新的铁锌结合性调控因子以及通过其表达调节提高植物的耐缺铁性和促进可食用部分中的铁锌蓄积的技术.pdf

上传人:r7 文档编号:48951 上传时间:2018-01-20 格式:PDF 页数:53 大小:16.50MB
返回 下载 相关 举报
摘要
申请专利号:

CN201380018432.9

申请日:

2013.07.19

公开号:

CN104245933A

公开日:

2014.12.24

当前法律状态:

实审

有效性:

审中

法律详情:

实质审查的生效IPC(主分类):C12N 15/09申请日:20130719|||公开

IPC分类号:

C12N15/09; A01H5/00; C07K14/415; C07K16/16; C12N1/15; C12N1/19; C12N1/21; C12N5/10

主分类号:

C12N15/09

申请人:

独立行政法人科学技术振兴机构

发明人:

小林高范; 西泽直子

地址:

日本埼玉县

优先权:

2012.07.26 JP 2012-166233

专利代理机构:

中科专利商标代理有限责任公司 11021

代理人:

蒋亭

PDF下载: PDF下载
内容摘要

根据本发明,提供在石灰质土壤中表现出比通常的植物更优良的生长、并且在石灰质土壤和优良土壤这两种土壤中均能够大量地蓄积铁和锌的转化体和基因破坏株、以及它们的制作中使用的基因、载体、蛋白质、抗体、提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作方法/制作用组合物/制作用试剂盒/育种方法。本发明的蛋白质的特征在于,由下述(a)~(c)中任一种氨基酸序列构成,并且为铁锌结合性调控因子。(a)序列号1或2所示的氨基酸序列、(b)在序列号1或2所示的氨基酸序列中缺失、取代或添加一个~多个氨基酸而成的氨基酸序列、(c)与序列号1或2所示的氨基酸序列的同源性为80%以上的氨基酸序列。

权利要求书

1.  一种蛋白质,其特征在于,由下述(a)~(c)中任一种氨基酸序列构成,并且为铁锌结合性调控因子,
(a)序列号1或2所示的氨基酸序列,
(b)在序列号1或2所示的氨基酸序列中缺失、取代或添加一个~多个氨基酸而成的氨基酸序列,或者,
(c)与序列号1或2所示的氨基酸序列的同源性为80%以上的氨基酸序列。

2.
  一种基因,其特征在于,
编码权利要求1所述的蛋白质。

3.
  一种基因,其特征在于,
由下述(d)~(g)中任一种DNA构成,并且编码作为铁锌结合性调控因子的蛋白质,
(d)由序列号3或4所示的碱基序列构成的DNA,
(e)由在序列号3或4所示的碱基序列中缺失、取代或添加一个~多个碱基而成的碱基序列构成的DNA,
(f)由与序列号3或4所示的碱基序列的同源性为80%以上的碱基序列构成的DNA,或者,
(g)由能够与由序列号3或4所示的碱基序列所构成的DNA的互补碱基序列构成的DNA在严格的条件下杂交的碱基序列构成的DNA。

4.
  一种载体,其特征在于,
能够抑制权利要求2或3所述的基因的表达。

5.
  如权利要求4所述的载体,其能够表达可在mRNA水平上抑制所述基因的表达的RNAi诱导性核酸。

6.
  如权利要求5所述的载体,其中,
所述RNAi诱导性核酸为序列号5所示的碱基序列。

7.
  一种转化体,其特征在于,
通过将权利要求4~6中任一项所述的载体导入宿主中而形成。

8.
  一种基因破坏株,其特征在于,
具有权利要求2或3所述的基因由于整合插入序列而被破坏的基因组DNA。

9.
  一种抗体,其特征在于,
与权利要求1所述的蛋白质特异性地结合。

10.
  一种提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作方法,其特征在于,
包括将权利要求4~6中任一项所述的载体导入植物中的步骤。

11.
  一种提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作用组合物,其特征在于,
具备权利要求4~6中任一项所述的载体。

12.
  一种提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作用试剂盒,其特征在于,
具备权利要求4~6中任一项所述的载体。

13.
  一种提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的育种方法,其特征在于,
包括对来自植物的提取液中含有的权利要求1所述的蛋白质进行检测的步骤。

14.
  一种提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的育种方法,其特征在于,
包括对来自植物的提取液中含有的权利要求2或3所述的基因进行检测的步骤。

说明书

新的铁锌结合性调控因子以及通过其表达调节提高植物的耐缺铁性和促进可食用部分中的铁锌蓄积的技术
技术领域
本发明涉及提高植物的耐缺铁性和促进可食用部分中的铁锌蓄积。详细而言,本发明涉及具有对植物的耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积进行调控的作用的蛋白质、基因、载体、转化体、基因破坏株、抗体、提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作方法、提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作用组合物、提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作用试剂盒、以及提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的育种方法。
本申请要求以2012年7月26日在日本提出的特愿2012-166233号为基础的优先权,将其内容援引到本发明中。
背景技术
植物为了生长、进行碳固定和物质生产,需要铁和锌。植物通过吸收土壤中的铁和锌来将它们加以利用。
然而,在约占世界土壤的30%的石灰质碱性土壤中,可溶化的铁和锌少,其中,可溶化的铁极少。因此,对于石灰质碱性土壤中的植物的生长而言,缺铁成为主要的制约因素。
因此,当务之急是获得在以石灰质碱性土壤为代表的不良土壤中也可良好生长的植物。
另外,从土壤中吸收铁和锌的植物是人类的主要的矿物质供给源。缺铁症和缺锌症对于全世界的人类、特别是儿童和女性已经成为深刻的问题,因此,期望获得在可食用部分中含有大量的铁和锌的植物。
近年来,正在进行与铁和锌(特别是铁)的吸收和利用相关的基因的鉴定和分析。已经获得了通过改变该基因并导入植物中而提高了耐缺铁性和耐缺锌性的植物、或在可食用部分中蓄积有大量的铁和锌的植物(例如, 参照非专利文献1~11)。
现有技术文献
非专利文献
非专利文献1:Takahashi,M.,等,Nature Biotech.,(2001)vol.19,pp.466-469.
非专利文献2:Ishimaru,Y.,等,Proc.Natl.Acad.Sci.USA,(2007)vol.104,pp.7373-7378.
非专利文献3:Suzuki,M.,等,Soil Sci.Plant Nutr.,(2008)vol.54,pp.77-85.
非专利文献4:Ogo,Y.,等,Plant Mol.Biol.,(2011)vol.75,pp.593-605.
非专利文献5:Goto,F.,等,Nature Biotech.,(1999)vol.17,pp.282-286.
非专利文献6:Uauy,C.,等,Science,(2006)vol.314,pp.1298-1301.
非专利文献7:Masuda,H.,等,Rice,(2008)vol.1,pp.100-108.
非专利文献8:Masuda,H.,等,Rice,(2009)vol.2,pp.155-166.
非专利文献9:Lee,S.,等,Proc.Natl.Acad.Sci.USA,(2009)vol.106,pp.22014-22019.
非专利文献10:Wirth,J.,等,Plant Biotech.J.,(2009)vol.7,pp.1-14.
非专利文献11:Ishimaru,Y.,等,Plant J.,(2010)vol.62,pp.379-390.
发明内容
发明所要解决的问题
但是,尚未获得在石灰质土壤中表现出与优良土壤中的生长同等程度或者更高程度的生长的植物。另外,尚未获得在石灰质土壤和优良土壤这两种土壤中均能够大量地(例如,以往的2倍量以上)蓄积铁和/或锌的植物。
因此,从获得具有这种性质的植物的观点而言,还有改良的余地。
本发明基于上述情况而完成,提供在石灰质土壤中表现出比通常的植物更优良的生长、并且在石灰质土壤和优良土壤这两种土壤中均能够在可 食用部分中大量地蓄积铁和锌的转化体和基因破坏株、以及在它们的制作中使用的基因、载体、蛋白质、抗体、提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作方法、提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作用组合物、提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作用试剂盒、以及提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的育种方法。所谓可食用部分,可举出例如植物的种子、地上部分、茎叶、根等,只要是作为食用、饲料用而可食用的部分,则不一定限定于这些部分。另外,在上述植物为水稻的情况下,可举出作为相当于种子的部分的糙米、将糙米制成精米而得到的胚芽米、分解米、白米等。
用于解决问题的手段
本发明人为了解决上述问题而进行了深入研究,结果发现了具有抑制植物的缺铁应答的作用的蛋白质。并且发现,通过制作抑制了编码该蛋白质的基因的表达的植物,能够提高植物的耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积,从而完成了本发明。
即,本发明提供具有下述特征的蛋白质、基因、载体、转化体、基因破坏株、抗体、提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作方法、提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作用组合物、提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作用试剂盒、以及提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的育种方法。
(1)一种蛋白质,其特征在于,由下述(a)~(c)中任一种氨基酸序列构成,并且为铁锌结合性调控因子,
(a)序列号1或2所示的氨基酸序列,
(b)在序列号1或2所示的氨基酸序列中缺失、取代或添加一个~多个氨基酸而成的氨基酸序列,或者,
(c)与序列号1或2所示的氨基酸序列的同源性为80%以上的氨基酸序列。
(2)一种基因,其特征在于,编码上述(1)所述的蛋白质。
(3)一种基因,其特征在于,由下述(d)~(g)中任一种DNA构成,并且编码作为铁锌结合性调控因子的蛋白质,
(d)由序列号3或4所示的碱基序列构成的DNA,
(e)由在序列号3或4所示的碱基序列中缺失、取代或添加一个~多个碱基而成的碱基序列构成的DNA,
(f)由与序列号3或4所示的碱基序列的同源性为80%以上的碱基序列构成的DNA,或者,
(g)由能够与由序列号3或4所示的碱基序列所构成的DNA的互补碱基序列构成的DNA在严格的条件下杂交的碱基序列构成的DNA。
(4)一种载体,其特征在于,能够抑制上述(2)或(3)所述的基因的表达。
(5)如上述(4)所述的载体,其能够表达可在mRNA水平上抑制所述基因的表达的RNAi诱导性核酸。
(6)如上述(5)所述的载体,其中,所述RNAi诱导性核酸为序列号5所示的碱基序列。
(7)一种转化体,其特征在于,通过将上述(4)~(6)中任一项所述的载体导入宿主中而形成。
(8)一种基因破坏株,其特征在于,具有上述(2)或(3)的基因由于整合插入序列而被破坏的基因组DNA。
(9)一种抗体,其特征在于,与上述(1)所述的蛋白质特异性地结合。
(10)一种提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作方法,其特征在于,包括将上述(4)~(6)中任一项所述的载体导入植物中的步骤。
(11)一种提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作用组合物,其特征在于,包含上述(4)~(6)中任一项所述的载体。
(12)一种提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作用试剂盒,其特征在于,包含上述(4)~(6)中任一项所述的载体。
(13)一种提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的育种方法,其特征在于,包括对来自植物的提取液中含有的上述(1)所述的蛋白质进行检测的步骤。
(14)一种提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的育 种方法,其特征在于,包括对来自植物的提取液中含有的上述(2)或(3)所述的基因进行检测的步骤。
发明效果
根据本发明,能够制作出在石灰质土壤中表现出比通常的植物更优良的生长、在石灰质土壤和优良土壤这两种土壤中均能够大量地蓄积铁和锌的转化体和基因破坏株。
此外,根据本发明,能够有助于不良土壤中的碳酸固定、物质生产以及人类的铁锌缺乏症的缓解。
附图说明
图1表示本发明的OsHRZ1蛋白质和OsHRZ2蛋白质的域结构。
图2表示本发明的基因破坏株中的基因组结构。
图3表示具有蚯蚓血红蛋白域的蛋白质的系统树和域结构。
图4表示使用定量RT-PCR得到的OsHRZ1和OsHRZ2的mRNA的表达水平的分析结果。
图5表示所制作的重组蛋白的域结构。
图6表示野生型和突变型OsHRZ蛋白质与金属的结合能力的分析结果。
图7表示含有各重组蛋白溶解液的管的照片。
图8表示OsHRZ2表达抑制株中的、使用定量RT-PCR得到的OsHRZ2的mRNA的表达水平的分析结果。
图9表示在缺铁栽培条件下的OsHRZ2表达抑制株的最新叶中的叶绿素含量的定量结果。
图10表示在石灰质土壤长期栽培下的OsHRZ2表达抑制株的最新叶中的叶绿素含量的定量结果。
图11表示在石灰质土壤中栽培28天下的未处理(NT)的稻和OsHRZ2表达抑制株的株高的照片。
图12表示OsHRZ破坏株中的基因组PCR的结果。
图13表示在缺铁栽培条件下的OsHRZ破坏株的最新叶中的叶绿素 含量的定量结果。
图14表示在铁充足条件下和缺铁条件下水培7天后的OsHRZ2表达抑制株的叶中的蓄积铁浓度。
图15表示在石灰质土壤中和通常的土壤中盆培后的OsHRZ2表达抑制株的稻杆中的蓄积铁浓度。
图16表示在石灰质土壤中和通常的土壤中盆培后的OsHRZ2表达抑制株的种子中的蓄积铁浓度。
图17表示在隔离田内的通常土壤中栽培后的OsHRZ2表达抑制株的糙米和白米中的蓄积铁浓度。
图18表示在石灰质土壤中和通常的土壤中盆培后的OsHRZ2表达抑制株的种子中的蓄积锌浓度。
图19表示在隔离田内的通常土壤中栽培后的OsHRZ2表达抑制株的糙米和白米中的蓄积锌浓度。
图20表示在通常的土壤中盆培后的OsHRZ破坏株的种子中的蓄积铁浓度。
图21表示在通常的土壤中盆培后的OsHRZ破坏株的种子中的蓄积锌浓度。
图22表示在通常的土壤中盆培后的OsHRZ破坏株的稻杆中的蓄积铁浓度。
图23表示在通常的土壤中盆培后的OsHRZ破坏株的稻杆中的蓄积锌浓度。
图24表示在铁充足条件下和缺铁条件下水培后的OsHRZ2表达抑制株的根中的、使用44K微阵列得到的基因表达谱的分析结果。
图25表示通过微阵列分析,对于在铁充足条件下的OsHRZ2表达抑制株的根中确认到表达上升的基因,使用定量RT-PCR进行验证的结果。
具体实施方式
<OsHRZ蛋白质>
本发明的蛋白质由下述(a)~(c)中任一种氨基酸序列构成,并且为铁锌结合性调控因子。
(a)序列号1或2所示的氨基酸序列,
(b)在序列号1或2所示的氨基酸序列中缺失、取代或添加一个~多个氨基酸而成的氨基酸序列,或者,
(c)与序列号1或2所示的氨基酸序列的同源性为80%以上的氨基酸序列。
上述(a)的氨基酸序列为序列号1或2所示的氨基酸序列。
本发明人将由序列号1和2所示的氨基酸序列构成的蛋白质分别命名为包含水稻蚯蚓血红蛋白模体的真正感兴趣新基因型锌指蛋白(Oryza sativa Hemerythrin motif-containing Really Interesting New Gene(RING)-and Zinc-finger protein,以下称为OsHRZ)1和OsHRZ2。
如图1所示,OsHRZ1从N末端侧到C末端侧包括:三个推定的蚯蚓血红蛋白(也作为HHE而公知)结构域、推测参与转录调控/转录后调控/蛋白质分解调控等的两个Zn指结构域(CHY样Zn指结构域和CTCHY样Zn指结构域)、作为E3连接酶起作用而参与蛋白质分解调控的RING-Zn指结构域和推测为了传递电子而形成铁硫簇的红素氧还蛋白样模体。
另外,如图1所示,OsHRZ2从N末端侧到C末端侧包括:一个蚯蚓血红蛋白结构域、三个Zn指结构域(CHY样Zn指结构域、CTCHY样Zn指结构域和RING-Zn指结构域)和红素氧还蛋白样模体。
在缺铁栽培条件下,编码这些OsHRZ蛋白质的基因的表达被诱导。
认为植物中合成的OsHRZ蛋白质通过蚯蚓血红蛋白结构域与铁和锌结合,作为对植物细胞内的铁与其他金属的浓度比进行检测的铁传感器起作用。
此外,OsHRZ1和OsHRZ2蛋白质通过推测参与转录调控/转录后调控/蛋白质分解调控等的上述三个Zn指结构域,主要在铁充足条件的栽培下抑制铁摄取相关基因和铁迁移相关基因的表达。
作为上述(b),例如可举出:在蚯蚓血红蛋白结构域以外的部位具有突变(缺失、插入、取代或添加)的蛋白质、或者具有位于蚯蚓血红蛋白结构域且保持铁锌结合活性的突变的蛋白质。
另外,作为上述(b),可举出例如:在推测参与转录调控/转录后调 控/蛋白质分解调控等的上述三个Zn指结构域以外的部位具有突变的蛋白质、或者具有位于上述Zn指结构域且保持铁摄取相关基因和铁迁移相关基因的表达抑制能力的突变的蛋白质。
在此,作为可以被缺失、取代或添加的氨基酸的数量,优选1~10个,更优选1~7个,进一步优选1~5个,特别优选1~3个,最优选1~2个。
构成本发明的蛋白质的氨基酸序列中,对一个或多个氨基酸引入突变可以使用公知技术容易地进行。
例如,根据公知的定点诱变法,可以使编码蛋白质的基因中的任意碱基发生突变。另外,可以设计与编码蛋白质的基因中的任意部位对应的引物来制作缺失突变体或者添加突变体。
作为上述(c),可举出例如:在蚯蚓血红蛋白结构域以外的部位具有突变(缺失、插入、取代或添加)的蛋白质、或者具有位于蚯蚓血红蛋白结构域且保持铁锌结合活性的突变的蛋白质。
另外,上述(c),可举出例如:在推测参与转录调控/转录后调控/蛋白质分解调控等的上述三个Zn指结构域以外的部位具有突变的蛋白质、或者具有位于上述Zn指结构域且保持铁摄取相关基因和铁迁移相关基因的表达抑制能力的突变的蛋白质。
在此,作为与序列号1或2所示的氨基酸序列的同源性(氨基酸序列的同源性),优选为80%以上,更优选85%以上,进一步优选90%以上,特别优选95%以上,最优选98%以上。
作为表达本发明的蛋白质中使用的表达载体,可举出:在宿主细胞中表达本发明的蛋白质的细胞系载体、和在由从适当的细胞提取出的具有蛋白质合成能力的成分构成的蛋白质翻译系统中表达本发明的蛋白质的无细胞系载体。
作为细胞系载体,可以使用适合宿主细胞的公知的表达载体。例如可举出大肠杆菌中以pBR322诱导体为代表的ColEI系质粒、具有p15A起点的pACYC系质粒、pSC系质粒、来源于Bac系等的F因子的mini-F质粒。此外,还可以举出具有trc、tac等色氨酸启动子、lac启动子、T7启动子、T5启动子、T3启动子、SP6启动子、阿拉伯糖诱导启动子、冷 休克启动子、四环素诱导性启动子等的表达载体。
作为无细胞系载体,可举出在细胞系载体中列举的具有T7启动子的表达载体、具有T3启动子的表达载体;具有SP6启动子或T7启动子的pEU系质粒等小麦无细胞蛋白质合成用载体等。
使用无细胞系载体的蛋白质合成中,首先,使用转录系统对cDNA进行转录,合成mRNA。作为该转录系统,可举出利用RNA聚合酶进行转录的现有公知的转录系统。作为RNA聚合酶,可举出例如T7RNA聚合酶。
接着,使用作为翻译系统的无细胞蛋白质合成系统对mRNA进行翻译,从而合成蛋白质。该系统中包含核糖体、翻译起始因子、翻译延伸因子、解离因子、氨酰-tRNA合成酶等翻译所必需的要素。作为这样的蛋白质翻译系统,可举出:大肠杆菌提取液、兔网织红细胞提取液、小麦胚芽提取液等。
此外,还可举出上述翻译所必需的要素仅由独立纯化的因子构成的再构成型无细胞蛋白质合成系统。
使用细胞系载体或无细胞系载体合成的蛋白质可以在细胞成分提取液中使用,也可以纯化后再使用。作为纯化方法,可举出盐析法、使用各种层析法的方法。在表达载体以在目的蛋白质的N末端或C末端表达组氨酸标签等标签序列的方式设计的情况下,可举出使用镍、钴等对该标签具有亲和性的物质的利用亲和柱的纯化方法。此外,也可以通过将离子交换层析法、凝胶过滤层析法等适当组合后进行纯化来提高本发明的蛋白质的纯度。
<OsHRZ基因>
本发明的基因编码由上述(a)~(c)中任一种氨基酸序列构成且为铁锌结合性调控因子的蛋白质。
另外,本发明的基因编码由以下的(d)~(g)中任一种DNA构成且为铁锌结合性调控因子的蛋白质。
(d)由序列号3或4所示的碱基序列构成的DNA,
(e)由在序列号3或4所示的碱基序列中缺失、取代或添加一个~ 多个碱基而成的碱基序列构成的DNA,
(f)由与序列号3或4所示的碱基序列的同源性(碱基序列的同源性)为80%以上、优选为85%以上、更优选为90%以上、进一步优选为95%以上、特别优选为98%以上的碱基序列构成的DNA,或者,
(g)由能够与由序列号3或4所示的碱基序列构成的DNA的互补碱基序列构成的DNA在严格的条件下杂交的碱基序列构成的DNA。
在此,作为可以被缺失、取代或添加的碱基的数量,优选1~30个,更优选1~20个,进一步优选1~15个,特别优选1~10个,最优选1~5个。
本发明和本申请说明书中,所谓“在严格的条件下”,例如可举出Molecular Cloning-A LABORATORY MANUAL(分子克隆实验指南)第三版(Sambrook等、冷泉港实验室出版社)中记载的方法。例如可举出通过在由5×SSC(20×SSC的组成:3M氯化钠、0.3M柠檬酸溶液、pH7.0)、0.1重量%N-月桂酰肌氨酸、0.02重量%的SDS、2重量%的核酸杂交用封闭试剂和50%甲酰胺构成的杂交缓冲液中在55~70℃下进行数小时至过夜的温育来进行杂交的条件。作为温育后的洗涤时使用的洗涤缓冲液,优选为含有0.1重量%SDS的1×SSC溶液、更优选为含有0.1重量%SDS的0.1×SSC溶液。
<OsHRZ基因表达抑制载体>
本发明的载体为能够抑制上述的本发明的基因的表达的载体。优选能够表达可在mRNA水平抑制上述基因的表达的RNAi诱导性核酸。
RNAi诱导性核酸是指通过导入到植物细胞内而能够诱导RNA干扰的核酸。所谓RNA干扰是指,含有与mRNA(或其部分序列)互补的碱基序列的RNA抑制该mRNA的表达的效果。
RNAi诱导性核酸的作为标靶的mRNA可以是编码区,也可以是非编码区。作为上述RNAi诱导性核酸,优选为序列号5所示的碱基序列,该RNAi诱导性核酸以OsHRZ的3’UTR(untranslated region,非翻译区)全长和编码区的一部分作为标靶。
另外,作为RNAi诱导性核酸,例如可举出siRNA、miRNA。作为 导入到植物细胞内、与siRNA同样地引起RNAi的载体,可举出shRNA(short hairpin RNA/small hairpin RNA,短发夹RNA/小发夹RNA)表达载体。
利用本发明的载体,能够提高植物的耐缺铁性和铁锌蓄积。
在此,“植物的耐缺铁性”是指即使在可溶化的铁分少的土壤中也能生长的特性,例如,在碱性土壤中不易发生称为萎黄病(由于叶绿素缺陷导致的黄色化)的缺铁症的等特性。
另外,“铁锌蓄积”是指能够在稻的地上部、特别是作为可食用部分的种子中蓄积高浓度的铁和锌的特性。例如,将使用上述载体制作的转化体在隔离田(是指基于规定的手续而设置的基因重组用的隔离田)内的普通土壤中栽培而得到的种子与未处理的稻的种子相比,含有约3.8倍量的铁,含有约1.2倍量的锌。
本发明的载体可以利用公知的基因重组技术来制作。
<转化体及耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物的制作方法>
本发明的转化体(有时也称为表达抑制株)是将本发明的载体导入宿主中而得到的。如上所述,本发明的载体能够使作为宿主的植物的耐缺铁性和铁锌蓄积提高。因此,本发明的转化体的耐缺铁性优良,并且特别是能够在可食用部分中蓄积高浓度的铁锌。
另外,本发明的耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物的制作方法是指用于制作耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物体的方法。本发明的耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物的制作方法只要包含将本发明的载体导入植物体内的步骤,则没有特别限定。
在使用重组表达载体的情况下,植物体的转化中应使用的载体只要是能够在该植物内抑制本发明的基因的表达的载体,则没有特别限定。
作为这样的载体,例如可举出:具有花椰菜花叶病毒的35S启动子等在植物细胞内使基因进行结构性表达的启动子的载体;具有因外部刺激而诱导性活化的启动子的载体。
本发明中作为转化对象的植物表示整个植物体、植物器官(例如叶、花瓣、茎、根、种子等)、植物组织(例如表皮、韧皮部、柔软组织、木 质部、维管束、栅栏组织、海绵组织等)或植物培养细胞、或者各种形式的植物细胞(例如,悬浮培养细胞)、原生质体、叶的切片、愈伤组织等中的任意一种。作为转化中使用的植物,没有特别限定,优选为稻科植物,更优选为稻、大麦、小麦或玉米。
基因向植物中的导入可以使用本领域技术人员公知的转化方法(例如,土壤杆菌法、基因枪、PEG法、电穿孔法等),大致分为土壤杆菌介导的方法和直接导入植物细胞的方法。使用土壤杆菌法时,可以使用将构建的植物用表达载体导入适当的土壤杆菌(例如,根癌土壤杆菌(Agrobacterium tumefaciens))中,依照叶盘法(内宫博文著、植物基因操作指南(1990)27~31页、讲谈社SCIENTIFIC、东京)等使该菌株感染无菌培养叶片,从而得到转化植物的方法。
另外,可以使用Nagel等的方法(Micribiol.Lett.,(1990)vol.67,pp325)。该方法为如下方法:首先,将表达载体导入土壤杆菌,接着,将转化后的土壤杆菌用Plant Molecular Biology Manual(植物分子生物学指南)(S.B.Gelvin等、学术出版社出版)中记载的方法导入植物细胞或植物组织中。在此,“植物组织”包括通过植物细胞的培养得到的愈伤组织。使用土壤杆菌法进行转化时,可以使用pBI系的双元载体(例如,pBIG、pBIN19、pBI101、pBI121、pBI221和pPZP202等)。
另外,作为将基因直接导入植物细胞或植物组织的方法,可举出电穿孔法、基因枪法等。使用基因枪时,作为导入基因的对象,可以直接使用植物体、植物器官、植物组织本身,也可以制备切片后使用,还可以制备原生质体后使用。可以使用基因导入装置(例如PDS-1000(伯乐公司)等)对这样制备的试样进行处理。处理条件因植物或试样而异,通常以约450~2000psi的压力、约4~12cm的距离进行。
对于基因导入后的细胞或植物组织,首先利用潮霉素抗性等药剂抗性进行选择,接着通过常规方法再生为植物体。从转化细胞向植物体的再生可以根据植物细胞的种类通过本领域技术人员公知的方法来进行。作为选择标记物,并不限定于潮霉素抗性,例如可举出对博莱霉素、卡那霉素、庆大霉素、氯霉素等的抗药性。
在使用植物培养细胞作为宿主的情况下,例如可举出显微注射法、电 穿孔法、聚乙二醇法、基因枪(粒子枪)法、原生质体融合法、磷酸钙法等。通过这些方法将重组载体导入培养细胞而进行转化。作为转化结果而得到的愈伤组织、根、毛状根等可以直接用于细胞培养、组织培养或器官培养。可以使用这些现有公知的植物组织培养法,通过施用适当浓度的植物激素(生长素、细胞分裂素、赤霉素、脱落酸、乙烯、芸苔素内酯等)等使其再生为植物体。
基因是否已被导入植物可以通过PCR法、Southern杂交法、Northern杂交法等进行确认。例如,由转化植物制备DNA,设计DNA特异性引物并进行PCR。PCR可以在本领域技术人员公知的条件下进行。然后,对扩增产物进行琼脂糖凝胶电泳、聚丙烯酰胺凝胶电泳或毛细管电泳等,利用溴化乙锭、SYBR Green液等进行染色。然后,使扩增产物成为单链来进行检测,由此可以确认已被转化。另外,也可以使用预先由荧光色素等标记的引物进行PCR并检测扩增产物。此外,还可以采用使扩增产物结合到微孔板等固相上、利用荧光或酶反应等来确认扩增产物的方法。
一旦获得在基因组内整合有本发明的载体的转化植物体,则可以通过该植物体的有性生殖或无性生殖获得后代。另外,可以由上述植物体或其后代、或者它们的克隆得到例如种子、果实、穗、块茎、块根、根株、愈伤组织、原生质体等,并在它们的基础上大量生产上述植物体。
因此,本发明的转化体也包括以可表达的方式导入有本发明的载体的植物体、或与该植物体具有相同性质的上述植物体的后代、或者来源于它们的组织。
<基因破坏株>
本发明的基因破坏株通过整合插入序列而具有本发明的基因被破坏的基因组DNA。例如,如图2所示,通过利用同源重组使T-DNA(hrz1-1)插入到基因组DNA中、或者通过转座子(hrz2-1)的转移,使基因组DNA上存在的本发明的基因被破坏,从而使其表达被抑制。
利用本发明的基因破坏株,本发明的基因和蛋白质的表达被抑制。因此,铁摄取相关基因、铁迁移相关基因的稳定表达抑制被解除,能够提高植物中的耐缺铁性和铁锌蓄积。
作为本发明的基因破坏株,优选Tos17插入株ND6059(稻基因组资源中心)。该插入株不是转化植物,因此,从可在一般的田地中快速生长的方面而言优良。
本发明的转化体和基因破坏株除了如上所述可食用部分中的铁锌蓄积的显著提高,还兼具优良的耐缺铁性。因此,对于在半干燥地带、石灰质土壤等容易潜在缺铁的栽培条件下稳定地生产富铁食物而言是特别有用的。
<耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物的制作用组合物、以及制作用试剂盒>
本发明的耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物的制作用组合物含有本发明的载体。另外,本发明的耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物的制作用试剂盒包括本发明的载体。在此,“组合物”是指各种成分含有在一种物质中的方式。“试剂盒”是指各种成分中的至少一种含有在另一物质中的方式。
另外,“耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物的制作用组合物”为用于制作耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物体的组合物。“耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物的制作用试剂盒”为用于制作耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物的试剂盒。
本发明的转化体通过将本发明的载体导入宿主(植物)而得到。由此,本发明的基因的表达被抑制,耐缺铁性和铁锌蓄积能够提高。并且,如上所述,如果使用本发明的载体,则能够将本发明的载体导入植物体中。因此,包括本发明的载体的组合物或包括载体的试剂盒优选用于制作耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物。
即,本发明的耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物的制作用组合物、或耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物的制作用试剂盒可以作为上述的本发明的耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物的制作方法中的载体的供给源使用。
本发明的耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物的制作用组合物除了包括本发明的载体以外,还可以包括溶剂、分散介质、试剂等。
另外,本发明的耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物的制作用试剂盒除了包括本发明的载体以外,还可以包括溶剂、分散介质、试剂、用于使用它们的说明书等。在此,本发明的试剂盒中,除说明书以外还“包括”溶剂等是指包含在构成试剂盒的各个容器(例如,瓶、板、管、碟等)中的任意一种的内部。
另外,本发明的试剂盒例如可以将物质A和物质B混合包括在同一容器内,可以包括在分开的容器内。“说明书”可以书写在纸或其他介质上,也可以印刷在纸或其他介质上,或者还可以附于磁带、计算机可读磁盘或磁带、CD-ROM等这样的电子介质上。另外,本发明的试剂盒可以包括内包有稀释剂、溶剂、洗涤液、其他试剂的容器。
<抗体>
本发明的抗体只要是与本发明的蛋白质特异性结合的抗体,则没有限定,可以为针对上述蛋白质的多克隆抗体等,但优选为针对上述蛋白质的单克隆抗体。单克隆抗体从下述方面而言优良:具有性质均匀且易于供给,可以将其产生细胞以杂交瘤的形式半永久地保存等。
作为本发明的抗体,可举出免疫球蛋白(IgA、IgD、IgE、IgG、IgM和它们的Fab片段、F(ab’)2片段、Fc片段),具体而言,可举出多克隆抗体、单克隆抗体、单链抗体和抗独特型抗体等,但不限定于这些。
需要说明的是,本发明的抗体可以依照各种公知的方法来制作。例如,单克隆抗体可以通过使用该领域中公知的技术(例如,杂交瘤法(Kohler,G.和Milstein,C.,Nature 256,495-497(1975))、三瘤体法、人类B-细胞杂交瘤法(Kozbor,Immunology Today 4,72(1983))和EBV-杂交瘤法(参照Monoclonal Antibodies and Cancer Therapy,Alan R Liss,Inc.,77-96(1985))等)来制作。
另外,肽抗体可以依照该领域中公知的方法(例如,Chow,M.,等,Proc.Natl.Acad.Sci.USA(1985)vol.82,pp.910-914;Bittle,F.J.等,J.Gen.Virol.(1985)vol.66,pp2347-2354)来制作。
本发明的抗体如上所述包括Fab片段、F(ab’)2片段等片段。这样的片段代表地可以通过使用木瓜蛋白酶(生成Fab片段)或胃蛋白酶(生 成F(ab’)2片段)等酶对抗体进行蛋白质分解来产生。
或者,这样的片段可以通过应用重组DNA技术或化学合成来产生。
<育种方法>
[第一实施方式]
本实施方式的耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物的育种方法包括对提取自植物的提取物中含有的本发明的蛋白质进行检测的步骤。
本实施方式的耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物的育种方法只要包括为了判断在植物体内本发明的蛋白质的表达是否被抑制而对本发明的蛋白质进行检测的步骤即可。基于本发明的蛋白质的表达的有无,筛选具有耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物。
如上所述,本发明的蛋白质抑制在植物从土壤中获得铁时具有重要作用的基因的表达。因此,上述蛋白质的表达被抑制的植物获得铁的能力高,耐缺铁性和铁锌蓄积提高。
另外,依照本实施方式的方法育种得到的植物体可以为天然的植物体,也可以为转化体。
提取自植物的提取物可以使用利用液体氮气的冷冻破碎法、市售的提取试剂盒来获得,但并不限定于此。另外,“提取物”可以为粗提纯物,也可以为经过若干纯化步骤后的纯化标准品。
本实施方式的育种方法中,作为上述对提取自植物的提取物中含有的本发明的蛋白质进行检测的步骤,可举出通过使提取自该植物的提取物与本发明的抗体反应来对本发明的蛋白质进行检测的步骤。如上所述,上述抗体与本发明的蛋白质特异性结合而形成免疫复合物,因此,通过检测该复合物的形成,能够容易地检测在植物体内表达的上述蛋白质。
上述复合物的形成例如使用将上述抗体预先用同位素等标记的方法、或者使用针对上述抗体的二次抗体的方法等来检测。具体而言,可以使用公知的蛋白免疫印迹法、蛋白芯片法等。
另外,本发明的抗体优选用于本实施方式的耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积得到提高的植物的育种方法。因此,含有本发明的抗体的组合物或者包括上述抗体的试剂盒优选用于耐缺铁性和可食用部分中的铁锌 蓄积得到提高的植物的育种。
[第二实施方式]
本实施方式的植物的育种方法包括对提取自植物的提取物中含有的本发明的基因进行检测的步骤。
上述对提取自植物的提取物中含有的本发明的基因进行检测的步骤优选包括将本发明的基因的片段或由其互补序列构成的寡核苷酸与上述提取自植物的提取物进行温育的步骤,更优选包括使提取自植物的提取物与来源于目标植物的基因组DNA、mRNA或针对mRNA的cDNA杂交的步骤。
通过使用本实施方式的育种方法对杂交后的靶基因进行检测,能够容易地检测本发明的基因的表达被抑制的植物体。
此外,如上所述,本发明的蛋白质在植物体对缺铁的应答中发挥重要的作用。因此,上述蛋白质的氨基酸序列的微小突变可能会给植物的耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积带来影响。通过使用PCR法、杂交法、微阵列法等公知惯用的技术,能够检测基因的一个碱基单元的突变,因此,利用这些技术,能够检测上述基因所编码的蛋白质的氨基酸序列的微小突变。
因此,通过使用本实施方式的植物的育种方法,基于给植物的耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积带来影响的上述蛋白质的氨基酸序列的微小突变,也能够对植物的耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积得到提高的植物进行育种。
本实施方式中,寡核苷酸是指数个至数十个或者数百个核苷酸结合而成的物质。
本实施方式的育种方法中使用的寡核苷酸可以作为用于得到本发明的基因或其片段的PCR引物或者杂交探针来使用。
作为本实施方式中使用的寡核苷酸的长度,优选7个碱基以上,更优选15个碱基以上,进一步优选20个碱基以上,最优选40个碱基以上。这些寡核苷酸例如利用应用生物公司的(ABI,林肯中心道850号,福斯特市,CA 94404)392型合成仪等来合成。
这样,通过将本实施方式的育种方法中使用的寡核苷酸作为检测编码本发明的蛋白质的基因的杂交探针、或者用于扩增上述基因的引物来利用,能够容易地检测本发明的基因的表达被抑制的植物体或组织。
[实施例]
下面示出实施例进一步详细说明本发明,但本发明不限定于以下的实施例。
[来源于稻的新的铁结合蛋白质的鉴定]
本发明人使用微阵列对缺铁诱导性基因群进行了分析(Ogo,Y.,等,J.Exp.Bot.(2006)vol.57,pp.2867-2878)。着眼于这些基因群中作为铁传感器的一个候选基因AK068028(NCBI的收录号:序列号4)。如上所述,该基因包含编码推定的蚯蚓血红蛋白(也作为HHE被公知)结构域的基因(参照图1)。蚯蚓血红蛋白结构域在无脊椎动物、细菌和哺乳类中具有保守性,已知其与二价铁和分子态氧结合。
无脊椎动物中,具有蚯蚓血红蛋白结构域的蛋白质作为输送氧的蛋白质起作用。
另一方面,对于人类而言,作为具有蚯蚓血红蛋白结构域的蛋白质,已知有人类FBXL5蛋白质(参照图3)。已知人类FBXL5蛋白质中蚯蚓血红蛋白结构域作为铁传感器起作用,FBXL5通过作为泛素-蛋白酶体系统的E3连接酶起作用的F-盒结构域来识别铁调节蛋白2(Iron Regulatory Protein 2;以下称为IRP2)并将其分解(Rouault,T.A.,Science(2009)vol.326,pp.676-677;Vashisht,A.,等,Science(2009)vol.326,pp.718-721;Salahudeen,A.A.,等,Science(2009)vol.326,pp.722-726)。
有趣的是,序列号4所示的基因所编码的蛋白质不含F-盒结构域,但包含与F-盒结构域同样作为E3连接酶起作用的RING-Zn指结构域(参照图1)。序列号4所示的基因所编码的蛋白质包含推测参与转录调控/转录后调控/蛋白质分解调控等的两个其他Zn指结构域和、推测为了传递电子而形成铁硫簇的红素氧还蛋白样模体(参照图1)。
通过数据库检索,在稻中进一步找到了2个包含编码蚯蚓血红蛋白结构域的基因的基因(参照图3;OsHORZ1和后述的OsHRZ1),在拟南芥 中找到了4个(参照图3;BTS、At3g54290、At1g74770、At1g18910)。这些基因中,AK288394(NCBI的收录号:序列号3)所编码的蛋白质含有序列号4所示的基因所编码的蛋白质具有的全部域结构,并且进一步具有2个蚯蚓血红蛋白结构域(参照图1)。
因此,本发明人将序列号3和4所示的基因所编码的蛋白质分别命名为“包含水稻蚯蚓血红蛋白模体的真正感兴趣新基因型锌指蛋白”(Oryza sativa Hemerythrin motif-containing Really Interesting New Gene(RING)-and Zinc-finger protein,以下称为OsHRZ)1和OsHRZ2。
从稻栽培品种“月之光”的cDNA池中使用PCR扩增OsHRZ1和OsHRZ2的cDNA,将该扩增产物插入pCR(注册商标)-Blunt II-TOPO(注册商标)载体中,确认碱基序列。
[应答于缺铁栽培条件的OsHRZ1和OsHRZ2的表达水平的变化]
使用定量RT-PCR对稻品种“日本晴”的叶和根中的、铁充足条件下和缺铁条件下的OsHRZ1和OsHRZ2的mRNA的表达水平的变化进行分析。
详细而言,对于提取自水培的稻的根或叶身中的RNA样品,使用NucleoSpin植物RNA小量制备试剂盒(MACHEREY-NAGEL公司制造)和ReverTra Ace逆转录酶(TOYOBO公司制造)、或者RNeasy植物小量制备试剂盒(凯杰公司制造)和含gDNA去除剂的ReverTra Ace qRT-PCR RT Master混合物(TOYOBO公司制造),使用DNaseI进行处理,供于逆转录反应。接着,使用通过逆转录反应合成的cDNA,利用StepOnePlus(商标)实时PCR系统(应用生物系统公司制造)进行实时PCR。作为试剂,使用SYBR Green I和ExTaq(商标)Real-Time-PCR version(TaKaRa公司制造)、或者TaqMan Gene Expression Assays(应用生物系统公司制造)。以稻α-2微管蛋白的转录水平对作为目标的转录产物的量进行修正,以每1μg总RNA的拷贝数来表示。
将结果示于图4。图4的图横轴表示铁充足条件下和缺铁条件下的栽培天数。+7d表示来源于铁充足条件下栽培7天后的稻的样品,-1d表示来源于缺铁条件下栽培1天后的稻的样品,-7d表示来源于缺铁条件下栽 培7天后的稻的样品。图4的图纵轴表示每1μgRNA的OsHRZ1或OsHRZ2的拷贝数。图4(a)为表示根中的表达水平的图,图4(b)为表示叶中的表达水平的图。图4左边为表示OsHRZ1的表达水平的图,图4右边为表示OsHRZ2的表达水平的图。另外,在以下的实施例中,通过t检验对显著差异进行检验。在以下的图中,*表示P<0.05,**表示P<0.01。
如图4所示,对于叶和根两者,在缺铁条件下均确认到OsHRZ1和OsHRZ2的mRNA的表达水平的上升。
[重组OsHRZ1蛋白质和OsHRZ2蛋白质的铁结合能力的评价]
植物来源的蚯蚓血红蛋白结构域是否具有与铁结合的能力还不得而知。本发明人首先制作了将在编码麦芽糖结合蛋白(MBP)的基因的下游连接有全长HRZ基因或HRZ缺失突变基因的基因插入pMAL-c2(新英格兰生物实验室公司制造)而得到的表达载体。
接着,使这些融合有麦芽糖结合蛋白(MBP)的OsHRZ重组蛋白的多种缺失突变体在大肠杆菌BL21(DE3)pLysS中表达来制作。重组蛋白的表达纯化使用MBP融合系统(新英格兰生物实验室公司制造)。将大肠杆菌在22℃~25℃下培养并且从柱缓冲液中除去EDTA,除此以外,依照指导手册进行。将重组蛋白供于SDS-PAGE进行分离后,通过考马斯亮蓝染色确认重组蛋白的纯度。将表达的重组蛋白使用PD-10柱(GE health care公司制造)脱盐后,使用阴离子交换柱(Q-琼脂糖;GE health care公司制造)进行纯化。制成的重组蛋白的域结构示于图5。
图5中,OsHRZ1 FL表示OsHRZ1蛋白全长,OsHRZ1ΔRZ表示从OsHRZ1蛋白质全长中使包含位于C末端侧的第3个蚯蚓血红蛋白结构域、推测参与转录调控/转录后调控/蛋白质分解调控等的三个Zn指结构域和推测为了传递电子而形成铁硫簇的红素氧还蛋白样模体的C末端结构域缺失的蛋白质。OsHRZ1ΔH表示从OsHRZ1蛋白质全长中使包含全部三个蚯蚓血红蛋白结构域的N末端结构域缺失的蛋白质。OsHRZ1ΔHRZ表示从OsHRZ1蛋白质全长中使包含位于N末端侧的全部2个蚯蚓血红蛋白结构域的N末端结构域以及包含位于C末端侧的第3个蚯蚓血红蛋白结构域、三个Zn指结构域和红素氧还蛋白样模体的C末端结构 域缺失的蛋白质。
图5中,OsHRZ2 FL表示OsHRZ2蛋白质全长,OsHRZ1ΔH表示从OsHRZ2蛋白质全长中使包含蚯蚓血红蛋白结构域的N末端结构域缺失的蛋白质。BTS FL表示OsHRZ1和OsHRZ2的拟南芥同系物的蛋白质全长(参照图3)。
通过感应耦合发射光谱测定结合在这些蛋白质上的金属浓度。详细而言,使用伯乐蛋白分析试剂盒(伯乐公司制造)对纯化后的蛋白质进行定量,使用MarsXpress烘箱(CEM公司制造)将0.1~1mg的纯化蛋白溶解液用2mL 13.4M HNO3在220℃下处理20分钟,进行湿法灰化。使用ICP发光分析装置(ICPS-8100;岛津制作所制造)测定铁和锌的摩尔浓度。结果示于图6。
图6中,图横轴表示使用的重组蛋白的种类,图纵轴表示1摩尔蛋白质上结合的铁或锌的摩尔数。如图6所示,OsHRZ1蛋白质全长和OsHRZ2蛋白质全长含有约2倍摩尔的量的铁和锌,其结合能力由于缺失蚯蚓血红蛋白结构域而减小至约0.5倍摩尔以下。另一方面,即使缺失三个Zn指结构域和红素氧还蛋白样模体,每1摩尔蛋白质的铁和锌结合量也未显著减少。
由以下也可以看出这一点:如图7所示,包含蚯蚓血红蛋白结构域的OsHRZ1 FL蛋白质的浓缩溶解液与不含蚯蚓血红蛋白结构域的OsHRZ1ΔH蛋白质的浓缩溶解液相比较,呈现出由铁产生的红棕色。
由此确认,OsHRZ蛋白质中,相较于Zn指结构域、红素氧还蛋白样模体,铁和锌更主要与蚯蚓血红蛋白结构域结合。另外,拟南芥的BTS蛋白质也与OsHRZ1蛋白质和OsHRZ2蛋白质同样显示出与铁和锌的结合,由此发现,蚯蚓血红蛋白样的铁锌结合性蛋白质在植物种间具有保守性。
[抑制了OsHRZ基因的表达的稻中的耐缺铁性能的确认]
为了考察OsHRZ的功能,通过RNAi法制作抑制了OsHRZ的表达的转化稻。具体而言,对相当于OsHRZ2的3’UTR全长和编码区的一部分的335bp的片段(序列号5所示的碱基序列)进行扩增,将该扩增产物 插入pENTR(注册商标)-Blunt II-TOPO(注册商标)载体中。接着,通过LR克隆酶反应,利用连接序列将该片段以正反两个方向各1个拷贝插入目标载体pIG121-RNAi-DEST(Ogo,Y.,等,Plant J.(2007)vol.51,pp.366-377)中,制成表达载体。
接着,依照常规方法,制成OsHRZ2的表达被抑制了的3个转化体(2i-1~2i-3)(Hiei,Y.,等,Plant J.(1994)vol.6,pp.271-282;Kobayashi,T.,等,Planta(2001)vol.212,pp.864-871)。
将制成的转化体在缺铁条件下栽培7天,使用上述的定量RT-PCR法考察各转化体中的OsHRZ2的mRNA的表达水平。
如图8所示,在这些转化体中,确认到OsHRZ2的表达抑制。此外还确认,这些转化体在通常的栽培条件下健康地生长而未表现出显著的表现型。
另外,为了考察缺铁栽培条件给这些转化体带来的影响,对缺铁栽培条件下的最新叶中的叶绿素含量进行了定量。结果示于图9中。图9中,纵轴表示最新叶中的叶绿素(SPAD值),横轴表示缺铁栽培条件下的栽培天数。如图9所示,OsHRZ2表达抑制株的叶与未处理(NT)的稻的叶相比,即使在缺铁条件下也显示出高叶绿素含量。由此确认,转化体对缺铁栽培条件显示出耐受性。
此外,为了评价这些转化体在有效铁含量少的特殊土壤中的生长状态,本发明人在石灰质土壤中进行了这些转化体的长期试验。结果示于图10中。图10中,纵轴表示最新叶中的叶绿素量(SPAD值),横轴表示移植后的栽培天数。
如图10所示,在移植后20天以内,在全部稻中观察到叶中叶绿素量的减少。但是,就其减少的程度而言,确认OsHRZ2表达抑制株的减少程度低于未处理的稻。此外,OsHRZ2表达抑制株的叶中的叶绿素量在移植后22天以后逐渐恢复。如图11所示,OsHRZ2表达抑制株的株高反映出耐缺铁性。可以确认,在收获期,OsHRZ2表达抑制株与未处理(NT)的稻相比显示出更高的稻杆资源量和谷物收获量。
此外,本发明人获得了在稻的基因组基因中插入有T-DNA的OsHRZ1破坏株和插入有Tos17的OsHRZ2破坏株,并进行了分析。OsHRZ1破坏 株为由韩国POSTECH(浦项科技大学)获得的3A-06066株。OsHRZ2破坏株为由稻基因组资源中心获得的ND6059株。图2示出OsHRZ1破坏株和OsHRZ2破坏株中的、插入序列(hrz1-1、hrz2-1)在基因组中的插入状态。
使用100μl的10mM Tris-HCl(pH8.0)-0.1mM EDTA溶液,从OsHRZ1破坏株和OsHRZ2破坏株的约0.1cm2的叶断片中提取基因组DNA。使用KOD FX Neo(TOYOBO公司制造)将提取到的基因组DNA供于PCR。结果示于图12中。
图12中,箭头表示使用的引物,与图2中示出的退火至基因组DNA上的引物对应。
如图12所示,确认hrz1-1和hrz2-1分别在OsHRZ1和OsHRZ2中特异性地发生了基因片段的插入。
将这些破坏株在缺铁条件下进行水培,对最新叶中的叶绿素量进行定量。将结果示于图13中。图13中,纵轴表示最新叶中的叶绿素量(SPAD值),横轴表示缺铁条件下的栽培天数。图13(a)示出未处理(野生株:WT)的稻和OsHRZ1破坏株中的最新叶中的叶绿素量,图13(b)示出未处理(野生株:WT)的稻和OsHRZ2破坏株中的最新叶中的叶绿素量。如图13所示,OsHRZ1破坏株保持了稍高于未处理稻的叶绿素量。另外,OsHRZ2破坏株保持了明确高于未处理稻的叶绿素量,确认其对缺铁栽培条件显示出耐受性。
[抑制了OsHRZ基因的表达的稻的叶中的铁蓄积的确认]
为了考察OsHRZ表达抑制株对缺铁栽培条件的耐受性机制,对水培7天后的稻的叶中的金属浓度进行了定量。将结果示于图14中。图14中,横轴表示所使用的稻的种类,纵轴表示叶中的铁含量。如图14所示可确认,OsHRZ2表达抑制株的叶与未处理株的叶相比,在铁充足条件下(图14(a))和缺铁条件下(图14(b))均蓄积了高浓度的铁。
[抑制了OsHRZ基因的表达的稻的稻杆和种子中的铁和锌的蓄积的确认]
为了考察抑制了OsHRZ基因的表达的稻的可食用部分中的铁的蓄积,对盆培后的稻的稻杆和种子中的铁浓度进行了定量。
将稻杆中的铁蓄积的结果示于图15中,将种子中的铁蓄积的结果示于图16中。图15和图16中,横轴表示所使用的稻的种类,纵轴表示稻杆或种子中的铁含量。图15(a)和图16(a)示出使用石灰质土壤的缺铁条件下的结果,图15(b)和图16(b)示出使用普通土壤的铁充足条件下的结果。
如图15和图16所示可确认,OsHRZ2表达抑制株的稻杆和种子与未处理株的稻杆和种子相比,在铁充足条件下(图15(b)和图16(b))和缺铁条件下(图15(a)和图16(a))均蓄积了高浓度的铁。由该结果可以认为,稻杆虽然不是可食用部分,但本发明能够应用于叶菜类等的铁富集。
同样地考察了在隔离田内的普通土壤中栽培的糙米和白米中的铁的蓄积。
将结果示于图17中。图17(a)示出糙米中的结果,图17(b)示出白米中的结果。图17(a)和图17(b)中OsHRZ2表达抑制株的种子与未处理株的种子相比均蓄积了高浓度的铁,由此确认了抑制了OsHRZ基因的表达的稻的可食用部分中的高浓度的铁的蓄积。
另外,为了考察抑制了OsHRZ基因的表达的稻的可食用部分中的锌的蓄积,对盆培后的稻的种子中的锌浓度进行了定量。图18(a)示出使用石灰质土壤的缺铁条件下的结果,图18(b)示出使用普通土壤的铁充足条件下的结果。如图18所示可确认,OsHRZ2表达抑制株的种子与未处理株的种子相比,在铁充足条件下和缺铁条件下(图18(a)和图18(b))均蓄积了高浓度的锌。
对于同样的稻,考察了在隔离田内的普通土壤中栽培的糙米和白米中的锌的蓄积。将结果示于图19中。图19(a)示出糙米中的结果,图19(b)示出白米中的结果。图19(a)和图19(b)中OsHRZ2表达抑制株的种子与未处理株的种子相比均蓄积了高浓度的锌,由此确认了抑制了OsHRZ基因的表达的稻的可食用部分中的高浓度的锌的蓄积。
此外,使用OsHRZ1破坏株(hrz1-1)和OsHRZ2破坏株(hrz2-1) 进行了与上述同样的使用普通土壤的盆培试验。将结果示于图20中。
图20(a)示出OsHRZ1破坏株(hrz1-1)的种子中的铁蓄积的结果,图20(b)示出OsHRZ2破坏株(hrz2-1)的种子中的铁蓄积的结果。图20(a)和图20(b)中,与未处理的稻(野生株:WT)的种子相比,OsHRZ破坏株的种子均蓄积了高浓度的铁。由此确认了OsHRZ破坏株的可食用部分中的高浓度的铁的蓄积。
另外,在同样的栽培条件下考察了OsHRZ破坏株的种子中的锌的蓄积。将结果示于图21中。图21(a)示出OsHRZ1破坏株(hrz1-1)的种子中的锌蓄积的结果,图21(b)示出OsHRZ2破坏株(hrz2-1)的种子中的锌蓄积的结果。图21(a)和图21(b)中,与未处理的稻(野生株:WT)的种子相比,OsHRZ破坏株的种子均蓄积了高浓度的锌。由此确认了OsHRZ破坏株的可食用部分中的高浓度的锌的蓄积。
另外,在同样的栽培条件下考察了OsHRZ破坏株的稻杆中的铁和锌的蓄积。将结果示于图22和图23中。图22示出OsHRZ破坏株(hrz1-1和hrz2-1)的稻杆中的铁蓄积的结果,图23示出OsHRZ破坏株(hrz1-1和hrz2-1)的稻杆中的锌蓄积的结果。图22和图23中,与未处理的稻(野生株:WT)的稻杆相比,OsHRZ破坏株的稻杆均蓄积了高浓度的铁锌。由此确认了OsHRZ破坏株的稻杆中的高浓度的铁锌的蓄积。
综上,抑制了OsHRZ的表达的转化稻和OsHRZ破坏株这两者表现出相同的表现型,由此确认,通过抑制OsHRZ基因的表达,稻的可食用部分中的铁锌蓄积提高。
[抑制了OsHRZ基因的表达的稻的根中的铁摄取相关基因、铁迁移相关基因的表达增强的确认]
本发明人使用44K微阵列分析考察了在铁充足条件下和缺铁条件下水培的OsHRZ2表达抑制株(2i-1~2i-3)的基因表达谱。基于由稻全长cDNA项目得到的序列信息,稻44K微阵列(安捷伦科技公司制造)含有43144个种类的60mer的寡核苷酸。使用NucleoSpin植物RNA小量制备试剂盒(Macherey-Nagel公司制造)从水培的OsHRZ2表达抑制株的根中制备总RNA。按照以前报道的内容进行微阵列杂交、数据获取和数 据分析(Ogo,Y.,等,J.Exp.Bot.(2006)vol.57,pp.2867-2878),以(OsHRZ2表达抑制株的平均信号值)/(未处理(NT)的稻的平均信号值)算出表达比。将结果示于图24中。
图24为示出各种基因的表达谱的图。如图24所示,OsHRZ2表达抑制株的根中,特别是在铁充足条件下,显示出多种铁摄取相关基因和铁迁移相关基因的表达增强。
进而,使用定量RT-PCR对铁充足条件下的微阵列分析的结果进行了验证。将结果示于图25中。图25中,横轴表示所使用的稻,纵轴表示各基因(OsIRO2、OsNAS2、OsYSL2)的mRNA的表达强度。如图25所示可确认,各基因的表达变化与微阵列分析的结果一致。
由此确认,OsHRZ蛋白质为缺铁应答的负调控因子,通过抑制OsHRZ蛋白质的表达,能够解除主要在铁充足条件下的铁摄取相关基因、铁迁移相关基因的表达抑制。
产业上的利用可能性
根据本发明,能够获得耐缺铁性提高的植物,因此,能够获得在可溶化的铁分少的碱性土壤等中也能生长的作物。
此外,根据本发明,能够获得在可食用部分中显著蓄积铁和锌、特别是铁的植物,因此,能够获得减轻缺铁症和缺锌症的作物。
特别是根据本发明,能够得到同时兼具上述的耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的性质,因此,认为对于在半干燥地带、石灰质倾向土壤等容易潜在缺铁的栽培条件下稳定生产富铁食物而言极为有利。
因此,本发明可以优选用于“新的铁锌结合性调控因子及利用其表达调节提高植物的耐缺铁性且促进可食用部分中的铁锌蓄积的技术”,在产业上极为有用。












新的铁锌结合性调控因子以及通过其表达调节提高植物的耐缺铁性和促进可食用部分中的铁锌蓄积的技术.pdf_第1页
第1页 / 共53页
新的铁锌结合性调控因子以及通过其表达调节提高植物的耐缺铁性和促进可食用部分中的铁锌蓄积的技术.pdf_第2页
第2页 / 共53页
新的铁锌结合性调控因子以及通过其表达调节提高植物的耐缺铁性和促进可食用部分中的铁锌蓄积的技术.pdf_第3页
第3页 / 共53页
点击查看更多>>
资源描述

《新的铁锌结合性调控因子以及通过其表达调节提高植物的耐缺铁性和促进可食用部分中的铁锌蓄积的技术.pdf》由会员分享,可在线阅读,更多相关《新的铁锌结合性调控因子以及通过其表达调节提高植物的耐缺铁性和促进可食用部分中的铁锌蓄积的技术.pdf(53页珍藏版)》请在专利查询网上搜索。

1、10申请公布号CN104245933A43申请公布日20141224CN104245933A21申请号201380018432922申请日20130719201216623320120726JPC12N15/09200601A01H5/00200601C07K14/415200601C07K16/16200601C12N1/15200601C12N1/19200601C12N1/21200601C12N5/1020060171申请人独立行政法人科学技术振兴机构地址日本埼玉县72发明人小林高范西泽直子74专利代理机构中科专利商标代理有限责任公司11021代理人蒋亭54发明名称新的铁锌结合性调控因。

2、子以及通过其表达调节提高植物的耐缺铁性和促进可食用部分中的铁锌蓄积的技术57摘要根据本发明,提供在石灰质土壤中表现出比通常的植物更优良的生长、并且在石灰质土壤和优良土壤这两种土壤中均能够大量地蓄积铁和锌的转化体和基因破坏株、以及它们的制作中使用的基因、载体、蛋白质、抗体、提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作方法/制作用组合物/制作用试剂盒/育种方法。本发明的蛋白质的特征在于,由下述AC中任一种氨基酸序列构成,并且为铁锌结合性调控因子。A序列号1或2所示的氨基酸序列、B在序列号1或2所示的氨基酸序列中缺失、取代或添加一个多个氨基酸而成的氨基酸序列、C与序列号1或2所示的氨基酸序列的。

3、同源性为80以上的氨基酸序列。30优先权数据85PCT国际申请进入国家阶段日2014093086PCT国际申请的申请数据PCT/JP2013/0696282013071987PCT国际申请的公布数据WO2014/017394JA2014013051INTCL权利要求书2页说明书17页序列表13页附图20页19中华人民共和国国家知识产权局12发明专利申请权利要求书2页说明书17页序列表13页附图20页10申请公布号CN104245933ACN104245933A1/2页21一种蛋白质,其特征在于,由下述AC中任一种氨基酸序列构成,并且为铁锌结合性调控因子,A序列号1或2所示的氨基酸序列,B在序列。

4、号1或2所示的氨基酸序列中缺失、取代或添加一个多个氨基酸而成的氨基酸序列,或者,C与序列号1或2所示的氨基酸序列的同源性为80以上的氨基酸序列。2一种基因,其特征在于,编码权利要求1所述的蛋白质。3一种基因,其特征在于,由下述DG中任一种DNA构成,并且编码作为铁锌结合性调控因子的蛋白质,D由序列号3或4所示的碱基序列构成的DNA,E由在序列号3或4所示的碱基序列中缺失、取代或添加一个多个碱基而成的碱基序列构成的DNA,F由与序列号3或4所示的碱基序列的同源性为80以上的碱基序列构成的DNA,或者,G由能够与由序列号3或4所示的碱基序列所构成的DNA的互补碱基序列构成的DNA在严格的条件下杂交。

5、的碱基序列构成的DNA。4一种载体,其特征在于,能够抑制权利要求2或3所述的基因的表达。5如权利要求4所述的载体,其能够表达可在MRNA水平上抑制所述基因的表达的RNAI诱导性核酸。6如权利要求5所述的载体,其中,所述RNAI诱导性核酸为序列号5所示的碱基序列。7一种转化体,其特征在于,通过将权利要求46中任一项所述的载体导入宿主中而形成。8一种基因破坏株,其特征在于,具有权利要求2或3所述的基因由于整合插入序列而被破坏的基因组DNA。9一种抗体,其特征在于,与权利要求1所述的蛋白质特异性地结合。10一种提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作方法,其特征在于,包括将权利要求46中任。

6、一项所述的载体导入植物中的步骤。11一种提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作用组合物,其特征在于,具备权利要求46中任一项所述的载体。12一种提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作用试剂盒,其特征在于,具备权利要求46中任一项所述的载体。13一种提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的育种方法,其特征在于,包括对来自植物的提取液中含有的权利要求1所述的蛋白质进行检测的步骤。权利要求书CN104245933A2/2页314一种提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的育种方法,其特征在于,包括对来自植物的提取液中含有的权利要求2或3所述的基因进行检测的步骤。权。

7、利要求书CN104245933A1/17页4新的铁锌结合性调控因子以及通过其表达调节提高植物的耐缺铁性和促进可食用部分中的铁锌蓄积的技术技术领域0001本发明涉及提高植物的耐缺铁性和促进可食用部分中的铁锌蓄积。详细而言,本发明涉及具有对植物的耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积进行调控的作用的蛋白质、基因、载体、转化体、基因破坏株、抗体、提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作方法、提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作用组合物、提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作用试剂盒、以及提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的育种方法。0002本申请要求以2012。

8、年7月26日在日本提出的特愿2012166233号为基础的优先权,将其内容援引到本发明中。背景技术0003植物为了生长、进行碳固定和物质生产,需要铁和锌。植物通过吸收土壤中的铁和锌来将它们加以利用。0004然而,在约占世界土壤的30的石灰质碱性土壤中,可溶化的铁和锌少,其中,可溶化的铁极少。因此,对于石灰质碱性土壤中的植物的生长而言,缺铁成为主要的制约因素。0005因此,当务之急是获得在以石灰质碱性土壤为代表的不良土壤中也可良好生长的植物。0006另外,从土壤中吸收铁和锌的植物是人类的主要的矿物质供给源。缺铁症和缺锌症对于全世界的人类、特别是儿童和女性已经成为深刻的问题,因此,期望获得在可食用。

9、部分中含有大量的铁和锌的植物。0007近年来,正在进行与铁和锌特别是铁的吸收和利用相关的基因的鉴定和分析。已经获得了通过改变该基因并导入植物中而提高了耐缺铁性和耐缺锌性的植物、或在可食用部分中蓄积有大量的铁和锌的植物例如,参照非专利文献111。0008现有技术文献0009非专利文献0010非专利文献1TAKAHASHI,M,等,NATUREBIOTECH,2001VOL19,PP4664690011非专利文献2ISHIMARU,Y,等,PROCNATLACADSCIUSA,2007VOL104,PP737373780012非专利文献3SUZUKI,M,等,SOILSCIPLANTNUTR,20。

10、08VOL54,PP77850013非专利文献4OGO,Y,等,PLANTMOLBIOL,2011VOL75,PP5936050014非专利文献5GOTO,F,等,NATUREBIOTECH,1999VOL17,PP2822860015非专利文献6UAUY,C,等,SCIENCE,2006VOL314,PP129813010016非专利文献7MASUDA,H,等,RICE,2008VOL1,PP1001080017非专利文献8MASUDA,H,等,RICE,2009VOL2,PP155166说明书CN104245933A2/17页50018非专利文献9LEE,S,等,PROCNATLACADS。

11、CIUSA,2009VOL106,PP22014220190019非专利文献10WIRTH,J,等,PLANTBIOTECHJ,2009VOL7,PP1140020非专利文献11ISHIMARU,Y,等,PLANTJ,2010VOL62,PP379390发明内容0021发明所要解决的问题0022但是,尚未获得在石灰质土壤中表现出与优良土壤中的生长同等程度或者更高程度的生长的植物。另外,尚未获得在石灰质土壤和优良土壤这两种土壤中均能够大量地例如,以往的2倍量以上蓄积铁和/或锌的植物。0023因此,从获得具有这种性质的植物的观点而言,还有改良的余地。0024本发明基于上述情况而完成,提供在石灰质土。

12、壤中表现出比通常的植物更优良的生长、并且在石灰质土壤和优良土壤这两种土壤中均能够在可食用部分中大量地蓄积铁和锌的转化体和基因破坏株、以及在它们的制作中使用的基因、载体、蛋白质、抗体、提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作方法、提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作用组合物、提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作用试剂盒、以及提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的育种方法。所谓可食用部分,可举出例如植物的种子、地上部分、茎叶、根等,只要是作为食用、饲料用而可食用的部分,则不一定限定于这些部分。另外,在上述植物为水稻的情况下,可举出作为相当于种子的部分的。

13、糙米、将糙米制成精米而得到的胚芽米、分解米、白米等。0025用于解决问题的手段0026本发明人为了解决上述问题而进行了深入研究,结果发现了具有抑制植物的缺铁应答的作用的蛋白质。并且发现,通过制作抑制了编码该蛋白质的基因的表达的植物,能够提高植物的耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积,从而完成了本发明。0027即,本发明提供具有下述特征的蛋白质、基因、载体、转化体、基因破坏株、抗体、提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作方法、提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作用组合物、提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作用试剂盒、以及提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的。

14、植物的育种方法。00281一种蛋白质,其特征在于,由下述AC中任一种氨基酸序列构成,并且为铁锌结合性调控因子,0029A序列号1或2所示的氨基酸序列,0030B在序列号1或2所示的氨基酸序列中缺失、取代或添加一个多个氨基酸而成的氨基酸序列,或者,0031C与序列号1或2所示的氨基酸序列的同源性为80以上的氨基酸序列。00322一种基因,其特征在于,编码上述1所述的蛋白质。00333一种基因,其特征在于,由下述DG中任一种DNA构成,并且编码作为铁锌结合性调控因子的蛋白质,0034D由序列号3或4所示的碱基序列构成的DNA,0035E由在序列号3或4所示的碱基序列中缺失、取代或添加一个多个碱基而。

15、成的说明书CN104245933A3/17页6碱基序列构成的DNA,0036F由与序列号3或4所示的碱基序列的同源性为80以上的碱基序列构成的DNA,或者,0037G由能够与由序列号3或4所示的碱基序列所构成的DNA的互补碱基序列构成的DNA在严格的条件下杂交的碱基序列构成的DNA。00384一种载体,其特征在于,能够抑制上述2或3所述的基因的表达。00395如上述4所述的载体,其能够表达可在MRNA水平上抑制所述基因的表达的RNAI诱导性核酸。00406如上述5所述的载体,其中,所述RNAI诱导性核酸为序列号5所示的碱基序列。00417一种转化体,其特征在于,通过将上述46中任一项所述的载体。

16、导入宿主中而形成。00428一种基因破坏株,其特征在于,具有上述2或3的基因由于整合插入序列而被破坏的基因组DNA。00439一种抗体,其特征在于,与上述1所述的蛋白质特异性地结合。004410一种提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作方法,其特征在于,包括将上述46中任一项所述的载体导入植物中的步骤。004511一种提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作用组合物,其特征在于,包含上述46中任一项所述的载体。004612一种提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的制作用试剂盒,其特征在于,包含上述46中任一项所述的载体。004713一种提高了耐缺铁性和可食用部分中。

17、的铁锌蓄积的植物的育种方法,其特征在于,包括对来自植物的提取液中含有的上述1所述的蛋白质进行检测的步骤。004814一种提高了耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物的育种方法,其特征在于,包括对来自植物的提取液中含有的上述2或3所述的基因进行检测的步骤。0049发明效果0050根据本发明,能够制作出在石灰质土壤中表现出比通常的植物更优良的生长、在石灰质土壤和优良土壤这两种土壤中均能够大量地蓄积铁和锌的转化体和基因破坏株。0051此外,根据本发明,能够有助于不良土壤中的碳酸固定、物质生产以及人类的铁锌缺乏症的缓解。附图说明0052图1表示本发明的OSHRZ1蛋白质和OSHRZ2蛋白质的域结构。0。

18、053图2表示本发明的基因破坏株中的基因组结构。0054图3表示具有蚯蚓血红蛋白域的蛋白质的系统树和域结构。0055图4表示使用定量RTPCR得到的OSHRZ1和OSHRZ2的MRNA的表达水平的分析结果。0056图5表示所制作的重组蛋白的域结构。0057图6表示野生型和突变型OSHRZ蛋白质与金属的结合能力的分析结果。说明书CN104245933A4/17页70058图7表示含有各重组蛋白溶解液的管的照片。0059图8表示OSHRZ2表达抑制株中的、使用定量RTPCR得到的OSHRZ2的MRNA的表达水平的分析结果。0060图9表示在缺铁栽培条件下的OSHRZ2表达抑制株的最新叶中的叶绿素含。

19、量的定量结果。0061图10表示在石灰质土壤长期栽培下的OSHRZ2表达抑制株的最新叶中的叶绿素含量的定量结果。0062图11表示在石灰质土壤中栽培28天下的未处理NT的稻和OSHRZ2表达抑制株的株高的照片。0063图12表示OSHRZ破坏株中的基因组PCR的结果。0064图13表示在缺铁栽培条件下的OSHRZ破坏株的最新叶中的叶绿素含量的定量结果。0065图14表示在铁充足条件下和缺铁条件下水培7天后的OSHRZ2表达抑制株的叶中的蓄积铁浓度。0066图15表示在石灰质土壤中和通常的土壤中盆培后的OSHRZ2表达抑制株的稻杆中的蓄积铁浓度。0067图16表示在石灰质土壤中和通常的土壤中盆培。

20、后的OSHRZ2表达抑制株的种子中的蓄积铁浓度。0068图17表示在隔离田内的通常土壤中栽培后的OSHRZ2表达抑制株的糙米和白米中的蓄积铁浓度。0069图18表示在石灰质土壤中和通常的土壤中盆培后的OSHRZ2表达抑制株的种子中的蓄积锌浓度。0070图19表示在隔离田内的通常土壤中栽培后的OSHRZ2表达抑制株的糙米和白米中的蓄积锌浓度。0071图20表示在通常的土壤中盆培后的OSHRZ破坏株的种子中的蓄积铁浓度。0072图21表示在通常的土壤中盆培后的OSHRZ破坏株的种子中的蓄积锌浓度。0073图22表示在通常的土壤中盆培后的OSHRZ破坏株的稻杆中的蓄积铁浓度。0074图23表示在通常。

21、的土壤中盆培后的OSHRZ破坏株的稻杆中的蓄积锌浓度。0075图24表示在铁充足条件下和缺铁条件下水培后的OSHRZ2表达抑制株的根中的、使用44K微阵列得到的基因表达谱的分析结果。0076图25表示通过微阵列分析,对于在铁充足条件下的OSHRZ2表达抑制株的根中确认到表达上升的基因,使用定量RTPCR进行验证的结果。具体实施方式00770078本发明的蛋白质由下述AC中任一种氨基酸序列构成,并且为铁锌结合性调控因子。0079A序列号1或2所示的氨基酸序列,0080B在序列号1或2所示的氨基酸序列中缺失、取代或添加一个多个氨基酸而成说明书CN104245933A5/17页8的氨基酸序列,或者,。

22、0081C与序列号1或2所示的氨基酸序列的同源性为80以上的氨基酸序列。0082上述A的氨基酸序列为序列号1或2所示的氨基酸序列。0083本发明人将由序列号1和2所示的氨基酸序列构成的蛋白质分别命名为包含水稻蚯蚓血红蛋白模体的真正感兴趣新基因型锌指蛋白ORYZASATIVAHEMERYTHRINMOTIFCONTAININGREALLYINTERESTINGNEWGENERINGANDZINCNGERPROTEIN,以下称为OSHRZ1和OSHRZ2。0084如图1所示,OSHRZ1从N末端侧到C末端侧包括三个推定的蚯蚓血红蛋白也作为HHE而公知结构域、推测参与转录调控/转录后调控/蛋白质分解。

23、调控等的两个ZN指结构域CHY样ZN指结构域和CTCHY样ZN指结构域、作为E3连接酶起作用而参与蛋白质分解调控的RINGZN指结构域和推测为了传递电子而形成铁硫簇的红素氧还蛋白样模体。0085另外,如图1所示,OSHRZ2从N末端侧到C末端侧包括一个蚯蚓血红蛋白结构域、三个ZN指结构域CHY样ZN指结构域、CTCHY样ZN指结构域和RINGZN指结构域和红素氧还蛋白样模体。0086在缺铁栽培条件下,编码这些OSHRZ蛋白质的基因的表达被诱导。0087认为植物中合成的OSHRZ蛋白质通过蚯蚓血红蛋白结构域与铁和锌结合,作为对植物细胞内的铁与其他金属的浓度比进行检测的铁传感器起作用。0088此外。

24、,OSHRZ1和OSHRZ2蛋白质通过推测参与转录调控/转录后调控/蛋白质分解调控等的上述三个ZN指结构域,主要在铁充足条件的栽培下抑制铁摄取相关基因和铁迁移相关基因的表达。0089作为上述B,例如可举出在蚯蚓血红蛋白结构域以外的部位具有突变缺失、插入、取代或添加的蛋白质、或者具有位于蚯蚓血红蛋白结构域且保持铁锌结合活性的突变的蛋白质。0090另外,作为上述B,可举出例如在推测参与转录调控/转录后调控/蛋白质分解调控等的上述三个ZN指结构域以外的部位具有突变的蛋白质、或者具有位于上述ZN指结构域且保持铁摄取相关基因和铁迁移相关基因的表达抑制能力的突变的蛋白质。0091在此,作为可以被缺失、取代。

25、或添加的氨基酸的数量,优选110个,更优选17个,进一步优选15个,特别优选13个,最优选12个。0092构成本发明的蛋白质的氨基酸序列中,对一个或多个氨基酸引入突变可以使用公知技术容易地进行。0093例如,根据公知的定点诱变法,可以使编码蛋白质的基因中的任意碱基发生突变。另外,可以设计与编码蛋白质的基因中的任意部位对应的引物来制作缺失突变体或者添加突变体。0094作为上述C,可举出例如在蚯蚓血红蛋白结构域以外的部位具有突变缺失、插入、取代或添加的蛋白质、或者具有位于蚯蚓血红蛋白结构域且保持铁锌结合活性的突变的蛋白质。0095另外,上述C,可举出例如在推测参与转录调控/转录后调控/蛋白质分解调。

26、控等的上述三个ZN指结构域以外的部位具有突变的蛋白质、或者具有位于上述ZN指结构域且保持铁摄取相关基因和铁迁移相关基因的表达抑制能力的突变的蛋白质。说明书CN104245933A6/17页90096在此,作为与序列号1或2所示的氨基酸序列的同源性氨基酸序列的同源性,优选为80以上,更优选85以上,进一步优选90以上,特别优选95以上,最优选98以上。0097作为表达本发明的蛋白质中使用的表达载体,可举出在宿主细胞中表达本发明的蛋白质的细胞系载体、和在由从适当的细胞提取出的具有蛋白质合成能力的成分构成的蛋白质翻译系统中表达本发明的蛋白质的无细胞系载体。0098作为细胞系载体,可以使用适合宿主细胞。

27、的公知的表达载体。例如可举出大肠杆菌中以PBR322诱导体为代表的COLEI系质粒、具有P15A起点的PACYC系质粒、PSC系质粒、来源于BAC系等的F因子的MINIF质粒。此外,还可以举出具有TRC、TAC等色氨酸启动子、LAC启动子、T7启动子、T5启动子、T3启动子、SP6启动子、阿拉伯糖诱导启动子、冷休克启动子、四环素诱导性启动子等的表达载体。0099作为无细胞系载体,可举出在细胞系载体中列举的具有T7启动子的表达载体、具有T3启动子的表达载体;具有SP6启动子或T7启动子的PEU系质粒等小麦无细胞蛋白质合成用载体等。0100使用无细胞系载体的蛋白质合成中,首先,使用转录系统对CDN。

28、A进行转录,合成MRNA。作为该转录系统,可举出利用RNA聚合酶进行转录的现有公知的转录系统。作为RNA聚合酶,可举出例如T7RNA聚合酶。0101接着,使用作为翻译系统的无细胞蛋白质合成系统对MRNA进行翻译,从而合成蛋白质。该系统中包含核糖体、翻译起始因子、翻译延伸因子、解离因子、氨酰TRNA合成酶等翻译所必需的要素。作为这样的蛋白质翻译系统,可举出大肠杆菌提取液、兔网织红细胞提取液、小麦胚芽提取液等。0102此外,还可举出上述翻译所必需的要素仅由独立纯化的因子构成的再构成型无细胞蛋白质合成系统。0103使用细胞系载体或无细胞系载体合成的蛋白质可以在细胞成分提取液中使用,也可以纯化后再使用。

29、。作为纯化方法,可举出盐析法、使用各种层析法的方法。在表达载体以在目的蛋白质的N末端或C末端表达组氨酸标签等标签序列的方式设计的情况下,可举出使用镍、钴等对该标签具有亲和性的物质的利用亲和柱的纯化方法。此外,也可以通过将离子交换层析法、凝胶过滤层析法等适当组合后进行纯化来提高本发明的蛋白质的纯度。01040105本发明的基因编码由上述AC中任一种氨基酸序列构成且为铁锌结合性调控因子的蛋白质。0106另外,本发明的基因编码由以下的DG中任一种DNA构成且为铁锌结合性调控因子的蛋白质。0107D由序列号3或4所示的碱基序列构成的DNA,0108E由在序列号3或4所示的碱基序列中缺失、取代或添加一个。

30、多个碱基而成的碱基序列构成的DNA,0109F由与序列号3或4所示的碱基序列的同源性碱基序列的同源性为80以上、优选为85以上、更优选为90以上、进一步优选为95以上、特别优选为98以上的碱基序列构成的DNA,或者,说明书CN104245933A7/17页100110G由能够与由序列号3或4所示的碱基序列构成的DNA的互补碱基序列构成的DNA在严格的条件下杂交的碱基序列构成的DNA。0111在此,作为可以被缺失、取代或添加的碱基的数量,优选130个,更优选120个,进一步优选115个,特别优选110个,最优选15个。0112本发明和本申请说明书中,所谓“在严格的条件下”,例如可举出MOLECU。

31、LARCLONINGALABORATORYMANUAL分子克隆实验指南第三版SAMBROOK等、冷泉港实验室出版社中记载的方法。例如可举出通过在由5SSC20SSC的组成3M氯化钠、03M柠檬酸溶液、PH70、01重量N月桂酰肌氨酸、002重量的SDS、2重量的核酸杂交用封闭试剂和50甲酰胺构成的杂交缓冲液中在5570下进行数小时至过夜的温育来进行杂交的条件。作为温育后的洗涤时使用的洗涤缓冲液,优选为含有01重量SDS的1SSC溶液、更优选为含有01重量SDS的01SSC溶液。01130114本发明的载体为能够抑制上述的本发明的基因的表达的载体。优选能够表达可在MRNA水平抑制上述基因的表达的。

32、RNAI诱导性核酸。0115RNAI诱导性核酸是指通过导入到植物细胞内而能够诱导RNA干扰的核酸。所谓RNA干扰是指,含有与MRNA或其部分序列互补的碱基序列的RNA抑制该MRNA的表达的效果。0116RNAI诱导性核酸的作为标靶的MRNA可以是编码区,也可以是非编码区。作为上述RNAI诱导性核酸,优选为序列号5所示的碱基序列,该RNAI诱导性核酸以OSHRZ的3UTRUNTRANSLATEDREGION,非翻译区全长和编码区的一部分作为标靶。0117另外,作为RNAI诱导性核酸,例如可举出SIRNA、MIRNA。作为导入到植物细胞内、与SIRNA同样地引起RNAI的载体,可举出SHRNASH。

33、ORTHAIRPINRNA/SMALLHAIRPINRNA,短发夹RNA/小发夹RNA表达载体。0118利用本发明的载体,能够提高植物的耐缺铁性和铁锌蓄积。0119在此,“植物的耐缺铁性”是指即使在可溶化的铁分少的土壤中也能生长的特性,例如,在碱性土壤中不易发生称为萎黄病由于叶绿素缺陷导致的黄色化的缺铁症的等特性。0120另外,“铁锌蓄积”是指能够在稻的地上部、特别是作为可食用部分的种子中蓄积高浓度的铁和锌的特性。例如,将使用上述载体制作的转化体在隔离田是指基于规定的手续而设置的基因重组用的隔离田内的普通土壤中栽培而得到的种子与未处理的稻的种子相比,含有约38倍量的铁,含有约12倍量的锌。01。

34、21本发明的载体可以利用公知的基因重组技术来制作。01220123本发明的转化体有时也称为表达抑制株是将本发明的载体导入宿主中而得到的。如上所述,本发明的载体能够使作为宿主的植物的耐缺铁性和铁锌蓄积提高。因此,本发明的转化体的耐缺铁性优良,并且特别是能够在可食用部分中蓄积高浓度的铁锌。0124另外,本发明的耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物的制作方法是指用于制作耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物体的方法。本发明的耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物的制作方法只要包含将本发明的载体导入植物体内的步骤,则没有特别限定。说明书CN104245933A108/17页110125在使用重组表达载体的情况下,植物。

35、体的转化中应使用的载体只要是能够在该植物内抑制本发明的基因的表达的载体,则没有特别限定。0126作为这样的载体,例如可举出具有花椰菜花叶病毒的35S启动子等在植物细胞内使基因进行结构性表达的启动子的载体;具有因外部刺激而诱导性活化的启动子的载体。0127本发明中作为转化对象的植物表示整个植物体、植物器官例如叶、花瓣、茎、根、种子等、植物组织例如表皮、韧皮部、柔软组织、木质部、维管束、栅栏组织、海绵组织等或植物培养细胞、或者各种形式的植物细胞例如,悬浮培养细胞、原生质体、叶的切片、愈伤组织等中的任意一种。作为转化中使用的植物,没有特别限定,优选为稻科植物,更优选为稻、大麦、小麦或玉米。0128基。

36、因向植物中的导入可以使用本领域技术人员公知的转化方法例如,土壤杆菌法、基因枪、PEG法、电穿孔法等,大致分为土壤杆菌介导的方法和直接导入植物细胞的方法。使用土壤杆菌法时,可以使用将构建的植物用表达载体导入适当的土壤杆菌例如,根癌土壤杆菌AGROBACTERIUMTUMEFACIENS中,依照叶盘法内宫博文著、植物基因操作指南19902731页、讲谈社SCIENTIFIC、东京等使该菌株感染无菌培养叶片,从而得到转化植物的方法。0129另外,可以使用NAGEL等的方法MICRIBIOLLETT,1990VOL67,PP325。该方法为如下方法首先,将表达载体导入土壤杆菌,接着,将转化后的土壤杆菌。

37、用PLANTMOLECULARBIOLOGYMANUAL植物分子生物学指南SBGELVIN等、学术出版社出版中记载的方法导入植物细胞或植物组织中。在此,“植物组织”包括通过植物细胞的培养得到的愈伤组织。使用土壤杆菌法进行转化时,可以使用PBI系的双元载体例如,PBIG、PBIN19、PBI101、PBI121、PBI221和PPZP202等。0130另外,作为将基因直接导入植物细胞或植物组织的方法,可举出电穿孔法、基因枪法等。使用基因枪时,作为导入基因的对象,可以直接使用植物体、植物器官、植物组织本身,也可以制备切片后使用,还可以制备原生质体后使用。可以使用基因导入装置例如PDS1000伯乐公。

38、司等对这样制备的试样进行处理。处理条件因植物或试样而异,通常以约4502000PSI的压力、约412CM的距离进行。0131对于基因导入后的细胞或植物组织,首先利用潮霉素抗性等药剂抗性进行选择,接着通过常规方法再生为植物体。从转化细胞向植物体的再生可以根据植物细胞的种类通过本领域技术人员公知的方法来进行。作为选择标记物,并不限定于潮霉素抗性,例如可举出对博莱霉素、卡那霉素、庆大霉素、氯霉素等的抗药性。0132在使用植物培养细胞作为宿主的情况下,例如可举出显微注射法、电穿孔法、聚乙二醇法、基因枪粒子枪法、原生质体融合法、磷酸钙法等。通过这些方法将重组载体导入培养细胞而进行转化。作为转化结果而得到。

39、的愈伤组织、根、毛状根等可以直接用于细胞培养、组织培养或器官培养。可以使用这些现有公知的植物组织培养法,通过施用适当浓度的植物激素生长素、细胞分裂素、赤霉素、脱落酸、乙烯、芸苔素内酯等等使其再生为植物体。0133基因是否已被导入植物可以通过PCR法、SOUTHERN杂交法、NORTHERN杂交法等进行确认。例如,由转化植物制备DNA,设计DNA特异性引物并进行PCR。PCR可以在本领域技说明书CN104245933A119/17页12术人员公知的条件下进行。然后,对扩增产物进行琼脂糖凝胶电泳、聚丙烯酰胺凝胶电泳或毛细管电泳等,利用溴化乙锭、SYBRGREEN液等进行染色。然后,使扩增产物成为单。

40、链来进行检测,由此可以确认已被转化。另外,也可以使用预先由荧光色素等标记的引物进行PCR并检测扩增产物。此外,还可以采用使扩增产物结合到微孔板等固相上、利用荧光或酶反应等来确认扩增产物的方法。0134一旦获得在基因组内整合有本发明的载体的转化植物体,则可以通过该植物体的有性生殖或无性生殖获得后代。另外,可以由上述植物体或其后代、或者它们的克隆得到例如种子、果实、穗、块茎、块根、根株、愈伤组织、原生质体等,并在它们的基础上大量生产上述植物体。0135因此,本发明的转化体也包括以可表达的方式导入有本发明的载体的植物体、或与该植物体具有相同性质的上述植物体的后代、或者来源于它们的组织。0136013。

41、7本发明的基因破坏株通过整合插入序列而具有本发明的基因被破坏的基因组DNA。例如,如图2所示,通过利用同源重组使TDNAHRZ11插入到基因组DNA中、或者通过转座子HRZ21的转移,使基因组DNA上存在的本发明的基因被破坏,从而使其表达被抑制。0138利用本发明的基因破坏株,本发明的基因和蛋白质的表达被抑制。因此,铁摄取相关基因、铁迁移相关基因的稳定表达抑制被解除,能够提高植物中的耐缺铁性和铁锌蓄积。0139作为本发明的基因破坏株,优选TOS17插入株ND6059稻基因组资源中心。该插入株不是转化植物,因此,从可在一般的田地中快速生长的方面而言优良。0140本发明的转化体和基因破坏株除了如上。

42、所述可食用部分中的铁锌蓄积的显著提高,还兼具优良的耐缺铁性。因此,对于在半干燥地带、石灰质土壤等容易潜在缺铁的栽培条件下稳定地生产富铁食物而言是特别有用的。01410142本发明的耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物的制作用组合物含有本发明的载体。另外,本发明的耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物的制作用试剂盒包括本发明的载体。在此,“组合物”是指各种成分含有在一种物质中的方式。“试剂盒”是指各种成分中的至少一种含有在另一物质中的方式。0143另外,“耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物的制作用组合物”为用于制作耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物体的组合物。“耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物的制作用试剂盒”。

43、为用于制作耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物的试剂盒。0144本发明的转化体通过将本发明的载体导入宿主植物而得到。由此,本发明的基因的表达被抑制,耐缺铁性和铁锌蓄积能够提高。并且,如上所述,如果使用本发明的载体,则能够将本发明的载体导入植物体中。因此,包括本发明的载体的组合物或包括载体的试剂盒优选用于制作耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物。0145即,本发明的耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物的制作用组合物、或耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物的制作用试剂盒可以作为上述的本发明的耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物的制作方法中的载体的供给源使用。0146本发明的耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物的制作用组合。

44、物除了包括本发明说明书CN104245933A1210/17页13的载体以外,还可以包括溶剂、分散介质、试剂等。0147另外,本发明的耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物的制作用试剂盒除了包括本发明的载体以外,还可以包括溶剂、分散介质、试剂、用于使用它们的说明书等。在此,本发明的试剂盒中,除说明书以外还“包括”溶剂等是指包含在构成试剂盒的各个容器例如,瓶、板、管、碟等中的任意一种的内部。0148另外,本发明的试剂盒例如可以将物质A和物质B混合包括在同一容器内,可以包括在分开的容器内。“说明书”可以书写在纸或其他介质上,也可以印刷在纸或其他介质上,或者还可以附于磁带、计算机可读磁盘或磁带、CDROM。

45、等这样的电子介质上。另外,本发明的试剂盒可以包括内包有稀释剂、溶剂、洗涤液、其他试剂的容器。01490150本发明的抗体只要是与本发明的蛋白质特异性结合的抗体,则没有限定,可以为针对上述蛋白质的多克隆抗体等,但优选为针对上述蛋白质的单克隆抗体。单克隆抗体从下述方面而言优良具有性质均匀且易于供给,可以将其产生细胞以杂交瘤的形式半永久地保存等。0151作为本发明的抗体,可举出免疫球蛋白IGA、IGD、IGE、IGG、IGM和它们的FAB片段、FAB2片段、FC片段,具体而言,可举出多克隆抗体、单克隆抗体、单链抗体和抗独特型抗体等,但不限定于这些。0152需要说明的是,本发明的抗体可以依照各种公知的。

46、方法来制作。例如,单克隆抗体可以通过使用该领域中公知的技术例如,杂交瘤法KOHLER,G和MILSTEIN,C,NATURE256,4954971975、三瘤体法、人类B细胞杂交瘤法KOZBOR,IMMUNOLOGYTODAY4,721983和EBV杂交瘤法参照MONOCLONALANTIBODIESANDCANCERTHERAPY,ALANRLISS,INC,77961985等来制作。0153另外,肽抗体可以依照该领域中公知的方法例如,CHOW,M,等,PROCNATLACADSCIUSA1985VOL82,PP910914;BITTLE,FJ等,JGENVIROL1985VOL66,PP2。

47、3472354来制作。0154本发明的抗体如上所述包括FAB片段、FAB2片段等片段。这样的片段代表地可以通过使用木瓜蛋白酶生成FAB片段或胃蛋白酶生成FAB2片段等酶对抗体进行蛋白质分解来产生。0155或者,这样的片段可以通过应用重组DNA技术或化学合成来产生。01560157第一实施方式0158本实施方式的耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物的育种方法包括对提取自植物的提取物中含有的本发明的蛋白质进行检测的步骤。0159本实施方式的耐缺铁性和铁锌蓄积得到提高的植物的育种方法只要包括为了判断在植物体内本发明的蛋白质的表达是否被抑制而对本发明的蛋白质进行检测的步骤即可。基于本发明的蛋白质的表达的有。

48、无,筛选具有耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积的植物。0160如上所述,本发明的蛋白质抑制在植物从土壤中获得铁时具有重要作用的基因的表达。因此,上述蛋白质的表达被抑制的植物获得铁的能力高,耐缺铁性和铁锌蓄积提高。说明书CN104245933A1311/17页140161另外,依照本实施方式的方法育种得到的植物体可以为天然的植物体,也可以为转化体。0162提取自植物的提取物可以使用利用液体氮气的冷冻破碎法、市售的提取试剂盒来获得,但并不限定于此。另外,“提取物”可以为粗提纯物,也可以为经过若干纯化步骤后的纯化标准品。0163本实施方式的育种方法中,作为上述对提取自植物的提取物中含有的本发明的蛋白质。

49、进行检测的步骤,可举出通过使提取自该植物的提取物与本发明的抗体反应来对本发明的蛋白质进行检测的步骤。如上所述,上述抗体与本发明的蛋白质特异性结合而形成免疫复合物,因此,通过检测该复合物的形成,能够容易地检测在植物体内表达的上述蛋白质。0164上述复合物的形成例如使用将上述抗体预先用同位素等标记的方法、或者使用针对上述抗体的二次抗体的方法等来检测。具体而言,可以使用公知的蛋白免疫印迹法、蛋白芯片法等。0165另外,本发明的抗体优选用于本实施方式的耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积得到提高的植物的育种方法。因此,含有本发明的抗体的组合物或者包括上述抗体的试剂盒优选用于耐缺铁性和可食用部分中的铁锌蓄积得到提高的植物的育种。0166第二实施方式0167本实施方式的植物的育种方法包括对提取自植物的提取物中含有的本发明的基因进行检测的步骤。0168上述对提取自植物的提取物中含有的本发明的基因进行检测的步骤优选包括将本发明的基因的片段或由其互补序列构成的寡核苷酸与上述提取自植物的提取物进行温育的步骤,更优选包括使提取自植物的提取物与来源于目标植物的基因组DNA、MRNA或针对MRNA的CDNA杂交的步骤。0169通过使用本实施方式的育种方法对杂交后的靶基因进行检测,。

展开阅读全文
相关资源
猜你喜欢
相关搜索

当前位置:首页 > 化学;冶金 > 生物化学;啤酒;烈性酒;果汁酒;醋;微生物学;酶学;突变或遗传工程


copyright@ 2017-2020 zhuanlichaxun.net网站版权所有
经营许可证编号:粤ICP备2021068784号-1