因此，本发明打算提供多价的疫苗制剂，所述制剂可以确保接种能
抵抗多种病原性的禽病毒。
本发明的另一目的是提供含有不同效价并满足彼此相容性和效价
稳定性所需的所有标准的疫苗制剂。
本发明的另一目的是提供可以在相同载体中含有不同效价的疫苗
制剂。
本发明的另一目的是提供使用简单且便宜的疫苗。
本发明的另一目的是提供接种鸡形目动物的方法，所述接种可以得
到高效，长期以及安全性良好又不留后患的保护作用，包括多价保护作
用。
因此，本发明的目的是禽疫苗制剂，所述制剂含有至少3种效价的
多核苷酸疫苗，每种含有一个整合质粒，其可在宿主细胞中体内表达一
种禽病原体效价的基因，这些效价选自马立克氏病病毒(MDV)，新城疫
病毒(NDV),Gumboro病病毒(IBDV)，传染性支气管炎病毒(IBV)，
传染性贫血症病毒(CAV)，传染性喉气管炎病毒(ILTV)，脑脊髓炎病毒
(AEV或禽白血病病毒ALV)，肺病毒病病毒，和禽瘟病毒，对于每种
效价而言，质粒含有一种或多种基因，该基因对于马立克氏病病毒选自
gB和gD，对于新城疫病毒选自HN和F，对于Gumboro病病毒选自
VP2，对于传染性支气管炎病毒选自S、M和N，对于传染性贫血症
病毒选自C+NS1，对于传染性喉气管炎病毒选自gB和gD，对于脑
脊髓炎病毒选自env和gag/pro，对于肺病毒病病毒选自F和G，和
对于禽瘟病毒选自HA、N和NP。
本发明中的效价应理解成至少一种可提供抗所研究病原体病毒的
保护作用的抗原，效价可含有得自一株或多株所研究病原体的一个或多
个天然或经修饰的基因作为亚效价。
病原性因子的基因应理解成不仅指完整的基因，也指不同的多种核
苷酸序列，包括保持了诱导保护性反应之能力的片段。基因的概念覆盖
了等价于实施例中详细描述的序列的核苷酸序列，也就是说，有所不同
但编码相同蛋白质的序列。此概念也覆盖了被研究的其它株病原体的核
苷酸序列，它可以提供交叉保护作用或特异于株或株群的保护作用。此
概念也覆盖了已被修饰以便于由宿主动物在体内表达，但编码相同蛋白
质的核苷酸序列。
优选本发明的疫苗制剂含有3种选自马立克氏病、Gumboro病、
传染性贫血症和新城疫的效价，也优选在其中加入传染性支气管炎的效
价。
在该3,4或5种效价的基础上，可以加入一种或多种选自禽瘟、
传染性喉气管炎、肺病毒病和脑脊髓炎的效价。
至于马立克氏病效价，在不同质粒或一个相同质粒中可使用两个编
码gB和gD的基因，然而优选仅使用gB基因。
对于新城疫效价而言，优选使用整合至两个不同质粒或一个相同质
粒中的HN和F这两个基因。
对于传染性支气管炎的效价而言，优选使用S基因。任选，但较不
优选S和M在单个质粒或不同质粒中联合。
对于传染性贫血症的效价而言，优选C和NS1这两个基因在相同
的质粒中联合。
对于传染性喉气管炎的效价而言，优选仅使用gB基因。任选，但
较不优选gB和gD这两个基因在不同质粒或一个相同质粒中联合。
对于肺病毒病的效价而言，优选使用单个质粒或不同质粒中的F和
G这两个基因。
对于禽瘟的效价而言，优选使用HA基因，任选，但较不优选，可
以使用不同质粒或一个相同质粒中HA和NP或HA和N的联合。优选
在相同疫苗中联合得自一种以上流感病毒株，尤其是得自在自然界发现
的不同株的HA序列。另一方面，NP提供了交叉保护作用，因此得自
单个病毒株的序列能令人满意。
对于脑脊髓炎的效价而言，优选使用env。
本发明疫苗制剂以0.1-1ml，尤其是0.3-0.5ml的剂量体积提供。
剂量一般为每种质粒类型10ng-1mg，优选为100ng-500μg，优选
为0.1μg-50μg。
优选使用简单地置于接种载体，一般为生理盐水等中的裸质粒。当
然也可以使用现有技术中已描述的任何多核苷酸疫苗形式，尤其是配制
于脂质体中的疫苗形式。
每个质粒都含有启动子，在其控制下可确保插入基因在宿主细胞中
的表达。所述启动子一般是强的真核生物启动子，尤其是来源于人或
鼠、或任选来源于其它动物如大鼠、猪和豚鼠的巨细胞病毒早期
CMV-IE启动子。
启动子更一般地讲是来源于病毒或细胞。至于CMV-IE以外的病
毒启动子，可提到SV40病毒早期或晚期启动子或Rous肉瘤病毒LTR
启动子。也可以是基因来源病毒的启动子，例如基因自身的启动子。
至于细胞启动子，可提到细胞骨架基因的启动子，例如结蛋白启动
子(Bolmont等，亚显微镜细胞学和病理学(Journal ofSubmicroscopic
Cytology and Pathology),1990,22,117-122；和Zhenlin等，
基因(Gene),1989,78,243-254)或者肌动蛋白启动子。
当相同质粒中存在几个基因时，它们会存在于相同的转录单位或两
个不同的单位中。
优选通过混合表达各种效价之抗原的多核苷酸质粒来达到本发明
不同疫苗效价的联合，但也可以设想使几种效价的抗原由相同质粒表
达。
本发明的目的还在于单价疫苗制剂，所述制剂含有一个或多个编码
得自上述病毒之一的一个或多个基因的质粒，所述基因为上述的那些。
除了它们的单价特征外，这些制剂可具有上述有关基因选择，基因联
合，质粒组成，剂量体积，剂量等方面的特征。
单价疫苗制剂也可用于(ⅰ)制备上述的多价疫苗制剂，(ⅱ)各对抗自
己的疾病，(ⅲ)与针对另一种疾病的另一类型(活的或灭活的完整的，重
组的，亚单位)的疫苗联合，或(ⅳ)按下述作为疫苗的加强剂。
实际上本发明另一个目的是使用一种或多种本发明的质粒以制备
用于接种动物的禽疫苗，所述动物首先已被第一种已知类型的常规疫苗
(单价或多价)接种，所述第一种疫苗特别选自活的完整疫苗，灭活的完
整疫苗、亚单位疫苗和重组疫苗，所述第一种疫苗具有(也就是说含有
或能表达)由所述质粒编码的抗原或提供交叉保护作用的抗原。
值得注意的是，所述多核苷酸疫苗具有强有力的加强效果，可导致
免疫应答的增强并可获得长期的免疫力。
一般地讲，第一接种疫苗可选自可从不同的兽用疫苗生产商处购得
的疫苗。
本发明的另一目的是接种试剂盒，所述试剂盒将本发明的疫苗制剂
和上述第一接种疫苗组配在一起。本发明还涉及附带有说明书的本发明
的疫苗制剂，所述说明书指明该制剂可作为上述第一次接种的加强剂来
使用。
本发明的另一目的是接种禽的方法，所述方法包括施用有效量的上
述疫苗制剂。此接种方法包括施用一剂或更多剂疫苗制剂，这些剂量可
以在短时间内连续施用和/或以较长的间隔期连续施用。
在这种接种方法中，通过现有技术中建议的用于多核苷酸接种的不
同施用途径并利用已知的施用技术施用本发明的疫苗制剂。
尤其涉及肌内途径，卵内途径，眼内途径，喷雾法和饮水。
向免疫系统呈递抗原的效力随组织的不同而不同。具体地说，呼吸
道粘膜是病原体进入的屏障，并与支持局部免疫力的淋巴组织相关。另
外，对于大量接种而言，通过与粘膜，特别是颊粘膜，咽粘膜和支气管
区域的粘膜接触以施用疫苗当然是有利的。
因此，尤其使用喷雾法或喷射或饮水经粘膜途径施用疫苗形成了本
发明优选施用方式的一部分。可在在此意义上应用本发明的疫苗制剂和
接种方法。
本发明的另一目的是一种接种方法，所述方法包括按上述进行第一
次接种，并用本发明的疫苗制剂加强接种。
在本发明方法的优选实施方案中，首先给动物施用有效剂量的常规
疫苗，尤其是灭活的、活的、减毒的或重组的、或亚单位的疫苗以提供
第一次接种，一段时间后，优选为2至6周后，施用本发明的多价或单
价疫苗。
本发明也涉及一种制备疫苗制剂的方法，即制备不同效价及其混合
物的方法，如从此说明书中看到的方法。
下面参照附图，借助于本发明的实施方案更详细地描述本发明。
实施例
实施例1：病毒的培养
在适当的细胞系统中培养病毒直至得到细胞病变效应。本领域技术
人员熟知每种病毒所用的细胞系统。简单地说，用感染复数为1的被研
究的病毒株接种对所用病毒敏感的细胞，所述细胞在Eagle最低基本培
养基(MEM培养基)或另一种适当的培养基中培养。然后于37℃保温被
感染的细胞直至出现完全的细胞病变效应(平均为36小时)。
实施例2：提取病毒基因组DNA
培养后，收获上清液和被裂解的细胞，于4℃,1000g将全部的病
毒悬浮液离心10分钟以除去细胞碎片，然后通过于4℃,400,000g超
速离心1小时以收获病毒颗粒。将沉淀物溶解于最少量的缓冲液(10mM
Tris,1mM EDTA)中，于37℃，在十二烷基硫酸钠(SDS)的存在下(终
浓度为0.5％)，用蛋白酶K(终浓度为100μg/ml)将上述浓缩的病毒悬浮
液处理2小时。然后用苯酚/氯仿混合物提取病毒DNA，再用2倍体积
的无水乙醇沉淀之。于-20℃放置过夜后，于4℃,10,000g将DNA离
心15分钟，干燥DNA沉淀物，然后将它溶于最少量的无菌超纯水中，
接着可以用限制性酶消化所述DNA。
实施例3：分离病毒基因组RNA
根据本领域技术人员熟知的技术纯化RNA病毒，然后使用P.
Chromczynski和N.Sacchi所述的“硫氰酸胍/苯酚-氯仿”提取技术(分
析生物化学，1987,162,156-159)分离各个病毒的基因组病毒
RNA。
实施例4：分子生物学技术
使用J.Sambrook等人(分子克隆：实验室手册，第2版，冷泉港
实验室，冷泉港，纽约，1989)所述的标准分子生物学技术进行所有的
质粒构建。使用“Geneclean”试剂盒(BIO 101 Inc.La Jolla,CA)
分离用于本发明的所有限制性片段。
实施例5：RT-PCR技术
合成多个特异性的寡核苷酸(在其5’末端含有限制性位点以便于克
隆经扩增的片段)以使其完全覆盖欲被扩增的基因的编码区(见具体的
实施例)。根据标准技术(SambrookJ等人，1989)进行逆转录(RT)反应
和聚合酶链反应(PCR)。用一对特异性的扩增引物进行一种RT-PCR反
应，所述反应的模板是提取出的病毒基因组RNA。用苯酚/氯仿/异戊
醇(25∶24∶1)提取经扩增的互补DNA，然后用限制性酶消化。
实施例6：质粒pVR1012
质粒pVR1012(图1)得自Vical Inc.,San Diego,CA,USA。其构建
描述于J.Hartikka等人(人类基因疗法(Human Gene Therapy),
1996,7,1205-1217)。
实施例7：构建质粒pAB045(MDV gB基因)
用根据实施例2的技术制备的马立克氏病病毒(MDV)(RB1B株)(L.
Ross等，普通病毒学杂志(J.Gen.Virol.),1989,70,1789-1804)
基因组DNA和下列寡核苷酸：
AB062(37聚体)(SEQ ID NO:1)
5’AAAACTGCAGACTATGCACTATTTTAGGCGGAATTGC3’
AB063(35聚体)(SEQ ID NO:2)
5’GGAAGATCTTTACACAGCATCATCTTCTGAGTCTG3’
进行PCR反应以从MDV病毒中分离PstⅠ-BglⅡ片段形式的编码gB糖
蛋白的基因。纯化之后，用PstⅠ和BglⅡ消化2613 bp的PCR产物以
分离2602bp的PstⅠ-BglⅡ片段。将此片段与预先经PstⅠ和BglⅡ消化
的载体pVR1012(实施例6)连接，得到质粒pAB045(7455bp)(图2)。
实施例8：构建质粒pAB080(MDV gD基因)
用根据实施例2的技术制备的马立克氏病病毒(MDV)(RB1B株)(L.
Ross等，普通病毒学杂志，1991,72,949-954)基因组DNA和下列
寡核苷酸：
AB148(29聚体)(SEQ ID NO:3)
5’AAACTGCAGATGAAAGTATTTTTTTTTAG3’
AB149(32聚体)(SEQ ID NO:4)
5’GGAAGATCTTTATAGGCGGGAATATGCCCGTC3’
进行PCR反应以从MDV病毒中分离PstⅠ-BglⅡ片段形式的编码gD糖
蛋白的基因。纯化之后，用PstⅠ和BglⅡ消化1215 bp的PCR产物以
分离1199bp的PstⅠ-BglⅡ片段。将此片段与预先经PstⅠ和BglⅡ消化
的载体pVR1012(实施例6)连接，得到质粒pAB080(6051bp)(图3)。
实施例9：构建质粒pAB046(NDV HN基因)
用根据实施例3的技术制备的新城疫病毒(NDV)(Texas GB株)基
因组RNA和下列寡核苷酸：
AB072(39聚体)(SEQ ID NO:5)
5’ATAAGAATGCGGCCGCCATGGACCGTGCAGTTAGCAGAG3’
AB094(34聚体)(SEQ ID NO:6)
5’CGCGGATCCTTAAATCCCATCATCCTTGAGAATC3’
根据实施例5的技术进行T-PCR反应以从NDV病毒Texas GB株中分
离NotⅠ-BamHⅠ片段形式的编码HN糖蛋白的基因(图4和SEQ ID
NO:7)。纯化之后，用NotⅠ和BamHⅠ消化1741bp的RT-PCR产物以
分离1723bp的NotⅠ-BamHⅠ片段。将此片段与预先经NotⅠ和BamHⅠ
消化的载体pVR1012(实施例6)连接，得到质粒pAB046(6616bp)(图
5)。
实施例10：构建质粒pAB047(NDV F基因)
用根据实施例3的技术制备的新城疫病毒(NDV)(Texas GB株)基
因组RNA和下列寡核苷酸：
AB091(37聚体)(SEQ ID NO:8)
5’AGAATGCGGCCGCGATGGGCTCCAGATCTTCTACCAG3’
AB092(34聚体)(SEQ ID NO:9)
5’TGCTCTAGATCATATTTTTGTAGTGGCTCTCATC3’
根据实施例5的技术进行RT-PCR反应以从NDV病毒Texas GB株中
分离NotⅠ-XbaⅠ片段形式的编码F糖蛋白的基因(图6和SEQ ID
NO:10)。纯化之后，用NotⅠ和XbaⅠ消化1684 bp的RT-PCR产物以
分离1669bp的NotⅠ-XbaⅠ片段。将此片段与预先经NotⅠ和XbaⅠ消化
的载体pVR1012(实施例6)连接，得到质粒pAB047(6578bp)(图7)。
实施例11：构建质粒pAB048(IBDV VP2基因)
用根据实施例3的技术制备的Gumboro病病毒(IBDV)(Faragher
株)基因组RNA和下列寡核苷酸：
AB093(33聚体)(SEQ ID NO:11)
5’TCAGATATCGATGACAAACCTGCAAGATCAAAC3’
AB094(38聚体)(SEQ ID NO:12)
5’AGAATGCGGCCGCTTACCTCCTTATAGCCCGGATTATG3’
根据实施例5的技术进行RT-PCR反应以从IBDV病毒Faragher株中
分离EcoRⅤ-NotⅠ片段形式的编码VP2蛋白的序列(图8和SEQ ID
NO:13)。纯化之后，用EcoRⅤ和NotⅠ消化1384 bp的RT-PCR产物
以分离1367bp的EcoRⅤ-NotⅠ片段。将此片段与预先经EcoRⅤ和NotⅠ
消化的载体pVR1012(实施例6)连接，得到质粒pAB048(6278bp)(图
9)。
实施例12：构建质粒pAB049(IBV S1基因)
用根据实施例3的技术制备的鸡传染性支气管炎病毒(IBV)
(Massachusetts 41株)基因组RNA和下列寡核苷酸：
AB095(32聚体)(SEQ ID NO:14)
5’ACGCGTCGACATGTTGGTAACACCTCTTTTAC3’
AB096(35聚体)(SEQ ID NO:15)
5’GGAAGATCTTCATTAACGTCTAAAACGACGTGTTC3’
根据实施例5的技术进行RT-PCR反应以从IBV病毒Massachusetts 41
株中分离SalⅠ-BglⅡ片段形式的编码S糖蛋白S1亚单位的序列(图10
和SEQ ID NO:16)。纯化之后，用SalⅠ和BglⅡ消化1635 bp的RT-
PCR产物以分离1622bp的SalⅠ-BglⅡ片段。将此片段与预先经SalⅠ
和BglⅡ消化的载体pVR1012(实施例6)连接，得到质粒
pAB049(6485bp)(图11)。
实施例13：构建质粒pAB050(IBV M基因)
用根据实施例3的技术制备的鸡传染性支气管炎病毒(IBV)
(Massachusetts 41株)基因组RNA和下列寡核苷酸：
AB097(37聚体)(SEQ ID NO:17)
5’ATAAGAATGCGGCCGCATGTCCAACGAGACAAATTGTAC3’
AB098(38聚体)(SEQ ID NO:18)
5’ATAAGAATGCGGCCGCTTTAGGTGTAAAGACTACTCCC3’
根据实施例5的技术进行RT-PCR反应以从IBV病毒Massachusetts 41
株中分离NotⅠ-NotⅠ片段形式的编码M糖蛋白的基因(图12和SEQ ID
NO:19)。纯化之后，用NotⅠ消化710bp的RT-PCR产物以分离686bp
的NotⅠ-NotⅠ片段。将此片段与预先经NotⅠ消化的载体pVR1012(实施
例6)连接，得到质粒pAB050(5602bp)，该质粒在相对启动子而言正确
的方向上含有IBV M基因(图13)。
实施例14：构建质粒pAB051(IBV N基因)
用根据实施例3的技术制备的鸡传染性支气管炎病毒(IBV)
(Massachusetts 41株)基因组RNA和下列寡核苷酸：
AB099(34聚体)(SEQ ID NO:20)
5’AAAACTGCAGTCATGGCAAGCGGTAAGGCAACTG3’
AB100(33聚体)(SEQ ID NO:21)
5’CGCGGATCCTCAAAGTTCATTCTCTCCTAGGGC3’
根据实施例5的技术进行RT-PCR反应以从IBV病毒Massachusetts 41
株中分离PstⅠ-BamHⅠ片段形式的编码N蛋白的基因(图14和SEQ ID
NO:22)。纯化之后，用PstⅠ和BamHⅠ消化1250 bp的RT-PCR产物
以分离1233 bp的PstⅠ-BamHⅠ片段。将此片段与预先经PstⅠ和BamHⅠ
消化的载体pVR1012(实施例6)连接，得到质粒pAB051(6092 bp)(图
15)。
实施例15：构建质粒pAB054(VAC VP1基因)
用根据实施例2的技术制备的鸡贫血症病毒(CAV)(Cuxhaven-1株)
基因组DNA(B.Meehan等，Arch.Virol,1992,124,301-319)和
下列寡核苷酸：
CD064(39聚体)(SEQ ID NO:23)
5’TTCTTGCGGCCGCCATGGCAAGACGAGCTCGCAGACCGA
3’
CD065(38聚体)(SEQ ID NO:24)
5’TTCTTGCGGCCGCTCAGGGCTGCGTCCCCCAGTACATG3’
进行PCR反应以分离NotⅠ-NotⅠ片段形式的编码CAV VP1衣壳蛋白的
基因。纯化之后，用NotⅠ消化1377bp的PCR产物以分离1359bp的
NotⅠ-NotⅠ片段。将此片段与预先经NotⅠ消化的载体pVR1012(实施例
6)连接，得到质粒pAB054(6274 bp)，该质粒在相对启动子而言正确的
方向上含有CAV VP1基因(图16)。
实施例17：构建质粒pAB055(VAC VP2基因)
用根据实施例2的技术制备的鸡贫血症病毒(CAV)(Cuxhaven-1株)
基因组DNA(B.Meehan等，Arch.Virol,1992,124,301-319)和
下列寡核苷酸：
CD066(39聚体)(SEQ ID NO:25)
5’TTCTTGCGGCCGCCATGCACGGGAACGGCGGACAACCGG
3’
AB105(32聚体)(SEQ ID NO:26)
5’CGCGGATCCTCACACTATACGTACCGGGGCGG3’
进行PCR反应以分离NotⅠ-BamHⅠ片段形式的编码CAV病毒VP2蛋
白的基因。纯化之后，用NotⅠ和BamHⅠ消化674 bp的PCR产物以分
离659 bp的NotⅠ-BamHⅠ片段。将此片段与预先经NotⅠ和BamHⅠ消
化的载体pVR1012(实施例6)连接，得到质粒pAB055(5551bp)(图
17)。
实施例18：构建质粒pAB076(ILTV gB基因)
用根据实施例2的技术制备的鸡传染性喉气管炎病毒(ILTV)(SA-
2株)基因组DNA(K.Kongsuwan等，病毒学(Virology),1991,184,
404-410)和下列寡核苷酸：
AB140(38聚体)(SEQ ID NO:27)
5’TTCTTGCGGCCGCCATGGCTAGCTTGAAAATGCTGATC3’
AB141(36聚体)(SEQ ID NO:28)
5’TTCTTGCGGCCGCTTATTCGTCTTCGCTTTCTTCTG3’
进行PCR反应以分离NotⅠ-NotⅠ片段形式的编码ILTV病毒gB糖蛋白
的基因。纯化之后，用NotⅠ消化2649 bp的PCR产物以分离2631bp
的NotⅠ-NotⅠ片段。将此片段与预先经NotⅠ消化的载体pVR1012(实施
例6)连接，得到质粒pAB076(7546 bp)，该质粒在相对启动子而言正确
的方向上含有ILTV gB基因(图18)。
实施例20：构建质粒pAB089(ILTV gD基因)
用根据实施例2的技术制备的鸡传染性喉气管炎病毒(ILTV)(SA-
2株)基因组DNA(M.Johnson等，1994,Genbank序列登记号为
L31965)和下列寡核苷酸：
AB164(33聚体)(SEQ ID NO:29)
5’CCGGTCGACATGGACCGCCATTTATTTTTGAGG3’
AB165(33聚体)(SEQ ID NO:30)
5’GGAAGATCTTTACGATGCTCCAAACCAGTAGCC3’
进行PCR反应以分离SalⅠ-BglⅡ片段形式的编码ILTV病毒gD糖蛋白
的基因。纯化之后，用SalⅠ和BglⅡ消化1134 bp的PCR产物以分离
1122bp的SalⅠ-BglⅡ片段。将此片段与预先经SalⅠ-BglⅡ消化的载体
pVR1012(实施例6)连接，得到质粒pAB089(5984 bp)(图19)。
实施例21：构建质粒pAB086(AEV env基因)
用根据实施例3的技术制备的禽脑脊髓炎病毒(AEV)(C型)基因组
RNA(E.Bieth等，核酸研究(Nucleic Res.),1992,20,367)和下列
寡核苷酸：
AB160(54聚体)(SEQ ID NO:31)
5’
TTTGATATCATGGAAGCCGTCATTAAGGCATTTCTGACTGGA
TACCCTGGGAAG3’
AB161(31聚体)(SEQ ID NO:32)
5’TTTGGATCCTTATACTATTCTGCTTTCAGGC3’
根据实施例5的技术进行RT-PCR反应以分离EcoRV-BamHⅠ片段形
式的编码AEV病毒Env糖蛋白的序列。纯化之后，用EcoRⅤ和BamHⅠ
消化1836bp的RT-PCR产物以分离1825bp的EcoRⅤ-BamHⅠ片段。
将此片段与预先经EcoRⅤ和BamHⅠ消化的载体pVR1012(实施例6)
连接，得到质粒pAB086(6712 bp)(图20)。
实施例22：构建质粒pAB081(AEV gag/pro基因)
用根据实施例3的技术制备的禽脑脊髓炎病毒(AEV)(C型)基因组
RNA(E.Bieth等，核酸研究，1992,20,367)和下列寡核苷酸：
AB150(31聚体)(SEQ ID NO:33)
5’ACGCGTCGACATGGAAGCCGTCATTAAGGTG3’
AB151(32聚体)(SEQ ID NO:34)
5’TGCTCTAGACTATAAATTTGTCAAGCGGAGCC3’
根据实施例5的技术进行RT-PCR反应以分离SalⅠ-XbaⅠ片段形式的编
码AEV病毒Gag和Pro蛋白的序列。纯化之后，用SalⅠ-XbaⅠ消化2125
bp的RT-PCR产物以分离2111bp的SalⅠ-XbaⅠ片段。将此片段与预
先经SalⅠ和XbaⅠ消化的载体pVR1012(实施例6)连接，得到质粒
pAB081(6996bp)(图21)。
实施例23：构建质粒pAB082(肺病毒G基因)
用根据实施例3的技术制备的火鸡鼻气管炎病毒(TRV)(2119株)基
因组RNA(K.Juhasz等，普通病毒学杂志，1994,75,2873-2880)
和下列寡核苷酸：
AB152(32聚体)(SEQ ID NO:35)
5’AAACTGCAGAGATGGGGTCAGAGCTCTACATC3’
AB153(31聚体)(SEQ ID NO:36)
5’CGAAGATCTTTATTGACTAGTACAGCACCAC3’
根据实施例5的技术进行RT-PCR反应以分离PstⅠ-BglⅡ片段形式的
编码TRV病毒G糖蛋白的基因。纯化之后，用PstⅠ和BglⅡ消化2165
bp的RT-PCR产物以分离1249bp的PstⅠ-BglⅡ片段。将此片段与预
先经PstⅠ和BglⅡ消化的载体pVR1012(实施例6)连接，得到质粒
pAB082(6101bp)(图22)。
实施例24：构建质粒pAB077(禽瘟病毒HA基因，H2N2株)
用根据实施例3的技术制备的禽瘟病毒(AIV)(H2N2 Postdam株)
基因组RNA(J.Schafer等，病毒学，1993,194,781-788)和下列寡
核苷酸：
AB142(33聚体)(SEQ ID NO:37)
5’AAACTGCAGCAATGGCCATCATTTATCTAATTC3’
AB143(31聚体)(SEQ ID NO:38)
5’CGAAGATCTTCATATGCAGATTCTGCATTGC3’
根据实施例5的技术进行RT-PCR反应以从禽瘟病毒(H2N2株)分离
PstⅠ-BglⅡ片段形式的编码HA糖蛋白的基因。纯化之后，用PstⅠ和
BglⅡ消化1709bp的RT-PCR产物以分离1693 bp的PstⅠ-BglⅡ片段。
将此片段与预先经PstⅠ和BglⅡ消化的载体pVR1012(实施例6)连接，
得到质粒pAB077(6545bp)(图23)。
实施例25：构建质粒pAB078(禽瘟病毒HA基因，H7N7株)
用根据实施例3的技术制备的禽瘟病毒(AIV)(H7N7 Leipzig株)基
因组RNA(C.Rohm等，病毒学，1995,209,664-670)和下列寡核
苷酸：
AB144(31聚体)(SEQ ID NO:39)
5’AAACTGCAGATGAACACTCAAATCCTGATAC3’
AB145(31聚体)(SEQ ID NO:40)
5’TTTGGATCCTTATATACAAATAGTGCACCGC3’
根据实施例5的技术进行RT-PCR反应以从禽瘟病毒(H7N7株)分离
PstⅠ-BamHⅠ片段形式的编码HA糖蛋白的基因。纯化之后，用PstⅠ和
BamHⅠ消化1707bp的RT-PCR产物以分离1691bp的PstⅠ-BamHⅠ
片段。将此片段与预先经PstⅠ和BamHⅠ消化的载体pVR1012(实施例
6)连接，得到质粒pAB078(6549bp)(图24)。
实施例26：构建质粒pAB088(禽瘟病毒NP基因，H1N1株)
用根据实施例3的技术制备的禽流感病毒(AIV)(H1N1 Bavaria株)
基因组RNA(M.Gammelin等，病毒学，1989,170,71-80)和下列
寡核苷酸：
AB156(32聚体)(SEQ ID NO:41)
5’CCGGTCGACATGGCGTCTCAAGGCACCAAACG3’
AB158(30聚体)(SEQ ID NO:42)
5’CGCGGATCCTTAATTGTCATACTCCTCTGC3’
根据实施例5的技术进行RT-PCR反应以分离SalⅠ-BamHⅠ片段形式的
编码禽流感病毒NP核蛋白的基因。纯化之后，用SalⅠ和BamHⅠ消化
1515bp的RT-PCR产物以分离1503bp的SalⅠ-BamHⅠ片段。将此
片段与预先经SalⅠ和BamHⅠ消化的载体pVR1012(实施例6)连接，得
到质粒pAB088(6371bp)(图25)。
实施例27：构建质粒pAB079(禽瘟病毒N基因，H7N1株)
用根据实施例3的技术制备的禽瘟病毒(AIV)(H7N1 Rostock株)基
因组RNA(J.McCauley,1990,Genbank登记号为X52226)和下列
寡核苷酸：
AB146(35聚体)(SEQ ID NO:43)
5’CGCGTCGACATGAATCCAAATCAGAAAATAATAAC3’
AB147(31聚体)(SEQ ID NO:44)
5’GGAAGATCTCTACTTGTCAATGGTGAATGGC3’
根据实施例5的技术进行RT-PCR反应以从禽瘟病毒(H7N1株)分离
SalⅠ-BglⅡ片段形式的编码N糖蛋白的基因。纯化之后，用SalⅠ和BglⅡ
消化1361bp的RT-PCR产物以分离1350bp的SalⅠ-BglⅡ片段。将
此片段与预先经SalⅠ和BglⅡ消化的载体pVR1012(实施例6)连接，得
到质粒pAB079(6212bp)(图26)。
实施例28：制备和纯化质粒
为了制备欲接种动物的质粒，可使用能得到超螺旋形式占优势的纯
化质粒悬浮液的任何技术，这些技术是本领域技术人员所熟知的。这里
可特别提到J.Sambrook等人(分子克隆：实验室手册，第2版，冷泉
港实验室，冷泉港，纽约，1989)所述的碱裂解技术，接着再在溴化乙
锭的存在下，在氯化铯梯度中进行2次连续的超速离心。也可参照专利
申请PCT WO 95/21250和PCT WO 96/02658，它们描述了工业化规
模生产可用于接种之质粒的方法。为了制备疫苗(见实施例17)，可重新
悬浮纯化的质粒以得到适于储存的高浓度溶液(＞2mg/ml)。为此，将质
粒重新悬浮于超纯水或TE缓冲液(10mM Tris-HCl；1mM EDTA,
pH8.0)中。
实施例29：制备联合疫苗
从其浓缩溶液(实施例16)开始混合制备联合疫苗所需的多种质
粒。制备混合物以使各个质粒的终浓度相当于各个质粒的有效剂量。可
用于调节疫苗终浓度的溶液可以是0.9％的NaCl溶液，也可以是PBS
缓冲液。
也可以将特殊的制剂，如脂质体，阳离子脂质用于制备疫苗。
实施例30：对鸡接种
以每种质粒10,50或100μg的剂量接种鸡，通过肌内途径用针头
进行注射。注射位点是胸骨(对于2周龄以上的鸡而言)和大腿(对于1天
龄或以上的鸡而言)。此时，以0.1至0.3ml的体积施用疫苗剂量。
在成年鸡中(大于20周龄)，也可以使用为接种鸡而特别设计的液
体喷射注射装置(不带针头)(如AVIJET装置)，经肌内途径进行注射。
此时，注射体积是0.3ml。可在胸骨或大腿上进行注射。类似地，在成
年鸡中，也可用针头，经肌内途径以0.3ml的体积对胸骨或大腿进行注
射。质粒疫苗的注射也可在卵内进行，此时，可使用实施例29中提到
的特殊制剂，注射至18天龄有胚卵中的体积是50至200μl。