一种海胆黄多糖规模化分离纯化方法.pdf

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摘要
申请专利号:

CN201010525618.1

申请日:

2010.10.29

公开号:

CN101974097A

公开日:

2011.02.16

当前法律状态:

授权

有效性:

有权

法律详情:

授权|||实质审查的生效IPC(主分类):C08B 37/00申请日:20101029|||公开

IPC分类号:

C08B37/00; C12S3/02

主分类号:

C08B37/00

申请人:

中国药科大学

发明人:

周长林; 奚涛; 高宇; 王慧; 窦洁

地址:

210009 江苏省南京市童家巷24号

优先权:

专利代理机构:

南京苏科专利代理有限责任公司 32102

代理人:

孙立冰

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内容摘要

本发明涉及生物医药领域,具体涉及一种海胆黄多糖规模化分离纯化方法,其特征是现有的提取分离方法基础上,浓缩步骤采用超滤浓缩,Cellulose DE52离子交换柱层析后再次进行超滤浓缩,Sephacryl S-400HR凝胶过滤柱层析后采用透析除杂质。本发明着重于海胆黄多糖的分离纯化方法及其规模化提纯工艺,不仅可以得到高产率、高纯度的海胆黄多糖,也为其进入工业化生产提供技术基础。

权利要求书

1: 一种海胆黄多糖规模化分离纯化方法, 包括将光棘球海胆黄脱脂、 热水浸提、 木瓜蛋 白酶法去蛋白、 浓缩、 乙醇沉淀、 Cellulose DE52 离子交换柱层析、 Sephacryl S-400HR 凝胶 过滤柱层析、 浓缩、 干燥, 其特征是 : 浓缩步骤采用超滤浓缩, Cellulose DE52 离子交换柱层 析后再次进行超滤浓缩, Sephacryl S-400HR 凝胶过滤柱层析后采用透析除杂质。
2: 权利要求 1 的分离纯化方法, 其中超滤步骤采用截流分子量为 100K 的超滤膜。
3: 权利要求 1 的分离纯化方法, 其中透析用的是截留分子量为 14000Da 的透析袋。
4: 权利要求 1 的分离纯化方法, 其中木瓜蛋白酶去蛋白时加入 0.6% w/w 的木瓜蛋白 酶。
5: 权利要求 1 的分离纯化方法, 依次包括下列步骤 : (1) 丙酮脱脂 : 以光棘球海胆黄为原料, 加入等体积的丙酮, 搅拌, 静置, 弃上层丙酮, 减压挥干, 研磨制成海胆黄丙酮粉 ; (2) 热水浸提 : 将海胆黄丙酮粉置于 10-50 倍水中, 90℃煮 2-10h, 收集提取液, 减压浓 缩至原提取液体积的 1/2 以下 ; (3) 木瓜蛋白酶法去蛋白 : 调海胆黄提取液 pH =
6: 5, 加入 0.6% w/w 的木瓜蛋白酶, 60℃保温 20-24h, 90℃加热 15min 使酶失活, 离心收集上清液 ; (4) 超滤浓缩 : 选择截流分子量为 100K 的超滤膜, 除去木瓜蛋白酶、 残留的蛋白质和小 分子杂质 ; 经超滤后, 浓缩至原溶液体积的 1/4 ; (5) 乙醇沉淀 : 向超滤去蛋白浓缩后的多糖提取液, 缓缓加入 2-6 倍体积的无水乙醇, 离心收集沉淀, 将沉淀用丙酮洗涤, 真空干燥得海胆黄粗多糖 ; (6)Cellulose DE52 离子交换柱层析 : 将海胆黄粗多糖配成 50mg/ml 的水溶液, 过平衡 好的 DE52 纤维素离子交换柱, 双蒸水进行洗脱, 分部收集, 苯酚 - 硫酸法逐管测定糖含量, 绘制洗脱曲线, 合并相同组分 ; (7) 超滤浓缩 : 选择截流分子量为 100K 的超滤膜, 将离子交换收集到的组分浓缩至 20mg/ml ; (8)Sephacryl S-400HR 凝 胶 过 滤 柱 层 析 纯 化 : 浓 缩 后 的 多 糖 组 分, 过平衡好的 SephacrylS-400HR 层析柱, 用双蒸水进行洗脱, 分部收集, 苯酚 - 硫酸法逐管测定糖含量, 合并相同组分 ; (9) 透析除杂质 : 选择截流分子量为 14000Da 的透析袋对 (8) 中收集的组分进一步除 杂质, 50℃水浴透析, 磁力搅拌, 每 3-4h 更换水浴, 透析 1-3 天 ; (10) 冷冻干燥 : 将 (9) 收集的组分浓缩后冷冻干燥, 得到海胆黄多糖。

说明书


一种海胆黄多糖规模化分离纯化方法

    【技术领域】
     本发明涉及生物医药领域, 具体涉及一种一种海胆黄多糖规模化分离纯化方法。背景技术 各国科学家通过对不同来源的多糖进行广泛研究, 发现多糖具有抗肿瘤、 心血管 疾病治疗、 免疫调节等作用。海胆黄多糖是从光棘球海胆中分离纯化得到的多糖, 利用物 理化学分析和 GC 分析对其结构进行鉴定, 证明为首次从海胆黄中分离到的一种结构新颖 的葡聚糖。 药理实验研究表明, 海胆黄多糖不但具有免疫调节活性, 还有具有天然抗肿瘤活 性。1985 年香菇多糖首先在日本被开发成注射液成进入临床应用, 作为免疫调节剂和肿瘤 放化疗治疗的辅助药物, 效果显著。 从此, 关于多糖类药物的研究引起了世界各国科学家的 广泛关注, 逐渐成为新药研究与开发的一个热门领域。多糖本身结构多样, 分离方法复杂, 需要经过多个步骤多种方法并用才能得到较为理想的纯度要求, 但在分离过程中样品的损 失也不可避免。
     据刘纯慧海 ( 胆黄多糖 SEP 的制备及其抗肿瘤作用研究, 刘纯慧, 叶亮, 林亲雄, 奚 涛等, [J]Pharmaceutical Biotechnology 2006, 13(6) : 429-432) 等人报道, 海胆黄多糖的 提取流程一般为丙酮脱脂、 热水浸提 (20 倍水, 90℃煮 6h, 反复提取 3 次 )、 木瓜蛋白酶 (W/V 0.5% )-Sevag 法 (10 次 ) 去蛋白、 减压浓缩、 乙醇沉淀、 Cellulose DE52 离子交换柱层析、 SephacrylS-400HR 凝胶过滤柱层析纯化、 减压浓缩、 冷冻干燥。 其中 Sevag 法是根据蛋白质 在氯仿和正丁醇等有机溶剂中变性的特点, 将氯仿和正丁醇按 5 ∶ 1 配成混合试剂加入多 糖提取液, 或先将氯仿按多糖提取液 1/5 体积加入, 随之再加入氯仿体积 1/5 的正丁醇, 剧 烈振摇 15-20min, 蛋白质变性成胶状, 存在于水相与溶剂相的交界面, 离心除去水层与溶剂 层交界处的变性蛋白。此法条件温和, 缺点是效率不高, 多糖收率低, 一般要重复 5 次甚至 更多次数才能去尽蛋白。这种方法需要使用大量的有机试剂, 操作要求严格, 周期长。此外 减压浓缩只能减少样品体积, 不能出去杂质, 这些对于海胆黄多糖的工业规模化生产造成 不便。 经研究, 海胆黄多糖具有多种药理作用, 因此, 改进海胆黄多糖分离纯化技术和规模, 才能更好的开发利用。
     发明内容
     本发明公开了一种分离纯化海胆黄多糖规模化分离纯化方法, 本发明的方法分离 得到海胆黄多糖产率高, 纯度好, 提取成本低, 规模化生产价值高。
     目前文献公开的制备方法主要包括 : 将光棘球海胆黄脱脂、 热水浸提、 木瓜蛋白酶 法去蛋白、 浓缩、 乙醇沉淀、 Cellulose DE52 离子交换柱层析、 Sephacryl S-400HR 凝胶过滤 柱层析、 浓缩、 干燥, 本发明在此技术上进行改进, 将现有的减压浓缩改进成采用超滤浓缩, 在 Sephacryl S-400HR 凝胶过 并且 Cellulose DE52 离子交换柱层析后再次进行超滤浓缩, 滤柱层析后增加透析除杂质步骤。
     其中超滤步骤优选采用截流分子量为 100K 的超滤膜。优选透析用的是截留分子量为 14000Da 的透析袋。
     木瓜蛋白酶去蛋白时优选加入 0.6 % (w/w) 的木瓜蛋白酶。优选的去蛋白方法 为: 调海胆黄提取液 pH = 6.5, 加入 0.6% (w/w) 的木瓜蛋白酶, 60℃保温 20-24h, 90℃加 热 15min 使酶失活, 离心收集上清液。
     实验发现, 加入木瓜蛋白酶的量对海胆黄多糖的收率有一定影响, 对比文件中采 用 0.5%, 其收率大概 80%, 发明人曾尝试过不同的酶浓度进行去蛋白, 加入考马斯亮蓝试 剂在 595nm 处检测溶液的吸光度, 结果如附图 1 所示, 在 2h 时, 酶浓度是 0.7 %的提取液 中蛋白含量为 0.441, 低于 0.6%的蛋白含量 0.447, 但是 2h 后蛋白含量总体水平明显高于 0.6%。10h 木瓜蛋白酶去蛋白基本达到平衡。只有当酶浓度为 0.6%时, 海胆黄多糖提取 液中的蛋白含量在 10h 内最低, 相对于 0.4%、 0.5%、 0.7%、 0.8%去蛋白效果最好, 多糖收 率能达到 89%。
     现有技术采用的是减压浓缩, 本发明进一步研究发现, 采用超滤将大大提高海胆 黄多糖的收率, 并且有效节约生产时间, 降低生产成本。
     超滤在工业生产中普遍使用, 超滤不但能快速截留多糖分子, 在浓缩体积的同时 还能将样品中的杂质和小分子蛋白, 包括本提取方法中使用的分子量为 21000 的木瓜蛋白 酶都可以较为彻底的清除。文献中报道的使用木瓜蛋白酶 -Sevag 法组合去蛋白, 多糖回收 率约为 70%, 本发明使用木瓜蛋白酶 - 超滤组合法, 多糖回收率为 95%, 最大限度的降低除 蛋白过程中多糖的损失, 并避免使用大量有机试剂, 多糖的生物活性得以保护。 更详细更优选的制备方法如下 :
     (1) 丙酮脱脂 : 以光棘球海胆黄为原料, 加入等体积的丙酮, 搅拌, 静置, 弃上层丙 酮, 减压挥干, 研磨制成海胆黄丙酮粉 ;
     (2) 热水浸提 : 将海胆黄丙酮粉置于 10-50 倍水中, 90℃煮 2-10h, 收集提取液, 减 压浓缩至原提取液体积的 1/2 以下 ;
     (3) 木瓜蛋白酶法去蛋白 : 调海胆黄提取液 pH = 6.5, 加入 0.6% (w/w) 的木瓜蛋 白酶, 60℃保温 20-24h, 90℃加热 15min 使酶失活, 离心收集上清液 ;
     (4) 超滤浓缩 : 选择截流分子量为 100K 的超滤膜, 除去木瓜蛋白酶、 残留的蛋白质 和小分子杂质 ; 经超滤后, 浓缩至原溶液体积的 1/4 ;
     (5) 乙醇沉淀 : 向超滤去蛋白浓缩后的多糖提取液, 缓缓加入 2-6 倍体积的无水乙 醇, 离心收集沉淀, 将沉淀用丙酮洗涤, 真空干燥得海胆黄粗多糖 ;
     (6)Cellulose DE52 离子交换柱层析 : 将海胆黄粗多糖配成 50mg/ml 的水溶液, 过 平衡好的 DE52 纤维素离子交换柱, 双蒸水进行洗脱, 分部收集, 苯酚 - 硫酸法逐管测定糖含 量, 绘制洗脱曲线, 合并相同组分 ;
     (7) 超滤浓缩 : 选择截流分子量为 100K 的超滤膜, 将离子交换收集到的组分浓缩 至 20mg/ml ;
     (8)Sephacryl S-400HR 凝胶过滤柱层析纯化 : 浓缩后的多糖组分, 过平衡好的 SephacrylS-400HR 层析柱, 用双蒸水进行洗脱, 分部收集, 苯酚 - 硫酸法逐管测定糖含量, 合并相同组分 ;
     (9) 透析除杂质 : 选择截流分子量为 14000Da 的透析袋对 (8) 中收集的组分进一 步除杂质, 50℃水浴透析, 磁力搅拌, 每 3-4h 更换水浴, 透析 1-3 天 ;
     (10) 冷冻干燥 : 将 (9) 收集的组分浓缩后冷冻干燥, 得到海胆黄多糖。
     本发明采用超滤和透析, 并且找到了木瓜蛋白酶的最佳浓度进行除蛋白, 使得海 胆黄粗多糖的收率由 0.56%提高到 0.82%, 海胆黄多糖的收率由 6.3%提高到 10%, 一次 纯化后的海胆黄多糖纯度由 87.9%提高到 93.6%。分离纯化周期减少至原周期 1/2, 收率 提高近一倍。本发明着重于海胆黄多糖的分离纯化方法及其规模化提纯工艺, 不仅可以得 到高产率、 高纯度的海胆黄多糖, 也为其进入工业化生产提供技术基础。 附图说明 :
     图 1 是木瓜蛋白酶解时蛋白酶用量与去蛋白效果图
     图 2 是 Cellulose DE52 离子交换柱 (5.0cm×75cm) 洗脱曲线
     图 3 是 Sephacryl S-400HR 凝胶过滤柱层析 (5.8cm×50cm) 洗脱曲线
     图 4 是海胆黄多糖精品 HPLC 图谱, 纯度为 93.6% 具体实施方式
     实施例 1
     以新鲜的光棘球海胆 50kg 为原料, 取黄称重约 10kg, 切成小块, 置于搅拌罐中, 加 入等体积的丙酮, 搅拌使之与丙酮充分接触, 静置 30min, 弃上层丙酮, 反复 8 次至丙酮层基 本无色为止, 最后将丙酮减压挥干, 研磨制成海胆黄丙酮粉 1.5kg。将 1.5kg 海胆黄丙酮粉 置于 30 倍水 (112L) 中, 90℃煮 6h, 提取 2 次, 收集提取液, 减压浓缩至 56L。木瓜蛋白酶法 去蛋白, 调整海胆黄提取液 pH = 6.5, 加入 0.6% (w/w) 的木瓜蛋白酶, 60℃保温 24h, 90℃ 加热 15min 使酶失活, 离心收集上清液。选择截流分子量为 100K 的超滤膜, 除去木瓜蛋白 酶、 残留的蛋白质和小分子杂质。经超滤后, 浓缩至 14L。向超滤去蛋白浓缩后的多糖提取 液, 缓缓加入 4 倍体积 56L 的无水乙醇, 4℃放置过夜, 离心收集沉淀, 将沉淀用丙酮洗涤 3 次, 最后经真空干燥得海胆黄粗多糖 0.43kg。 将海胆黄粗多糖配成 50mg/ml 的水溶液, 过平 衡好的 DE 52 纤维素离子交换柱 (5.0cm×75cm)。双蒸水洗脱, 流速 5ml/min, 每管 5min 分 部收集, 苯酚 - 硫酸法在 490nm 处逐管测定糖含量, 绘制洗脱曲线, 合并相同组分。选择截 流分子量为 100K 的超滤膜, 将离子交换收集到的组分浓缩至 20mg/ml。 浓缩后的多糖组分, 过平衡好的 Sephacryl S-400HR 层析柱 (5.8cm×50cm), 双蒸水洗脱, 流速 0.5ml/min, 每管 10min 分部收集。苯酚 - 硫酸法在 490nm 处逐管测定糖含量, 合并相同组分。选择截流分子 量为 14000Da 的透析袋对 Sephacryl S-400HR 凝胶过滤柱层析中收集的相同组分进一步除 杂质, 50℃水浴透析, 磁力搅拌, 每 3-4h 更换水浴, 透析 3 天。将去除杂质后组分浓缩至一 定体积冷冻干燥, 得到精品海胆黄多糖 0.0422kg。 Agilent 高效液相色谱系统, 采用 Shodex sugar KS-805 色谱柱, 2414 示差折光检测器, 流动相为乐百氏纯净水, 样品浓度为 5.0mg/ ml, 进样量 20ul, 流速 1.0ml/min, 柱温 30℃, 记录样品色谱曲线, 检测纯度为 93.4%。各步 骤收率见表 1 :
     表 1 海胆黄多糖分离纯化收率
     实施例 2
     以新鲜的光棘球海胆 100kg 为原料, 取黄称重约 20kg, 切成小块, 置于搅拌罐中, 加入等体积的丙酮, 搅拌使之与丙酮充分接触, 静置 30min, 弃上层丙酮, 反复数次至丙酮层 基本无色为止 ( 约 6-8 次 ), 最后将丙酮减压挥干, 研磨制成海胆黄丙酮粉 3kg。 将 3kg 海胆 黄丙酮粉置于 30 倍水 (225L) 中, 90℃煮 6h, 提取 2 次, 收集提取液, 减压浓缩至 112L。木 瓜蛋白酶法去蛋白, 调整海胆黄提取液 pH = 6.5, 加入 0.6% (w/w) 的木瓜蛋白酶, 60℃保 温 20h, 90℃加热 15min 使酶失活, 离心收集上清液。选择截流分子量为 100K 的超滤膜, 除 去木瓜蛋白酶、 残留的蛋白质和小分子杂质。经超滤后, 浓缩至 28L。向超滤去蛋白浓缩后 的多糖提取液, 缓缓加入 4 倍体积 112L 的无水乙醇, 4℃放置过夜, 离心收集沉淀, 将沉淀用 丙酮洗涤 3 次, 最后经真空干燥得海胆黄粗多糖 0.84kg。将海胆黄粗多糖配成 50mg/ml 的 水溶液, 过平衡好的 DE52 纤维素离子交换柱 (5.8cm×100cm)。双蒸水洗脱, 流速 5ml/min, 每管 5min 分部收集, 苯酚 - 硫酸法在 490nm 处逐管测定糖含量, 绘制洗脱曲线, 合并相同 组分。选择截流分子量为 100K 的超滤膜, 将离子交换收集到的组分浓缩至 20mg/ml。浓缩 后的多糖组分, 过平衡好的 Sephacryl S-400HR 层析柱 (5.8cm×50cm), 双蒸水洗脱, 流速 0.5ml/min, 每管 10min 分部收集。苯酚 - 硫酸法在 490nm 处逐管测定糖含量, 合并相同组 分。选择截流分子量为 14000Da 的透析袋对 Sephacryl S-400HR 凝胶过滤柱层析中收集的 相同组分进一步除杂质, 50℃水浴透析, 磁力搅拌, 每 3-4h 更换水浴, 透析 3 天。将去除杂 质后组分浓缩至一定体积冷冻干燥, 得到精品海胆黄多糖 0.084kg。Agilent 高效液相色谱 系统, 采用 Shodex sugar KS-805 色谱柱, 2414 示差折光检测器, 流动相为乐百氏纯净水, 样 品浓度为 5.0mg/ml, 进样量 20ul, 流速 1.0ml/min, 柱温 30℃, 记录样品色谱曲线, 检测纯度 为 94%。各步骤收率见表 2 :
     表 2. 海胆黄多糖分离纯化收率
     实施例 3
     以新鲜的光棘球海胆 200kg 为原料, 取黄称重约 40kg, 切成小块, 置于搅拌罐中, 加入等体积的丙酮, 搅拌使之与丙酮充分接触, 静置 30min, 弃上层丙酮, 反复数次至丙酮层 基本无色为止 ( 约 6-8 次 ), 最后将丙酮减压挥干, 研磨制成海胆黄丙酮粉 6kg。 将 3kg 海胆 黄丙酮粉置于 30 倍水 (450L) 中, 90℃煮 6h, 提取 2 次, 收集提取液, 减压浓缩至 224L。木 瓜蛋白酶法去蛋白, 调整海胆黄提取液 pH = 6.5, 加入 0.6% (W/W) 的木瓜蛋白酶, 60℃保 温 22h, 90℃加热 15min 使酶失活, 离心收集上清液。选择截流分子量为 100K 的超滤膜, 除 去木瓜蛋白酶、 残留的蛋白质和小分子杂质。经超滤后, 浓缩至 56L。向超滤去蛋白浓缩后 的多糖提取液, 缓缓加入 4 倍体积 224L 的无水乙醇, 4℃放置过夜, 离心收集沉淀, 将沉淀用 丙酮洗涤 3 次, 最后经真空干燥得海胆黄粗多糖 1.65kg。将海胆黄粗多糖配成 50mg/ml 的 水溶液, 过平衡好的 DE52 纤维素离子交换柱 (7.5cm×75cm)。双蒸水洗脱, 流速 5ml/min, 每管 5min 分部收集, 苯酚 - 硫酸法在 490nm 处逐管测定糖含量, 绘制洗脱曲线, 合并相同 组分。选择截流分子量为 100K 的超滤膜, 将离子交换收集到的组分浓缩至 20mg/ml。浓缩 后的多糖组分, 过平衡好的 Sephacryl S-400HR 层析柱 (5.8cm×50cm), 双蒸水洗脱, 流速 0.5ml/min, 每管 10min 分部收集。苯酚 - 硫酸法在 490nm 处逐管测定糖含量, 合并相同组 分。选择截流分子量为 14000Da 的透析袋对 Sephacryl S-400HR 凝胶过滤柱层析中收集的 相同组分进一步除杂质, 50℃水浴透析, 磁力搅拌, 每 3-4h 更换水浴, 透析 3 天。将去除杂 质后组分浓缩至一定体积冷冻干燥, 得到精品海胆黄多糖 0.173kg。Agilent 高效液相色谱 系统, 采用 Shodex sugar KS-805 色谱柱, 2414 示差折光检测器, 流动相为乐百氏纯净水, 样 品浓度为 5.0mg/ml, 进样量 20ul, 流速 1.0ml/min, 柱温 30℃, 记录样品色谱曲线, 检测纯度 为 93.6%。各步骤收率见表 3 :
     表 3. 海胆黄多糖分离纯化收率
    

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1、10申请公布号CN101974097A43申请公布日20110216CN101974097ACN101974097A21申请号201010525618122申请日20101029C08B37/00200601C12S3/0220060171申请人中国药科大学地址210009江苏省南京市童家巷24号72发明人周长林奚涛高宇王慧窦洁74专利代理机构南京苏科专利代理有限责任公司32102代理人孙立冰54发明名称一种海胆黄多糖规模化分离纯化方法57摘要本发明涉及生物医药领域,具体涉及一种海胆黄多糖规模化分离纯化方法,其特征是现有的提取分离方法基础上,浓缩步骤采用超滤浓缩,CELLULOSEDE52离子。

2、交换柱层析后再次进行超滤浓缩,SEPHACRYLS400HR凝胶过滤柱层析后采用透析除杂质。本发明着重于海胆黄多糖的分离纯化方法及其规模化提纯工艺,不仅可以得到高产率、高纯度的海胆黄多糖,也为其进入工业化生产提供技术基础。51INTCL19中华人民共和国国家知识产权局12发明专利申请权利要求书1页说明书5页附图2页CN101974101A1/1页21一种海胆黄多糖规模化分离纯化方法,包括将光棘球海胆黄脱脂、热水浸提、木瓜蛋白酶法去蛋白、浓缩、乙醇沉淀、CELLULOSEDE52离子交换柱层析、SEPHACRYLS400HR凝胶过滤柱层析、浓缩、干燥,其特征是浓缩步骤采用超滤浓缩,CELLULO。

3、SEDE52离子交换柱层析后再次进行超滤浓缩,SEPHACRYLS400HR凝胶过滤柱层析后采用透析除杂质。2权利要求1的分离纯化方法,其中超滤步骤采用截流分子量为100K的超滤膜。3权利要求1的分离纯化方法,其中透析用的是截留分子量为14000DA的透析袋。4权利要求1的分离纯化方法,其中木瓜蛋白酶去蛋白时加入06W/W的木瓜蛋白酶。5权利要求1的分离纯化方法,依次包括下列步骤1丙酮脱脂以光棘球海胆黄为原料,加入等体积的丙酮,搅拌,静置,弃上层丙酮,减压挥干,研磨制成海胆黄丙酮粉;2热水浸提将海胆黄丙酮粉置于1050倍水中,90煮210H,收集提取液,减压浓缩至原提取液体积的1/2以下;3木。

4、瓜蛋白酶法去蛋白调海胆黄提取液PH65,加入06W/W的木瓜蛋白酶,60保温2024H,90加热15MIN使酶失活,离心收集上清液;4超滤浓缩选择截流分子量为100K的超滤膜,除去木瓜蛋白酶、残留的蛋白质和小分子杂质;经超滤后,浓缩至原溶液体积的1/4;5乙醇沉淀向超滤去蛋白浓缩后的多糖提取液,缓缓加入26倍体积的无水乙醇,离心收集沉淀,将沉淀用丙酮洗涤,真空干燥得海胆黄粗多糖;6CELLULOSEDE52离子交换柱层析将海胆黄粗多糖配成50MG/ML的水溶液,过平衡好的DE52纤维素离子交换柱,双蒸水进行洗脱,分部收集,苯酚硫酸法逐管测定糖含量,绘制洗脱曲线,合并相同组分;7超滤浓缩选择截流。

5、分子量为100K的超滤膜,将离子交换收集到的组分浓缩至20MG/ML;8SEPHACRYLS400HR凝胶过滤柱层析纯化浓缩后的多糖组分,过平衡好的SEPHACRYLS400HR层析柱,用双蒸水进行洗脱,分部收集,苯酚硫酸法逐管测定糖含量,合并相同组分;9透析除杂质选择截流分子量为14000DA的透析袋对8中收集的组分进一步除杂质,50水浴透析,磁力搅拌,每34H更换水浴,透析13天;10冷冻干燥将9收集的组分浓缩后冷冻干燥,得到海胆黄多糖。权利要求书CN101974097ACN101974101A1/5页3一种海胆黄多糖规模化分离纯化方法技术领域0001本发明涉及生物医药领域,具体涉及一种一。

6、种海胆黄多糖规模化分离纯化方法。背景技术0002各国科学家通过对不同来源的多糖进行广泛研究,发现多糖具有抗肿瘤、心血管疾病治疗、免疫调节等作用。海胆黄多糖是从光棘球海胆中分离纯化得到的多糖,利用物理化学分析和GC分析对其结构进行鉴定,证明为首次从海胆黄中分离到的一种结构新颖的葡聚糖。药理实验研究表明,海胆黄多糖不但具有免疫调节活性,还有具有天然抗肿瘤活性。1985年香菇多糖首先在日本被开发成注射液成进入临床应用,作为免疫调节剂和肿瘤放化疗治疗的辅助药物,效果显著。从此,关于多糖类药物的研究引起了世界各国科学家的广泛关注,逐渐成为新药研究与开发的一个热门领域。多糖本身结构多样,分离方法复杂,需要。

7、经过多个步骤多种方法并用才能得到较为理想的纯度要求,但在分离过程中样品的损失也不可避免。0003据刘纯慧海胆黄多糖SEP的制备及其抗肿瘤作用研究,刘纯慧,叶亮,林亲雄,奚涛等,JPHARMACEUTICALBIOTECHNOLOGY2006,136429432等人报道,海胆黄多糖的提取流程一般为丙酮脱脂、热水浸提20倍水,90煮6H,反复提取3次、木瓜蛋白酶W/V05SEVAG法10次去蛋白、减压浓缩、乙醇沉淀、CELLULOSEDE52离子交换柱层析、SEPHACRYLS400HR凝胶过滤柱层析纯化、减压浓缩、冷冻干燥。其中SEVAG法是根据蛋白质在氯仿和正丁醇等有机溶剂中变性的特点,将氯仿。

8、和正丁醇按51配成混合试剂加入多糖提取液,或先将氯仿按多糖提取液1/5体积加入,随之再加入氯仿体积1/5的正丁醇,剧烈振摇1520MIN,蛋白质变性成胶状,存在于水相与溶剂相的交界面,离心除去水层与溶剂层交界处的变性蛋白。此法条件温和,缺点是效率不高,多糖收率低,一般要重复5次甚至更多次数才能去尽蛋白。这种方法需要使用大量的有机试剂,操作要求严格,周期长。此外减压浓缩只能减少样品体积,不能出去杂质,这些对于海胆黄多糖的工业规模化生产造成不便。经研究,海胆黄多糖具有多种药理作用,因此,改进海胆黄多糖分离纯化技术和规模,才能更好的开发利用。发明内容0004本发明公开了一种分离纯化海胆黄多糖规模化分。

9、离纯化方法,本发明的方法分离得到海胆黄多糖产率高,纯度好,提取成本低,规模化生产价值高。0005目前文献公开的制备方法主要包括将光棘球海胆黄脱脂、热水浸提、木瓜蛋白酶法去蛋白、浓缩、乙醇沉淀、CELLULOSEDE52离子交换柱层析、SEPHACRYLS400HR凝胶过滤柱层析、浓缩、干燥,本发明在此技术上进行改进,将现有的减压浓缩改进成采用超滤浓缩,并且CELLULOSEDE52离子交换柱层析后再次进行超滤浓缩,在SEPHACRYLS400HR凝胶过滤柱层析后增加透析除杂质步骤。0006其中超滤步骤优选采用截流分子量为100K的超滤膜。说明书CN101974097ACN101974101A2。

10、/5页40007优选透析用的是截留分子量为14000DA的透析袋。0008木瓜蛋白酶去蛋白时优选加入06W/W的木瓜蛋白酶。优选的去蛋白方法为调海胆黄提取液PH65,加入06W/W的木瓜蛋白酶,60保温2024H,90加热15MIN使酶失活,离心收集上清液。0009实验发现,加入木瓜蛋白酶的量对海胆黄多糖的收率有一定影响,对比文件中采用05,其收率大概80,发明人曾尝试过不同的酶浓度进行去蛋白,加入考马斯亮蓝试剂在595NM处检测溶液的吸光度,结果如附图1所示,在2H时,酶浓度是07的提取液中蛋白含量为0441,低于06的蛋白含量0447,但是2H后蛋白含量总体水平明显高于06。10H木瓜蛋白。

11、酶去蛋白基本达到平衡。只有当酶浓度为06时,海胆黄多糖提取液中的蛋白含量在10H内最低,相对于04、05、07、08去蛋白效果最好,多糖收率能达到89。0010现有技术采用的是减压浓缩,本发明进一步研究发现,采用超滤将大大提高海胆黄多糖的收率,并且有效节约生产时间,降低生产成本。0011超滤在工业生产中普遍使用,超滤不但能快速截留多糖分子,在浓缩体积的同时还能将样品中的杂质和小分子蛋白,包括本提取方法中使用的分子量为21000的木瓜蛋白酶都可以较为彻底的清除。文献中报道的使用木瓜蛋白酶SEVAG法组合去蛋白,多糖回收率约为70,本发明使用木瓜蛋白酶超滤组合法,多糖回收率为95,最大限度的降低除。

12、蛋白过程中多糖的损失,并避免使用大量有机试剂,多糖的生物活性得以保护。0012更详细更优选的制备方法如下00131丙酮脱脂以光棘球海胆黄为原料,加入等体积的丙酮,搅拌,静置,弃上层丙酮,减压挥干,研磨制成海胆黄丙酮粉;00142热水浸提将海胆黄丙酮粉置于1050倍水中,90煮210H,收集提取液,减压浓缩至原提取液体积的1/2以下;00153木瓜蛋白酶法去蛋白调海胆黄提取液PH65,加入06W/W的木瓜蛋白酶,60保温2024H,90加热15MIN使酶失活,离心收集上清液;00164超滤浓缩选择截流分子量为100K的超滤膜,除去木瓜蛋白酶、残留的蛋白质和小分子杂质;经超滤后,浓缩至原溶液体积的。

13、1/4;00175乙醇沉淀向超滤去蛋白浓缩后的多糖提取液,缓缓加入26倍体积的无水乙醇,离心收集沉淀,将沉淀用丙酮洗涤,真空干燥得海胆黄粗多糖;00186CELLULOSEDE52离子交换柱层析将海胆黄粗多糖配成50MG/ML的水溶液,过平衡好的DE52纤维素离子交换柱,双蒸水进行洗脱,分部收集,苯酚硫酸法逐管测定糖含量,绘制洗脱曲线,合并相同组分;00197超滤浓缩选择截流分子量为100K的超滤膜,将离子交换收集到的组分浓缩至20MG/ML;00208SEPHACRYLS400HR凝胶过滤柱层析纯化浓缩后的多糖组分,过平衡好的SEPHACRYLS400HR层析柱,用双蒸水进行洗脱,分部收集,。

14、苯酚硫酸法逐管测定糖含量,合并相同组分;00219透析除杂质选择截流分子量为14000DA的透析袋对8中收集的组分进一步除杂质,50水浴透析,磁力搅拌,每34H更换水浴,透析13天;说明书CN101974097ACN101974101A3/5页5002210冷冻干燥将9收集的组分浓缩后冷冻干燥,得到海胆黄多糖。0023本发明采用超滤和透析,并且找到了木瓜蛋白酶的最佳浓度进行除蛋白,使得海胆黄粗多糖的收率由056提高到082,海胆黄多糖的收率由63提高到10,一次纯化后的海胆黄多糖纯度由879提高到936。分离纯化周期减少至原周期1/2,收率提高近一倍。本发明着重于海胆黄多糖的分离纯化方法及其规。

15、模化提纯工艺,不仅可以得到高产率、高纯度的海胆黄多糖,也为其进入工业化生产提供技术基础。附图说明0024图1是木瓜蛋白酶解时蛋白酶用量与去蛋白效果图0025图2是CELLULOSEDE52离子交换柱50CM75CM洗脱曲线0026图3是SEPHACRYLS400HR凝胶过滤柱层析58CM50CM洗脱曲线0027图4是海胆黄多糖精品HPLC图谱,纯度为936具体实施方式0028实施例10029以新鲜的光棘球海胆50KG为原料,取黄称重约10KG,切成小块,置于搅拌罐中,加入等体积的丙酮,搅拌使之与丙酮充分接触,静置30MIN,弃上层丙酮,反复8次至丙酮层基本无色为止,最后将丙酮减压挥干,研磨制成。

16、海胆黄丙酮粉15KG。将15KG海胆黄丙酮粉置于30倍水112L中,90煮6H,提取2次,收集提取液,减压浓缩至56L。木瓜蛋白酶法去蛋白,调整海胆黄提取液PH65,加入06W/W的木瓜蛋白酶,60保温24H,90加热15MIN使酶失活,离心收集上清液。选择截流分子量为100K的超滤膜,除去木瓜蛋白酶、残留的蛋白质和小分子杂质。经超滤后,浓缩至14L。向超滤去蛋白浓缩后的多糖提取液,缓缓加入4倍体积56L的无水乙醇,4放置过夜,离心收集沉淀,将沉淀用丙酮洗涤3次,最后经真空干燥得海胆黄粗多糖043KG。将海胆黄粗多糖配成50MG/ML的水溶液,过平衡好的DE52纤维素离子交换柱50CM75CM。

17、。双蒸水洗脱,流速5ML/MIN,每管5MIN分部收集,苯酚硫酸法在490NM处逐管测定糖含量,绘制洗脱曲线,合并相同组分。选择截流分子量为100K的超滤膜,将离子交换收集到的组分浓缩至20MG/ML。浓缩后的多糖组分,过平衡好的SEPHACRYLS400HR层析柱58CM50CM,双蒸水洗脱,流速05ML/MIN,每管10MIN分部收集。苯酚硫酸法在490NM处逐管测定糖含量,合并相同组分。选择截流分子量为14000DA的透析袋对SEPHACRYLS400HR凝胶过滤柱层析中收集的相同组分进一步除杂质,50水浴透析,磁力搅拌,每34H更换水浴,透析3天。将去除杂质后组分浓缩至一定体积冷冻干燥。

18、,得到精品海胆黄多糖00422KG。AGILENT高效液相色谱系统,采用SHODEXSUGARKS805色谱柱,2414示差折光检测器,流动相为乐百氏纯净水,样品浓度为50MG/ML,进样量20UL,流速10ML/MIN,柱温30,记录样品色谱曲线,检测纯度为934。各步骤收率见表10030表1海胆黄多糖分离纯化收率说明书CN101974097ACN101974101A4/5页600310032实施例20033以新鲜的光棘球海胆100KG为原料,取黄称重约20KG,切成小块,置于搅拌罐中,加入等体积的丙酮,搅拌使之与丙酮充分接触,静置30MIN,弃上层丙酮,反复数次至丙酮层基本无色为止约68次。

19、,最后将丙酮减压挥干,研磨制成海胆黄丙酮粉3KG。将3KG海胆黄丙酮粉置于30倍水225L中,90煮6H,提取2次,收集提取液,减压浓缩至112L。木瓜蛋白酶法去蛋白,调整海胆黄提取液PH65,加入06W/W的木瓜蛋白酶,60保温20H,90加热15MIN使酶失活,离心收集上清液。选择截流分子量为100K的超滤膜,除去木瓜蛋白酶、残留的蛋白质和小分子杂质。经超滤后,浓缩至28L。向超滤去蛋白浓缩后的多糖提取液,缓缓加入4倍体积112L的无水乙醇,4放置过夜,离心收集沉淀,将沉淀用丙酮洗涤3次,最后经真空干燥得海胆黄粗多糖084KG。将海胆黄粗多糖配成50MG/ML的水溶液,过平衡好的DE52纤。

20、维素离子交换柱58CM100CM。双蒸水洗脱,流速5ML/MIN,每管5MIN分部收集,苯酚硫酸法在490NM处逐管测定糖含量,绘制洗脱曲线,合并相同组分。选择截流分子量为100K的超滤膜,将离子交换收集到的组分浓缩至20MG/ML。浓缩后的多糖组分,过平衡好的SEPHACRYLS400HR层析柱58CM50CM,双蒸水洗脱,流速05ML/MIN,每管10MIN分部收集。苯酚硫酸法在490NM处逐管测定糖含量,合并相同组分。选择截流分子量为14000DA的透析袋对SEPHACRYLS400HR凝胶过滤柱层析中收集的相同组分进一步除杂质,50水浴透析,磁力搅拌,每34H更换水浴,透析3天。将去除。

21、杂质后组分浓缩至一定体积冷冻干燥,得到精品海胆黄多糖0084KG。AGILENT高效液相色谱系统,采用SHODEXSUGARKS805色谱柱,2414示差折光检测器,流动相为乐百氏纯净水,样品浓度为50MG/ML,进样量20UL,流速10ML/MIN,柱温30,记录样品色谱曲线,检测纯度为94。各步骤收率见表20034表2海胆黄多糖分离纯化收率0035说明书CN101974097ACN101974101A5/5页70036实施例30037以新鲜的光棘球海胆200KG为原料,取黄称重约40KG,切成小块,置于搅拌罐中,加入等体积的丙酮,搅拌使之与丙酮充分接触,静置30MIN,弃上层丙酮,反复数次。

22、至丙酮层基本无色为止约68次,最后将丙酮减压挥干,研磨制成海胆黄丙酮粉6KG。将3KG海胆黄丙酮粉置于30倍水450L中,90煮6H,提取2次,收集提取液,减压浓缩至224L。木瓜蛋白酶法去蛋白,调整海胆黄提取液PH65,加入06W/W的木瓜蛋白酶,60保温22H,90加热15MIN使酶失活,离心收集上清液。选择截流分子量为100K的超滤膜,除去木瓜蛋白酶、残留的蛋白质和小分子杂质。经超滤后,浓缩至56L。向超滤去蛋白浓缩后的多糖提取液,缓缓加入4倍体积224L的无水乙醇,4放置过夜,离心收集沉淀,将沉淀用丙酮洗涤3次,最后经真空干燥得海胆黄粗多糖165KG。将海胆黄粗多糖配成50MG/ML的。

23、水溶液,过平衡好的DE52纤维素离子交换柱75CM75CM。双蒸水洗脱,流速5ML/MIN,每管5MIN分部收集,苯酚硫酸法在490NM处逐管测定糖含量,绘制洗脱曲线,合并相同组分。选择截流分子量为100K的超滤膜,将离子交换收集到的组分浓缩至20MG/ML。浓缩后的多糖组分,过平衡好的SEPHACRYLS400HR层析柱58CM50CM,双蒸水洗脱,流速05ML/MIN,每管10MIN分部收集。苯酚硫酸法在490NM处逐管测定糖含量,合并相同组分。选择截流分子量为14000DA的透析袋对SEPHACRYLS400HR凝胶过滤柱层析中收集的相同组分进一步除杂质,50水浴透析,磁力搅拌,每34H更换水浴,透析3天。将去除杂质后组分浓缩至一定体积冷冻干燥,得到精品海胆黄多糖0173KG。AGILENT高效液相色谱系统,采用SHODEXSUGARKS805色谱柱,2414示差折光检测器,流动相为乐百氏纯净水,样品浓度为50MG/ML,进样量20UL,流速10ML/MIN,柱温30,记录样品色谱曲线,检测纯度为936。各步骤收率见表30038表3海胆黄多糖分离纯化收率0039说明书CN101974097ACN101974101A1/2页8图1图2说明书附图CN101974097ACN101974101A2/2页9图3图4说明书附图CN101974097A。

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