一种绿僵菌发酵生产酯酶的培养基及方法.pdf

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摘要
申请专利号:

CN201210319225.4

申请日:

20120903

公开号:

CN102839161B

公开日:

20130703

当前法律状态:

有效性:

失效

法律详情:

IPC分类号:

C12N9/16,C12R1/645

主分类号:

C12N9/16,C12R1/645

申请人:

福建农林大学

发明人:

邱君志,苏礼超,涂洁,宋飞飞,关雄,邱云锋,李小霞,郭庆丰,何肖云,吴国辉

地址:

350002 福建省福州市仓山区建新镇金山学区

优先权:

CN201210319225A

专利代理机构:

福州元创专利商标代理有限公司

代理人:

蔡学俊

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内容摘要

本发明涉及真菌的发酵培养基及工艺。更具体地,本发明涉及一种绿僵菌发酵生产酯酶的培养基及方法。所述培养基的原料含有酵母粉1-3w%,D-山梨醇1-4w%,Ba2+0.01-0.04mol/L,VB40.005-0.02w%,三醋酸甘油酯2w%,培养基初始pH=6.6-7.5。该方法通过将发酵种子液按接种于培养基,250mL的三角瓶装液量为125mL,接种量10%,于27℃,转速160r/min下培养。本发明的发酵方法有发酵周期短;条件温和,易于控制;提供的用于绿僵菌发酵生产酯酶的培养基,具有酯酶产率高,酯酶活力高等优点。

权利要求书

1.一种绿僵菌MaYDTR 03发酵生产酯酶的培养基,其特征在于,所述培养基的原料含有酵母粉1-2w%,D-山梨醇1-4 w %,Ba 0.01-0.04 mol/L,VB0.005-0.02 w %,三醋酸甘油酯2w%,培养基初始pH=6.6-7.5。 2.一种绿僵菌MaYDTR 03发酵生产酯酶的培养基,其特征在于,所述培养基的原料按重量分数计,含有酵母粉2%,D-山梨醇3%,BaCl·2HO 0.24%,VB0.01%,三醋酸甘油酯2%,培养基初始pH=6.9。 3.一种绿僵菌MaYDTR 03发酵产酯酶的方法,其特征在于,所述方法包含以下步骤:(a)将绿僵菌MaYDTR 03接种种子培养基,制得发酵种子液;(b)将步骤(a)中制得的发酵种子液接种于权利要求1或2所述的培养基,250mL的三角瓶装液量为125mL,接种量10%,于27℃,转速160 r/min下培养。 4.如权利3所述绿僵菌MaYDTR 03发酵产酯酶的方法,其特征在于,所述种子培养基的原料含有:按培养基重量计,牛肉膏2.0%,蔗糖2.0%,蛋白胨0.2%,酵母粉0.2%,(NH)SO 0.5%,KHPO 0.1% ,MgSO7HO 0.05%,pH5.5。

说明书

技术领域

本发明涉及真菌的发酵培养基及工艺。更具体地,本发明涉及一种绿僵菌发酵生产酯酶的培养基及方法。

背景技术

酯酶(Esterase,EC3.1.1.1)是一类能够催化酯键水解形成相应的酸和乙醇的酶类,广泛分布于动植物和微生物(Bronscheuer,2002)。微生物能够产生多种具有酯解活力的酶类,包括酯酶(Esterase)和脂肪酶(Lipase)。酯酶能够水解或者合成酰基碳链长度小于10的甘油酯类,对于酰基碳链长度大于10的甘油酯类则没有催化活性。

酯酶催化反应具较广的底物范围,在催化底物反应时不需要辅助因子,在一些变形剂,如有机溶剂中有很高的稳定性,此外酯酶催化反应具有立体特异性和区域专一性的特点。由于酯酶以上优点,使得酯酶在很多领域有着广泛的应用。近年来,全球市场工业用酶市场不断扩大,而酯酶是其中一种被广泛使用的生物催化剂,在全球工业用酶市场占据很高的很高比例。随着日益高涨的能源成本、石油煤炭等不可再生资源的衰竭、环境污染以及经济全球化,大规模的可再生的,环保的生物处理工艺来代替或者互补传统不可再生,高能耗,高污染的工业生产工艺是刻不容缓。

在食品加工方面,利用酯酶分解底物后产物为呈香化合物,将酯酶己应用于奶制品的增香、改善稻米和发酵类饮料的香味等方面,如用酯酶处理过的奶制品比未处理的具有更好的香味和可接受性;在农业生产方面,人工合成的有机磷化物广泛用于杀虫剂,这些物质的残留将危害环境并且最终危害人类健康,来自于Brevundimonas diminuta和Alteromonas sp.酯酶被证明能有效降解这类物质,广泛应用于清除有机磷杀虫剂的污染;在医药合成方面,酯酶主要用于拆分手性药物。来自于Pseudomonas sp.的酯酶被应用于抗炎药物布洛芬的生产,来自于Bacillus cogulans的酯酶广泛应用于生物活性物质DL-甘油醇缩丙酮的生产;在轻化工业方面,酯酶广泛应用于制浆造纸、纺织品、皮革处理等。来自于Ophiostoma piceae的酯酶能够有效的水解甘油三酯和幽醇酯,酯酶能够显著降低制浆造纸过程中的树脂,因而能够显著提高机器的运行效率并改善纸张的品质,因而广泛应用于制浆造纸工业;化工日用品方面,碱性酯酶具有明显的助洗作用,加入后使得洗涤剂朝低磷或无磷的方向反应,有利于降低水体中无机磷含量,从而减少环境水体富营养化。酯酶除了在上述的食品加工、农业生产、医药合成以及轻化工业等行业广泛使用外,酯酶还被认为在环保型燃料、生物柴油等生物能源的开发具有广泛的前景。

微生物酯酶是一类重要的工业酶类,国内外上从20世纪90年代到现在,相继开发出各种酯酶,但是依旧无法满足现代工业需求。我国真菌产酯酶的相关研究起步较晚,在期刊杂志上鲜有报道,覃拥灵等人利用诱变裂褶菌ZM37.8,获得稳定的正突变高产菌株E1,其产酯酶量为87.56U/mL(覃拥灵等,2007)。真菌发酵有别于细菌发酵,真菌在发酵过程中可以随时取样接种于LB培养基,检测是否染杂菌;也可通过添加抗生素减少染菌,且真菌发酵条件温和,易于控制等鲜明特点。因此真菌发酵法生产的独特优势,有利于真菌酯酶更广泛地工业化应用。

发明内容

本发明的目的在于提供一种绿僵菌发酵生产酯酶的培养基及方法。

本发明首先提供了一种绿僵菌发酵生产酯酶的培养基,所述培养基的原料含有酵母粉1-3w%,D-山梨醇1-4 w %,Ba2+ 0.01-0.04 mol/L,VB40.005-0.02 w %,三醋酸甘油酯2w%,培养基初始pH=6.6-7.5。

更优选地,所述培养基的原料按重量分数计,含有酵母粉2%,D-山梨醇3%,BaCl2·2H2O 0.24%,VB40.01%,三醋酸甘油酯2%,培养基初始pH=6.9。

其次,本发明还提供了一种绿僵菌发酵产酯酶的方法,所述方法包含以下步骤:

(a)将绿僵菌接种种子培养基,制得发酵种子液;

(b)将步骤(a)中制得的发酵种子液按接种于权利要求1或2所述的培养基,250mL的三角瓶装液量为125mL,接种量10%,于27℃,转速160 r/min下培养。

所述种子培养基的原料含有:按培养基重量计,牛肉膏2.0%,蔗糖2.0%,蛋白胨0.2%,酵母粉0.2%,(NH4)2SO4 0.5%,K2HPO4 0.1% ,MgSO4.7H2O 0.05%,pH5.5。

本发明采用的绿僵菌为绿僵菌 M a Y D T R 03(以下简称绿僵菌Ma-3)(何学友等,应用绿僵菌和白僵菌林间防治木麻黄毒蛾的初步研究,福建林业科技,2011年6月)。

采用本发明优化后的培养基,菌龄4d,发酵周期54h,发酵产生结果绿僵菌Ma-3产酯酶为45U/mL以上。

本发明的发酵方法有发酵周期短;条件温和,易于控制;提供的用于绿僵菌发酵生产酯酶的培养基,具有酯酶产率高,酯酶活力高等优点。

附图说明

图1为对硝基苯酚标准曲线。

具体实施方式

本发明用下列实施例来进一步说明本发明,但本发明的保护范围并不限于下列实施例。

实施例1

单因素实验确定培养基最优成分

(1)种子培养基配制:牛肉膏20.0g,蔗糖20.0g,蛋白胨2.0g, (NH4)2SO4 5.0g,酵母粉2.0g,K2HPO4 1.0g ,MgSO4·7H2O 0.5g,蒸馏水定容到1000mL,调pH至5.5,分装于250mL的三角瓶,每个三角瓶含150mL。0.1MPa,灭菌20min。使用前可加入抗生素对培养基预处理。

(2)发酵种子的制作:将绿僵菌Ma-3接种于马铃薯琼脂培养基上,于27℃下培养5d,待其产孢子,即活化;将活化后的菌株用接种针将孢子粉接种至种子培养基,27℃,转速160 r/min下培养24h,即为发酵液。

(3)酶液的制备:取步骤(2)下的发酵液在4℃下, 5000 r/min离心,15min,得上清液即为粗酶液待用。按酶活性测定在在波长405nm处测定吸光值。换算成酶活单位U/mL。

(4)酯酶酶活测定:根据Westlake K等人的酯酶酶活测定方法,进行改进,取1 mL 1mmol/L的对硝基苯酯酸酯(p-NPC2)溶液、2 mL 50mM Tris-HCl(pH 7.2)缓冲液加人试管中,放人恒温水浴器中,40℃保温15 min,再加1 mL酶液振荡反应4.5 min,立即加入2 mL 95%乙醇终止反应,在波长405nm处测定吸光值。另以在沸水浴中失活的酶液代替原酶液为空白。酶活力单位的定义为在本实验测定条件下,以每分钟催化产生1μmol的对硝基苯酚所需的酶量为1个酶活力单位(U)。酶活力(U/g或U/mL)=A×K×V×n/(t×m)(A为样品的吸光度;K为吸光常数;V为反应试剂的总体积;n为酶液的稀释倍数;t为反应时间;m为酶液质量或体积,g或mL)。

(5)标准曲线的制作:精确配制对硝基苯酚2mmol/L标准溶液;首先在试管中加入不同体积50mmol/L Tris-Hcl pH7.2, 在40℃保温15 min,在加入不同体积的对硝基苯酚标准液。反应4.5min后立即加入2mL95%乙醇。反应体系为6mL(对硝基苯酚和缓冲液4mL,终止液为2mL)。每个浓度做3平行实验,为空白对照。在波长405 nm处测定吸光值。以吸光值为纵坐标,标准溶液溶度为横坐标,经统计处理得到的线性回归方程,y=0.0025x,R2=0.9976,结果见图1。

(6)不同碳源、氮源、金属离子、维生素对产酯酶的影响

(a)碳源对酶产量的影响,在含有三醋酸甘油酯2% (w/v)(经细菌过滤器除菌后加入,下同)、蛋白胨1%、KH2PO4 0.1%、MgSO4.7H2O 0.05%、NaCl 0.1%、FeSO4.7H2O 0.001%、pH7.0的培养基中分别添加2%葡萄糖、蔗糖、麦芽糖、果糖、L(+)-阿拉伯糖、海藻糖、D-山梨醇、可溶性淀粉,0.1MPa,灭菌20min(下同),接入相同的绿僵菌菌液,在27℃、160r/min的摇床中培养60h检测酶活性,结果见表1。

(b)金属离子对产酶的影响,在含有三醋酸甘油酯2% (w/v)、蔗糖2%、蛋白胨1%、pH7.0的培养基分别添加0.02mol/L(以6(a)中含有的金属离子按其浓度换算得来)FeCl3·6H2O、NaCl、MgCl2·6H2O、CaCl2、MnCl2·4H2O、KCl、BaCl2·2H2O、ZnCl2、CuCl2·2H2O、FeCl2·4H2O,灭菌,接入相同的绿僵菌菌液,在27℃、160r/min的摇床中培养60h检测酶活性,结果见表2。

(c)氮源对酶产量的影响,在含有三醋酸甘油酯2% (w/v)、蔗糖2%、KH2PO4 0.1%、MgSO4.7H2O 0.05%、NaCl 0.1%、FeSO4.7H2O 0.001%、pH7.0的培养基中分别添加1%的酵母粉、蛋白胨、甘氨酸、(NH4)2HPO4、(NH4)2SO4、NaNO3、NH4NO3、KNO3、胰蛋白胨、叶酸、酸水解蛋白胨,灭菌,接入相同的绿僵菌菌液,在27℃、160r/min的摇床中培养60h检测酶活性,结果见表3。

(d)维生素对酶产量的影响,在含有三醋酸甘油酯2% (w/v)、蛋白胨1%,蔗糖2%、KH2PO4 0.1%、MgSO4.7H2O 0.05%、NaCl 0.1%、FeSO4.7H2O 0.001%、pH7.0的培养基中分别添加0.01%硫胺素VB1、核黄素VB2、氨基嘌呤VB4、吡哆醇类VB6、烟酸、叶酸、抗坏血酸VC、生育酚脂VE 、VA、VD,灭菌,接入相同的绿僵菌菌液,在27℃、160r/min的摇床中培养60h检测酶活性,结果见表4。

表1 不同碳源对酶产量的影响

表2 不同金属离子对酶产量的影响

表3 不同氮源对酶产量的影响

表4 不同维生素对酶产量的影响

从表中可以得出最佳的培养基成分为D-山梨醇,酵母粉,Ba2+,VB4,接下来的正交实验将以此作为发酵培养基成分。

实施例2

正交实验确定最优发酵条件

(1)正交实验确定最佳培养基

从单因素实验确定的培养基的基础上,改变各成分的溶度,和pH值,配置不同的培养基,方法同实施例1中步骤(1)、(2)。见表5,将相同量的接种量(10%)菌种接种于250mL,装有50mL培养液,在27℃,转速160 r/min下培养培养48h。然后按实施例1步骤(3)、(4)测定酶活。选取正交实验最优结果和其产酶量最高的实验组号,进行验证实验。为了避免累赘实施例中的培养基配法、粗酶液的制作、酶活测定方法均与实施例1的方法相同。

表5 绿僵菌Ma-3酯酶五因子四水平(45)正交实验设计

表6 绿僵菌Ma-3酯酶五因子四水平(45)正交实验设计实验结果

注:K1 为各因素水平1的所有酶活力之和,K2 为各因素水平2的所有酶活力之和,K3为各因素水平3的所有酶活力之和,K4为各因素水平4的所有酶活力之和,R为极差,酶活力的数字代表3次重复的平均值(mean)±标准差(S.D)。

表7 培养基优化验证试验

正交结果分析表明:最佳因素组合是A3B3C2D2E2,即D-山梨醇2%,酵母粉1%,Ba2+ 0.02mol/L,VB40.01%,pH6.9,且结果与验证试验相符合。正交实验结果表明较好水平包括D-山梨醇2%、酵母粉1%、Ba2+0.01mol/L、VB40.1%、pH6.9,即A3B3C2D2E2。表6变化因子的极差值R分别为碳源(94.33)、氮源(102.86)、金属离子(117.25)、维生素(81.01)和pH(66.62),表明碳源、氮源、金属离子、维生素和pH的变化与绿僵菌Ma-3产酯酶培养基相关,尤其是金属离子的变化对该菌产酶的影响更大。相对而言,pH的改变对产酶的影响较小。

 (2)正交实验确定最优培养条件

在从正交实验确定的最优培养基的基础上,通过设定不同接种量,装液量,菌龄,培养时间,在27℃,转速160 r/min下培养,各组号的培养时间以表9为准。然后按实施例1步骤(3)、(4)测定酶活。选取正交实验最优结果和其产酶量最高的实验组号,进行验证实验。为了避免累赘实施例中的培养基配法、粗酶液的制作、酶活测定方法均与实施例1的方法相同。

表8绿僵菌Ma-3酯酶四因子三水平(34)正交实验

表9绿僵菌Ma-3酯酶四因子三水平(34)正交实验设计实验结果

注: K1 为各因素水平1的所有酶活力之和,K2 为各因素水平2的所有酶活力之和,K3为各因素水平3的所有酶活力之和, R为极差,酶活力的数字代表3次重复的平均值(mean)±标准差(S.D)。

表10 培养条件优化验证试验

总结了4个因子(接种量、装液量、菌龄和培养时间)对绿僵菌Ma-3产酯酶产生的影响。表9中的R值表明培养时间(54.36)是一个比其他培养条件更重要的因子,其次是装液量(39.97),然后是菌龄(35.71),对绿僵菌Ma-3产酯酶影响最小的因子是接种量(19.19)。最优相应的实验条件应为A2B3C2D2(接种量10%,装液量125mL/250mL,菌龄4d,培养时间54h)。在培养该菌产的时候,要注意培养时间,以提高产酶效率。

实施例3

真菌产酯酶发酵方法

(1)   发酵种子的制备

(A)菌种和培养基

菌种:绿僵菌Ma-3

斜面培养基:PDA培养基

液体种子培养基:牛肉膏20.0g,蔗糖20.0g,蛋白胨2.0g, (NH4)2SO4 5.0g,K2HPO4 1.0g ,MgSO4·7H2O 0. 5g,蒸馏水定容至1000mL,调pH值为5.5,0.1MPa,灭菌20min,(该培养基pH值较低是为了抑制杂菌生长)。

(B)种子液制备

将斜面上的纯种绿僵菌Ma-3转接到多个250mL三角瓶中,其中装有100mL培养基,然后在27℃(温度较发酵培养同样是为了抑制染菌),在往复式震荡摇床转速160 r/min下培养培养4d,带菌丝生长健壮,菌液呈粘稠状时,说明种子已经生长好了。

此外接种前可在种子液中加入抗生素,杀灭或者抑制杂菌的生长,从而获得不带杂菌的纯种菌种。

(2)   发酵培养

发酵培养基:按照培养基优化正交实验,即D-山梨醇2%,酵母粉1%,BaCl2·2H2O 0.24%,VB40.01%,pH6.9,,三醋酸甘油酯2% (w/v),配制。

将上一步骤中制备的绿僵菌Ma-3发酵种子液,按培养条件正交实验得出的最佳条件,接种量10%接种于250mL三角瓶中,瓶中装有125mL发酵培养液,

摇床温度:27℃±1℃,

发酵周期:54h,

发酵产生结果绿僵菌Ma-3产酯酶为45U/mL以上,该实施例表明本发明的摇瓶实验工艺良好。

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1、(10)授权公告号 CN 102839161 B (45)授权公告日 2013.07.03 CN 102839161 B *CN102839161B* (21)申请号 201210319225.4 (22)申请日 2012.09.03 C12N 9/16(2006.01) C12R 1/645(2006.01) (73)专利权人 福建农林大学 地址 350002 福建省福州市仓山区建新镇金 山学区 (72)发明人 邱君志 苏礼超 涂洁 宋飞飞 关雄 邱云锋 李小霞 郭庆丰 何肖云 吴国辉 (74)专利代理机构 福州元创专利商标代理有限 公司 35100 代理人 蔡学俊 CN 101100682。

2、 B,2011.04.27, 说明书全文 . CN 101525577 C,2011.07.20, 说明书全文 . CN 101403930 B,2011.05.25, 说明书全文 . CN 100381557 C,2008.04.16, 说明书全文 . CN 102168025 B,2012.08.08, 说明书全文 . CN 101845397 B,2012.06.27, 说明书全文 . liyang-ling 等 .CULTURE CONDITIONS FOR THE PRODUCTION OF TREHALOSE-HYDROLYSING ENZYMES FROM METARHIZIUM。

3、 ANISOPLIAE. mycosystema .2004, 第 23 卷 ( 第 3 期 ),403-411. 杨腊英 等 . 金龟子绿僵菌菌株培养基的 改良 .热带作物学报 .2008, 第 29 卷 ( 第 2 期 ),210-214. 肖代敏 等 . 戴氏绿僵菌活性多糖深层发酵 的培养基优化 .食品科学 .2010, 第 31 卷 ( 第 11 期 ),132-135. 宋漳 等 . 培养基组成对金龟子绿僵菌 M337 菌株稳定性的影响 .附件农林大学学报 (自然科 学版) .2008, 第 37 卷 ( 第 2 期 ),135-139. (54) 发明名称 一种绿僵菌发酵生产酯酶的。

4、培养基及方法 (57) 摘要 本发明涉及真菌的发酵培养基及工艺。更 具体地, 本发明涉及一种绿僵菌发酵生产酯酶的 培养基及方法。所述培养基的原料含有酵母粉 1-3w%, D- 山 梨 醇 1-4w%, Ba2+0.01-0.04mol/L, VB40.005-0.02w%, 三醋酸甘油酯 2w%, 培养基初始 pH=6.6-7.5。该方法通过将发酵种子液按接种于 培养基, 250mL 的三角瓶装液量为 125mL, 接种量 10%, 于 27, 转速 160r/min 下培养。本发明的发 酵方法有发酵周期短 ; 条件温和, 易于控制 ; 提供 的用于绿僵菌发酵生产酯酶的培养基, 具有酯酶 产率。

5、高, 酯酶活力高等优点。 (51)Int.Cl. (56)对比文件 审查员 张林 权利要求书 1 页 说明书 9 页 附图 1 页 (19)中华人民共和国国家知识产权局 (12)发明专利 权利要求书1页 说明书9页 附图1页 (10)授权公告号 CN 102839161 B CN 102839161 B *CN102839161B* 1/1 页 2 1. 一种绿僵菌 MaYDTR 03 发酵生产酯酶的培养基, 其特征在于, 所述培养基的原料含 有酵母粉 1-2w%, D- 山梨醇 1-4 w %, Ba2+ 0.01-0.04 mol/L, VB40.005-0.02 w %, 三醋酸甘 油酯。

6、 2w%, 培养基初始 pH=6.6-7.5。 2. 一种绿僵菌 MaYDTR 03 发酵生产酯酶的培养基, 其特征在于, 所述培养基的原料按 重量分数计, 含有酵母粉 2%, D- 山梨醇 3%, BaCl22H2O 0.24%, VB40.01%, 三醋酸甘油酯 2%, 培养基初始 pH=6.9。 3. 一种绿僵菌 MaYDTR 03 发酵产酯酶的方法, 其特征在于, 所述方法包含以下步骤 : (a) 将绿僵菌 MaYDTR 03 接种种子培养基, 制得发酵种子液 ; (b) 将步骤 (a) 中制得的发酵种子液接种于权利要求 1 或 2 所述的培养基, 250mL 的三 角瓶装液量为 12。

7、5mL, 接种量 10%, 于 27, 转速 160 r/min 下培养。 4. 如权利 3 所述绿僵菌 MaYDTR 03 发酵产酯酶的方法, 其特征在于, 所述种子培养基 的原料含有 : 按培养基重量计, 牛肉膏2.0%, 蔗糖2.0%, 蛋白胨0.2%, 酵母粉0.2%, (NH4)2SO4 0.5%, K2HPO4 0.1% , MgSO4.7H2O 0.05%, pH5.5。 权 利 要 求 书 CN 102839161 B 2 1/9 页 3 一种绿僵菌发酵生产酯酶的培养基及方法 技术领域 0001 本发明涉及真菌的发酵培养基及工艺。更具体地, 本发明涉及一种绿僵菌发酵生 产酯酶的。

8、培养基及方法。 背景技术 0002 酯酶 (Esterase, EC3.1.1.1) 是一类能够催化酯键水解形成相应的酸和乙醇的酶 类, 广泛分布于动植物和微生物 (Bronscheuer, 2002)。微生物能够产生多种具有酯解活力 的酶类, 包括酯酶(Esterase)和脂肪酶(Lipase)。 酯酶能够水解或者合成酰基碳链长度小 于 10 的甘油酯类, 对于酰基碳链长度大于 10 的甘油酯类则没有催化活性。 0003 酯酶催化反应具较广的底物范围, 在催化底物反应时不需要辅助因子, 在一些变 形剂, 如有机溶剂中有很高的稳定性, 此外酯酶催化反应具有立体特异性和区域专一性的 特点。由于酯。

9、酶以上优点, 使得酯酶在很多领域有着广泛的应用。近年来, 全球市场工业用 酶市场不断扩大, 而酯酶是其中一种被广泛使用的生物催化剂, 在全球工业用酶市场占据 很高的很高比例。 随着日益高涨的能源成本、 石油煤炭等不可再生资源的衰竭、 环境污染以 及经济全球化, 大规模的可再生的, 环保的生物处理工艺来代替或者互补传统不可再生, 高 能耗, 高污染的工业生产工艺是刻不容缓。 0004 在食品加工方面, 利用酯酶分解底物后产物为呈香化合物, 将酯酶己应用于奶制 品的增香、 改善稻米和发酵类饮料的香味等方面, 如用酯酶处理过的奶制品比未处理的具 有更好的香味和可接受性 ; 在农业生产方面, 人工合成。

10、的有机磷化物广泛用于杀虫剂, 这 些物质的残留将危害环境并且最终危害人类健康, 来自于Brevundimonas diminuta和 Alteromonas sp. 酯酶被证明能有效降解这类物质, 广泛应用于清除有机磷杀虫剂的污染 ; 在医药合成方面, 酯酶主要用于拆分手性药物。 来自于Pseudomonas sp.的酯酶被应用于抗 炎药物布洛芬的生产, 来自于Bacillus cogulans的酯酶广泛应用于生物活性物质 DL- 甘 油醇缩丙酮的生产 ; 在轻化工业方面, 酯酶广泛应用于制浆造纸、 纺织品、 皮革处理等。 来自 于Ophiostoma piceae的酯酶能够有效的水解甘油三酯。

11、和幽醇酯, 酯酶能够显著降低制浆 造纸过程中的树脂, 因而能够显著提高机器的运行效率并改善纸张的品质, 因而广泛应用 于制浆造纸工业 ; 化工日用品方面, 碱性酯酶具有明显的助洗作用, 加入后使得洗涤剂朝低 磷或无磷的方向反应, 有利于降低水体中无机磷含量, 从而减少环境水体富营养化。 酯酶除 了在上述的食品加工、 农业生产、 医药合成以及轻化工业等行业广泛使用外, 酯酶还被认为 在环保型燃料、 生物柴油等生物能源的开发具有广泛的前景。 0005 微生物酯酶是一类重要的工业酶类, 国内外上从20世纪90年代到现在, 相继开发 出各种酯酶, 但是依旧无法满足现代工业需求。 我国真菌产酯酶的相关研。

12、究起步较晚, 在期 刊杂志上鲜有报道, 覃拥灵等人利用诱变裂褶菌 ZM37.8, 获得稳定的正突变高产菌株 E1, 其产酯酶量为 87.56U/mL (覃拥灵等, 2007) 。真菌发酵有别于细菌发酵, 真菌在发酵过程中 可以随时取样接种于 LB 培养基, 检测是否染杂菌 ; 也可通过添加抗生素减少染菌, 且真菌 发酵条件温和, 易于控制等鲜明特点。 因此真菌发酵法生产的独特优势, 有利于真菌酯酶更 说 明 书 CN 102839161 B 3 2/9 页 4 广泛地工业化应用。 发明内容 0006 本发明的目的在于提供一种绿僵菌发酵生产酯酶的培养基及方法。 0007 本发明首先提供了一种绿僵。

13、菌发酵生产酯酶的培养基, 所述培养基的原料含有酵 母粉 1-3w%, D- 山梨醇 1-4 w %, Ba2+ 0.01-0.04 mol/L, VB40.005-0.02 w %, 三醋酸甘油酯 2w%, 培养基初始 pH=6.6-7.5。 0008 更优选地, 所述培养基的原料按重量分数计, 含有酵母粉 2%, D- 山梨醇 3%, BaCl22H2O 0.24%, VB40.01%, 三醋酸甘油酯 2%, 培养基初始 pH=6.9。 0009 其次, 本发明还提供了一种绿僵菌发酵产酯酶的方法, 所述方法包含以下步骤 : 0010 (a) 将绿僵菌接种种子培养基, 制得发酵种子液 ; 00。

14、11 (b) 将步骤 (a) 中制得的发酵种子液按接种于权利要求1或2所述的培养基, 250mL 的三角瓶装液量为 125mL, 接种量 10%, 于 27, 转速 160 r/min 下培养。 0012 所述种子培养基的原料含有 : 按培养基重量计, 牛肉膏 2.0%, 蔗糖 2.0%, 蛋白胨 0.2%, 酵母粉 0.2%, (NH4)2SO4 0.5%, K2HPO4 0.1% , MgSO4.7H2O 0.05%, pH5.5。 0013 本发明采用的绿僵菌为绿僵菌 M a Y D T R 03(以下简称绿僵菌 Ma-3) (何学友 等, 应用绿僵菌和白僵菌林间防治木麻黄毒蛾的初步研究。

15、, 福建林业科技, 2011 年 6 月) 。 0014 采用本发明优化后的培养基, 菌龄4d, 发酵周期54h, 发酵产生结果绿僵菌Ma-3产 酯酶为 45U/mL 以上。 0015 本发明的发酵方法有发酵周期短 ; 条件温和, 易于控制 ; 提供的用于绿僵菌发酵 生产酯酶的培养基, 具有酯酶产率高, 酯酶活力高等优点。 附图说明 0016 图 1 为对硝基苯酚标准曲线。 具体实施方式 0017 本发明用下列实施例来进一步说明本发明, 但本发明的保护范围并不限于下列实 施例。 0018 实施例 1 0019 单因素实验确定培养基最优成分 0020 (1) 种子培养基配制 : 牛肉膏 20.0。

16、g, 蔗糖 20.0g, 蛋白胨 2.0g, (NH4)2SO4 5.0g, 酵母粉 2.0g, K2HPO4 1.0g , MgSO47H2O 0.5g, 蒸馏水定容到 1000mL, 调 pH 至 5.5, 分装于 250mL 的三角瓶, 每个三角瓶含 150mL。0.1MPa, 灭菌 20min。使用前可加入抗生素对培养基 预处理。 0021 (2) 发酵种子的制作 : 将绿僵菌 Ma-3 接种于马铃薯琼脂培养基上, 于 27下培养 5d, 待其产孢子, 即活化 ; 将活化后的菌株用接种针将孢子粉接种至种子培养基, 27, 转速 160 r/min 下培养 24h, 即为发酵液。 002。

17、2 (3) 酶液的制备 : 取步骤 (2) 下的发酵液在 4下, 5000 r/min 离心, 15min, 得上 清液即为粗酶液待用。按酶活性测定在在波长 405nm 处测定吸光值。换算成酶活单位 U/ 说 明 书 CN 102839161 B 4 3/9 页 5 mL。 0023 (4) 酯酶酶活测定 : 根据 Westlake K 等人的酯酶酶活测定方法, 进行改进, 取 1 mL 1mmol/L的对硝基苯酯酸酯(p-NPC2)溶液、 2 mL 50mM Tris-HCl(pH 7.2)缓冲液加人试管 中, 放人恒温水浴器中, 40保温 15 min, 再加 1 mL 酶液振荡反应 4.。

18、5 min, 立即加入 2 mL 95%乙醇终止反应, 在波长405nm处测定吸光值。 另以在沸水浴中失活的酶液代替原酶液为 空白。酶活力单位的定义为在本实验测定条件下, 以每分钟催化产生 1mol 的对硝基苯酚 所需的酶量为 1 个酶活力单位 (U)。酶活力 (U/g 或 U/mL) =AKVn/(tm)(A 为样品 的吸光度 ; K 为吸光常数 ; V 为反应试剂的总体积 ; n 为酶液的稀释倍数 ; t 为反应时间 ; m 为 酶液质量或体积, g 或 mL) 。 0024 (5) 标准曲线的制作 : 精确配制对硝基苯酚 2mmol/L 标准溶液 ; 首先在试管中加 入不同体积 50mm。

19、ol/L Tris-Hcl pH7.2, 在 40保温 15 min, 在加入不同体积的对硝基苯 酚标准液。反应 4.5min 后立即加入 2mL95% 乙醇。反应体系为 6mL(对硝基苯酚和缓冲液 4mL, 终止液为 2mL) 。每个浓度做 3 平行实验, 为空白对照。在波长 405 nm 处测定吸光值。 以吸光值为纵坐标, 标准溶液溶度为横坐标, 经统计处理得到的线性回归方程, y=0.0025x, R2=0.9976, 结果见图 1。 0025 (6) 不同碳源、 氮源、 金属离子、 维生素对产酯酶的影响 0026 (a) 碳源对酶产量的影响, 在含有三醋酸甘油酯 2% (w/v)(经细。

20、菌过滤器除菌后加 入, 下同) 、 蛋白胨 1%、 KH2PO4 0.1%、 MgSO4.7H2O 0.05%、 NaCl 0.1%、 FeSO4.7H2O 0.001%、 pH7.0 的培养基中分别添加2%葡萄糖、 蔗糖、 麦芽糖、 果糖、 L(+)-阿拉伯糖、 海藻糖、 D-山梨醇、 可 溶性淀粉, 0.1MPa, 灭菌 20min (下同) , 接入相同的绿僵菌菌液, 在 27、 160r/min 的摇床中 培养 60h 检测酶活性, 结果见表 1。 0027 (b) 金属离子对产酶的影响, 在含有三醋酸甘油酯 2% (w/v) 、 蔗糖 2%、 蛋白胨 1%、 pH7.0 的培养基分别。

21、添加 0.02mol/L(以 6(a)中含有的金属离子按其浓度换算得来) FeCl36H2O、 NaCl、 MgCl26H2O、 CaCl2、 MnCl24H2O、 KCl、 BaCl22H2O、 ZnCl2、 CuCl22H2O、 FeCl24H2O, 灭菌, 接入相同的绿僵菌菌液, 在 27、 160r/min 的摇床中培养 60h 检测酶活 性, 结果见表 2。 0028 (c) 氮源对酶产量的影响, 在含有三醋酸甘油酯 2% (w/v) 、 蔗糖 2%、 KH2PO4 0.1%、 MgSO4.7H2O 0.05%、 NaCl 0.1%、 FeSO4.7H2O 0.001%、 pH7.0。

22、的培养基中分别添加1%的酵母粉、 蛋白胨、 甘氨酸、(NH4) 2HPO4、 (NH4)2SO4、 NaNO3、 NH4NO3、 KNO3、 胰蛋白胨、 叶酸、 酸水解蛋白胨, 灭菌, 接入相同的绿僵菌菌液, 在 27、 160r/min 的摇床中培养 60h 检测酶活性, 结果见表 3。 0029 (d) 维生素对酶产量的影响, 在含有三醋酸甘油酯 2% (w/v) 、 蛋白胨 1%, 蔗糖 2%、 KH2PO4 0.1%、 MgSO4.7H2O 0.05%、 NaCl 0.1%、 FeSO4.7H2O 0.001%、 pH7.0 的培养基中分别添加 0.01% 硫胺素 VB1、 核黄素 V。

23、B2、 氨基嘌呤 VB4、 吡哆醇类 VB6、 烟酸、 叶酸、 抗坏血酸 VC、 生育酚 脂 VE 、 VA、 VD, 灭菌, 接入相同的绿僵菌菌液, 在 27、 160r/min 的摇床中培养 60h 检测酶活 性, 结果见表 4。 0030 表 1 不同碳源对酶产量的影响 0031 说 明 书 CN 102839161 B 5 4/9 页 6 0032 表 2 不同金属离子对酶产量的影响 0033 0034 表 3 不同氮源对酶产量的影响 0035 说 明 书 CN 102839161 B 6 5/9 页 7 0036 表 4 不同维生素对酶产量的影响 0037 0038 从表中可以得出最。

24、佳的培养基成分为 D- 山梨醇, 酵母粉, Ba2+, VB4, 接下来的正交 实验将以此作为发酵培养基成分。 0039 实施例 2 0040 正交实验确定最优发酵条件 0041 (1) 正交实验确定最佳培养基 0042 从单因素实验确定的培养基的基础上, 改变各成分的溶度, 和 pH 值, 配置不同的 培养基, 方法同实施例 1 中步骤 (1) 、(2) 。见表 5, 将相同量的接种量 (10%)菌种接种于 250mL, 装有 50mL 培养液, 在 27, 转速 160 r/min 下培养培养 48h。然后按实施例 1 步骤 (3) 、(4) 测定酶活。选取正交实验最优结果和其产酶量最高的。

25、实验组号, 进行验证实验。为 说 明 书 CN 102839161 B 7 6/9 页 8 了避免累赘实施例中的培养基配法、 粗酶液的制作、 酶活测定方法均与实施例 1 的方法相 同。 0043 表 5 绿僵菌 Ma-3 酯酶五因子四水平 (45) 正交实验设计 0044 0045 表 6 绿僵菌 Ma-3 酯酶五因子四水平 (45) 正交实验设计实验结果 0046 0047 注 :K1 为各因素水平 1 的所有酶活力之和, K2 为各因素水平 2 的所有酶活力之 和, K3 为各因素水平 3 的所有酶活力之和, K4 为各因素水平 4 的所有酶活力之和, R 为极 差, 酶活力的数字代表 3。

26、 次重复的平均值 (mean) 标准差 (S.D)。 0048 表 7 培养基优化验证试验 说 明 书 CN 102839161 B 8 7/9 页 9 0049 0050 正交结果分析表明 : 最佳因素组合是 A3B3C2D2E2, 即 D- 山梨醇 2%, 酵母粉 1%, Ba2+ 0.02mol/L, VB40.01%, pH6.9, 且结果与验证试验相符合。正交实验结果表明较好水平包 括 D- 山梨醇 2%、 酵母粉 1%、 Ba2+0.01mol/L、 VB40.1%、 pH6.9, 即 A3B3C2D2E2。表 6 变化因子 的极差值 R 分别为碳源 (94.33)、 氮源 (10。

27、2.86)、 金属离子 (117.25)、 维生素 (81.01) 和 pH(66.62), 表明碳源、 氮源、 金属离子、 维生素和 pH 的变化与绿僵菌 Ma-3 产酯酶培养基相 关, 尤其是金属离子的变化对该菌产酶的影响更大。相对而言, pH 的改变对产酶的影响较 小。 0051 (2) 正交实验确定最优培养条件 0052 在从正交实验确定的最优培养基的基础上, 通过设定不同接种量, 装液量, 菌龄, 培养时间, 在 27, 转速 160 r/min 下培养, 各组号的培养时间以表 9 为准。然后按实施例 1 步骤 (3) 、(4) 测定酶活。选取正交实验最优结果和其产酶量最高的实验组号。

28、, 进行验证实 验。为了避免累赘实施例中的培养基配法、 粗酶液的制作、 酶活测定方法均与实施例 1 的方 法相同。 0053 表 8 绿僵菌 Ma-3 酯酶四因子三水平 (34) 正交实验 0054 0055 表 9 绿僵菌 Ma-3 酯酶四因子三水平 (34) 正交实验设计实验结果 0056 说 明 书 CN 102839161 B 9 8/9 页 10 0057 注 : K1 为各因素水平 1 的所有酶活力之和, K2 为各因素水平 2 的所有酶活力之 和, K3 为各因素水平 3 的所有酶活力之和, R 为极差, 酶活力的数字代表 3 次重复的平均值 (mean) 标准差 (S.D)。 。

29、0058 表 10 培养条件优化验证试验 0059 0060 总结了 4 个因子 ( 接种量、 装液量、 菌龄和培养时间 ) 对绿僵菌 Ma-3 产酯酶产生 的影响。表 9 中的 R 值表明培养时间 (54.36) 是一个比其他培养条件更重要的因子, 其次 是装液量 (39.97), 然后是菌龄 (35.71), 对绿僵菌 Ma-3 产酯酶影响最小的因子是接种量 (19.19)。最优相应的实验条件应为 A2B3C2D2( 接种量 10%, 装液量 125mL/250mL, 菌龄 4d, 培 养时间 54h) 。在培养该菌产的时候, 要注意培养时间, 以提高产酶效率。 0061 实施例 3 00。

30、62 真菌产酯酶发酵方法 0063 (1) 发酵种子的制备 0064 (A) 菌种和培养基 0065 菌种 : 绿僵菌 Ma-3 0066 斜面培养基 : PDA 培养基 0067 液体种子培养基 : 牛肉膏 20.0g, 蔗糖 20.0g, 蛋白胨 2.0g, (NH4)2SO4 5.0g, K2HPO4 1.0g , MgSO47H2O 0. 5g, 蒸馏水定容至 1000mL, 调 pH 值为 5.5, 0.1MPa, 灭菌 20min, ( 该 培养基 pH 值较低是为了抑制杂菌生长 )。 说 明 书 CN 102839161 B 10 9/9 页 11 0068 (B) 种子液制备 。

31、0069 将斜面上的纯种绿僵菌 Ma-3 转接到多个 250mL 三角瓶中, 其中装有 100mL 培养 基, 然后在 27 ( 温度较发酵培养同样是为了抑制染菌 ), 在往复式震荡摇床转速 160 r/ min 下培养培养 4d, 带菌丝生长健壮, 菌液呈粘稠状时, 说明种子已经生长好了。 0070 此外接种前可在种子液中加入抗生素, 杀灭或者抑制杂菌的生长, 从而获得不带 杂菌的纯种菌种。 0071 (2) 发酵培养 0072 发酵培养基 : 按照培养基优化正交实验, 即 D- 山梨醇 2%, 酵母粉 1%, BaCl22H2O 0.24%, VB40.01%, pH6.9, , 三醋酸甘油酯 2% (w/v) , 配制。 0073 将上一步骤中制备的绿僵菌 Ma-3 发酵种子液, 按培养条件正交实验得出的最佳 条件, 接种量 10% 接种于 250mL 三角瓶中, 瓶中装有 125mL 发酵培养液, 0074 摇床温度 : 27 1, 0075 发酵周期 : 54h, 0076 发酵产生结果绿僵菌 Ma-3 产酯酶为 45U/mL 以上, 该实施例表明本发明的摇瓶实 验工艺良好。 说 明 书 CN 102839161 B 11 1/1 页 12 图 1 说 明 书 附 图 CN 102839161 B 12 。

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