴定。 0060 将上述 pFastBac Dual/polyhedrin 质粒和带定位信号肽的 eGFP 基因的 PCR 产物经 Smal I 和 Kpn I 双酶。

29、切后分别回收, 并将引导基因与 eGFP 基因定向克隆至 pFastBac Dual/polyhedrin 的 P10 启动子下游, 构建获得重组转移载体 pFastBac Dual/ polyhedrin-eGFP, 最后转化 DH5, 送上海生物工程公司测序鉴定。 0061 4、 重组 Bacmid 质粒的构建与鉴定 : 0062 将 pFastBac Dual/polyhedrin-eGFP 和 对 照 质 粒 pFastBac dual 分 别 转 化 E.coli DH10Bac 感受态细胞, 菌液涂于含有 X-Gal(40g/ml)、 IPTG(24g/ml)、 卡那霉 素 (50。

30、g/ml) 、 庆大霉素 (100g/ml)和四环素 (30g/ml)的培养基平板上, 经蓝白斑 筛选, 分别挑取白色菌落、 提取质粒, 送上海生工测序鉴定, 鉴证正确后命名为重组质粒 Bacmid-polyhedrin-eGFP。 0063 5 重组 Bacmid 转染 sf9 细胞及其表达分析 : 0064 根 据 Cellfectin 转 染 试 剂 说 明 书, 将 重 组 质 粒 Bacmid-polyhedrin-eGFP (2g) 、 Cellfectin 转染试剂 (2L) 与 100l 不含抗生素无血清昆虫细胞培养基 (Gibco sf-900II SFM) 混匀, 室温下孵。

31、育45min, 转染处于对数生长期的sf9细胞, 置28培养5h后 吸去转染混合物, 加入含抗性 (青霉素 0.008g/100ml, 链霉素终浓度 0.01g/100ml) 和血清 的昆虫细胞培养基中继续培养 72h 以上, 出现病变 (即细胞内充满颗粒, 细胞附着力减弱, 开始脱壁上浮并个别细胞解体成颗粒状物散落细胞培养液中) 后, 并观察细胞内多角体的 产生以及荧光下观察多角体内的eGFP的包裹情况并计数, 并收集细胞上清为P1代病毒液。 以此为毒种, 再去感染 sf9 细胞以扩增病毒, 收获病毒液为 P2 代病毒。 0065 结果如下 : 0066 1) 、 细胞内多角体的产生如图 2。

32、 所示 ; 该方法获得的 Bacmid-polyhedrin-eGFP 病 毒在细胞内产生大量的多角体颗粒, 图2中, 左图为Bacmid-polyhedrin-eGFP病毒感染, 通 过计数, 每个细胞内可以产生 10-50 个多角体, 右图为对照细胞, 细胞内没有发现多角体颗 粒。 (20 倍数下显微镜拍照) 。 【对照细胞为正常细胞, 细胞内不产生多角体颗粒。 】 0067 2) 、 荧光下观察多角体内的 eGFP 的包裹情况如图 3 所示 ; 该方法获得的 Bacmid-polyhedrin-eGFP 病毒在细胞内产生大量的多角体颗粒, 并且包裹了 eGFP 目的蛋 白, 图 A1 与。

33、 A2 为细胞内多角体分别在可见光与荧光下拍照图片, 图 B1 与 B2 为从细胞中分 离获得的多角体分别在可见光与荧光下拍照的图片。 图片证明了该方法可以在细胞产生大 量的多角体并且可以高效率的包裹目的蛋白 eGFP(20 倍数下显微镜拍照) 。 0068 6、 重组杆状病毒在甜菜夜蛾幼虫中的表达分析 0069 将甜菜夜蛾幼虫虫卵在 27孵化成幼虫, 分装于 24 孔板内, 以人工饲料喂养至四 说 明 书 CN 103614417 A 7 6/6 页 8 龄时, 每头幼虫注射 P2 病毒 1-3l, 3-4 天后收集死亡和液化的幼虫, 经过研磨和过滤, 直 接涂片进行显微镜拍照观察并对多角体。

34、进行计数。 0070 备注说明 : 0071 1、 人工饲料是指从武汉病毒研究所购买, 用于喂养昆虫的饲料。 0072 2、 液化是指昆虫发生病变的一种现象, 整个虫体水肿并且柔软, 用针刺表皮后会 流出大量液体。 0073 结果如下 : 0074 该方法获得的 Bacmid-polyhedrin-eGFP 病毒可以在昆虫甜菜夜蛾上产生大量的 多角体颗粒, 并且包裹了 eGFP 目的蛋白。图 C1 为注射病毒后虫体液化结果 : 虫体带绿色 ; 图 C2 与 C3 为液化虫体经过直接涂片后在可见光与荧光下观察结果 ; 结果说明通过该方法 获得病毒可以直接注射甜菜夜蛾来获得包裹型多角体, 并且可以。

35、在幼虫上产生大量的包裹 了 eGFP 目的蛋白的多角体, 经过计数每头幼虫可以产生约 1-2 亿个多角体颗粒。 (40 倍数 下显微镜拍照) 。 0075 最后, 还需要注意的是, 以上列举的仅是本发明的若干个具体实施例。显然, 本发 明不限于以上实施例, 还可以有许多变形。本领域的普通技术人员能从本发明公开的内容 直接导出或联想到的所有变形, 均应认为是本发明的保护范围。 说 明 书 CN 103614417 A 8 1/2 页 9 0001 0002 序 列 表 CN 103614417 A 9 2/2 页 10 序 列 表 CN 103614417 A 10 1/3 页 11 图 1 图 2 说 明 书 附 图 CN 103614417 A 11 2/3 页 12 图 3 说 明 书 附 图 CN 103614417 A 12 3/3 页 13 图 4 说 明 书 附 图 CN 103614417 A 13 。

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