就减少的镉转运进行修饰的转基因植物、衍生产物和相关方法.pdf

本发明部分涉及转基因植物，包括转基因烟草植物和衍生种子，其进行遗传修饰以通过减少HMA相关转运蛋白的表达水平，阻碍从转基因植物的根系到气生部分的镉(Cd)转运。本发明包括经遗传修饰以稳定表达编码RNAi多核苷酸的RNAi构建体的转基因烟草植物，所述RNAi多核苷酸使得内源NtHMA RNA变体的降解成为可能。在转基因植物中NtHMA转运蛋白表达的减少导致叶片中基本上减少的镉(Cd)含量。通过并入衍生自转基因烟草植物的叶可以产生基本上不含或在Cd含量中基本上减少的各种消费品，所述转基因烟草植物进行修饰以减少NtHMA转运蛋白的表达。

1.  用于减少植物的至少部分中的Cd水平的方法，包括通过减少重金属ATP酶(HMA)基因表达和/或HMA基因产物活性来修饰所述植物，其中所述修饰或未修饰形式的HMA基因选自：
包括这样的序列或由这样的序列组成且编码具有P1B型ATP酶活性的NtHMA转运蛋白的基因，所述序列与SEQ ID NO：1具有至少70％序列同一性；
包括这样的序列或由这样的序列组成的基因，所述序列与SEQ ID NO：3具有至少70％序列同一性；
包括这样的序列或由这样的序列组成的基因，所述序列与SEQ ID NO：47具有至少70％序列同一性；
包括编码这样的多肽的序列或由编码这样的多肽的序列组成的基因，所述多肽与SEQ ID NO：2具有至少70％序列同一性，其中所述多肽是具有P1B型ATP酶活性的NtHMA转运蛋白；和
包括编码这样的多肽的序列或由编码这样的多肽的序列组成的基因，所述多肽与SEQ ID NO：49具有至少70％序列同一性，其中所述多肽是具有P1B型ATP酶活性的NtHMA转运蛋白。

2.  用于减少植物的至少部分中的Cd水平的方法，包括减少植物中重金属ATP酶(HMA)基因表达和/或HMA基因产物活性，其中所述修饰或未修饰形式的HMA基因编码与SEQ ID NO：2或49具有至少70％序列同一性或至少95％序列同一性的多肽，并且其中所述多肽具有P1B型ATP酶活性。

3.  权利要求1或权利要求2的方法，其中减少HMA基因表达和/或HMA基因产物活性是通过对HMA基因的诱变的修饰而实现的。

4.  权利要求3的方法，其中对HMA基因的诱变是通过定点诱变、寡核苷酸指导的诱变、化学诱导的诱变或辐射诱导的诱变而实现的。

5.  权利要求1或权利要求2的方法，其中减少HMA基因表达和/或HMA基因产物活性是通过对HMA基因的失活的修饰而实现的。

6.  权利要求5的方法，其中失活是通过将转座子和/或插入序列(IS)元件引入植物的基因组内、通过Targeting Induced Local Lesions IN Genomics("TILLING")或通过引入靶RNA特异性核酶而实现的。

7.  权利要求1或权利要求2的方法，其中减少HMA基因表达和/或HMA基因产物活性是通过引起RNAi构建体的表达而减少所述植物中的NtHMA mRNA水平而实现的。

8.  权利要求7的方法，其中所述RNAi构建体包括：
与SEQ ID NO：3或47的部分具有至少90％序列同一性的第一序列；
第二序列；和
以与所述第一序列相同的定向放置、具有所述第一序列的反向互补序列的第三序列，
其中所述第二序列放置在所述第一序列和所述第三序列之间，并且所述第二序列与所述第一序列和所述第三序列可操作地连接。

9.  上述权利要求中任一项的方法，还包括在修饰植物之后，就减少的HMA基因表达和/或HMA基因产物活性进行筛选的步骤。

10.  权利要求9的方法，包括就减少的Cd转运和/或降低的Cd水平进行筛选。

11.  上述权利要求中任一项的方法，其中所述植物是烟草。

12.  根据权利要求1－11中任一项获得的或可获得的修饰的植物，并且由于重金属ATP酶(HMA)基因表达和/或HMA基因产物活性的减少，与未修饰的植物的部分相比，所述修饰的植物在其至少部分中具有降低的Cd水平。

13.  权利要求12的修饰的植物，其中叶具有降低的Cd水平。

14.  权利要求12或权利要求13的修饰的植物，其中所述植物是烟草。

15.  可消费烟草产品，其并入从权利要求14的修饰的植物中收获的叶，其中由于重金属ATP酶(HMA)基因表达和/或HMA基因产物活性的减少，与未修饰的植物的叶相比，所述叶具有降低的Cd水平。

16.  权利要求15的产品，其中Cd减少％是至少约5％、10％、15％、20％、25％、30％、35％、40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％或99％的值。

17.  权利要求13或权利要求14的产品，其中所述Cd含量是约0.01至约0.05ppm、约0.01至约0.1ppm、约0.01至约0.5ppm、约0.01至约1.0ppm、或约0.01至约5ppm的值。

就减少的镉转运进行修饰的转基因植物、衍生产物和相关方法
本申请是申请日为2008年12月11日、申请号为200880125345.2、发明名称为“就减少的镉转运进行修饰的转基因植物、衍生产物和相关方法”的发明专利申请的分案申请。
技术领域
组合物、表达载体、多核苷酸、多肽、转基因植物、转基因细胞系和转基因种子、以及制备且使用这些实施方案以产生可以减少重金属转运到气生部分内的各种植物的方法。
与相关申请的交叉参照
本申请要求于2007年12月13日提交的美国临时专利申请号60/996,982的优先权，所述美国临时专利申请号的完整内容通过引用在此合并。
发明背景
植物通过各种转运机制从其环境中吸收金属离子底物而获得必需重金属，例如Zn、Ni和Cu，所述转运机制由在根细胞和各种维管组织的表面上表达的膜转运蛋白介导。分类为P型ATP酶例如P1B型ATP酶的转运蛋白，是通过利用从放能ATP水解反应释放的能量转移带正电的底物穿过质膜的转运蛋白。P1B型ATP酶也称为重金属ATP酶(“HMA”)或CPx型ATP酶。HMA已通过底物特异性分成2个亚类，Cu/Ag和Zn/Co/Cd/Pb组。在植物中表征的第一种P1B型ATP酶是从拟南芥属(Arabidopsis)中克隆的AtHMA4。通过HMAs的底物特异性并不严格限制于必需金属的转运，因为几种非必需金属 可以无差别地识别为底物，导致许多非必需金属例如Cd、Pb、As和Hg的累积。
发明概述
本发明的多个方面涉及用于产生转基因植物包括转基因烟草植物的组合物和方法，所述转基因植物经遗传修饰以通过减少HMA家族的转运蛋白的表达水平而阻碍从根系到叶片(leaf lamina)的镉(Cd)转运。HMA同系物(“NtHMA”)已在烟草中得到鉴定，其可以用于构建多种RNAi构建体，编码可以促进内源NtHMA RNA转录物降解的目的NtHMA RNAi多核苷酸。可以表达根据本发明的NtHMA RNAi多核苷酸的转基因植物可以用于减少NtHMA RNA转录物的稳态水平，并且因此用于减少可用于转运金属穿过细胞膜的功能活性NtHMA转运蛋白的数目。
本发明的其他方面涉及包括多种NtHMA RNAi构建体的重组表达载体，经遗传修饰以内源表达NtHMA RNAi多核苷酸的转基因植物和种子，衍生自转基因植物和种子的细胞系，和并入衍生自根据所公开方法产生的转基因植物的叶的消费品。
根据本发明，在一个方面提供了选自下述的经分离的多核苷酸：
包括这样的序列或由这样的序列组成且编码具有P1B型ATP酶活性的NtHMA转运蛋白的多核苷酸，所述序列与SEQ ID NO：1具有至少50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％或99％序列同一性，例如至少70％序列同一性；
包括这样的序列或由这样的序列组成的多核苷酸，所述序列与SEQ ID NO：3具有至少50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％或99％序列同一性，例如至少70％序列同一性；
包括这样的序列或由这样的序列组成的多核苷酸，所述序列与SEQ ID NO：47具有至少50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、 85％、90％、95％、96％、97％、98％或99％序列同一性，例如至少70％序列同一性；
包括编码这样的多肽的序列或由编码这样的多肽的序列组成的多核苷酸，所述多肽与SEQ ID NO：2具有至少50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％或99％序列同一性，例如至少70％序列同一性，其中所述多肽是具有P1B型ATP酶活性的NtHMA转运蛋白；和
包括编码这样的多肽的序列或由编码这样的多肽的序列组成的多核苷酸，所述多肽与SEQ ID NO：49具有至少50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％或99％序列同一性，例如至少70％序列同一性，其中所述多肽是具有P1B型ATP酶活性的NtHMA转运蛋白。
本发明的经分离的多核苷酸可以在高严格条件下与这样的核酸分子杂交，所述核酸分子包括SEQ ID NO：1、3或47或SEQ ID NO：1、3或47的互补序列或由SEQ ID NO：1、3或47或SEQ ID NO：1、3或47的互补序列组成。
本发明的另一个方面是包括如本文所定义的经分离的多核苷酸的表达载体。
还提供的是通过这样的方法制备的转基因植物，所述方法包括引入如本文所定义的经分离的多核苷酸或如本文所定义的表达载体。转基因植物可以是例如烟草植物。
进一步提供的是通过这样的方法制备的细胞系，所述方法包括引入如本文所定义的经分离的多核苷酸或如本文所定义的表达载体。
在一个进一步的方面，提供了并入从如本文所定义的转基因植物中收获的叶的可消费烟草产品(例如但不限于可抽吸物品(smoking article)或无烟烟草制品)。
在另一个方面，提供了能够抑制它与之相对应的NtHMA信使RNA表达的NtHMA RNAi构建体，所述构建体包括：
与SEQ ID NO：3或47的部分具有至少50％、55％、60％、65％、 70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％或99％序列同一性，例如至少70％序列同一性的第一序列；
第二序列；和
以与第一序列相同的定向放置的、具有第一序列的反向互补序列的第三序列，
其中第二序列放置在第一序列和第三序列之间，并且第二序列与第一序列和第三序列可操作地连接。
在NtHMA RNAi构建体中：
(a)第一序列可以与选自下述一个或多个的序列具有至少50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％或99％序列同一性，例如至少95％序列同一性：外显子1(SEQ ID NO：5)、外显子1(SEQ ID NO：5)的片段、外显子2(SEQ ID NO：7)、外显子2(SEQ ID NO：7)的片段、外显子3(SEQ ID NO：9)、外显子3(SEQ ID NO：9)的片段、外显子4(SEQ ID NO：11)、外显子4(SEQ ID NO：11)的片段、外显子5(SEQ ID NO：13)、外显子5(SEQ ID NO：13)的片段、外显子6(SEQ ID NO：15)、外显子6(SEQ ID NO：15)的片段、外显子7(SEQ ID NO：17)、外显子7(SEQ ID NO：17)的片段、外显子8(SEQ ID NO：19)、外显子8(SEQ ID NO：19)的片段、外显子9(SEQ ID NO：21)、外显子9(SEQ ID NO：21)的片段、外显子10(SEQ ID NO：23)、外显子10(SEQ ID NO：23)的片段、外显子11(SEQ ID NO：25)、和外显子11(SEQ ID NO：25)的片段；
(b)第二序列可以与选自下述一个或多个的序列具有至少50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％或99％序列同一性，例如至少95％序列同一性：内含子1(SEQ ID NO：4)、内含子1(SEQ ID NO：4)的片段、内含子2(SEQ ID NO：6)、内含子2(SEQ ID NO：6)的片段、内含子3(SEQ ID NO：8)、内含子3(SEQ ID NO：8)的片段、内含子4(SEQ ID NO：10)、内含子4(SEQ ID NO：10)的片段、内含子 5(SEQ ID NO：12)、内含子5(SEQ ID NO：12)的片段、内含子6(SEQ ID NO：14)、内含子6(SEQ ID NO：14)的片段、内含子7(SEQ ID NO：16)、内含子7(SEQ ID NO：16)的片段、内含子8(SEQ ID NO：18)、内含子8(SEQ ID NO：18)的片段、内含子9(SEQ ID NO：20)、内含子9(SEQ ID NO：20)的片段、内含子10(SEQ ID NO：22)、内含子10(SEQ ID NO：22)的片段、内含子11(SEQ ID NO：24)、内含子11(SEQ ID NO：24)的片段、内含子12(SEQ ID NO：26)、和内含子12(SEQ ID NO：26)的片段；
(c)第三序列可以与选自下述一个或多个的序列具有至少50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％或99％序列同一性，例如至少95％序列同一性：SEQ ID NO：27、SEQ ID NO：27的片段、SEQ ID NO：28、SEQ ID NO：28的片段、SEQ ID NO：29、SEQ ID NO：29的片段、SEQ ID NO：30、SEQ ID NO：30的片段、SEQ ID NO：31、SEQ ID NO：31的片段、SEQ ID NO：32、SEQ ID NO：32的片段、SEQ ID NO：33、SEQ ID NO：33的片段、SEQ ID NO：34、SEQ ID NO：34的片段、SEQ ID NO：35、SEQ ID NO：35的片段、SEQ ID NO：36、SEQ ID NO：36的片段、SEQ ID NO：37、和SEQ ID NO：37的片段；
(d)第一序列可以包括SEQ ID NO：38，第二序列可以包括SEQ ID NO：39，并且第三序列可以包括SEQ ID NO：40；
(e)第一序列可以包括SEQ ID NO：42，第二序列可以包括SEQ ID NO：43，并且第三序列可以包括SEQ ID NO：44；或
(f)可以应用(a)、(b)、(c)、(d)和(e)中的一个或两个或三个。
本发明还涵盖包括启动子的表达载体，所述启动子放置在如本文所定义的NtHMA RNAi构建体的上游且与之可操作地连接。启动子可以选自：组织特异性启动子、诱导型启动子和组成型启动子。
在NtHMA RNAi构建体中，第一个和第二序列可以各自具有选 自下述的长度：20-30个核苷酸、30-50个核苷酸、50-100个核苷酸、100-150个核苷酸、150-200个核苷酸、200-300个核苷酸、300-400个核苷酸、400-500个核苷酸、500-600个核苷酸、和600-700个核苷酸。
本发明的一个进一步方面是包括如本文所定义的RNAi(或NtHMA RNAi构建体或表达载体)的转基因植物，其中与非转基因对应物中的部分相比较，所述转基因植物在植物的至少部分中具有减少的Cd水平。转基因植物可以是例如烟草植物。
还提供的是并入从包括如本文所定义RNAi的转基因植物中收获的叶的可消费烟草产品(例如但不限于可抽吸物品或无烟烟草制品)。
产品可以具有至少约5％、10％、15％、20％、25％、30％、35％、40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％或99％的％Cd减少值。
产品可以具有值为约0.01至约0.05ppm、约0.01至约0.1ppm、约0.01至约0.5ppm、约0.01至约1.0ppm、或约0.01至约5ppm的Cd含量。
在本发明的另一个方面，提供的是用于减少植物的至少部分中的Cd水平的方法，其包括：
通过引起RNAi构建体的表达减少植物中的NtHMA mRNA水平。
对于这种方法，RNAi构建体可以是如本文所定义的，并且特别可以包括：
与SEQ ID NO：3或47的部分具有至少50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％或99％序列同一性，例如至少90％序列同一性的第一序列；
第二序列；和
以与第一序列相同的定向放置、具有第一序列的反向互补序列的第三序列，
其中第二序列放置在第一序列和第三序列之间，并且第二序列与第一序列和第三序列可操作地连接。
根据该方法，在RNAi构建体表达后，植物的部分可以具有减少至少约5％、10％、15％、20％、25％、30％、35％、40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％或99％的Cd含量。
另外或备选地，在RNAi构建体表达后，植物的部分可以具有约0.01至约0.05ppm、约0.01至约0.1ppm、约0.01至约0.5ppm、约0.01至约1.0ppm、或约0.01至约5ppm的Cd含量。
根据本发明的一个进一步的方面，提供的是与SEQ ID NO：2或49具有至少50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％或99％序列同一性，例如至少70％序列同一性或至少95％序列同一性的基本上纯化的多肽，其中所述多肽是具有P1B型ATP酶活性的NtHMA转运蛋白。
与如本文所定义的多肽特异性结合的抗体也由本发明涵盖，所述多肽例如包括SEQ ID NO：2或49或由SEQ ID NO：2或49组成。
下文描述了本发明的进一步和多个方面(在本文中也称为“实施方案”)。
附图简述
图1是包括11个外显子的NtHMA基因组克隆的示意图。
图2A举例说明用于构建NtHMA RNAi表达载体的示例性亚克隆策略，所述NtHMA RNAi表达载体使得目的NtHMA RNAi多核苷酸的组成性表达成为可能，如实施例2中描述的。
图2B举例说明由NtHMA RNAi多核苷酸内的分子内、碱基配对相互作用形成的假定双链RNA双链体(作为“茎-环-茎”结构)，所述NtHMA RNAi多核苷酸作为由示例性NtHMA RNAi构建体转录的产物产生。
图3A显示用于产生目的NtHMA RNAi多核苷酸的示例性RNAi序列，NtHMA(660-915)，如实施例2中描述的。
图3B-3D显示在代表3个变种的多个第一代(T0)转基因品系的 叶片中的Cd减少，所述转基因品系已进行遗传修饰以表达NtHMA RNAi多核苷酸(660-915)，如实施例5中描述的。
图4A显示用于产生目的NtHMA RNAi多核苷酸的示例性RNAi序列，NtHMA(1382-1584)，如实施例3中描述的。
图4B-4D显示在代表3个变种的多个第一代(T0)转基因品系的叶片中的Cd减少，所述转基因品系已进行遗传修饰以表达NtHMA RNAi多核苷酸(1382-1584)，如实施例5中描述的。
图5A-C显示在多个第一代(T0)转基因品系中的标准化NtHMA RNA转录物水平，所述转基因品系已进行遗传修饰以表达目的NtHMA RNAi多核苷酸，如通过叶片提取物的定量实时PCR分析测定的，如实施例6中描述的。
图6显示在多个第一代(T0)转基因品系的叶片和根之间的Cd和Zn分布，所述转基因品系已进行遗传修饰以表达目的NtHMA RNAi多核苷酸，如表2中呈现的和实施例7中描述的。
图7显示在多个第一代(T0)转基因品系的树皮(“B”)、叶片(“L”)、木髓(“P”)和根(“R”)组织中的Cd分布，所述转基因品系已进行遗传修饰以表达目的NtHMA RNAi多核苷酸，如表3中呈现的和实施例8中描述的。
图8显示在多个第二代(T1)转基因品系的叶片(“L”)和根(“R”)之间的Cd分布，所述转基因品系已进行遗传修饰以表达目的NtHMA RNAi多核苷酸，如实施例9中描述的。
发明详述
I.烟草NtHMA基因和基因产物的分离
图1是包括11个外显子的NtHMA基因组克隆的示意图，所述外显子编码与HMA转运蛋白家族相关的重金属转运蛋白。实施例1进一步描述了NtHMA基因组克隆(_HO-18-2)和4个NtHMA cDNA克隆的鉴定。下表1提供了与在NtHMA基因组克隆(_HO-18-2)内作图的外显子和内含子亚区相对应的核苷酸位置。
A.NtHMA多核苷酸
术语“多核苷酸”指长度包括至少10个碱基的核苷酸聚合物。多核苷酸可以是DNA、RNA或DNA/RNA杂交物，包括核糖核苷酸、脱氧核糖核苷酸、脱氧核糖核苷酸和核糖核苷酸的组合、以及碱基和/或修饰的组合，包括尿嘧啶、腺嘌呤、胸腺嘧啶、胞嘧啶、鸟嘌呤、肌苷、黄嘌呤、次黄嘌呤、异胞嘧啶和异鸟嘌呤。该术语包括单链和双链形式的DNA或RNA。术语“DNA”包括基因组DNA、cDNA、化学合成的DNA、PCR扩增的DNA及其组合/等价物。术语“经分离的多核苷酸”指与起源任何的基因组不邻接、或从天然背景中分离的多核苷酸。该术语包括任何重组多核苷酸分子，例如NtHMA RNAi构建体、NtHMA RNAi表达载体、NtHMA基因组克隆及其片段和变体。
如图1中所示，指定为SEQ ID NO：1的NtHMA基因组克隆包括：内含子1(SEQ ID NO:4)、外显子1(SEQ ID NO:5)、内含子2(SEQ ID NO:6)、外显子2(SEQ ID NO:7)、内含子3(SEQ ID NO:8)、外显子3(SEQ ID NO:9)、内含子4(SEQ ID NO:10)、外显子4(SEQ ID NO:11)、内含子5(SEQ ID NO:12)、外显子5(SEQ ID NO:13)、内含子6(SEQ ID NO:14)、外显子6(SEQ ID NO:15)、内含子7(SEQ ID NO:16)、外显子7(SEQ ID NO:17)、内含子8(SEQ ID NO:18)、外显子8(SEQ ID NO:19)、内含子9(SEQ ID NO:20)、外显子9(SEQ ID NO:21)、内含子10(SEQ ID NO:22)、外显子10(SEQ ID NO:23)、内含子11(SEQ ID NO:24、外显子11(SEQ ID NO:25)、和内含子12(SEQ ID NO:26)。关于序列，参见下文序列表。本发明的多个实施方案涉及代表在NtHMA基因座处分离的基因组片段的经分离的多核苷酸，包括SEQ ID NO：1、SEQ ID NO：1的片段或其变体。多个实施方案涉及经分离的NtHMA多核苷酸变体，其包括与SEQ ID NO：1或SEQ ID NO：1的片段至少50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、 90％、95％、96％、97％、98％和99％序列同一性。
多个实施方案涉及具有互补于NtHMA多核苷酸变体的序列的经分离的多核苷酸，所述变体包括与SEQ ID NO：1或SEQ ID NO：1的片段至少50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％和99％序列同一性。多个实施方案涉及这样的经分离的多核苷酸，其可以在中至高严格条件下与多核苷酸特异性杂交，所述多核苷酸包括SEQ ID NO：1或SEQ ID NO：1的片段。
多个实施方案涉及NtHMA cDNA(克隆P6663)的经分离的多核苷酸，其包括SEQ ID NO：3、SEQ ID NO：3的片段或其变体。多个实施方案涉及经分离的NtHMA多核苷酸变体，其包括与SEQ ID NO：3或SEQ ID NO：3的片段至少70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％和99％序列同一性。多个实施方案涉及经分离的NtHMA多核苷酸变体，其包括与SEQ ID NO：3或SEQ ID NO：3的片段至少70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％和99％序列同一性，并且其中T已由U替换(例如RNA)。多个实施方案涉及这样的经分离的多核苷酸，其可以在中至高严格条件下与多核苷酸特异性杂交，所述多核苷酸包括SEQ ID NO：3或SEQ ID NO：3的片段。多个实施方案涉及具有互补于NtHMA多核苷酸变体的序列的经分离的多核苷酸，所述变体包括与SEQ ID NO：3或SEQ ID NO：3的片段至少70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％和99％序列同一性。
多个实施方案涉及NtHMA cDNA(克隆P6643)的经分离的多核苷酸，其包括SEQ ID NO：47、SEQ ID NO：47的片段或其变体。多个实施方案涉及经分离的NtHMA多核苷酸变体，其包括与SEQ ID NO：47或SEQ ID NO：47的片段至少70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％和99％序列同一性。多个实施方案涉及经分离的NtHMA多核苷酸变体，其包括与SEQ ID NO：47或SEQ ID NO：47的片段至少70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、 98％和99％序列同一性，并且其中T已由U替换(例如RNA)。多个实施方案涉及这样的经分离的多核苷酸，其可以在中至高严格条件下与多核苷酸特异性杂交，所述多核苷酸包括SEQ ID NO：47或SEQ ID NO：47的片段。多个实施方案涉及具有互补于NtHMA多核苷酸变体的序列的经分离的多核苷酸，所述变体包括与SEQ ID NO：47或SEQ ID NO：47的片段至少70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％和99％序列同一性。
多个实施方案涉及与NtHMA多核苷酸和NtHMA多肽同源的生物聚合物(“NtHMA同系物”)，其可以从不同植物物种中鉴定。例如，NtHMA同系物可以通过筛选衍生自不同目的植物物种的合适核酸文库在实验上分离。备选地，NtHMA同系物可以利用衍生自NtHMA多核苷酸和/或NtHMA多肽的序列通过筛选包含来自一个或多个物种的序列的基因组数据库得到鉴定。此类基因组数据库可对于许多物种容易地获得(例如在环球网(www)上在tigr.org/tdb；genetics.wisc.edu；stanford.edu/.about.ball；hiv-web.lan1.gov；ncbi.nlm.nig.gov；ebi.ac.uk；和pasteur.fr/other/biology处)。例如，简并寡核苷酸序列可以通过“回译”由NtHMA多肽片段获得。NtHMA多核苷酸可以可以用作探针或引物以鉴定/扩增相关序列，或例如通过PCR或通过其他众所周知的技术(例如，参见PCR Protocols：A Guide to Methods and Applications，Innis等人，编辑，Academic Press，Inc.(1990))获得关于相关NtHMAs的全长序列。
B.NtHMA多肽
术语“NtHMA多肽”指包括指定为SEQ ID NO：2的氨基酸序列的多肽；与SEQ ID NO：2具有基本同源性(即序列相似性)或序列同一性的多肽；SEQ ID NO：2的片段；及其变体。NtHMA多肽包括与SEQ ID NO：2具有足够或基本同一性或相似性程度并且可以通过转运重金属穿过细胞膜起作用的序列。
NtHMA多肽包括通过引入任何类型的改变(例如，氨基酸的插 入、缺失或置换；糖基化状态中的改变；影响重折叠或异构化、三维结构或自结合状态的改变)而产生的变体，其可以是有意改造的或天然分离的。NtHMA多肽可以为线性形式的或使用已知方法环化的(例如H.U.Saragovi，等人，Bio/Technology 10，773(1992)；和R.S.McDowell，等人，J.Amer.Chem.Soc.114:9245(1992)，两者都通过引用合并入本文)。NtHMA多肽包括至少8至10个、至少20个、至少30个或至少40个邻接氨基酸。
多个实施方案涉及由多核苷酸序列SEQ ID NO：1编码的经分离的NtHMA多肽，包括SEQ ID NO：2、SEQ ID NO：2的片段或其变体。多个实施方案涉及经分离的NtHMA多肽变体，包括与SEQ ID NO：2或SEQ ID NO：2的片段至少70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％和99％序列同一性。
多个实施方案涉及经分离的NtHMA多肽(克隆P6663)，包括SEQ ID NO：2、SEQ ID NO：2的片段或其变体。多个实施方案涉及经分离的NtHMA多肽变体，包括与SEQ ID NO：2或SEQ ID NO：2的片段至少70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％和99％序列同一性。
多个实施方案涉及经分离的NtHMA多肽(克隆P6643)，包括SEQ ID NO：49、SEQ ID NO：49的片段或其变体。多个实施方案涉及经分离的NtHMA多肽变体，包括与SEQ ID NO：49或SEQ ID NO：49的片段至少70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％和99％序列同一性。
II.用于减少NtHMA基因表达和/或NtHMA介导的转运蛋白活性的组合物和相关方法
可以下调NtHMA和NtHMA变体的表达和/或活性的合适拮抗性组合物包括可以干扰一种或多种内源NtHMA基因的转录的序列特异性多核苷酸；可以干扰NtHMA RNA转录物的翻译的序列特异性多核苷酸(例如，dsRNA、siRNA、核酶)；可以干扰NtHMA的蛋白质 稳定性、NtHMA的酶促活性、和/或NtHMA就底物和/或调节蛋白质而言的结合活性的序列特异性多肽；显示关于NtHMA的特异性的抗体；和可以干扰NtHMA的蛋白质稳定性、NtHMA的酶促活性、和/或NtHMA的结合活性的小分子化合物。有效拮抗剂可以使重金属(例如Cd)转运到叶片结构内减少至少5％、10％、15％、20％、25％、30％、35％、40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％或95％。
A.定义
本公开内容和附加权利要求自始至终，术语“a”和“the”充当单数和复数指示物，除非上下文另有明确说明。因此，例如提及“RNAi多核苷酸”包括多个此类RNAi多核苷酸，并且提及“植物”包括提及一个或多个此类植物。
术语“定向”指多核苷酸相对于参考多核苷酸的位置放置的特定顺序。线性DNA具有2个可能定向：5'-至-3'方向和3'-至-5'方向。例如，如果参考序列以5'-至-3'方向放置，并且如果第二序列以5'-至-3'方向放置在相同多核苷酸分子/链内，那么参考序列和第二序列以相同方向定向，或具有相同定向。一般地，启动子序列和在给定启动子调节下的目的基因以相同方向放置。然而，就以5'-至-3'方向放置的参考序列而言，如果第二序列以3'-至-5'方向放置在相同多核苷酸分子/链内，那么参考序列和第二序列以反义方向定向，或具有反义定向。就彼此而言具有反义定向的2个序列可以备选地描述为具有相同定向，如果参考序列(5'-至-3'方向)和参考序列的反向互补序列(以5'-至-3'放置的参考序列)放置在相同多核苷酸分子/链内。
术语“NtHMA RNAi表达载体”指包括DNA组分的组合用于使得NtHMA RNAi构建体的转运和表达成为可能的核酸媒介物。合适的表达载体包括能够染色体外复制的附加体，例如环状、双链DNA质粒；线性化双链DNA质粒；和任何起源的其他功能上等价的表达载体。合适的NtHMA RNAi表达载体至少包括放置在上游且与 NtHMA RNAi构建体可操作地连接的启动子，如下文定义的。
术语“NtHMA RNAi构建体”指编码具有RNA干扰活性的“NtHMA RNAi多核苷酸”的双链、重组DNA片段。NtHMA RNAi构建体包括与互补“正义或编码链”碱基配对的“模板链”。给定NtHMA RNAi构建体可以以2个可能的定向插入NtHMA RNAi表达载体内，就放置在NtHMA RNAi表达载体内的启动子定向而言的相同(或正义)定向或相反(或反义)定向。
术语“NtHMA RNAi多核苷酸”可以靶向NtHMA RNA用于酶促降解，涉及NtHMA RNAi多核苷酸的较小片段(“siRNA”)的形成，其可以与靶NtHMA RNA内的多个互补序列结合。一种或多种NtHMA基因的表达水平可以通过NtHMA RNAi多核苷酸的RNA干扰活性减少。
术语“模板链”指包括互补于DNA双链体的“正义或编码链”序列的序列的链，所述DNA双链体例如NtHMA基因组片段、NtHMA cDNA或NtHMA RNAi构建体、或包括可以由RNA聚合酶转录的核酸序列的任何DNA片段。在转录过程中，RNA聚合酶可以在新生RNA合成过程中以3'-至-5'方向沿着模板链移动。
术语“正义链”或“编码链”指包括互补于DNA双链体中的模板链序列的序列的链。例如，关于经鉴定的NtHMA基因组克隆的正义链的序列(“正义序列”)指定为SEQ ID NO:1。例如，关于经鉴定为克隆P6663的NtHMA cDNA的正义序列指定为SEQ ID NO：3。例如，关于经鉴定为克隆P6643的NtHMA cDNA的正义序列指定为SEQ ID NO：46。例如，如果正义链包括假定序列5'-TAATCCGGT-3'，那么在假定靶mRNA内基本上相同的相对应序列是5'-UAAUCCGGU-3'。
术语“反向互补序列”指互补于就正义序列而言以相同定向放置在相同链内的目的“正义序列”(例如外显子序列)的序列。例如，如果链包括假定序列5'-TAATCCGGT-3'，那么反向互补序列5'-ACCGGATTA-3'可以与正义序列可操作地连接，通过间隔物序列 分开。
在RNA干扰上下文中的术语“NtHMA RNA转录物”或“NtHMA RNA”指在目的宿主植物细胞内产生的多核糖核酸分子，产生于HMA家族的内源基因的转录，包括经分离的NtHMA基因(SEQ ID NO：1)。因此，这些术语包括作为转录产物由HMA相关基因产生的任何RNA种类或RNA变体，所述HMA相关基因可以不同于经分离的NtHMA基因(SEQ ID NO：1)，但在结构和/或功能水平上具有足够的相似性以分类在相同家族内。例如，如果根据所公开的方法就遗传修饰选择的宿主植物细胞是烟草，那么靶NtHMA RNA转录物包括：(1)由经分离的NtHMA基因(SEQ ID NO：1)转录产生的mRNA前体和mRNA；(2)由与经分离的NtHMA基因(SEQ ID NO：1)序列具有至少50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％和99％序列同一性的任何基因(即与经鉴定的NtHMA基因基本上等同且编码HMA转运蛋白的相关同种型的其他不同基因)转录产生的mRNA前体和mRNA；和(3)由NtHMA基因(SEQ ID NO：1)的等位基因转录产生的mRNA前体和mRNA。NtHMA RNA转录物包括由于特定NtHMA基因的异核RNA(“hnRNA”)的可变RNA剪接反应产生的RNA变体、起因于此类可变RNA剪接反应的mRNA变体、和任何中间RNA变体。
术语“同源性”或“同一性”或“相似性”指通过序列比对相比较的2个多肽之间或2个核酸分子之间的序列相似性程度。被比较的2个不连续核酸序列之间的同源性程度是在可比较位置上的等同或匹配核苷酸数目的函数。同一性百分比可以通过目视检查和数学计算进行测定。备选地，2个核酸序列的同一性百分比可以使用GAP计算机程序、版本6.0通过比较序列信息进行测定，所述GAP计算机程序由Devereux等人(Nucl.Acids Res.12:387，1984)描述，且可从University of Wisconsin Genetics Computer Group(UWGCG)获得。用于GAP程序的一般缺省参数包括：(1)用于核苷酸的一元比较矩阵(包含值1用于同一性和0用于非同一性)，以及Gribskov和Burgess，Nucl. Acids Res.14:6745，1986的加权比较矩阵，如由Schwartz和Dayhoff，编辑，Atlas of Protein Sequence and Structure，National Biomedical Research Foundation，第353-358页，1979描述的；(2)罚分3.0用于每个缺口和另外的0.10罚分用于每个缺口中的每个符号；和(3)对于末端缺口无罚分。备选地可以利用序列比较领域技术人员已知的各种程序。
术语“上游”指沿着线性多核苷酸序列就参考元件而言的相对方向/位置，这指示朝向多核苷酸序列的5'末端的方向/位置。“上游”可以与“参考元件的5'末端”互换使用。
术语“可操作地连接”指不同DNA元件、片段或序列的连接，以产生功能转录单位或功能表达载体。
术语“启动子”指一般放置在双链DNA片段的上游且与之可操作地连接的核酸元件/序列，所述双链DNA片段例如NtHMA RNAi构建体。例如，合适的启动子通过召募转录复合物使得NtHMA RNAi构建体的转录激活成为可能，所述转录复合物包括RNA聚合酶和各种因子，以起始RNA合成。“启动子”可以完全衍生自与目的天然基因邻近的区域，或可以由衍生自不同天然启动子的不同元件和/或合成DNA区段组成。合适的启动子包括由组织特异性因子识别的组织特异性启动子，所述组织特异性因子在不同组织或细胞类型中出现(例如，根特异性启动子、芽特异性启动子、木质部特异性启动子)、或在不同发育阶段过程中出现、或响应不同环境条件而出现。合适的启动子包括无需特异性诱导剂即可在大多数细胞类型中激活的组成型启动子。用于控制NtHMA RNAi多肽产生的合适启动子的例子包括花椰菜花叶病毒35S(CaMV/35S)、SSU、OCS、lib4、usp、STLS1、B33、nos或泛素或菜豆球蛋白启动子。本领域技术人员能够产生重组启动子的多重变化，如许多参考文献中描述的，例如Okamuro和Goldberg，Biochemistry of Plants，第15卷:第1-82页(1989)。
组织特异性启动子是仅在植物发育过程中的特定时间在特定细胞或组织中活跃的转录控制元件，例如在营养组织或生殖组织中。例如 当多核苷酸在特定组织中的表达是优选的时，组织特异性表达可以是有利的。在发育控制下的组织特异性启动子的例子包括可以仅(或仅最初)在特定组织中起始转录的启动子，所述特定组织例如营养组织例如根或叶，或生殖组织例如果实、胚珠、种子、花粉、雌蕊、花或任何胚胎组织。生殖组织特异性启动子可以是例如花药特异性、胚珠特异性、胚特异性、胚乳特异性、珠被特异性、种子和种皮特异性、花粉特异性、花瓣特异性、萼片特异性的或其组合。
合适的叶特异性启动子包括来自C4植物(玉蜀黍)的丙酮酸正磷酸二激酶(PPDK)启动子、来自玉蜀黍的cab-m1Ca+2启动子、拟南芥myb相关基因启动子(Atmyb5)、核酮糖二磷酸羧化酶(RBCS)启动子(例如在叶和光生长(light-grown)幼苗中表达的烟草RBCS 1、RBCS2和RBCS3A基因，在发育番茄果实中表达的RBCS1和RBCS2，和/或以高水平在叶片和叶鞘中的叶肉细胞中几乎专一地表达的核酮糖二磷酸羧化酶启动子)。
合适的衰老特异性启动子包括在果实催熟、叶枯萎和脱落过程中活跃的番茄启动子、编码半胱氨酸蛋白酶的基因的玉蜀黍启动子。可以使用合适的花药特异性启动子。此类启动子是本领域已知的，或可以通过已知技术发现；参见例如，Bhalla和Singh(1999)Molecular control of male fertility in Brassica，Proc.10th Annual Rapeseed Congress，Canberra，Australia；van Tunen等人(1990)Pollen-and anther-specific chi promoters from petunia：tandem promoter regulation of the chiA gene.Plant Cell 2:393-40；Jeon等人(1999)Isolation and characterization of an anther-specific gene，RA8，from rice(Oryza sativa L).Plant Molecular Biology 39:35-44；和Twell等人(1993)Activation and developmental regulation of an Arabidopsis anther-specific promoter in microspores and pollen of Nicotiana tabacum.Sex.Plant Reprod.6:217-224。
可以选择本领域技术人员已知的合适的根优选启动子。参见例如，Hire等人(1992)Plant Mol.Biol.20(2):207-218(大豆根特异性谷 氨酰胺合成酶基因)；Keller和Baumgartner(1991)Plant Cell 3(10):1051-1061(在菜豆的GRP 1.8基因中的根特异性控制元件)；Sanger等人(1990)Plant Mol.Biol.14(3):433-443(根瘤土壤杆菌(Agrobacterium tumefaciens)的甘露碱合酶(MAS)基因的根特异性启动子)；和Miao等人(1991)Plant Cell 3(1):11-22(编码细胞溶质谷氨酰胺合成酶(GS)的全长cDNA克隆，其在大豆的根和根瘤中表达)。还参见Bogusz等人(1990)Plant Cell 2(7):633-641，其中描述了从来自固氮的非豆科Parasponia andersonii和相关非固氮的非豆科山黄麻(Trema tomentosa)的血红蛋白基因中分离的2种根特异性启动子。
合适的种子优选启动子包括种子特异性启动子(这些启动子在种子发育过程中活跃，例如种子储存蛋白质的启动子)和种子发芽启动子(这些启动子在种子发芽过程中活跃)。参见例如，通过引用合并入本文的Thompson等人(1989)BioEssays 10：108。此类种子优选启动子包括但不限于，Cim1(细胞分裂素诱导的信使)；cZ19B1(玉蜀黍19kDa玉米醇溶蛋白)；milps(肌-肌醇-1-磷酸合酶)；mZE40-2也称为Zm-40(美国专利号6,403,862)；nuclc(美国专利号6,407,315)；和celA(纤维素合酶)(参见WO 00/11177)。γ-玉米醇溶蛋白是胚乳特异性启动子。Glob-1是胚胎特异性启动子。对于双子叶植物，种子特异性启动子包括但不限于豆β-菜豆球蛋白、napin、β-伴大豆球蛋白、大豆凝集素、cruciferin等。对于单子叶植物，种子特异性启动子包括但不限于玉蜀黍15kDa玉米醇溶蛋白启动子、22kDa玉米醇溶蛋白启动子、27kDa玉米醇溶蛋白启动子、g-玉米醇溶蛋白启动子、27kD.γ.-玉米醇溶蛋白启动子(例如gzw64A启动子，参见Genbank登记#S78780)、蜡质基因(waxy)启动子、shrunken 1启动子、shrunken2启动子、球蛋白1启动子(参见Genbank登记#L22344)、Itp2启动子(Kalla，等人，Plant Journal 6:849-860(1994)；美国专利号5,525,716)、cim1启动子(参见美国专利号6,225,529)玉蜀黍end1和end2启动子(参见2002年12月4日提交的美国专利号6,528,704 和申请10/310,191)；nuc1启动子(美国专利号6,407,315)；Zm40启动子(美国专利号6,403,862)；eep1和eep2；lec1(美国专利申请序列号09/718,754)；硫氧还蛋白H启动子(美国临时专利申请60/514,123)；mlip15启动子(美国专利号6,479,734)；PCNA2启动子；和shrunken-2启动子。(Shaw等人，Plant Phys 98:1214-1216、1992；Zhong Chen等人，PNAS US100:3525-3530、2003)。
诱导型启动子的例子包括响应病原体攻击、缺氧情况、温度升高、光、干旱、寒冷温度或高盐浓度的启动子。病原体诱导型启动子包括来自发病机理相关蛋白质(PR蛋白质)的那些，其在受病原体感染后被诱导(例如，PR蛋白质、SAR蛋白质、β-1,3-葡聚糖酶、壳多糖酶)。参见例如，Redolfi等人(1983)Neth.J.Plant Pathol.89:245-254；Uknes等人(1992)Plant Cell 4:645-656；和Van Loon(1985)Plant Mol.Virol.4:111-116。还参见1999年2月25日提交的名称为"Inducible Maize Promoters"的申请，美国专利申请序列号09/257,583。
除植物启动子外，其他合适的启动子可以衍生自细菌来源(例如，章鱼碱合酶启动子、胭脂碱合酶启动子和衍生自Ti质粒的其他启动子)，或可以衍生自病毒启动子(例如，花椰菜花叶病毒(CaMV)的35S和19S RNA启动子、烟草花叶病毒的组成型启动子、花椰菜花叶病毒(CaMV)19S和35S启动子、或玄参花叶病毒35S启动子)。
术语“增强子”指核酸分子或核酸序列，其可以召募转录调节蛋白质例如转录激活因子，以通过增加启动子活性而增强转录激活。合适的增强子可以衍生自与目的天然启动子邻近的区域(同源来源)，或可以衍生自非天然背景(异源来源)且与NtHMA RNAi表达载体内的任何目的启动子可操作地连接，以增强启动子的活性和/或组织特异性。某些增强子可以以就转录单位定向而言的任何定向起作用。例如，增强子可以放置在转录单位的上游或下游，所述转录单位包括启动子和NtHMA RNAi构建体。本领域技术人员能够使增强子和启动子可操作地连接，以最佳化NtHMA RNAi构建体的转录水平。
B.包括编码NtHMA RNAi多核苷酸的NtHMA RNAi构建体的RNAi表达载体
RNA干扰(“RNAi”)或RNA沉默是可以通过其而靶向特异性mRNA用于酶促降解的进化上保守的过程。双链RNA(dsRNA)必须由细胞引入或产生(例如，dsRNA病毒或NtHMA RNAi多核苷酸)，以起始RNAi途径。dsRNA可以通过RNA酶III转变为21-23bp长度的多重siRNA双链体(“siRNA”)，所述RNA酶III是dsRNA特异性核酸内切酶(“Dicer”)。siRNA随后可以由RNA诱导的沉默复合物(“RISC”)识别，所述RISC通过ATP依赖性过程促进siRNA的解链。siRNA展开的反义链将激活的RISC引导至被靶向的mRNA(例如，NtHMA RNA变体)，所述被靶向的mRNA包括与siRNA反义链互补的序列。被靶向的mRNA和反义链可以形成A型螺旋，并且A型螺旋的大沟可以被激活的RISC识别。靶mRNA可以被激活的RISC在由siRNA链的5'末端的结合位点限定的单个位点处切割。激活的RISC可以再循环以催化另一个切割单位。
图2A举例说明示例性NtHMA RNAi表达载体的构建。在图2A中，“S I”指构建过程的步骤I并且“S II”指步骤II。多个实施方案涉及包括编码NtHMA RNAi多核苷酸的NtHMA RNAi构建体的NtHMA RNAi表达载体，通过减少NtHMA mRNA、NtHMA mRNA前体和相关NtHMA RNA变体的表达水平来显示RNA干扰活性。表达载体包括放置在NtHMA RNAi构建体上游并且与之可操作地连接的启动子，如下文进一步定义的。NtHMA RNAi表达载体包括合适的最低限度的核心启动子，目的NtHMA RNAi构建体，上游(5')调节区，下游(3')调节区包括转录终止和多腺苷酸化信号，以及本领域技术人员已知的其他序列，例如各种选择标记。
NtHMA多核苷酸可以以各种形式产生，包括作为双链发夹样结构(“dsRNAi”)。NtHMA dsRNAi可以酶促转变为双链NtHMA siRNA。NtHMA siRNA双链体的链之一可以对靶NtHMA mRNA和 相关NtHMA RNA变体内的互补序列退火。siRNA/mRNA双链体由RISC识别，所述RISC可以以序列依赖性方式在多重位点处切割NtHMA RNA，导致靶NtHMA mRNA和相关NtHMA RNA变体的降解。
图2B举例说明作为由示例性NtHMA RNAi构建体转录的产物形成的假定双链RNA双链体(作为“茎-环-茎”结构)的形成。在图2B中，显示了假定的NtHMA RNAi构建体10，包括3个双链DNA片段，例如片段1-3。箭头I指示RNAi构建体的形成，箭头II转录，并且箭头III dsRNA的形成。片段1放置在片段2上游并且与之可操作地连接，所述片段2放置在片段3上游并且与之可操作地连接，对于其DNA链/序列4、6和8串联连接在一起以形成链11，如所示的。备选地，NtHMA RNAi构建体包括“正义序列”5，所述“正义序列”5放置在“间隔物序列”7上游并且与之可操作地连接，所述“间隔物序列”7放置在“反向互补序列”9上游并且与之可操作地连接。链/序列5、7和9可以串联连接在一起以形成链/序列12。备选地，NtHMA RNAi构建体包括“正义序列”8，所述“正义序列”8放置在“间隔物序列”6上游并且与之可操作地连接，所述“间隔物序列”6放置在“反向互补序列”4上游并且与之可操作地连接。链/序列8、6和4可以串联连接在一起以形成链/序列11。链12与链11互补。链11是可以转录成NtHMA RNAi多核苷酸13的模板链。NtHMA RNAi多核苷酸13形成发夹(“茎-环-茎”)结构，其中茎16是起因于NtHMA RNAi多核苷酸15的分子内碱基对相互作用的互补区，并且环17代表由间隔物序列例如链/序列6或7编码的非互补区。
任何目的NtHMA RNA多核苷酸都可以通过选择用于产生NtHMA发夹双链体的合适序列组成、环尺寸和茎长度而产生。用于设计发夹双链体的茎长度的合适范围包括20-30个核苷酸、30-50个核苷酸、50-100个核苷酸、100-150个核苷酸、150-200个核苷酸、200-300个核苷酸、300-400个核苷酸、400-500个核苷酸、500-600个核苷酸、和600-700个核苷酸的茎长度。如果发夹双链体的茎长度是基本的， 那么用于设计发夹双链体的环长度的合适范围包括4-25个核苷酸、25-50个核苷酸或更长的环长度。在特定背景下，具有长于21个核苷酸的双链体区的发夹结构可以促进有效的siRNA指导的沉默，与环序列和长度无关。
用于下调NtHMA基因(SEQ ID NO：1)和其他NtHMA相关基因的表达水平的示例性NtHMA RNAi构建体包括下述：
多个实施方案涉及包括NtHMA RNAi构建体的NtHMA RNAi表达载体，所述NtHMA RNAi构建体包括下述中的一种或多种：内含子1(SEQ ID NO:4)、外显子1(SEQ ID NO:5)、内含子2(SEQ ID NO:6)、外显子2(SEQ ID NO:7)、内含子3(SEQ ID NO:8)、外显子3(SEQ ID NO:9)、内含子4(SEQ ID NO:10)、外显子4(SEQ ID NO:11)、内含子5(SEQ ID NO:12)、外显子5(SEQ ID NO:13)、内含子6(SEQ ID NO:14)、外显子6(SEQ ID NO:15)、内含子7(SEQ ID NO:16)、外显子7(SEQ ID NO:17)、内含子8(SEQ ID NO:18)、外显子8(SEQ ID NO:19)、内含子9(SEQ ID NO:20)、外显子9(SEQ ID NO:21)、内含子10(SEQ ID NO:22)、外显子10(SEQ ID NO:23)、内含子11(SEQ ID NO:24、外显子11(SEQ ID NO:25)、和内含子12(SEQ ID NO:26)、其片段及其变体。
多个实施方案涉及包括下述的NtHMA RNAi表达载体：与选自下述的序列具有至少70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％和99％序列同一性的NtHMA RNAi构建体：外显子1(SEQ ID NO：5)、外显子1(SEQ ID NO：5)的片段、外显子2(SEQ ID NO：7)、外显子2(SEQ ID NO：7)的片段、外显子3(SEQ ID NO：9)、外显子3(SEQ ID NO：9)的片段、外显子4(SEQ ID NO：11)、外显子4(SEQ ID NO：11)的片段、外显子5(SEQ ID NO：13)、外显子5(SEQ ID NO：13)的片段、外显子6(SEQ ID NO：15)、外显子6(SEQ ID NO：15)的片段、外显子7(SEQ ID NO：17)、外显子7(SEQ ID NO：17)的片段、外显子8(SEQ ID NO： 19)、外显子8(SEQ ID NO：19)的片段、外显子9(SEQ ID NO：21)、外显子9(SEQ ID NO：21)的片段、外显子10(SEQ ID NO：23)、外显子10(SEQ ID NO：23)的片段、外显子11(SEQ ID NO：25)、和外显子11(SEQ ID NO：25)的片段。
多个实施方案涉及包括下述的NtHMA RNAi表达载体：编码能够自身退火以形成发夹结构的NtHMA RNAi多核苷酸的NtHMA RNAi构建体，其中RNAi构建体包括(a)与SEQ ID NO：3或47具有至少70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％和99％序列同一性的第一序列；(b)编码形成发夹结构的环的NtHMA RNAi多核苷酸的间隔物元件的第二序列；和(c)以与第一序列相同的方向放置、包括第一序列的反向互补序列的第三序列，其中第二序列放置在第一序列和第三序列之间，并且第二序列与第一序列和第三序列可操作地连接。
多个实施方案涉及包括下述的NtHMA RNAi表达载体：编码能够自身退火以形成发夹结构的NtHMA RNAi多核苷酸的NtHMA RNAi构建体，其中RNAi构建体包括(a)与SEQ ID NO：3或47具有至少70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％和99％序列同一性的第一序列；(b)编码形成发夹结构的环的NtHMA RNAi多核苷酸的间隔物元件的第二序列；和(c)以与第一序列相同的方向放置、包括第一序列(SEQ ID NO:46或SEQ ID NO:48)的反向互补序列的第三序列，其中第二序列放置在第一序列和第三序列之间，并且第二序列与第一序列和第三序列可操作地连接。
多个实施方案涉及包括下述的NtHMA RNAi表达载体：包括与SEQ ID NO：3或SEQ ID NO：3的部分具有“基本相似性”，或具有至少70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％和99％序列同一性的第一序列的NtHMA RNAi构建体。多个实施方案涉及包括NtHMA RNAi构建体的NtHMA RNAi表达载体，所述NtHMA RNAi构建体包括与SEQ ID NO：47或SEQ ID NO：47的部分具有“基本相似性”，或具有至少70％、75％、80％、85％、90％、 95％、96％、97％、98％和99％序列同一性的第一序列。
多个实施方案涉及包括下述的NtHMA RNAi表达载体：包括与选自下述的序列具有“基本相似性”，或具有至少70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％和99％序列同一性的第二序列的NtHMA RNAi构建体：内含子1(SEQ ID NO：4)、内含子1(SEQ ID NO：4)的片段、内含子2(SEQ ID NO：6)、内含子2(SEQ ID NO：6)的片段、内含子3(SEQ ID NO：8)、内含子3(SEQ ID NO：8)的片段、内含子4(SEQ ID NO：10)、内含子4(SEQ ID NO：10)的片段、内含子5(SEQ ID NO：12)、内含子5(SEQ ID NO：12)的片段、内含子6(SEQ ID NO：14)、内含子6(SEQ ID NO：14)的片段、内含子7(SEQ ID NO：16)、内含子7(SEQ ID NO：16)的片段、内含子8(SEQ ID NO：18)、内含子8(SEQ ID NO：18)的片段、内含子9(SEQ ID NO：20)、内含子9(SEQ ID NO：20)的片段、内含子10(SEQ ID NO：22)、内含子10(SEQ ID NO：22)的片段、内含子11(SEQ ID NO：24)、内含子11(SEQ ID NO：24)的片段、内含子12(SEQ ID NO：26)、和内含子12(SEQ ID NO：26)的片段。备选地，可以随机产生NtHMA RNAi构建体的第二序列，而不利用衍生自NtHMA基因(SEQ ID NO：1)的内含子序列。
多个实施方案涉及包括下述的NtHMA RNAi表达载体：包括与SEQ ID NO：46或SEQ ID NO：46的部分具有“基本相似性”，或具有至少70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％和99％序列同一性的第三序列的NtHMA RNAi构建体。多个实施方案涉及包括NtHMA RNAi构建体的NtHMA RNAi表达载体，所述NtHMA RNAi构建体包括与SEQ ID NO：48或SEQ ID NO：48的部分具有“基本相似性”，或具有至少70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％和99％序列同一性的第三序列。
多个实施方案涉及包括下述的NtHMA RNAi表达载体：包括与选自下述的反向互补序列具有“基本相似性”，或具有至少70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％和99％序列同一性的第 三序列的NtHMA RNAi构建体：SEQ ID NO：27(外显子1)、SEQ ID NO：27(外显子1)的片段、SEQ ID NO：28(外显子2)、SEQ ID NO：28(外显子2)的片段、SEQ ID NO：29(外显子3)、SEQ ID NO：29(外显子3)的片段、SEQ ID NO：30(外显子4)、SEQ ID NO：30(外显子4)的片段、SEQ ID NO：31(外显子5)、SEQ ID NO：31(外显子5)的片段、SEQ ID NO：32(外显子6)、SEQ ID NO：32(外显子6)的片段、SEQ ID NO：33(外显子7)、SEQ ID NO：33(外显子7)的片段、SEQ ID NO：34(外显子8)、SEQ ID NO：34(外显子8)的片段、SEQ ID NO：35(外显子9)、SEQ ID NO：35(外显子9)的片段、SEQ ID NO：36(外显子10)、SEQ ID NO：36(外显子10)的片段、SEQ ID NO：37(外显子11)、和SEQ ID NO：37(外显子11)的片段。
多个实施方案涉及包括NtHMA RNAi构建体的NtHMA RNAi表达载体，所述NtHMA RNAi构建体包括：SEQ ID NO：38(“正义序列/片段”)、包括SEQ ID NO：39的第二序列(“间隔物序列/片段”)和包括SEQ ID NO：40的第三序列(“反义序列/片段”)。
多个实施方案涉及包括NtHMA RNAi构建体的NtHMA RNAi表达载体，所述NtHMA RNAi构建体包括：SEQ ID NO：42(“正义序列/片段”)、包括SEQ ID NO：43的第二序列(“间隔物序列/片段”)和包括SEQ ID NO：44的第三序列(“反义序列/片段”)。
备选地，所公开的序列可以用于构建不形成发夹结构的多种NtHMA多核苷酸。例如，NtHMA长双链RNA可以通过下述形成：(1)通过与第一个启动子可操作地连接转录NtHMA cDNA的第一条链，和(2)通过与第二个启动子可操作地连接转录NtHMA cDNA片段的第一条链的反向互补序列。NtHMA多核苷酸的每条链可以由相同表达载体进行转录，或由不同表达载体进行转录。具有RNA干扰活性的NtHMA RNA双链体可以酶促转变为siRNAs，以减少NtHMA RNA水平。
C.通过共抑制用于减少NtHMA基因表达的表达载体
提供了通过促进NtHMA基因表达的共抑制用于减少关于NtHMA基因家族成员的内源表达水平的多种组合物和方法。共抑制现象由于将转基因的多个拷贝引入植物细胞宿主内而发生。转基因的多个拷贝的整合可以导致转基因和所靶向的内源基因的表达减少。共抑制的程度依赖于转基因和所靶向的内源基因之间的序列同一性程度。内源基因和转基因的沉默可以通过所沉默的基因座(即，内源启动子和内源目的基因)的广泛甲基化而发生，所述所沉默的基因座可以排除转录。备选地，在某些情况下，内源基因和转基因的共抑制可以通过转录后基因沉默(“PTGS”)而发生，其中可以产生转录物但增强的降解率排除转录物的累积。关于通过PTGS共抑制的机制被认为类似RNA干扰，因为RNA看起来是这些过程中的重要起始因子和靶，并且可以至少部分通过相同分子机制介导，可能通过RNA引导的mRNAs降解。
NtHMA基因家族成员的共抑制可以通过将作为转基因的NtHMA cDNA或其片段的多个拷贝整合到目的植物的基因组内来实现。宿主植物可以用表达载体进行转化，所述表达载体包括与NtHMA cDNA或其片段可操作地连接的启动子。多个实施方案涉及用于促进NtHMA家族的内源基因的共抑制的表达载体，其包括：与经鉴定为克隆P6663(SEQ ID NO:3)的NtHMA cDNA或其片段，或经鉴定为克隆P6643(SEQ ID NO:47)的NtHMA cDNA或其片段可操作地连接的启动子。多个实施方案涉及用于促进NtHMA家族的内源基因的共抑制的表达载体，其包括：与NtHMA cDNA或其片段可操作地连接的启动子，所述NtHMA cDNA或其片段与SEQ ID NO：3或SEQ ID NO：47具有至少约70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％或99％序列同一性。
多个实施方案涉及通过将NtHMA cDNA或其片段的多个拷贝整合到植物基因组内，用于减少NtHMA家族的内源基因的表达水平的方法，所述方法包括：用表达载体转化植物细胞宿主，所述表达载体 包括与SEQ ID NO：3或其片段；或者SEQ ID NO：47或其片段可操作地连接的启动子。多个实施方案涉及通过将NtHMA cDNA或其片段的多个拷贝整合到植物基因组内，用于减少NtHMA家族的内源基因的表达水平的方法，所述方法包括：用表达载体转化植物细胞宿主，所述表达载体包括与NtHMA cDNA或其片段可操作地连接的启动子，所述NtHMA cDNA或其片段与SEQ ID NO：3或SEQ ID NO：47具有至少约70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％或99％序列同一性。
D.通过经由反义试剂抑制翻译用于减少NtHMA基因表达的表达载体
提供了通过抑制NtHMA mRNA翻译用于减少NtHMA基因家族的内源表达水平的多种组合物和方法。宿主植物细胞可以用表达载体进行转化，所述表达载体包括：与以就启动子而言的反义定向放置的NtHMA cDNA或其片段可操作地连接的启动子，以使得具有与NtHMA mRNA的部分互补的序列的RNA多核苷酸的表达成为可能。用于抑制HMA mRNA翻译的多种表达载体包括：与经鉴定为克隆P6663(SEQ ID NO:3)的NtHMA cDNA或其片段；或经鉴定为克隆P6643(SEQ ID NO:47)的NtHMA cDNA或其片段可操作地连接的启动子；其中NtHMA cDNA或其片段以就启动子而言的反义定向放置。用于抑制HMA mRNA翻译的多种表达载体包括：与NtHMA cDNA或其片段可操作地连接的启动子，所述NtHMA cDNA或其片段与SEQ ID NO：3或SEQ ID NO：47具有至少约70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％或99％序列同一性，其中NtHMA cDNA或其片段以就启动子而言的反义定向放置。反义NtHMA RNA多核苷酸的长度可以改变，包括15-20个核苷酸、20-30个核苷酸、30-50个核苷酸、50-75个核苷酸、75-100个核苷酸、100-150个核苷酸、150-200个核苷酸、和200-300个核苷酸。
多个实施方案涉及通过抑制NtHMA mRNA翻译用于减少 NtHMA家族的内源基因的表达水平的方法，所述方法包括：用表达载体转化植物细胞宿主，所述表达载体包括与经鉴定为克隆P6663(SEQ ID NO:3)的NtHMA cDNA或其片段；或经鉴定为克隆P6643(SEQ ID NO:47)的NtHMA cDNA或其片段可操作地连接的启动子，其中NtHMA cDNA或其片段以就启动子而言的反义定向放置。多个实施方案涉及通过抑制NtHMA mRNA翻译用于减少NtHMA家族的内源基因的表达水平的方法，所述方法包括：用表达载体转化植物细胞宿主，所述表达载体包括与NtHMA cDNA或其片段可操作地连接的启动子，所述NtHMA cDNA或其片段与SEQ ID NO：3或SEQ ID NO：47具有至少约70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％或99％序列同一性，其中NtHMA cDNA或其片段以就启动子而言的反义定向放置。
E.用于减少NtHMA基因表达的其他组合物和方法
用于获得NtHMA多核苷酸和多肽的保守变体和更趋异变体的方法是本领域技术人员已知的。任何目的植物可以通过已知诱导诱变的多种方法进行遗传修饰，所述方法包括定点诱变、寡核苷酸指导的诱变、化学诱导的诱变、辐射诱导的诱变和其他等价方法。例如，定点诱变在下述中描述：例如Smith(1985)"In vitro mutagenesis,"Ann.Rev.Genet.19:423-462，和其中的参考文献例如Botstein&Shortle(1985)"Strategies and Applications of in vitro Mutagenesis,"Science229:1193-1201，和Carter(1986)"Site-directed mutagenesis,"Biochem.J.237:1-7。寡核苷酸指导的诱变在例如Zoller&Smith(1982)"Oligonucleotide-directed Mutagenesis using M13-derived Vectors：an Efficient and General Procedure for the Production of Point mutations in any DNA Fragment,"Nucleic Acids Res.10:6487-6500中描述。利用修饰碱基的诱变在例如Kunkel(1985)"Rapid and Efficient Site-specific Mutagenesis without Phenotypic Selection,"Proc.Natl.Acad.Sci.USA 82:488-492，和Taylor等人(1985)"The Rapid  Generation of Oligonucleotide-directed Mutations at High Frequency using Phosphorothioate-modified DNA,"Nucl.Acids Res.13：8765-8787中描述。利用缺口双链体DNA的诱变在例如Kramer等人(1984)"The Gapped Duplex DNA Approach to Oligonucleotide-directed Mutation Construction,"Nucl.Acids Res.12：9441-9460)中描述。点错配诱变在例如Kramer等人(1984)"Point Mismatch Repair,"Cell 38:879-887)中描述。双链断裂诱变在例如Mandecki(1986)"Oligonucleotide-directed Double-strand Break Repair in Plasmids of Escherichia coli：A Method for Site-specific Mutagenesis,"Proc.Natl.Acad.Sci.USA，83:7177-7181，和Arnold(1993)"Protein Engineering for Unusual Environments,"Current Opinion in Biotechnology 4:450-455)中描述。利用修复缺失型宿主菌株的诱变在例如Carter等人(1985)"Improved Oligonucleotide Site-directed Mutagenesis using M13Vectors,"Nucl.Acids Res.13：4431-4443中描述。通过总基因合成的诱变在例如Nambiar等人(1984)"Total Synthesis and Cloning of a Gene Coding for the Ribonuclease S Protein,"Science 223：1299-1301中描述。DNA改组在例如Stemmer(1994)"Rapid Evolution of a Protein in vitro by DNA Shuffling,"Nature 370:389-391，和Stemmer(1994)"DNA shuffling by random fragmentation and reassembly：In Vitro Recombination for Molecular Evolution,"Proc.Natl.Acad.Sci.USA 91:10747-10751中描述。
备选地，NtHMA基因可以通过将转座子(和IS元件)引入目的植物的基因组内而被靶向用于失活。这些活动遗传元件可以通过有性异体受精引入，并且插入突变体可以就NtHMA活性中的丧失例如减少的Cd转运进行筛选。通过经由例如有性异体受精使亲本植物与未实施转座子诱导的诱变的植物杂交，可以将亲本植物中断裂的NtHMA基因引入其他植物内。可以利用本领域技术人员已知的任何标准育种方法。在一个实施方案中，一种或多种NtHMA相关基因可以通过插入一个或多个转座子被失活。突变可以导致一种或多种 NtHMA基因的纯合断裂，一种或多种NtHMA基因的杂合断裂，或如果断裂超过一种NtHMA基因，那么纯合和杂合断裂的组合。合适的可转座元件可以选自指定为类别I和类别II的2个广泛类别。合适的类别I可转座元件包括反转录转座子、反转录子和SINE样元件。此类方法是本领域技术人员已知的，如在Kumar和Bennetzen(1999)，Plant Retrotransposons in Annual Review of Genetics 33:479中描述的。
备选地，NtHMA基因可以通过称为Targeting Induced Local Lesions IN Genomics("TILLING")的方法而被靶向用于失活，所述方法使高密度点突变与突变的快速灵敏检测相组合。一般地，使植物种子暴露于诱变剂例如乙基甲磺酸(EMS)或EMS烷基化物鸟嘌呤，这一般导致错配。合适的试剂和方法是本领域技术人员已知的，如在下述中描述的：McCallum等人，(2000)，"Targeting Induced Local Lesions IN Genomics(TILLING)for Plant Functional Genomics,"Plant Physiology 123:439-442；McCallum等人，(2000)"Targeted screening for induced mutations,"Nature Biotechnology 18:455-457；和Colbert等人，(2001)"High-Throughput Screening for Induced Point Mutations,"Plant Physiology 126:480-484。
备选地，NtHMA基因可以通过引入衍生自许多小环状RNA的核酶而被靶向用于失活，所述小环状RNA能够在植物中自切割和复制。这些RNA可以单独(类病毒RNAs)或与辅助病毒(卫星RNA)一起复制。合适RNA的例子包括衍生自鳄梨日斑病类病毒的那些，以及衍生自烟草环斑病毒、紫花苜蓿短暂条纹病毒、绒毛烟草斑驳病毒、茄属植物斑驳病毒、和地下三叶草斑驳病毒的卫星RNA。各种靶RNA特异性核酶是本领域技术人员已知的，如在Haseloff等人(1988)Nature，334:585-591中描述的。
III.包括NtHMA RNAi多核苷酸的转基因植物、细胞系和种子及相关方法
多个实施方案涉及通过多种方法进行遗传修饰以减少NtHMA基因表达水平的转基因植物，所述方法可以用于沉默NtHMA基因表达，并且因此产生其中NtHMA转运蛋白的表达水平可以在目的植物组织内减少的转基因植物。重金属转运的速率和重金属转运特别地镉转运的分布模式可以在根据所公开的方法和组合物产生的转基因植物中改变。适合于遗传修饰的植物包括单子叶植物和双子叶植物。
多个实施方案涉及通过本领域技术人员已知的多种方法进行遗传修饰以减少NtHMA基因表达水平的转基因烟草植物，所述方法可以用于下调NtHMA基因表达，并且因此产生其中NtHMA转运蛋白的表达水平可以在目的植物组织内减少的转基因烟草植物。已提供多种表达载体，以产生显示NtHMA基因表达水平减少的任何变种的烟草转基因品系。所公开的组合物和方法可以应用于任何目的植物物种，包括烟草属(Nicotiana)的植物，烟草属的多个物种，包括黄花烟草(N.rustica)和红花烟草(N.tabacum)(例如LA B21、LN KY171、TI 1406、Basma、Galpao、Perique、Beinhart 1000-1和Petico)。其他物种包括花烟草(N.acaulis)、尖叶肾蕨(N.acuminata)、尖叶肾蕨细叶变种(N.acuminata var.multiflora)、N.africana、红猪笼草(N.alata)、N.amplexicaulis、N.arentsii、渐狭叶烟草(N.attenuata)、N.benavidesii、本氏烟草(N.benthamiana)、N.bigelovii、N.bonariensis、N.cavicola、克氏烟草(N.clevelandii)、N.cordifolia、N.corymbosa、德氏烟草(N.debneyi)、N.excelsior、福氏烟草(N.forgetiana)、N.fragrans、N.glauca、粘烟草(N.glutinosa)、N.goodspeedii、N.gossei、N.hybrid、N.ingulba、N.kawakamii、N.knightiana、N.langsdorffii、渐尖叶烟草(N.linearis)、N.longiflora、N.maritima、N.megalosiphon、N.miersii、N.noctiflora、N.nudicaulis、N.obtusifolia、N.occidentalis、N.occidentalis subsp.hesperis、耳状烟草(N.otophora)、N.paniculata、N.pauciflora、碧冬烟草(N.petunioides)、N.plumbaginifolia、N.quadrivalvis、N.raimondii、N.repanda、N.rosulata、N.rosulata subsp.ingulba、N.rotundifolia、 N.setchellii、N.simulans、N.solanifolia、N.spegazzinii、斯氏烟草(N.stocktonii)、香甜烟草(N.suaveolens)、美花烟草(N.sylvestris)、N.thyrsiflora、绒毛烟草(N.tomentosa)、拟茸花烟草(N.tomentosiformis)、N.trigonophylla、N.umbratica、波叶烟草(N.undulata)、N.velutina、N.wigandioides和N.x sanderae。用于转化的合适植物包括能够通过本领域技术人员已知转化植物的多种方法转化的任何植物组织，所述方法包括电穿孔、微粒轰击和土壤杆菌属(Agrobacterium)介导的转移，如例如在下述中描述的：公开了用包含Ti质粒的土壤杆菌属菌株用于转化敏感植物包括双子叶植物的方法的美国专利号4,459,355；公开了用土壤杆菌属载体转化木本植物的美国专利号4,795,855；公开了二元土壤杆菌属载体的；美国专利号4,940,838，美国专利号4,945,050；和美国专利号5,015,580。
多个实施方案涉及经遗传修饰以内源表达编码NtHMA RNAi多核苷酸的RNAi构建体的转基因烟草植物，所述NtHMA RNAi多核苷酸促进NtHMA RNA转录物的降解，并且随后减少可用于翻译成NtHMA转运蛋白的RNA转录物的数目。多个实施方案涉及包括表达载体的转基因植物，所述表达载体使得根据所公开的方法产生的NtHMA多核苷酸的表达成为可能。多个实施方案涉及衍生自根据所公开的方法产生的转基因植物的细胞系。多个实施方案涉及衍生自根据所公开的方法产生的转基因植物的转基因种子。
多个实施方案涉及用于减少植物中的NtHMA基因表达水平的方法，所述方法包括减少NtHMA基因的表达水平，这可以通过本领域技术人员已知的多种方法来完成。作为例子，本公开内容描述了：(1)通过表达NtHMA RNAi多核苷酸，用于减少可用于翻译的内源NtHMA RNA变体的稳态水平的RNA干扰方法；(2)通过将作为转基因的NtHMA cDNA或其片段的多个拷贝整合到植物基因组内，用于减少一种或多种NtHMA基因转录的共抑制方法；(3)通过表达反义多核苷酸用于减少NtHMA翻译的反义方法，所述反义多核苷酸可以靶向NtHMA RNA；和(4)用于诱导诱变的多种方法。
多个实施方案涉及这样的转基因烟草植物，其通过本领域技术人员已知的多种方法进行遗传修饰以减少NtHMA基因表达水平，并且进一步进行修饰以减少第二种目的内源基因(即非NtHMA相关的)的表达，或增强目的外源基因(即非NtHMA相关的)的表达。例如，编码涉及生物碱生物合成的酶的第二种目的内源基因的下调可能是希望的。在其他情况下，编码目的重组蛋白质例如用于治疗用途的人激素的转基因的表达水平中的增强可能是希望的。本领域技术人员能够产生多种转基因植物，其可以进行修饰例如以外源表达NtHMA RNAi多核苷酸和至少一种目的重组基因产物例如重组人生长因子，或可以靶向与NtHMA家族不相关的第二种目的基因的RNAi多核苷酸。
根据所公开的方法产生转基因植物提供了许多优点。转基因植物包括转基因烟草植物可以在包含可变Cd浓度的土壤中或在包含小于所需Cd浓度的土壤中生长。这些转基因植物和衍生种子可以提供用于在更广泛范围的土壤环境中培养它们的更多选择，这可以增加从业者(例如农民)可获得的可培养土壤量。此外，与非转基因对应物相比较，显示减少的Cd含量的这些转基因植物可以直接作为可食用产物而消费。与非转基因对应物的消费相比较，这些转基因植物的可食用部分的消费可以是更健康的选择。可以根据所公开的方法遗传修饰的合适植物包括可用于农业用途培养的植物，包括水稻、玉米、南瓜、大豆、莴苣、马铃薯、beats、药草、小麦、大麦、胡萝卜等。当与非转基因对应物相比较时，这些转基因植物包括叶片部分中的Cd减少％可以是大约至少5％、10％、15％、20％、25％、30％、35％、40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％和99％。这些转基因植物包括叶片部分中的Cd含量是来自下述范围的值：约0.01至约0.05ppm、约0.01至约0.1ppm、约0.01至约0.5ppm、约0.01至约1.0ppm、和约0.01至约5ppm。
IV.并入经遗传修饰以包含减少的Cd含量的烟草叶的消费品
多个实施方案提供了转基因植物，其中NtHMA基因家族成员的 表达水平基本上减少，以减少或阻碍Cd转移到叶片内。衍生自根据所公开的方法产生的转基因烟草植物的叶片可以并入包含Cd的多种消费品内，所述Cd处于基本上低于通过将衍生自相同基因型的植物的烟草叶制备的消费品的那种的水平，所述衍生自相同基因型的植物在相同条件下生长，但未就NtHMA基因家族成员的表达水平减少而言进行遗传修饰(“非转基因对应物”)。
在某些实施方案中，与非基因组对应物相比较显示减少的Cd含量的这些转基因植物可以并入消费品内，包括各种可抽吸物品例如雪茄烟、香烟和无烟烟草产品(即不可燃的)。与非转基因对应物相比较，通过并入衍生自烟草植物的烟草叶产生的可抽吸物品和无烟烟草产品可以提供更健康的选择，所述烟草植物根据所公开的方法进行遗传修饰以包含减少的Cd水平。
并入根据所公开的方法进行遗传修饰的烟草植物的无烟烟草产品可以以适合于消费者的口腔舒适的任何形式制造。无烟烟草产品包含以任何形式的烟草，包括作为沉积、混合、围绕或以其他方式与以任何形式(例如薄片、薄膜、片剂、泡沫或珠)的其他成分相组合的干燥颗粒、碎屑、粒剂、粉剂或浆(即烟草提取物)。无烟烟草产品可以用材料进行包装，所述材料可以是可食用(即，经口崩解的)或不可食用的。无烟烟草产品的液体内含物可以以例如珠的形式封装，以排除与水溶性包装物的相互作用。包装物可以作为小袋成形，以部分或完全封装并入烟草的组合物，或充当粘合剂以使烟草的多个片剂、珠或薄片保持在一起。包装物也可以封装可塑烟草组合物，其适应消费者的口的形状。经口崩解的包装物可以封装无烟烟草，例如作为干鼻烟或可溶烟草，并且可以在连续热压成形或水平形式/填充/密封设备或使用可食用薄膜(其可以包含或不包含烟草)的其他合适的包装设备上成型。用于构建包装物的示例性材料包括薄膜组合物，包括HPMC、CMC、果胶、海藻酸盐、支链淀粉和其他商购可得的可食用薄膜成型聚合物。其他包装材料可以包括由明胶、HPMC、淀粉/角叉菜胶或其他商购可得材料产生的预成型的胶囊。此类包装材料可以包 括烟草作为成分。无法经口崩解的包装物可以由针织或非针织编织物(nonwoven fabrics)、涂层或无涂层纸、或穿孔或其他多孔塑料薄膜组成。包装物可以并入调味剂和/或着色剂。无烟产品可以利用商业包装领域技术人员已知的任何方法与包装物装配在一起，包括诸如泡罩包装和stik-包装方法，其中小包装可以通过垂直形式/填充/密封包装机器成型。
当与衍生自非转基因对应物的消费品相比较时，通过并入衍生自经遗传修饰以包含减少的Cd水平的烟草植物的烟草叶产生的、这些可抽吸物品和无烟产品中的Cd减少％是至少约5％、10％、15％、20％、25％、30％、35％、40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％、99％和100％的值。在某些实施方案中，通过并入衍生自经遗传修饰以包含减少的Cd水平的烟草植物的烟草叶产生的、这些可抽吸物品和无烟产品中的Cd含量是来自下述范围的值：约0.01至约0.05ppm、约0.01至约0.1ppm、约0.01至约0.5ppm、约0.01至约1.0ppm、和约0.01至约5ppm。
植物中的Cd累积程度可以依赖于归于基因型复杂度和生长环境的几种参数而基本上不同。例如，田间生长的烟草叶中的Cd浓度可以依赖于诸如农业气候、土壤参数和栽培变种的因素而极端不同。此外，在烟草植物的不同部分内的相对Cd分布模式可以根据物种、器官/组织和生长条件(即田间生长与水耕法生长比较)而改变。平均起来，在田间生长的烟草叶(包括中脉和叶脉)中测量的Cd浓度可以在约0.5至5ppm(百万分之，或ug/g烟草干重)的范围内。然而，许多公开的Cd水平一般不限定烟草成熟阶段、烟草变种或收获用于分析的特定叶部分(即从叶柄位置切除)。在某些变种中，较低的叶可能累积比中部和较高的叶更高的Cd水平。在细胞内水平上，Cd可以在植物细胞的各种细胞组分中发现，包括细胞壁、细胞质、叶绿体、核和液泡。
此外，在烟草叶中测量的Cd含量可以依赖于其中烟草植物所生 长的土壤环境中的Cd水平而基本上改变。与在非污染区中生长的遗传上等同的对应物的叶相比较(其可以累积约0.4至约8ppm的Cd)，在Cd污染区中生长的烟草的叶可以累积约35ppm或更高的Cd。在Cd污染区中生长的植物的叶内的液泡可以累积极高的Cd浓度。用于修饰所公开的组合物以适合于给定目的植物物种的方法是本领域技术人员已知的。
实施例
实施例1
全长烟草属NtHMA基因组克隆的克隆和外显子作图
独立地鉴定了代表内源NtHMA基因的不同部分的2个部分基因组克隆，称为“CHO_OF96xf01.ab1”和“CHO_OF261xo09c1.ab1”。基于得自部分基因组克隆的序列信息，随后鉴定了全长基因组克隆(_HO-18-2)和4个全长NtHMA cDNA，包括克隆P6663(SEQ ID NO:3)和克隆P6643(SEQ ID NO:47)。绘制了全长基因组克隆(_HO-18-2)(17,921bp)的外显子和内含子亚区的图。如图1中所示，从烟草属中克隆的全长内源NtHMA基因包括由总共3392个核苷酸组成的11个外显子。
实施例2
编码RNAi多核苷酸的NtHMA RNAi表达载体PBI121-NtHMA(660-915)的构建
表1提供了对经分离的NtHMA基因组克隆(SEQ ID NO：1)内的每个外显子作图的核苷酸位置列表。
表1


部分基因组克隆CHO_OF96xf01.ab1包括内含子4的部分、外显子4、内含子5、外显子5、内含子6和外显子6的部分，如图1中所示，并且在表1下列出。部分基因组克隆CHO_OF261xo09c1包括内含子7的部分、外显子7、内含子8、外显子8和外显子9的部分，如图1中所示。为了产生可以稳定产生目的重组NtHMA RNAi多核苷酸的转基因植物，所述目的重组NtHMA RNAi多核苷酸可以促进编码NtHMA多肽的内源RNA转录物的降解，2组NtHMA RNAi表达载体，如下文进一步描述的PBI121-NtHMA(660-915)RNAi，和如实施例3中进一步描述的PBI121-NtHMA(1382-1584)RNAi表达载体。
图2举例说明用于构建NtHMA RNAi表达载体的示例性亚克隆策略，所述NtHMA RNAi表达载体使得目的NtHMA RNAi多核苷酸的组成性表达成为可能。基于基因组克隆CHO_OF96xf01.ab1的外显子作图和序列分析，设计RNAi构建体。
图3A显示用于产生目的NtHMA RNAi多核苷酸的示例性RNAi序列，NtHMA(660-915)。在图3A中，NtHMA RNAi RNAi构建体(SEQ ID NO：41)包括由外显子4(272bp)组成的正义片段(272bp)(SEQ ID NO:38)，所述正义片段放置在内含子5组成的间隔物片段(80bp)(SEQ ID NO:39)的上游且与之由可操作地连接，所述间隔物片段放置在由以反义定向放置的外显子4组成的反向互补片段(272bp)(SEQ ID NO:40)的上游且与之可操作地连接。将编码目的NtHMA RNAi多核苷酸的RNAi构建体插入PBKCMV克隆载体 内，并且放置在巨细胞病毒(CMV)启动子的下游且与之可操作地连接。通过利用经修饰以掺入如下限制性酶位点的PCR引物(PMG783F：ATTCTAGACTGCTGCTATGTCATCACTGG[SEQ ID NO：50]和PMG783R：ATAAGCTTAGCCTGAAGAATTGAGCAAA[SEQ ID NO：51])，将XbaI和HindIII位点掺入352bp NtHMA正义片段的5'和3'末端内，所述352bp NtHMA正义片段包括80bp内含子片段。类似地，通过利用PCR引物(PMG 785F：ATGAGCTCTGGTTATGTAGGCTACTGCTGCT[SEQ ID NO：52]和PMG 786R：ATACTAGTATTTGTAGTGCCAGCCCAGA[SEQ ID NO：53])，将SpeI和SacI位点掺入相对应的NtHMA反向互补片段的5'和3'末端内，以产生PBKCMV-NtHMA RNAi质粒。通过下述构建PBI121-NtHMA RNAi表达载体：(a)切割来自二元表达载体(来自CLONTECH的“pBI121”)的β-葡糖醛酸糖苷酶ORF，和(b)将从PBKCMV-NtHMA RNAi质粒中切割的NtHMA RNAi构建体取代到PBI121质粒的XbaI/SacI位点内，代替被去除的β-葡糖醛酸糖苷酶ORF。PBI121-NtHMA RNAi表达载体包括：(i)352bp XbaI–HindIII NtHMA正义片段，其包括与(iii)272bp SpeII–SacI NtHMA反向互补片段可操作地连接的(ii)80bp内含子片段。
实施例3
编码RNAi多核苷酸的NtHMA RNAi表达载体PBI121-NtHMA(1382-1584)的构建
图4A显示用于产生目的NtHMA RNAi多核苷酸的示例性RNAi序列，NtHMA(1382-1584)。基于基因组克隆CHO_OF261xo09c1的外显子作图和序列分析，设计RNAi构建体(SEQ ID NO：41)，其包括包含外显子7的序列的正义片段(191bp)(SEQ ID NO:42)，所述正义片段放置在包括内含子8的序列的间隔物DNA片段(139bp)(SEQ ID NO:43)的上游且与之可操作地连接，所述间隔物DNA片段放置在包括以反义定向放置的外显子7的序列的反向互补片段(196 bp)(SEQ ID NO:44)的上游且与之可操作地连接。将编码目的NtHMA RNAi多核苷酸的这些RNAi构建体插入PBKCMV克隆载体内，并且放置在巨细胞病毒(CMV)启动子的下游且与之可操作地连接。通过利用经修饰以掺入如下限制性酶位点的PCR引物(PMG754F：ATTCTAGATGAGAGCAAGTCAGGTCATCC[SEQ ID NO：54]和PMG754R：ATAAGCTTTTCAAACATCCACCGCATTA[SEQ ID NO：55])，将XbaI和HindIII位点掺入330bp NtHMA正义片段的5'和3'末端内，所述330bp NtHMA正义片段包括139bp内含子片段。类似地，通过利用PCR引物PMG757F：ATGAGCTCGCATTGAGAGCAAGTCAGGTC[SEQ ID NO：56]和PMG757R：ATCTGCAGCCTGTGGTACATCCAGCTCTT[SEQ ID NO：57])，将PstI和SacI位点掺入相对应的NtHMA反向互补片段的5'和3'末端内，以产生PBKCMV-NtHMA RNAi表达载体。
通过下述构建PBI121-NtHMA RNAi表达载体：(a)切割来自二元表达载体(来自CLONTECH的“pBI121”)的β-葡糖醛酸糖苷酶ORF，和(b)将从PBKCMV-NtHMA RNAi质粒中切割的NtHMARNAi构建体取代到PBI121质粒的XbaI/SacI位点内，代替被去除的β-葡糖醛酸糖苷酶ORF。PBI121-NtHMA RNAi表达载体包括：(i)330bp XbaI–HindIII NtHMA正义片段，其包括与(iii)196bp SpeII–SacI NtHMA反向互补片段可操作地连接的(ii)139bp内含子片段。PBI121-NtHMA RNAi表达载体例如在实施例2和3中描述的那些，可以通过本领域技术人员已知的多种方法引入任何宿主植物细胞内。
实施例4
用NtHMA RNAi表达载体转化Burley(TN90)、Flue-cured(K326)和Dark(VA359)烟草变种
使来自3个不同变种Burley(TN90)、Flue-cured(K326)和Dark(VA359)的烟草种子灭菌，并且在包含MS基础培养基的培养皿中发芽，所述MS基础培养基补充有5ml/L植物防腐混合物(PPM)。 选择在发芽后约7至10天时的幼苗用于用多种NtHMA RNAi表达载体转化。将根瘤土壤杆菌LBA4404的单个菌落接种到包含50mg l^-1卡那霉素(卡那霉素单硫酸盐)液体LB培养基内，并且在28℃下伴随往复震荡(150个循环分钟^-1)温育48小时。通过离心(6000×g，10分钟)收集经培养的细菌细胞，并且用包含20g^-1蔗糖的20ml液体MS培养基悬浮至0.4-0.7OD₆₀₀的最终密度。将7-10天的幼苗外植体浸没到细菌悬浮液内5分钟，并且印迹在无菌滤纸上。将50个外植体放置到100mmX20mm培养皿中的40ml REG琼脂培养基(补充有0.1mg l^-1NAA和1mg l^-1BAP的MS基础培养基)等分试样上。使外植体与土壤杆菌属一起在25℃下共培养。在共培养3天后，洗涤外植体并且转移至RCPK培养基(具有100mg^-1卡那霉素、500mg^-1羧苄青霉素和5ml PPM的REG培养基)以就转化体进行选择。每2周使外植体传代培养。在选择条件下生长8-12周后，将代表已将NtHMA RNAi表达构建体整合到其基因组内的转化体的存活植物转移至生根培养基(补充有100mg l^-1卡那霉素的MS基础培养基)。将已生根的植物转移至罐以促进进一步生长。
实施例5
经遗传修饰以表达NtHMA RNAi多核苷酸的第一代转基因的叶片中的Cd减少
为了测定NtHMA RNAi多核苷酸表达对从转基因植物的根到气生部分的Cd转运的影响，对于几个转基因品系测定Cd水平，所述转基因品系已进行遗传修饰以表达NtHMA(660-915)或(1382-1584)RNAi多核苷酸。
用多种PBI121-NtHMA RNAi表达载体转化代表3个烟草变种的约40个独立转基因植物。最初，使转化体在包含Hoaglands培养基的漂浮托盘中生长4周。选择对于NPT II PCR阳性的植物，并且罐装在具有溶液培养系统(hydroponic system)的10”罐中，所述溶液培养系统包含含有5μM CdCl₂的Hoaglands培养基。4-8周后，收获2 个中间叶样品，并且冷冻干燥用于金属分析，或在液氮中冷冻用于基因表达分析。称重约500mg烟草，并且通过微波加速、反应系统5消化系统(CEM corporation，Mathews，NC)在10ml浓缩HNO₃中消化。利用电感耦合等离子体质谱法("ICP-MS,"Agilent 7500A；Agilent Technologies，Palo Alto，CA)分析重金属浓度。作为非转基因烟草对照，在可比较条件下制备由磨抛检验的(polish-certified)弗吉尼亚烟草叶CTA-VTL-2组成的样品(Dybczynski等人，1997)。
图3B-3D显示在代表3个变种的多个第一代(T0)转基因品系的叶片中的Cd减少，所述转基因品系已进行遗传修饰以表达NtHMA RNAi多核苷酸(660-915)。在每个曲线图中，y轴单位是μg/mg组织。
图4B-4D显示在代表3个变种的多个第一代(T0)转基因品系的叶片中的Cd减少，所述转基因品系已进行遗传修饰以表达NtHMA RNAi多核苷酸(1382-1584)。在每个曲线图中，y轴单位是μg/mg组织。
实施例6
通过表达NtHMA RNAi多核苷酸减少转基因烟草叶中的NtHMA RNA转录物
为了测定NtHMA RNAi多核苷酸表达对内源NtHMA RNA转录物的稳态水平的影响，通过从代表3个烟草变种的多个转基因品系的叶片部分中分离细胞总RNA，测量NtHMA RNA转录物中的相对改变。
使用Reagent(Sigma-Aldrich，St.Louis，MO)从T0植物的中间叶中分离总RNA。为了去除DNA杂质，用无RNA酶的DNA酶(TURBO DNA-free，Ambion，Austin TX)处理经纯化的RNA。为了合成第一条cDNA链，利用High Capacity cDNA Archive Kit(Applied Biosystems，Foster City，CA)逆转录约10μg总RNA。为了测量样品中的NtHMA转录物水平，根据基于Taqman MGB探 针的化学作用执行定量2步RT-PCR。RT混合物包含4μM dNTP混合物、1X随机引物、1X RT缓冲液、10g cDNA、50U Multiscribe逆转录酶(Applied Biosystems)、2U Superase-In RNase Inhibitor(Ambion)和无核酸酶水。PCR混合物包含1X Taqman Universal PCR Master Mix(Applied Biosystems，Foster City，CA)、400nM正向引物、400nM反向引物、250nM Taqman MGB探针、2ng cDNA和无核酸酶水。利用ABI 7500Real-Time System(Applied Biosystems，Foster City，CA)且在下述扩增条件下执行RT-PCR：50℃2分钟；95℃10分钟；95℃15秒的40个循环；和60℃1分钟。为了标准化所测量的NtHMA RNA转录物水平，选择3-磷酸甘油醛脱氢酶(G3PDH)作为对照内源RNA转录物，其表达水平不响应在分析下的NtHMA RNAi多核苷酸的序列特异性RNA干扰活性。通过测定(a)/(b)比来计算由NtHMA RNAi多核苷酸表达引起的NtHMA RNA转录物水平中的改变倍数，其中(a)代表对于衍生自用NtHMA RNAi表达载体转化的转基因植物的样品测定的NtHMA RNA转录物水平的标准化值，和(b)代表对于用缺乏NtHMA RNAi RNAi构建体的对照表达载体转化的转基因植物的样品测定的NtHMA RNA转录物水平的标准化值。
图5A-C显示在多个第一代(T0)转基因品系中的标准化NtHMA RNA转录物水平，所述转基因品系已进行遗传修饰以表达目的NtHMA RNAi多核苷酸，如通过叶片提取物的定量实时PCR分析测定的。图5A显示对于多个独立衍生的K326转基因品系，通过NtHMA(660-915)RNAi多核苷酸的RNA干扰活性减少RNA转录物水平。图5B显示对于多个独立衍生的TN90转基因品系，通过NtHMA(660-915)RNAi多核苷酸的RNA干扰活性减少RNA转录物水平。图5C显示对于多个独立衍生的VA359转基因品系，通过NtHMA(660-915)RNAi多核苷酸的RNA干扰活性减少RNA转录物水平。NtHMA RNA转录物水平中的减少与对于所测试的相同转基因品系的中间叶中测量的Cd含量中的减少相一致。“PBI121”代表缺乏编码 NtHMA(660-915)RNAi多核苷酸的RNAi构建体的表达载体。
实施例7
经遗传修饰以表达NtHMA RNAi多核苷酸的转基因品系中的Cd和Zn分布
为了测定NtHMA(660-915)RNAi多核苷酸表达对叶片和根内的Cd和Zn分布的影响，分析3个变种的转基因植物的金属含量。选择每个变种即Flue-cured(K326)、Burley(TN90)和Dark(VA359)的5个转基因品系，用于显示在叶片中在最低范围下的Cd含量。收获这些转基因植物和对照植物的中间叶和根用于通过ICP_MS的金属分析。在收获前，所有植物在补充有5μM CdCl₂的Hoaglands培养基中生长8周。
表2列出了在代表3个烟草变种的几个转基因品系的叶片和根中测量的Cd和Zn水平，如下文提供的。在表2中，对于所有3个变种Flue-cured(K326)、Burley(TN90)和Dark(VA359)，通过表达NtHMA(660-915)RNAi多核苷酸基本上修饰叶片和根之间的Cd分布。对于K326转基因品系，当与K326对照植物中观察到的Cd水平相比较时，Cd减少％的范围为97.16-98.54％。对于TN90转基因品系，当与TN90对照中观察到的Cd水平相比较时，Cd减少％的范围为85.12-90.96％。对于VA359转基因品系，当与VA359对照中观察到的Cd水平相比较时，Cd减少％的范围为93.24-99.07％。当针对显示以158.3-205.96μg/g的Cd水平的2个NtHMA RNAi转基因缺乏对照品系(“VA359PBI121”)相比较时，VA359NtHMA-11转基因品系显示最低的Cd水平(1.62μg/g)和最高的Cd减少％(99.07％)。转基因品系的可比较根分析显示，相对于在分别的对照中观察到的Cd水平，大量的Cd可以在根中累积，导致根Cd水平中6.90-15.38的倍数增加。
与转基因品系的叶片中的显著Cd减少形成对比，叶片的Zn含量 基本上未减少，尽管在大多数转基因品系中观察到由NtHMA(660-915)RNAi多核苷酸表达引起的某些减少。根内的Zn含量(表3的最后一列)在所有转基因品系中都增加，导致K326和VA359变种的转基因品系中的4-6倍增加，和TN90变种中的3-5倍增加。
图6显示在多个第一代转基因品系的叶片和根之间的Cd和Zn分布，所述转基因品系已进行遗传修饰以表达目的NtHMA RNAi多核苷酸，如表2中呈现的。在图6的每个曲线图中，y轴单位是μg/mg组织。
表2

实施例8
经遗传修饰以表达NtHMA RNAi多核苷酸的转基因品系的各种组织中的Cd分布
为了测定NtHMA(1382-1584)RNAi多核苷酸表达对多种组织(即树皮、叶片、木髓和根)内的Cd分布的影响，分析代表2个变种Burley(TN90)和Flue-cured(K326)的几个转基因品系的金属含量。收获完全成熟的转基因植物和对照植物用于通过ICP_MS的金属分析。在收获前，所有植物在Hoaglands培养基中的5μM CdCl₂中生长8周。
表3列出了在几个转基因品系的树皮、叶片、木髓和根组织中的Cd含量，如下文提供的。在表3中，当与对照植物的那种相比较时，在所测试的所有转基因品系的树皮、叶片和木髓组织中Cd水平基本上减少。“对照”代表非转基因植物。“PBI121”代表用缺乏NtHMA RNAi RNAi构建体的表达载体转化的转基因植物。K326转基因品系的树皮、木髓和叶片中的Cd减少程度显著大于TN90转基因品系中观察到的那种。K326转基因植物中的RNAi(1382-1584)多核苷酸表达导致树皮中的9-11倍Cd减少、木髓中的6-13倍Cd减少、和叶片中的31-32倍Cd减少。TN90转基因植物中的RNAi(1382-1584)多核苷酸表达导致树皮中的4-7倍Cd减少、木髓中的5-8倍Cd减少、和叶片中的6-20倍Cd减少。相比之下，当与对照植物的那种相比较时，观察到这些转基因品系的根中Cd含量的更适度的增加(5-6倍)。
图7显示在多个第一代转基因品系的树皮(“B”)、叶片(“L”)、木髓(“P”)和根(“R”)中的Cd分布，所述转基因品系已进行遗传修饰以表达目的NtHMA RNAi多核苷酸，如表3中呈现的。在图7的每个曲线图中，y轴单位是μg/mg组织。
表3


实施例9
经遗传修饰以表达NtHMA RNAi多核苷酸的第二代转基因品系的叶片中的Cd减少
为了测定NtHMA(660-915)RNAi多核苷酸表达对叶片中的Cd含量的影响，使VA359变种的2个(T1)转基因品系的金属含量在包含可变Cd浓度的土壤中生长4周。通过PCR筛选经选择为卡那霉素阳性的2个转基因品系，06T498和06T506。用0、0.1、0.5或5μMCdCl₂使充满沙:土壤混合物的几个10”罐饱和。通过将Hoaglands培养基加入垫盘使3个植物/处理/转基因品系生长4周。观察叶的总数目、叶面积指数、叶重量、茎重量和根重量。使2个中间叶和根样品冷冻干燥，并且实施重金属分析。
图8显示在多个第二代(T1)转基因品系的叶片(“L”)和根(“R”)之间的Cd分布，所述转基因品系已进行遗传修饰以表达目的NtHMA RNAi多核苷酸。在图8的每个曲线图中，y轴单位是μg/mg组织。从图8中可见在测试的所有Cd浓度(0、0.1、0.5和5μM)下，转基因植物的Cd含量一致低于对照植物的那种。在所测试的多个转基因品系中观察到叶片的Cd含量中的减少(2-4.7倍)。在5μM CdCl₂下，关于品系06T498的Cd水平仅是对照植物的～20％。在所测试的多个转基因品系中观察到根Cd含量中的增加(4-16倍)。在5μMCdCl₂下，对于品系06T498观察到最高的根Cd含量(16倍增加)。因此，在表达NtHMA(660-915)RNAi多核苷酸的转基因品系中的叶片/芽中减少的重金属含量，暗示从根到叶片/芽的显著量的重金属的移动可以通过RNAi干扰而被阻断。该结果与在第一代转基因品系的叶片中观察到的Cd减少相一致，因为第二代转基因品系也证实(a) 在叶片中减少的Cd水平，和(b)在根中增加的Cd。相对于对照植物的那种，转基因品系未证实一般外观、生长和发育中的表型差异。
实施例10
NtHMA多核苷酸
NtHMA多核苷酸一般将包含磷酸二酯键，尽管在某些情况下，包括可能具有备选主链的核酸类似物，包括例如氨基磷酸酯、硫代磷酸盐、二硫代磷酸盐或O-甲亚磷酰胺连接(参见Eckstein，Oligonucleotides and Analogues：A Practical Approach，Oxford University Press)；以及肽核酸主链和连接。其他类似物核酸包括具有阳性主链；非离子主链和非核糖主链的那些，包括美国专利号5,235,033和5,034,506，以及第6和7章，ASC Symposium Series 580，Carbohydrate Modifications in Antisense Research，Sanghui&Cook，编辑中描述的那些。包含一种或多种碳环糖的核酸也包括在核酸的一种定义内。磷酸核糖主链的修饰可以由于各种原因而完成，例如增加此类分子在生理环境中的稳定性和半衰期，或作为生物芯片上的探针。可以制备天然存在的核酸和类似物的混合物；备选地，可以制备不同核酸类似物的混合物、以及天然存在的核酸和类似物的混合物。
各种参考文献公开了此类核酸类似物，包括例如，氨基磷酸酯(Beaucage等人，Tetrahedron 49(10):1925(1993)和其中的参考文献；Letsinger，J.Org.Chem.35:3800(1970)；Sprinzl等人，Eur.J.Biochem.81:579(1977)；Letsinger等人，Nucl.Acids Res.14:3487(1986)；Sawai等人，Chem.Lett.805(1984)，Letsinger等人，J.Am.Chem.Soc.110:4470(1988)；和Pauwels等人，Chemica Scripta 26:14191986))，硫代磷酸盐(Mag等人，Nucleic Acids Res.19:1437(1991)；和美国专利号5,644,048)，二硫代磷酸盐(Briu等人，J.Am.Chem.Soc.111:2321(1989)，O-甲基亚磷酰胺连接(参见Eckstein，Oligonucleotides and Analogues：A Practical Approach，Oxford University Press)，以及肽核酸主链和连接(参见Egholm， J.Am.Chem.Soc.114:1895(1992)；Meier等人，Chem.Int.Ed.Engl.31:1008(1992)；Nielsen，Nature，365:566(1993)；Carlsson等人，Nature 380:207(1996)，所有这些通过引用合并入本文)。其他类似物核酸包括具有阳性主链(Denpcy等人，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 92:6097(1995)；非离子主链(美国专利号5,386,023，5,637,684，5,602,240，5,216,141和4,469,863；Kiedrowshi等人，Angew.Chem.Intl.Ed.English 30:423(1991)；Letsinger等人，J.Am.Chem.Soc.110:4470(1988)；Letsinger等人，Nucleoside&Nucleotide 13:1597(1994)；第2和3章，ASC Symposium Series 580，"Carbohydrate Modifications in Antisense Research"，Ed.Y.S.Sanghui和P.Dan Cook；Mesmaeker等人，Bioorganic&Medicinal Chem.Lett.4:395(1994)；Jeffs等人，J.Biomolecular NMR 34:17(1994)；Tetrahedron Lett.37:743(1996))和非核糖主链，包括美国专利号5,235,033和5,034,506，以及第6和7章，ASC Symposium Series 580，"Carbohydrate Modifications in Antisense Research"，Ed.Y.S.Sanghui和P.Dan Cook中描述的那些。包含一种或多种碳环糖的核酸也包括在核酸的一种定义内(参见Jenkins等人，Chem.Soc.Rev.(1995)第169-176页)。几种核酸类似物在Rawls，C&E News，1997年6月2日第35页中描述。这些参考文献通过引用特别在此合并。
其他类似物包括其为肽核酸类似物的肽核酸(PNA)。这些主链在中性条件下基本上是非离子的，与天然存在的核酸的高荷电磷酸二酯主链形成对比。这导致2个优点。首先，PNA主链显示改善的杂交动力学。与完美匹配的碱基对相比较，PNA对于错配具有解链温度(Tm)中的更大改变。对于内部错配，DNA和RNA一般显示T_m中的2-4℃下降。对于非离子PNA主链，下降接近于7-9℃。类似地，由于其非离子性质，与这些主链附着的碱基的杂交对于盐浓度相对不敏感。此外，PNA不由细胞酶降解，并且因此可以更稳定。
在所公开的NtHMA多核苷酸及其片段的组合的用途中有片段作 为探针或引物或RNAi分子开发中的用途。此类片段一般包括DNA序列的至少约17个邻接核苷酸。在其他实施方案中，DNA片段包括DNA序列的至少30个或至少60个邻接核苷酸。影响杂交条件选择的基本参数和用于设计合适条件的指导由Sambrook等人，1989阐述，并且在上文详细描述。使用与上文阐述的氨基酸序列相组合的遗传密码的知识，可以制备简并寡核苷酸组。此类寡核苷酸例如在聚合酶链反应(PCR)中用作引物，由此分离且扩增DNA片段。在特定实施方案中，简并引物可以用作探针用于非人遗传文库。此类文库将包括但不限于cDNA文库、基因组文库和甚至电子EST(表达序列标记)或DNA文库。通过这种方法鉴定的同源序列随后将用作探针，以鉴定本文鉴定的NtHMA序列的非人同系物。
本发明还包括这样的多核苷酸和寡核苷酸，其在降低的严格条件下(一般是中等严格条件和通常高度严格(在本文中也称为“高严格”)条件)与本文描述的NtHMA多核苷酸杂交。影响杂交条件选择的基本参数和用于设计合适条件的指导由Sambrook，J.，E.F.Fritsch,和T.Maniatis(1989，Molecular Cloning：A Laboratory Manual，Cold Spring Harbor Laboratory Press，Cold Spring Harbor，N.Y.，第9和11章；和Current Protocols in Molecular Biology，1995，F.M.Ausubel等人，编辑，John Wiley&Sons，Inc.，节段2.10和6.3-6.4，通过引用合并入本文)阐述，并且可以基于例如多核苷酸的长度和/或碱基组成由普通技术人员容易地测定。达到中等严格条件的一种方法涉及使用包含5xSSC、0.5％SDS、1.0mM EDTA(pH 8.0)的预洗涤溶液，约50％甲酰胺、6xSSC的杂交缓冲液，和约55℃的杂交温度(或其他相似杂交溶液，例如包含约50％甲酰胺的溶液，与约42℃的杂交温度)，和约60℃在0.5xSSC、0.1％SDS中的洗涤条件。一般地，高度严格条件定义为如上的杂交条件，但伴随在约68℃、0.2xSSC、0.1％SDS下的洗涤。SSPE(1x SSPE是0.15M NaCl、10mM NaH₂PO4和1.25mM EDTA，pH 7.4)可以取代杂交和洗涤缓冲液中的SSC(1xSSC是0.15M NaCl和15mM柠檬酸钠)；洗涤在杂交完成后执行15 分钟。应当理解必要时通过应用控制杂交反应和双链体稳定性的基本原理，可以调整洗涤温度和洗涤盐浓度，以达到所需严格程度，如本领域技术人员已知且在下文进一步描述的(参见例如，Sambrook等人，1989)。当使核酸与未知序列的靶多核苷酸杂交时，杂交物长度假定为杂交核酸的那种。当使已知序列的核酸杂交时，杂交物长度可以通过下述进行测定：使核酸的序列比对，并且鉴定最佳序列互补性的一个或多个区域。关于长度预期小于50个碱基对的杂交物的杂交温度应比杂交物的解链温度(T_m)低5至10℃，其中T_m根据下述等式进行测定。对于长度小于18个碱基对的杂交物，T_m(℃)＝2(A+T碱基#)+4(G+C碱基#)。对于长度超过18个碱基对的杂交物，T_m(℃)＝81.5+16.6(log10[Na+])+0.41(％G+C)-(600/N)，其中N是杂交物中的碱基数目，并且[Na+]是杂交缓冲液中的钠离子浓度([Na+]对于1x SSC＝0.165M)。一般地，每个此类杂交核酸具有这样的长度，其为它与之杂交的本公开内容的多核苷酸长度的至少25％(通常至少50％、60％或70％，且最通常至少80％)，并且与它与之杂交的本公开内容的多核苷酸具有至少60％序列同一性(例如至少70％、75％、80％、85％、90％、95％、97.5％，或至少99％)。
实施例11
NtHMA多核苷酸
本公开内容的多肽可以通过在适合于表达本公开内容的多肽的培养条件下培养经转化的或重组宿主细胞进行制备。使用已知纯化过程，随后可以从此类培养物中纯化所得到的表达多肽。多肽的纯化还可以包括包含试剂的亲和柱，所述试剂将与多肽结合；穿过此类亲和树脂如伴刀豆球蛋白A-琼脂糖、肝素或Cibacrom blue 3GA的一个或多个柱步骤；涉及疏水相互作用色谱法的一个或多个步骤，利用此类树脂如苯基醚、丁基醚或丙醚；或免疫亲和色谱法。备选地，本公开内容的多肽也可以以促进纯化的形式表达。例如，它可以作为融合多肽表达，例如麦芽糖结合多肽(MBP)、谷胱甘肽 -5-转移酶(GST)或硫氧还蛋白(TRX)的那些。用于此类融合多肽的表达和纯化的试剂盒分别从New England BioLab(Beverly，Mass.)、Pharmacia(Piscataway，N.J.)和InVitrogen商购可得。多肽还可以用表位进行标记，并且随后通过使用针对此类表位的特异性抗体进行纯化。最后，可以采用一个或多个反相高效液相色谱法(RP-HPLC)步骤，其采用疏水RP-HPLC介质，例如具有悬挂甲基或其他脂肪族基团的硅胶，以进一步纯化多肽。还可以采用以各种组合的某些或所有前述纯化步骤，以提供基本上均质的重组多肽。因此纯化的多肽基本上不含其他哺乳动物多肽，并且依照本发明定义为“基本上纯化的多肽”；此类经纯化的多肽包括NtHMA多肽、片段、变体等。本公开内容的多肽和片段的表达、分离和纯化可以通过任何合适技术来完成，包括但不限于本文描述的方法。
还可以利用亲和柱例如针对本公开内容的多肽产生的单克隆抗体，以亲和纯化所表达的多肽。这些多肽可以使用常规技术例如在高盐洗脱缓冲液中从亲和柱中去除，并且随后透析到较低盐的缓冲液内用于使用或依赖于所利用的亲和基质通过改变pH或其他组分，或使用亲和部分的天然存在的底物例如衍生自本公开内容的多肽而竞争性去除。
本公开内容的多肽还可以通过已知的常规化学合成来产生。通过合成方法用于构建本公开内容的多肽或其片段的方法是本领域技术人员已知的。依靠与天然多肽共享一级、二级或三级结构和/或构象特征而合成构建的多肽序列可以具有与之共同的生物性质，包括生物活性。
实施例12
抗NtHMA抗体
在另一个实施方案中，本文提供了与本公开内容的多肽免疫反应的抗体。如本文所阐述的NtHMA多肽、片段、变体、融合多肽等可以在产生与之免疫反应的抗体中用作“免疫原”。此类抗体经由抗体的抗原结合位点与多肽特异性结合。特异性结合的抗体是将特异性识 别且结合NtHMA家族多肽、同系物和变体结合，但不特异性识别且结合其他分子的那些。在一个实施方案中，抗体对于具有如SEQ ID NO：2中所示的本公开内容的NtHMA氨基酸序列的多肽特异，并且不与其他多肽交叉反应。
更具体而言，多肽、片段、变体、融合多肽等包含引发抗体形成的抗原决定簇或表位。这些抗原决定簇或表位可以是线性或构象的(不连续的)。线性表位由多肽的单个氨基酸节段组成，而构象或不连续的表位由来自多肽链的不同区域的氨基酸节段组成，其在多肽折叠后达到紧密接近。表位可以通过本领域已知的任何方法进行鉴定。此外，来自本公开内容的多肽的表位可以在测定法中用作研究试剂，并且用于从物质例如多克隆血清或来自经培养的杂交瘤的上清液中纯化特异性结合抗体。此类表位或其变体可以使用本领域已知的技术产生，例如固相合成、多肽的化学或酶促切割、或使用重组DNA技术。
针对本公开内容的多肽的多克隆和单克隆抗体都可以通过常规技术进行制备。参见例如，Monoclonal Antibodies，Hybridomas：A New Dimension in Biological Analyses，Kennet等人(编辑)，Plenum Press，New York(1980)；和Antibodies：A Laboratory Manual，Harlow和Land(编辑)，Cold Spring Harbor Laboratory Press，Cold Spring Harbor，N.Y.,(1988)；Kohler和Milstein,(美国专利号4,376,110)；人B细胞杂交瘤技术(Kosbor等人，Immunology Today 4:72，1983；Cole等人，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 80:2026，1983)；和EBV-杂交瘤技术(Cole等人，1985，Monoclonal Antibodies And Cancer Therapy，Alan R.Liss，Inc.，第77-96页)。本文还考虑了产生对于本公开内容的多肽特异的单克隆抗体的杂交瘤细胞系。此类杂交瘤可以通过常规技术来产生且鉴定。对于抗体的产生，通过用NtHMA多肽、片段、变体或其突变体注射可以使多种宿主动物免疫接种。此类宿主动物包括但不限于例如兔、小鼠和大鼠，仅是举例说明。可以使用各种助剂(adjutants)以增加免疫应答。依赖于宿主物种，此类助剂包括但不限于弗氏(完全和不完全)、矿物凝胶例如氢氧化铝、表 面活性物质例如溶血卵磷脂、复合多元醇、多聚阴离子、肽、油乳状液、钥孔血蓝蛋白、二硝基苯酚、和潜在有用的人助剂例如BCG(卡介苗)和短小棒状杆菌(Corynebacterium parvum)。单克隆抗体可以通过常规技术回收。此类单克隆抗体可以是任何免疫球蛋白类别，包括IgG、IgM、IgE、IgA、IgD及其任何亚类。
本公开内容的抗体也可以在测定法中用于在体外或体内检测本公开内容的多肽或片段的存在。抗体还可以在通过免疫亲和色谱法纯化本公开内容的多肽或片段中采用。
实施例13
双链RNA
在一个实施方案中，本公开内容提供了用于抑制细胞(例如植物细胞)中的NtHMA基因表达的双链核糖核酸(dsRNA)分子，其中dsRNA包括包含互补性区域的反义链，所述互补性区域与NtHMA基因表达中形成的mRNA的至少部分互补，并且其中互补性区域长度小于30个核苷酸，并且其中所述dsRNA在与表达所述NtHMA基因的细胞接触后，使所述NtHMA基因的表达抑制至少20％。dsRNA包括充分互补的2条RNA链，以杂交形成双链体结构。dsRNA的一条链(反义链)包括互补性区域，其与靶序列基本上互补且一般完全互补，所述靶序列衍生自在NtHMA基因的表达过程中形成的mRNA的序列，另一条链(正义链)包括与反义链互补的区域，从而使得当在合适条件下相组合时，2条链杂交且形成双链体结构。双链体结构长度为约15至30(例如约18至25)、一般约19至24(例如21至23)个碱基对。类似地，与靶序列具有互补性的区域长度为15至30(例如约18至25)、一般约19至24(例如21至23)个碱基对。本公开内容的dsRNA可以进一步包括一个或多个单链核苷酸突出端。dsRNA可以通过如下文进一步讨论的本领域已知的标准方法进行合成，例如通过使用例如从例如Biosearch，Applied Biosystems，Inc商购可得的自动化DNA合成仪。在另一个方面，表达载体可以用于在体内表达 RNAi分子。
本公开内容的dsRNA可以包含与靶序列的一个或多个错配。在一个实施方案中，本公开内容的dsRNA包含超过3个错配。如果dsRNA的反义链包含与靶序列的错配，那么一般错配区不位于互补性区域的中心。如果dsRNA的反义链包含与靶序列的错配，那么一般错配限制于距离任一末端5个核苷酸，例如距离互补性区域的5'或3'末端5、4、3、2或1个核苷酸。例如，对于与NtHMA基因区域互补的23核苷酸dsRNA链，dsRNA优选不包含在中心13个核苷酸内的任何错配。在本公开内容内描述的方法可以用于测定包含与靶序列的错配的dsRNA是否有效抑制NtHMA基因的表达。
在一个实施方案中，dsRNA的至少一个末端具有1至4(例如1或2个核苷酸)的单链核苷酸突出端。具有至少一个核苷酸突出端的dsRNA具有抑制性质。dsRNA还可以具有一般位于反义链的5'末端处的平头末端。
在另外一个实施方案中，dsRNA进行化学修饰以增强稳定性。本公开内容的核酸可以通过本领域良好建立的方法进行合成和/或修饰，例如在"Current protocols in nucleic acid chemistry"，Beaucage，S.L.等人(Edrs.)，John Wiley&Sons，Inc.，New York，N.Y.，USA中描述的那些，其通过引用在此合并入本文。化学修饰可以包括但不限于2'修饰、非天然碱基的引入、与配体共价附着、和用硫代磷酸盐连接替换磷酸盐连接。在这个实施方案中，双链体结构的完整性通过至少一个且一般两个化学连接得到增强。化学连接可以通过各种众所周知的技术中的任何来实现，例如通过引入共价、离子或氢键；疏水相互作用、范德华或叠加相互作用；借助于金属离子配位，或通过使用嘌呤类似物。
在另外一个实施方案中，在2条单链之一或两者上的核苷酸可以进行修饰，以预防或抑制细胞酶的活化，所述细胞酶例如但不限于特定核酸酶。用于抑制细胞酶活化的技术是本领域已知的，包括但不限于，2'-氨基修饰、2'-氟修饰、2'-烷基修饰、不荷电的主链修饰、吗啉 代修饰、2'-O-甲基修饰、和氨基磷酸酯(参见例如Wagner，Nat.Med.(1995)1:1116-8)。因此，在dsRNA上的核苷酸的至少一个2'-羟基可以由化学基团替换。此外，至少一个核苷酸可以进行修饰，以形成锁核酸。此类锁核酸包含亚甲基或亚乙基桥，其使核糖的2'-氧与核糖的4'-碳相连接。包含锁核酸的寡核苷酸在Koshkin，A.A.，等人，Tetrahedron(1998)，54：3607-3630)和Obika，S.等人，Tetrahedron Lett.(1998)，39：5401-5404)中描述。将锁核酸引入寡核苷酸内改善对于互补序列的亲和力，并且使解链温度增加数度(Braasch，D.A.和D.R.Corey，Chem.Biol.(2001)，8:1-7)。
使配体与dsRNA缀合可以增强其细胞吸收。在特定情况下，使疏水配体与dsRNA缀合，以促进细胞膜的直接渗透。备选地，与dsRNA缀合的配体是用于受体介导的胞吞作用的底物。这些方法已用于促进反义寡核苷酸的细胞渗透。在特定情况下，阳离子配体与寡核苷酸的缀合通常导致改善的对核酸酶的抗性。阳离子配体的代表性例子是丙铵和二甲基丙铵。有趣的是，据报告当阳离子配体分散遍及寡核苷酸时，反义寡核苷酸保留其对于mRNA的高结合亲和力。参见M.Manoharan Antisense&Nucleic Acid Drug Development 2002，12，103和其中的参考文献。
实施例15
用于鉴定NtHMA调节试剂的方法
本公开内容提供了用于鉴定可以调节NtHMA表达水平和/或活性的试剂的方法。可以进行筛选以鉴定NtHMA特异性调节活性的候选物(“测试试剂”)包括小分子、化学制品、拟肽、抗体、肽、多核苷酸(例如RNAi、siRNA、反义或核酶分子)、和通过以计算机为基础的设计开发的试剂。NtHMA的调节包括活性或表达中的增加或减少。例如，用于鉴定可以调节NtHMA表达和/或活性的候选物的方法包括：使包含NtHMA多肽或多核苷酸的样品与测试试剂在这样的条件下接触，所述条件允许测试试剂和NtHMA多肽或多核苷酸相互作 用，并且测量在测试试剂的存在或不存在下NtHMA多肽的表达和/或活性。
在一个实施方案中，使包含NtHMA多核苷酸的细胞与测试试剂在这样的条件下接触，从而使得允许细胞和测试试剂相互作用。此类条件一般包括本领域已知的、与所采用的具体细胞类型一致的标准细胞培养条件。可能希望允许测试试剂和细胞在与增加的温度相关的条件下或在促进测试试剂经由细胞的摄取的试剂的存在下相互作用。对照是类似处理但不存在测试试剂的情况下。备选地，NtHMA活性或表达可以在与测试试剂接触前进行测量(例如，标准或对照测量)，并且随后在与测试试剂接触后再次进行测量。经处理的细胞随后与对照进行比较，并且与对照相比较，NtHMA的表达或活性中的差异指示调节NtHMA活性或表达的试剂。
当测量NtHMA表达时，检测细胞中编码NtHMA多肽的mRNA量可以通过例如PCR或Northern印迹进行定量。当测量样品中的NtHMA多肽的量中的改变时，使用已知技术通过使用抗NtHMA抗体检测NtHMA，可以用于定量细胞中的NtHMA多肽的量。备选地，可以在与测试试剂接触前和后测量生物活性(例如，重金属转运)。
应当理解，尽管为了举例说明的目的，本文已描述了本发明的特定实施方案，但可进行各种修饰而不背离本发明的精神和范围。因此，本发明仅受附加权利要求限制。除非另有说明，所有技术和科学术语具有如本领域技术人员通常理解的标准含义。尽管已特别描述了示例性方法、设备和材料，但可能与本文描述的那些相似或等价的备选方法和材料可应用于制备所公开的组合物和实践所公开的方法。
本文引用或描述的任何出版物提供了在本申请的提交日期前所公开的相关信息。本文的陈述不应解释为承认本发明人未给予先于此类本公开内容的权利。
优选的实施方式：
1.经分离的多核苷酸，其选自：
包括这样的序列或由这样的序列组成且编码具有P1B型ATP酶活性的NtHMA转运蛋白的多核苷酸，所述序列与SEQ ID NO：1具有至少70％序列同一性；
包括这样的序列或由这样的序列组成的多核苷酸，所述序列与SEQ ID NO：3具有至少70％序列同一性；
包括这样的序列或由这样的序列组成的多核苷酸，所述序列与SEQ ID NO：47具有至少70％序列同一性；
包括编码这样的多肽的序列或由编码这样的多肽的序列组成的多核苷酸，所述多肽与SEQ ID NO：2具有至少70％序列同一性，其中所述多肽是具有P1B型ATP酶活性的NtHMA转运蛋白；和
包括编码这样的多肽的序列或由编码这样的多肽的序列组成的多核苷酸，所述多肽与SEQ ID NO：49具有至少70％序列同一性，其中所述多肽是具有P1B型ATP酶活性的NtHMA转运蛋白。
2.表达载体，其包括项目1的经分离的多核苷酸。
3.通过这样的方法制备的转基因植物，所述方法包括引入项目1的经分离的多核苷酸或项目2的表达载体。
4.通过这样的方法制备的细胞系，所述方法包括引入项目1的经分离的多核苷酸或项目2的表达载体。
5.可消费烟草产品，其并入从项目3的转基因植物中收获的叶。
6.能够抑制它与之相对应的NtHMA信使RNA表达的NtHMA RNAi构建体，所述构建体包括下述或由下述组成：
与SEQ ID NO：3或47的部分具有至少70％序列同一性的第一序列；
第二序列；和
以与所述第一序列相同的定向放置、具有所述第一序列的反向互补序列的第三序列，
其中所述第二序列放置在所述第一序列和所述第三序列之间，并 且所述第二序列与所述第一序列和所述第三序列可操作地连接。
7.项目6的NtHMA RNAi构建体，其中：
(a)所述第一序列与选自下述一个或多个的序列具有至少95％序列同一性：外显子1(SEQ ID NO：5)、外显子1(SEQ ID NO：5)的片段、外显子2(SEQ ID NO：7)、外显子2(SEQ ID NO：7)的片段、外显子3(SEQ ID NO：9)、外显子3(SEQ ID NO：9)的片段、外显子4(SEQ ID NO：11)、外显子4(SEQ ID NO：11)的片段、外显子5(SEQ ID NO：13)、外显子5(SEQ ID NO：13)的片段、外显子6(SEQ ID NO：15)、外显子6(SEQ ID NO：15)的片段、外显子7(SEQ ID NO：17)、外显子7(SEQ ID NO：17)的片段、外显子8(SEQ ID NO：19)、外显子8(SEQ ID NO：19)的片段、外显子9(SEQ ID NO：21)、外显子9(SEQ ID NO：21)的片段、外显子10(SEQ ID NO：23)、外显子10(SEQ ID NO：23)的片段、外显子11(SEQ ID NO：25)、和外显子11(SEQ ID NO：25)的片段；
(b)所述第二序列与选自下述一个或多个的序列具有至少95％序列同一性：内含子1(SEQ ID NO：4)、内含子1(SEQ ID NO：4)的片段、内含子2(SEQ ID NO：6)、内含子2(SEQ ID NO：6)的片段、内含子3(SEQ ID NO：8)、内含子3(SEQ ID NO：8)的片段、内含子4(SEQ ID NO：10)、内含子4(SEQ ID NO：10)的片段、内含子5(SEQ ID NO：12)、内含子5(SEQ ID NO：12)的片段、内含子6(SEQ ID NO：14)、内含子6(SEQ ID NO：14)的片段、内含子7(SEQ ID NO：16)、内含子7(SEQ ID NO：16)的片段、内含子8(SEQ ID NO：18)、内含子8(SEQ ID NO：18)的片段、内含子9(SEQ ID NO：20)、内含子9(SEQ ID NO：20)的片段、内含子10(SEQ ID NO：22)、内含子10(SEQ ID NO：22)的片段、内含子11(SEQ ID NO：24)、内含子11(SEQ ID NO：24)的片段、内含子12(SEQ ID NO：26)、和内含子12(SEQ ID NO：26)的片段；
(c)所述第三序列与选自下述一个或多个的序列具有至少95％序列同一性：SEQ ID NO：27、SEQ ID NO：27的片段、SEQ ID NO：28、SEQ ID NO：28的片段、SEQ ID NO：29、SEQ ID NO：29的片段、SEQ ID NO：30、SEQ ID NO：30的片段、SEQ ID NO：31、SEQ ID NO：31的片段、SEQ ID NO：32、SEQ ID NO：32的片段、SEQ ID NO：33、SEQ ID NO：33的片段、SEQ ID NO：34、SEQ ID NO：34的片段、SEQ ID NO：35、SEQ ID NO：35的片段、SEQ ID NO：36、SEQ ID NO：36的片段、SEQ ID NO：37、和SEQ ID NO：37的片段；
(d)所述第一序列包括SEQ ID NO：38，所述第二序列包括SEQ ID NO：39，并且所述第三序列包括SEQ ID NO：40；
(e)所述第一序列包括SEQ ID NO：42，所述第二序列包括SEQ ID NO：43，并且所述第三序列包括SEQ ID NO：44；或
(f)(a)、(b)、(c)、(d)和(e)中的一个或两个或三个。
8.项目6的NtHMA RNAi构建体，其中所述第一个和第二序列各自具有选自下述的长度：20-30个核苷酸、30-50个核苷酸、50-100个核苷酸、100-150个核苷酸、150-200个核苷酸、200-300个核苷酸、300-400个核苷酸、400-500个核苷酸、500-600个核苷酸、和600-700个核苷酸。
9.包括项目6-8中任一项的RNAi的转基因植物，与非转基因对应物中的部分相比较，所述转基因植物在植物的至少部分中具有减少的Cd水平。
10.可消费烟草产品，其并入从项目9的转基因植物中收获的叶。
11.项目10的产品，其中Cd减少％是至少约5％、10％、15％、20％、25％、30％、35％、40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％或99％的值。
12.项目10或项目11的产品，其中所述Cd含量是约0.01至约 0.05ppm、约0.01至约0.1ppm、约0.01至约0.5ppm、约0.01至约1.0ppm、或约0.01至约5ppm的值。
13.用于减少植物的至少部分中的Cd水平的方法，其包括：
通过引起RNAi构建体的表达减少所述植物中的NtHMA mRNA水平。
14.项目13的方法，其中所述RNAi构建体包括：
与SEQ ID NO：3或47的部分具有至少90％序列同一性的第一序列；
第二序列；和
以与所述第一序列相同的定向放置、具有所述第一序列的反向互补序列的第三序列，
其中所述第二序列放置在所述第一序列和所述第三序列之间，并且所述第二序列与所述第一序列和所述第三序列可操作地连接。
15.项目13或项目14的方法，其中在所述RNAi构建体表达后，所述植物的部分具有减少至少约5％、10％、15％、20％、25％、30％、35％、40％、45％、50％、55％、60％、65％、70％、75％、80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％或99％的Cd含量。
16.项目13至15中任一项的方法，其中在所述RNAi构建体表达后，所述植物的部分具有约0.01至约0.05ppm、约0.01至约0.1ppm、约0.01至约0.5ppm、约0.01至约1.0ppm、或约0.01至约5ppm的Cd含量。
17.基本上纯化的多肽，其与SEQ ID NO：2或49具有至少70％序列同一性或至少95％序列同一性，其中所述多肽是具有P1B型ATP酶活性的NtHMA转运蛋白。
18.抗体，其与如项目17中限定的多肽特异性结合，例如包括SEQ ID NO：2或49或由SEQ ID NO：2或49组成的多肽。