槲皮素脂质体的制备方法及其应用.pdf

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摘要
申请专利号:

CN201810376603.X

申请日:

20180425

公开号:

CN108478534A

公开日:

20180904

当前法律状态:

有效性:

审查中

法律详情:

IPC分类号:

A61K9/127,A61K31/352,A61P35/00,A61P13/12,A61P3/10

主分类号:

A61K9/127,A61K31/352,A61P35/00,A61P13/12,A61P3/10

申请人:

桂林医学院

发明人:

顾生玖,朱开梅,马授权,蒋运生,许有瑞

地址:

541004 广西壮族自治区桂林市七星区环城北二路109号

优先权:

CN201810376603A

专利代理机构:

桂林市华杰专利商标事务所有限责任公司

代理人:

杨雪梅

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内容摘要

本发明公开了槲皮素脂质体的制备方法及其应用,制备方法是将不溶于水的槲皮素用纳米脂质体包裹,制备成槲皮素脂质体,通过实验研究槲皮素脂质体(LQ)对糖尿病大鼠肾脏糖基化终产物(AGEs)及其受体(RAGE)和TGF‑β1表达的影响,以及其对DM大鼠肾脏的影响,并与氨基胍(Aminoguanidine,AG)对比,探讨LQ对DM肾脏的干预作用。实验表明,槲皮素脂质体能够在一定程度上减轻糖尿病肾病的形态病理学改变,改善STZ性DM大鼠的一般状况,有降血糖的作用。本发明为槲皮素脂质体的下一步临床应用研究打下基础,同时也对探索DM的临床中药治疗提供新的思路和理论依据。

权利要求书

1.槲皮素脂质体的制备方法,采用旋转蒸发法,其特征在于,具体步骤如下:称取槲皮素:胆固醇:卵磷脂:聚乙二醇4000按重量比6:4:13:1放入圆底烧瓶中;在负压旋转蒸发仪上加入按3:1体积比的三氯化甲烷及甲醇,蒸干,在瓶底形成黄色膜状物;向烧瓶中加入去离子水,0℃超声破碎,悬液在4℃下水化24h,然后再水浴超声仪处理20min,使之扩散形成平均粒径小于200nm的脂质体;(4)旋转恒温负压蒸发仪上,分装冷冻保存,得到槲皮素脂质体。 2.权利要求1所述制备方法得到槲皮素脂质体。 3.权利要求2所述的槲皮素脂质体在制备抗肿瘤药物中的应用。 4.权利要求2所述的槲皮素脂质体在制备治疗糖尿病肾病药物中的应用。

说明书

技术领域

本发明涉及槲皮素,具体是槲皮素脂质体的制备方法及其应用。

背景技术

槲皮素是天然的黄酮类化合物,广泛存在于蔬菜及水果中。槲皮素具有抗肿瘤、抗炎症、抗氧化作用,并影响多种酶的活性,是一种潜在的化疗药物。由于槲皮素不溶于水,难于吸收,极大地限制了其在体内吸收、给药和生物利用。国外Ⅰ和Ⅱ期临床试验证实了槲皮素在体内能抑制多种肿瘤进展,然而,其溶剂二甲亚矾,会导致人体溶血,肝肾损害及难闻的气味,限制了槲皮素用于临床。解决这个问题方法之一通过对槲皮素进行化学修饰,然而这需要多步骤化学反应,修饰后的槲皮素结构不稳定,降低槲皮素的抗瘤效果。

发明内容

本发明的目的之一是:提供槲皮素脂质体的制备方法。

本发明的目的之二是:公开槲皮素脂质体在制备抗肿瘤药物中的应用。

本发明的目的之三是:公开槲皮素脂质体在制备治疗糖尿病肾病药物中的应用。

本发明槲皮素脂质体的制备方法,采用旋转蒸发法,具体步骤如下:

(1)称取槲皮素:胆固醇:卵磷脂:聚乙二醇4000按重量比6:4:13:1放入圆底烧瓶中;

(2)在负压旋转蒸发仪上加入按3:1体积比的三氯化甲烷及甲醇,蒸干,在瓶底形成黄色膜状物;

(3)向烧瓶中加入去离子水,0℃超声破碎,悬液在4℃下水化24h,然后再水浴超声仪处理20min,使之扩散形成平均粒径小于200nm的脂质体;

(4)旋转恒温负压蒸发仪上,分装冷冻保存,得到槲皮素脂质体。

本发明将不溶于水的槲皮素用纳米脂质体包裹,制备成槲皮素脂质体,通过实验研究槲皮素脂质体(LQ)对糖尿病大鼠肾脏糖基化终产物(AGEs)及其受体(RAGE)和TGF-β1表达的影响,以及其对DM 大鼠肾脏的影响,并与氨基胍(Aminoguanidine,AG)对比,探讨LQ 对DM 肾脏的干预作用。实验表明,槲皮素脂质体能够在一定程度上减轻糖尿病肾病的形态病理学改变,改善STZ性DM大鼠的一般状况,有降血糖的作用。本发明为槲皮素脂质体的下一步临床应用研究打下基础,同时也对探索DM的临床中药治疗提供新的思路和理论依据。

附图说明

图1为实验例中各组大鼠肾脏免疫组化PAS染色情况(×400)照片;

图2为实验例中各组大鼠肾脏免疫组化AGEs表达情况(×400)照片;

图3 为实验例中各组大鼠肾脏免疫组化TGF-β1表达情况(×400)照片;

图中,A-F分别为N组、DM组、LQ-L组、LQ-M组、LQ-H组、AG组。

图4 为实验例中各组大鼠肾组织 RAGE mRNA表达情况;

图5为实验例中各组大鼠肾组织 TGF-β1mRNA表达情况;

图中,marker左侧为β-actin,marker右侧为RAGE mRNA,1-6分别为N组、DM组、LQ-L组、LQ-M组、LQ-H组、AG组。

具体实施方式

下面结合实验例和附图对本发明内容作进一步的详细说明。

实验例:槲皮素脂质体的制备及其应用

1 材料与方法

1.1 实验材料与仪器

1.1.1 实验动物

SPF级65只雄性SD健康成年清洁大鼠,体质量190~220 g,6~8周龄,由桂林医学院动物实验室(SPF级)提供,在桂林医学院动物实验室饲养。饲养条件:室温18~25℃,保持空气流通,相对湿度55~70%,12h光照维持,模拟昼夜循环,每日清洗笼子换垫料保持其生活环境清洁干燥。

1.2 实验方法

1.2.1 槲皮素脂质体的制备

本实验用旋转蒸发法制备,具体制备步骤如下:

(1)称取槲皮素:胆固醇:卵磷脂:聚乙二醇4000按重量比6:4:13:1放入圆底烧瓶中;

(2)在负压旋转蒸发仪上加入按3:1体积比的三氯化甲烷及甲醇,蒸干,在瓶底形成黄色膜状物;

(4)向烧瓶中加入去离子水,0℃超声破碎,悬液在4℃下水化24h,然后再水浴超声仪处理20min,使之扩散形成平均粒径小于200nm的脂质体;

(4)旋转恒温负压蒸发仪上,分装冷冻保存,得到脂质体槲皮素,同时制备空白脂质体,方法同前,配方中无槲皮素;

(5)脂质体槲皮素的理化分析:在电子显微镜下检测脂质体槲皮素的大小,高效液相色谱法(HPLC)检测脂质体槲皮素载药量和包封率。

1.2.2 动物模型建立

65 只SD 大鼠饲养1 周,记录每只大鼠24 h 尿量。采用随机数字表法选取8 只作为正常组,普通饲料喂养,剩余全部食用高糖高脂饲料,饲料配方参照文献[13]。4 周后禁食12 h,腹腔注射STZ 40 mg/kg(临用前溶于0.1 mmol/L、pH4.2~4.5 柠檬酸-柠檬酸钠缓冲液中)诱导2型糖尿病模型。N 组注射同剂量的柠檬酸-柠檬酸钠缓冲液。饲养3 d 后,每日清晨7:00 采尾静脉血检测血糖,连续测3 次血糖均≥16.7 mmol/L 认为DM模型成功建立。将成功建立2 型糖尿病模型的大鼠继续饲养2 周后留取24 h 尿液,达到以下条件则定为糖尿病肾病模型建立成功:(1)空腹血糖持续≥16.7 mmol/L;(2)尿白蛋白排泄率>20 μg/min;(3)尿量是健康状态时的1.5 倍;最终52 只成模。

1.2.3 动物模型分组

将成模的大鼠采用随机数字表法选取50 只成模大鼠分为以下5 组:DM 组,LQ-低(LQ-L)组、中(LQ-M)组、高(LQ-H)组,AG 组,各组均为10 只。按以下剂量给予相应的药物:LQ-L 组50 mg/(kg·d),LQ-M 组150 mg/(kg·d),LQ-H 组250 mg/(kg·d),AG 组用氨基胍100mg/(kg·d),DM 组和N 组用蒸馏水100 mg/(kg·d)。定于每日约10:00 灌胃。每3 d 监测血糖和称体质量1 次。实验期间DM 组和LQ-L 组大鼠各死亡2 只,LQ-H 组和AG 组各死亡1 只,统计数据时将死亡大鼠数据剔除。

1.2.4 标本的收集

灌胃处理8 周后,将大鼠单独置于代谢笼中,采集每只大鼠24 h 尿液,并以3 000 r/min 离心5 min,取上清液6 mL 用于测定24 h 尿微量白蛋白。禁食12 h 后,分别测定空腹血糖和称体质量。用10%水合氯醛腹腔注射麻醉,快速腹主动脉取血4~5 mL,取2 mL 测血尿素氮(BUN)、血肌酐(Scr),剩余以12 000 r/min 4 ℃离心10 min,取上清备待测AGEs、SOD、MDA。剖腹取双侧肾脏标本,剔除肾周包膜,并用0.9% NaCl 溶液洗净,干净滤纸吸收水份,称肾质量,计算肾脏肥大指数(KI)=双侧肾质量/体质量×100%。快速液氮保存左肾,-80 ℃冰箱保存;右肾从纵轴面对半切开,4%多聚甲醛液固定,石蜡包埋备用,制备成3 μm 厚切片,用于PAS 染色及免疫组化。

1.2.5 生化指标的检测

罗氏血糖仪及配套试纸检测血糖,全自动生化分析仪检测BUN、Scr;用分光光度计法检测SOD、MDA,用ELISA 法检测血清AGEs表达水平和24h尿微量白蛋白,严格按照试剂盒说明书步骤进行操作,并根据相应的检测方法及计算公式计算出标本中各指标的相应浓度。

1.2.6 PAS 染色观察肾脏病理改变

前期准备的大鼠的糖尿病肾病蜡块,蜡块切片脱蜡至水→流水冲洗→1%过碘酸溶液10min→流水冲洗→吹干→schiff氏液37℃孵育10min→镜观→流水冲洗→苏木精染核5min→流水冲洗→盐酸酒精分化10-15s→流水冲洗→弱氨水返蓝10-15s→流水冲洗→系列酒精脱水-二甲苯I、II分别透明10min左右→树胶封固,并在显微镜下观察肾小球、肾小管、基质增生、基膜厚度等情况。

1.2.7 免疫组化法检测肾脏AGEs 及TGF-β1的表达

肾脏组织经石蜡包埋切片后,在60 ℃烤箱中烤片2 h,以0.4%胃酶修复、山羊血清封闭、PBS 冲洗,一抗分别按以下浓度稀释(AGEs 1∶100,TGF-β1 1:200),二抗(生物素标记的羊抗兔IgG)及三抗先后在37 ℃下孵育20 min,DAB显色,适时终止;复染、分化、脱水、风干、封片。阳性标本(抗体公司提供的大鼠动脉粥样硬化斑块玻片)作为阳性对照,PBS 作为阴性对照,光镜下阳性反应部位为棕黄色,细胞核呈淡蓝色。观察低倍视野(×100)下反应情况,各例随机读取5 个高倍视野(×400),通过Image-Pro Plus6.0 获得阳性表达的平均光密度(MOD)。

1.2.8 逆转录-聚合酶链反应(RT-PCR)法检测肾脏AGEs mRNA及TGF-β1mRNA的表达

根据柱式法提取肾组织总RNA,紫外分光光度计检测RNA浓度及纯度后,将总RNA根据TaKaRa 逆转录说明书逆转录成cDNA后进行扩增,β-actin 为内参。PCR 扩增反应系统包括25 μL Premix Taq,cDNA 2 μL,上、下游引物(10 μmol/L)各2μL,RNase-Free Water 19 μL,共50 μL。PCR反应条件为:94 ℃预变性1 min;94 ℃变性30 s,退火30 s,72 ℃延伸30min,循环30次数左右;72 ℃延伸1 min。取PCR产物6 µL用浓度为1.5%琼脂糖凝胶(含0.5 mg/L溴化乙啶)电泳鉴定,用SensiAnsys凝胶成像系统摄影并定量分析,计算目的基因与内参基因光密度值的比值。

1.2.8 统计学方法

采用SPSS 18.0 进行分析,计量资料以均数±标准差()表示,多个样本均数的比较采用单因素方差分析,多重比较采用LSD-t 检验,P < 0.05 为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 槲皮素脂质体的理化性质

槲皮素脂质体在显微镜下观察其粒径分布在(128.8±18.05)nm,高效液相色谱法检测其载药量约为(58±7)%,包封率为(87.1±2.7)%。

2.2 各组大鼠血糖、体质量、KI 的比较

与N 组比较,DM、LQ-L、LQ-M、LQ-H 和AG 组的血糖显著升高,体质量明显降低,KI 增大(均P < 0.05)。与DM组对比,LQ-L 组血糖差异无统计学意义,LQ-M、LQ-H 和AG 组血糖降低(均P < 0.05);与DM 组比较,LQ 各剂量组体质量增加,血糖、KI 降低(均P< 0.05),见表1;

表1 各组大鼠空腹血糖、体质量及KI 的比较()

**P<0.01;a与N组比较,P<0.01; b与DM组比较,P<0.05。

2.3 各组大鼠生化指标的比较

与N 组比较,DM、LQ-L、LQ-M、LQ-H、AG 组BUN、Scr、MDA含量、血清AGEs、24 h 尿微量白蛋白水平均增高,血清中SOD活性水平明显降低(均P < 0.05);与DM组比较,LQ-L、LQ-M、LQ-H、AG 组BUN、Scr、MDA含量、血清AGEs、24h尿微量白蛋白降低,血清中SOD活性水平明显升高,其中以LQ-M组改善最为明显(均P < 0.05),见表2、表3。

表2 各组大鼠BUN、Scr、MDA、SOD 的比较()

**P<0.01;a与N组比较,P<0.01; b与DM组比较,P<0.05。

表3 各组大鼠血清AGEs、24h尿微量白蛋白 的比较()

**P<0.01;a与N组比较,P<0.01; b与DM组比较,P<0.05。

2.4 各组大鼠肾脏的病理改变

PAS 染色显示N组肾小管结构、肾小球基底膜正常,系膜基质均匀;DM 组见肾小球结构紊乱,肾小球体积明显萎缩,肾小球系膜区基质增多,基底膜增厚;LQ 各剂量组肾脏的上述病理改变较DM 组有所改善,以中剂量组改善最明显,见图1。

2.5 免疫组化检测各组大鼠肾脏AGEs和TGF-β1蛋白的表达情况

免疫组化结果显示,AGEs和TGF-β1在N 组大鼠肾小管有一定程度的表达;与N 组比较,DM 组表达增多,肾小管上皮细胞包膜和(或)胞浆呈棕黄色强阳性;与DM 组比较,LQ 各剂量组表达减少,以中剂量组减少最明显,且中剂量组与AG 组效果类似,AGEs表达见图2、TGF-β1表达见图3,表4。

表4 各组大鼠肾脏免疫组化AGEs蛋白和TGF-β1蛋白表达的情况()

**P<0.01;a与N组比较,P<0.01; b与DM组比较,P<0.05。

2.6 RT-PCR法检测肾脏AGEs mRNA及TGF-β1mRNA的表达情况

RT-PCR 结果显示,与N 组比较,DM 组RAGE mRNA和TGF-β1mRNA表达量增加明显;与DM 组比较,LQ 各剂量组表达减少,以中剂量组减少最明显,且中剂量组与AG 组效果类似,RAGE mRNA表达见图4,TGF-β1mRNA表达见图5,表5。

表5 各组大鼠肾脏AGEs mRNA和TGF-β1mRNA表达情况

**P<0.01;a与N组比较,P<0.01; b与DM组比较,P<0.05。

3 槲皮素脂质体对血糖、AGEs和TGF-β1的影响

DN的发病因素尚未完全研究清楚,其中公认的高危因素是持续的高血糖。槲皮素属天然黄酮类化合物,因其具有抗氧化、降血糖、降血脂等作用受到广泛学者的青睐研究。有研究观察发现DM大鼠经Que治疗后,DM大鼠的尿蛋白排泄量及AGEs含量明显下降。本实验中经槲皮素脂质体治疗后大鼠肾小球中AGEs和RAGE的表达明显减少,提示槲皮素脂质体可以抑制肾脏非酶糖基化终产物及其受体的生成,这与相关报道结果相一致。

曾云先等文献报道,腹腔注射Que治疗组大鼠与正常组、模型组相比较,Que能显著降低DM大鼠血糖、血脂、胰岛素水平,但对正常组大鼠无显著影响,并且还发现疗程越久,其降糖效果越好。Gomes等以STZ诱导的糖尿病小鼠模型,经Que治疗4周发现其蛋白尿、尿酸减少和血糖的降低,减缓肾组织的毒性进展。其他相关研究也表明槲皮素能显著降低STZ所诱导的DM大鼠的血糖水平,具有降糖作用,其作用机制与抗氧化作用、清除自由基、抗纤维化等有关。DN诊断的金标准之一是24h尿微量白蛋白,减少尿微量白蛋白能够延缓DN的发生发展。本实验中发现LQ治疗后DM大鼠的血糖降低,而且BUN、Scr、24h尿微量白蛋白、KI等指标均得到改善,说明LQ复合体也能有效改善DM肾功能,达到减轻肾脏损害的作用,其作用机制可能与抑制蛋白激酶C(PKC)活性、醛糖还原酶活性、活性氧簇(ROS)等有关。

也有研究报道,槲皮素可降低线粒体中超氧化物的生成,同时通过稳定线粒体膜和清除已经生成的超氧化物,从而降低线粒体中超氧化物水平,可提高机体抗氧化能力、抑制TGF-β1的信号通路,来发挥其对肾功能的保护作用。Kim等在鼠肾小球细胞的观察中证实,由于Que结构不同,可通过激活不同的通路(PKA、PKC)来发挥其抗氧化活性,进而抑制TGF-β1引起的胶原蛋白的产生。槲皮素抗纤维化作用与其抗氧化活性密切相关。Kedziora等曾报道DM大鼠尿蛋白的排泄量与MDA的含量呈正相关关系。本实验中,在DM组大鼠中抗氧化酶SOD活性明显下降,而MDA含量明显升高,肾脏组织TGF-β1蛋白及TGF-β1mRNA表达升高,提示糖尿病状态下肾脏发生明显氧化应激,经槲皮素脂质体治疗后,DM大鼠肾脏SOD活性明显提高,MDA含量显著下降,肾脏组织TGF-β1蛋白及TGF-β1mRNA表达下降,表明槲皮素脂质体可保护DM大鼠的抗氧化活性、清除自由基、抑制脂质过氧化反应,减少TGF-β1蛋白及基因的表达,从而延缓DM大鼠肾脏病变的发生发展。此外,DM大鼠肾组织AGEs、RAGE mRNA 表达水平均有明显增高,与孙风娟等研究结果相似;而LQ各剂量组中表达显著下降,其中又以中剂量组下降最为明显,表明槲皮素脂质体也有可能通过抑制AGEs下调RAGE及其蛋白的表达以延缓DN的发生发展。

4. 结论

(1) 槲皮素脂质体能够在一定程度上减轻糖尿病肾病的形态病理学改变,改善STZ性DM大鼠的一般状况,有降血糖的作用;

(2) 槲皮素脂质体通过有效减少BUN、Scr、24h尿微量白蛋白、肾组织中AGEs,下调RAGE mRNA的表达,即通过抑制蛋白质非酶糖基化反应,干预糖尿病肾病的发生发展;

(3) 槲皮素脂质体通过减少MDA的含量,增加SOD的氧化活性等抗氧化指标,抑制炎性细胞因子的表达,从而减少肾组织TGF-β1蛋白及基因表达,对糖尿病大鼠肾病具有保护作用。

本实验为槲皮素脂质体的临床应用研究打下基础,同时也对探索DM的临床中药治疗提供新的思路和理论依据。

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1、(19)中华人民共和国国家知识产权局 (12)发明专利申请 (10)申请公布号 (43)申请公布日 (21)申请号 201810376603.X (22)申请日 2018.04.25 (71)申请人 桂林医学院 地址 541004 广西壮族自治区桂林市七星 区环城北二路109号 (72)发明人 顾生玖 朱开梅 马授权 蒋运生 许有瑞 (74)专利代理机构 桂林市华杰专利商标事务所 有限责任公司 45112 代理人 杨雪梅 (51)Int.Cl. A61K 9/127(2006.01) A61K 31/352(2006.01) A61P 35/00(2006.01) A61P 13/12(200。

2、6.01) A61P 3/10(2006.01) (54)发明名称 槲皮素脂质体的制备方法及其应用 (57)摘要 本发明公开了槲皮素脂质体的制备方法及 其应用, 制备方法是将不溶于水的槲皮素用纳米 脂质体包裹, 制备成槲皮素脂质体, 通过实验研 究槲皮素脂质体 (LQ) 对糖尿病大鼠肾脏糖基化 终产物 (AGEs) 及其受体 (RAGE) 和TGF-1表达的 影响, 以及其对DM大鼠肾脏的影响, 并与氨基胍 (Aminoguanidine, AG) 对比, 探讨LQ对DM肾脏的 干预作用。 实验表明, 槲皮素脂质体能够在一定 程度上减轻糖尿病肾病的形态病理学改变, 改善 STZ性DM大鼠的一般。

3、状况, 有降血糖的作用。 本发 明为槲皮素脂质体的下一步临床应用研究打下 基础, 同时也对探索DM的临床中药治疗提供新的 思路和理论依据。 权利要求书1页 说明书8页 附图4页 CN 108478534 A 2018.09.04 CN 108478534 A 1.槲皮素脂质体的制备方法, 采用旋转蒸发法, 其特征在于, 具体步骤如下: 称取槲皮素:胆固醇:卵磷脂:聚乙二醇4000按重量比6:4:13:1放入圆底烧瓶中; 在负压旋转蒸发仪上加入按3:1体积比的三氯化甲烷及甲醇, 蒸干, 在瓶底形成黄色膜 状物; 向烧瓶中加入去离子水, 0超声破碎, 悬液在4下水化24h, 然后再水浴超声仪处理 。

4、20min, 使之扩散形成平均粒径小于200nm的脂质体; (4) 旋转恒温负压蒸发仪上, 分装冷冻保存, 得到槲皮素脂质体。 2.权利要求1所述制备方法得到槲皮素脂质体。 3.权利要求2所述的槲皮素脂质体在制备抗肿瘤药物中的应用。 4.权利要求2所述的槲皮素脂质体在制备治疗糖尿病肾病药物中的应用。 权 利 要 求 书 1/1 页 2 CN 108478534 A 2 槲皮素脂质体的制备方法及其应用 技术领域 0001 本发明涉及槲皮素, 具体是槲皮素脂质体的制备方法及其应用。 背景技术 0002 槲皮素是天然的黄酮类化合物, 广泛存在于蔬菜及水果中。 槲皮素具有抗肿瘤、 抗 炎症、 抗氧化作。

5、用, 并影响多种酶的活性, 是一种潜在的化疗药物。 由于槲皮素不溶于水, 难 于吸收, 极大地限制了其在体内吸收、 给药和生物利用。 国外 和期临床试验证实了槲皮 素在体内能抑制多种肿瘤进展, 然而, 其溶剂二甲亚矾, 会导致人体溶血, 肝肾损害及难闻 的气味, 限制了槲皮素用于临床。 解决这个问题方法之一通过对槲皮素进行化学修饰, 然而 这需要多步骤化学反应, 修饰后的槲皮素结构不稳定, 降低槲皮素的抗瘤效果。 发明内容 0003 本发明的目的之一是: 提供槲皮素脂质体的制备方法。 0004 本发明的目的之二是: 公开槲皮素脂质体在制备抗肿瘤药物中的应用。 0005 本发明的目的之三是: 公。

6、开槲皮素脂质体在制备治疗糖尿病肾病药物中的应用。 0006 本发明槲皮素脂质体的制备方法, 采用旋转蒸发法, 具体步骤如下: (1) 称取槲皮素:胆固醇:卵磷脂:聚乙二醇4000按重量比6:4:13:1放入圆底烧瓶中; (2) 在负压旋转蒸发仪上加入按3:1体积比的三氯化甲烷及甲醇, 蒸干, 在瓶底形成黄 色膜状物; (3) 向烧瓶中加入去离子水, 0超声破碎, 悬液在4下水化24h, 然后再水浴超声仪处 理20min, 使之扩散形成平均粒径小于200nm的脂质体; (4) 旋转恒温负压蒸发仪上, 分装冷冻保存, 得到槲皮素脂质体。 0007 本发明将不溶于水的槲皮素用纳米脂质体包裹, 制备成。

7、槲皮素脂质体, 通过实验 研究槲皮素脂质体 (LQ) 对糖尿病大鼠肾脏糖基化终产物 (AGEs) 及其受体 (RAGE) 和TGF- 1 表达的影响, 以及其对DM 大鼠肾脏的影响, 并与氨基胍 (Aminoguanidine, AG) 对比, 探讨LQ 对DM 肾脏的干预作用。 实验表明, 槲皮素脂质体能够在一定程度上减轻糖尿病肾病的形态 病理学改变, 改善STZ性DM大鼠的一般状况, 有降血糖的作用。 本发明为槲皮素脂质体的下 一步临床应用研究打下基础, 同时也对探索DM的临床中药治疗提供新的思路和理论依据。 附图说明 0008 图1为实验例中各组大鼠肾脏免疫组化PAS染色情况 (400)。

8、 照片; 图2为实验例中各组大鼠肾脏免疫组化AGEs表达情况 (400) 照片; 图3 为实验例中各组大鼠肾脏免疫组化TGF- 1表达情况 (400) 照片; 图中, A-F分别为N组、 DM组、 LQ-L组、 LQ-M组、 LQ-H组、 AG组。 0009 图4 为实验例中各组大鼠肾组织 RAGE mRNA表达情况; 图5为实验例中各组大鼠肾组织 TGF- 1mRNA表达情况; 说 明 书 1/8 页 3 CN 108478534 A 3 图中, marker左侧为 -actin, marker右侧为RAGE mRNA, 1-6分别为N组、 DM组、 LQ-L组、 LQ-M组、 LQ-H组、。

9、 AG组。 具体实施方式 0010 下面结合实验例和附图对本发明内容作进一步的详细说明。 0011 实验例: 槲皮素脂质体的制备及其应用 1 材料与方法 1.1 实验材料与仪器 1.1.1 实验动物 SPF级65只雄性SD健康成年清洁大鼠, 体质量190220 g, 68周龄, 由桂林医学院动 物实验室 (SPF级) 提供, 在桂林医学院动物实验室饲养。 饲养条件: 室温1825, 保持空气 流通, 相对湿度5570%, 12h光照维持, 模拟昼夜循环, 每日清洗笼子换垫料保持其生活环 境清洁干燥。 0012 1.2 实验方法 1.2.1 槲皮素脂质体的制备 本实验用旋转蒸发法制备, 具体制备。

10、步骤如下: (1) 称取槲皮素: 胆固醇: 卵磷脂: 聚乙二醇4000按重量比6:4:13:1放入圆底烧瓶中; (2) 在负压旋转蒸发仪上加入按3:1体积比的三氯化甲烷及甲醇, 蒸干, 在瓶底形成黄 色膜状物; (4) 向烧瓶中加入去离子水, 0超声破碎, 悬液在4下水化24h, 然后再水浴超声仪处 理20min, 使之扩散形成平均粒径小于200nm的脂质体; (4) 旋转恒温负压蒸发仪上, 分装冷冻保存, 得到脂质体槲皮素, 同时制备空白脂质体, 方法同前, 配方中无槲皮素; (5) 脂质体槲皮素的理化分析: 在电子显微镜下检测脂质体槲皮素的大小, 高效液相色 谱法 (HPLC) 检测脂质体。

11、槲皮素载药量和包封率。 0013 1.2.2 动物模型建立 65 只SD 大鼠饲养1 周, 记录每只大鼠24 h 尿量。 采用随机数字表法选取8 只作为 正常组, 普通饲料喂养, 剩余全部食用高糖高脂饲料, 饲料配方参照文献13。 4 周后禁食 12 h, 腹腔注射STZ 40 mg/kg (临用前溶于0.1 mmol/L、 pH4.24.5 柠檬酸-柠檬酸钠缓冲 液中) 诱导2型糖尿病模型。 N 组注射同剂量的柠檬酸-柠檬酸钠缓冲液。 饲养3 d 后, 每日 清晨7:00 采尾静脉血检测血糖, 连续测3 次血糖均16.7 mmol/L 认为DM模型成功建立。 将成功建立2 型糖尿病模型的大鼠。

12、继续饲养2 周后留取24 h 尿液, 达到以下条件则定为 糖尿病肾病模型建立成功:(1) 空腹血糖持续16.7 mmol/L;(2) 尿白蛋白排泄率20 g/ min;(3) 尿量是健康状态时的1.5 倍; 最终52 只成模。 0014 1.2.3 动物模型分组 将成模的大鼠采用随机数字表法选取50 只成模大鼠分为以下5 组: DM 组, LQ-低 (LQ- L) 组、 中 (LQ-M) 组、 高 (LQ-H) 组, AG 组, 各组均为10 只。 按以下剂量给予相应的药物: LQ-L 组50 mg/(kgd), LQ-M 组150 mg/(kgd), LQ-H 组250 mg/(kgd), 。

13、AG 组用氨基胍 100mg/(kgd), DM 组和N 组用蒸馏水100 mg/(kgd)。 定于每日约10:00 灌胃。 每3 d 监 说 明 书 2/8 页 4 CN 108478534 A 4 测血糖和称体质量1 次。 实验期间DM 组和LQ-L 组大鼠各死亡2 只, LQ-H 组和AG 组各死 亡1 只, 统计数据时将死亡大鼠数据剔除。 0015 1.2.4 标本的收集 灌胃处理8 周后, 将大鼠单独置于代谢笼中, 采集每只大鼠24 h 尿液, 并以3 000 r/ min 离心5 min, 取上清液6 mL 用于测定24 h 尿微量白蛋白。 禁食12 h 后, 分别测定空腹 血糖和。

14、称体质量。 用10%水合氯醛腹腔注射麻醉, 快速腹主动脉取血45 mL, 取2 mL 测血尿 素氮 (BUN) 、 血肌酐 (Scr) , 剩余以12 000 r/min 4 离心10 min, 取上清备待测AGEs、 SOD、 MDA。 剖腹取双侧肾脏标本, 剔除肾周包膜, 并用0.9% NaCl 溶液洗净, 干净滤纸吸收水份, 称肾质量, 计算肾脏肥大指数 (KI) =双侧肾质量/体质量100%。 快速液氮保存左肾, -80 冰箱保存; 右肾从纵轴面对半切开, 4%多聚甲醛液固定, 石蜡包埋备用, 制备成3 m 厚切 片, 用于PAS 染色及免疫组化。 0016 1.2.5 生化指标的检测。

15、 罗氏血糖仪及配套试纸检测血糖, 全自动生化分析仪检测BUN、 Scr; 用分光光度计法检 测SOD、 MDA, 用ELISA 法检测血清AGEs表达水平和24h尿微量白蛋白, 严格按照试剂盒说明 书步骤进行操作, 并根据相应的检测方法及计算公式计算出标本中各指标的相应浓度。 0017 1.2.6 PAS 染色观察肾脏病理改变 前期准备的大鼠的糖尿病肾病蜡块, 蜡块切片脱蜡至水流水冲洗1%过碘酸溶液 10min流水冲洗吹干schiff氏液37孵育10min镜观流水冲洗苏木精染核 5min流水冲洗盐酸酒精分化10-15s流水冲洗弱氨水返蓝10-15s流水冲洗系 列酒精脱水-二甲苯I、 II分别透。

16、明10min左右树胶封固, 并在显微镜下观察肾小球、 肾小 管、 基质增生、 基膜厚度等情况。 0018 1.2.7 免疫组化法检测肾脏AGEs 及TGF- 1的表达 肾脏组织经石蜡包埋切片后, 在60 烤箱中烤片2 h, 以0.4%胃酶修复、 山羊血清封 闭、 PBS 冲洗, 一抗分别按以下浓度稀释 (AGEs 1 100, TGF- 1 1:200) , 二抗 (生物素标记的 羊抗兔IgG) 及三抗先后在37 下孵育20 min, DAB显色, 适时终止; 复染、 分化、 脱水、 风干、 封片。 阳性标本 (抗体公司提供的大鼠动脉粥样硬化斑块玻片) 作为阳性对照, PBS 作为阴 性对照,。

17、 光镜下阳性反应部位为棕黄色, 细胞核呈淡蓝色。 观察低倍视野 (100) 下反应情 况, 各例随机读取5 个高倍视野 (400) , 通过Image-Pro Plus6.0 获得阳性表达的平均光 密度 (MOD) 。 0019 1.2.8 逆转录-聚合酶链反应 (RT-PCR) 法检测肾脏AGEs mRNA及TGF- 1mRNA的表 达 根据柱式法提取肾组织总RNA, 紫外分光光度计检测RNA浓度及纯度后, 将总RNA根据 TaKaRa 逆转录说明书逆转录成cDNA后进行扩增, -actin 为内参。 PCR 扩增反应系统包括 25 L Premix Taq, cDNA 2 L, 上、 下游。

18、引物 (10 mol/L) 各2 L, RNase-Free Water 19 L, 共50 L。 PCR反应条件为: 94 预变性1 min; 94 变性30 s, 退火30 s, 72 延伸 30min, 循环30次数左右; 72 延伸1 min。 取PCR产物6 L用浓度为1.5%琼脂糖凝胶 (含0.5 mg/L溴化乙啶) 电泳鉴定, 用SensiAnsys凝胶成像系统摄影并定量分析, 计算目的基因与内 参基因光密度值的比值。 0020 1.2.8 统计学方法 说 明 书 3/8 页 5 CN 108478534 A 5 采用SPSS 18.0 进行分析, 计量资料以均数标准差 () 表。

19、示, 多个样本均 数的比较采用单因素方差分析, 多重比较采用LSD-t 检验, P 0.05 为差异有统计学意 义。 0021 2 结果 2.1 槲皮素脂质体的理化性质 槲皮素脂质体在显微镜下观察其粒径分布在 (128.818.05) nm, 高效液相色谱法检测 其载药量约为 (587) %, 包封率为 (87.12.7) %。 0022 2.2 各组大鼠血糖、 体质量、 KI 的比较 与N 组比较, DM、 LQ-L、 LQ-M、 LQ-H 和AG 组的血糖显著升高, 体质量明显降低, KI 增大 (均P 0.05) 。 与DM组对比, LQ-L 组血糖差异无统计学意义, LQ-M、 LQ-。

20、H 和AG 组血糖降低 (均P 0.05) ; 与DM 组比较, LQ 各剂量组体质量增加, 血糖、 KI 降低 (均P 0.05) , 见表1; 表1 各组大鼠空腹血糖、 体质量及KI 的比较 () P0.01; a与N组比较, P0.01; b与DM组比较, P0.05。 0023 2.3 各组大鼠生化指标的比较 与N 组比较, DM、 LQ-L、 LQ-M、 LQ-H、 AG 组BUN、 Scr、 MDA含量、 血清AGEs、 24 h 尿微量白 蛋白水平均增高, 血清中SOD活性水平明显降低 (均P 0.05) ; 与DM组比较, LQ-L、 LQ-M、 LQ- H、 AG 组BUN、。

21、 Scr、 MDA含量、 血清AGEs、 24h尿微量白蛋白降低, 血清中SOD活性水平明显升 高, 其中以LQ-M组改善最为明显 (均P 0.05) , 见表2、 表3。 0024表2 各组大鼠BUN、 Scr、 MDA、 SOD 的比较 () 说 明 书 4/8 页 6 CN 108478534 A 6 P0.01; a与N组比较, P0.01; b与DM组比较, P0.05。 0025表3 各组大鼠血清AGEs、 24h尿微量白蛋白 的比较 () P0.01; a与N组比较, P0.01; b与DM组比较, P0.05。 0026 2.4 各组大鼠肾脏的病理改变 PAS 染色显示N组肾小。

22、管结构、 肾小球基底膜正常, 系膜基质均匀; DM 组见肾小球结构 紊乱, 肾小球体积明显萎缩, 肾小球系膜区基质增多, 基底膜增厚; LQ 各剂量组肾脏的上述 说 明 书 5/8 页 7 CN 108478534 A 7 病理改变较DM 组有所改善, 以中剂量组改善最明显, 见图1。 0027 2.5 免疫组化检测各组大鼠肾脏AGEs和TGF- 1蛋白的表达情况 免疫组化结果显示, AGEs和TGF- 1在N 组大鼠肾小管有一定程度的表达; 与N 组比较, DM 组表达增多, 肾小管上皮细胞包膜和 (或) 胞浆呈棕黄色强阳性; 与DM 组比较, LQ 各剂 量组表达减少, 以中剂量组减少最明。

23、显, 且中剂量组与AG 组效果类似, AGEs表达见图2、 TGF- 1表达见图3, 表4。 0028表4 各组大鼠肾脏免疫组化AGEs蛋白和TGF- 1蛋白表达的情况 () P0.01; a与N组比较, P0.01; b与DM组比较, P0.05。 0029 2.6 RT-PCR法检测肾脏AGEs mRNA及TGF- 1mRNA的表达情况 RT-PCR 结果显示, 与N 组比较, DM 组RAGE mRNA和TGF- 1mRNA表达量增加明显; 与DM 组比较, LQ 各剂量组表达减少, 以中剂量组减少最明显, 且中剂量组与AG 组效果类似, RAGE mRNA表达见图4, TGF- 1mR。

24、NA表达见图5, 表5。 0030 表5 各组大鼠肾脏AGEs mRNA和TGF- 1mRNA表达情况 说 明 书 6/8 页 8 CN 108478534 A 8 P0.01; a与N组比较, P0.01; b与DM组比较, P0.05。 0031 3 槲皮素脂质体对血糖、 AGEs和TGF- 1的影响 DN的发病因素尚未完全研究清楚, 其中公认的高危因素是持续的高血糖。 槲皮素属天 然黄酮类化合物, 因其具有抗氧化、 降血糖、 降血脂等作用受到广泛学者的青睐研究。 有研 究观察发现DM大鼠经Que治疗后, DM大鼠的尿蛋白排泄量及AGEs含量明显下降。 本实验中经 槲皮素脂质体治疗后大鼠肾。

25、小球中AGEs和RAGE的表达明显减少, 提示槲皮素脂质体可以抑 制肾脏非酶糖基化终产物及其受体的生成, 这与相关报道结果相一致。 0032 曾云先等文献报道, 腹腔注射Que治疗组大鼠与正常组、 模型组相比较, Que能显著 降低DM大鼠血糖、 血脂、 胰岛素水平, 但对正常组大鼠无显著影响, 并且还发现疗程越久, 其 降糖效果越好。 Gomes等以STZ诱导的糖尿病小鼠模型, 经Que治疗4周发现其蛋白尿、 尿酸减 少和血糖的降低, 减缓肾组织的毒性进展。 其他相关研究也表明槲皮素能显著降低STZ所诱 导的DM大鼠的血糖水平, 具有降糖作用, 其作用机制与抗氧化作用、 清除自由基、 抗纤维。

26、化 等有关。 DN诊断的金标准之一是24h尿微量白蛋白, 减少尿微量白蛋白能够延缓DN的发生发 展。 本实验中发现LQ治疗后DM大鼠的血糖降低, 而且BUN、 Scr、 24h尿微量白蛋白、 KI等指标 均得到改善, 说明LQ复合体也能有效改善DM肾功能, 达到减轻肾脏损害的作用, 其作用机制 可能与抑制蛋白激酶C (PKC) 活性、 醛糖还原酶活性、 活性氧簇 (ROS) 等有关。 0033 也有研究报道, 槲皮素可降低线粒体中超氧化物的生成, 同时通过稳定线粒体膜 和清除已经生成的超氧化物, 从而降低线粒体中超氧化物水平, 可提高机体抗氧化能力、 抑 说 明 书 7/8 页 9 CN 10。

27、8478534 A 9 制TGF- 1的信号通路, 来发挥其对肾功能的保护作用。 Kim等在鼠肾小球细胞的观察中证 实, 由于Que结构不同, 可通过激活不同的通路 (PKA、 PKC) 来发挥其抗氧化活性, 进而抑制 TGF- 1引起的胶原蛋白的产生。 槲皮素抗纤维化作用与其抗氧化活性密切相关。 Kedziora 等曾报道DM大鼠尿蛋白的排泄量与MDA的含量呈正相关关系。 本实验中, 在DM组大鼠中抗氧 化酶SOD活性明显下降, 而MDA含量明显升高, 肾脏组织TGF- 1蛋白及TGF- 1mRNA表达升高, 提示糖尿病状态下肾脏发生明显氧化应激, 经槲皮素脂质体治疗后, DM大鼠肾脏SOD。

28、活性明 显提高, MDA含量显著下降, 肾脏组织TGF- 1蛋白及TGF- 1mRNA表达下降, 表明槲皮素脂质 体可保护DM大鼠的抗氧化活性、 清除自由基、 抑制脂质过氧化反应, 减少TGF- 1蛋白及基因 的表达, 从而延缓DM大鼠肾脏病变的发生发展。 此外, DM大鼠肾组织AGEs、 RAGE mRNA 表达 水平均有明显增高, 与孙风娟等研究结果相似; 而LQ各剂量组中表达显著下降, 其中又以中 剂量组下降最为明显, 表明槲皮素脂质体也有可能通过抑制AGEs下调RAGE及其蛋白的表达 以延缓DN的发生发展。 0034 4. 结论 (1) 槲皮素脂质体能够在一定程度上减轻糖尿病肾病的形态。

29、病理学改变, 改善STZ性 DM大鼠的一般状况, 有降血糖的作用; (2) 槲皮素脂质体通过有效减少BUN、 Scr、 24h尿微量白蛋白、 肾组织中AGEs, 下调RAGE mRNA的表达, 即通过抑制蛋白质非酶糖基化反应, 干预糖尿病肾病的发生发展; (3) 槲皮素脂质体通过减少MDA的含量, 增加SOD的氧化活性等抗氧化指标, 抑制炎性 细胞因子的表达, 从而减少肾组织TGF- 1蛋白及基因表达, 对糖尿病大鼠肾病具有保护作 用。 0035 本实验为槲皮素脂质体的临床应用研究打下基础, 同时也对探索DM的临床中药治 疗提供新的思路和理论依据。 说 明 书 8/8 页 10 CN 108478534 A 10 图1 说 明 书 附 图 1/4 页 11 CN 108478534 A 11 图2 说 明 书 附 图 2/4 页 12 CN 108478534 A 12 图3 图4 说 明 书 附 图 3/4 页 13 CN 108478534 A 13 图5 说 明 书 附 图 4/4 页 14 CN 108478534 A 14 。

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