明胶酶A抑制性多肽的修饰物的应用.pdf

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摘要
申请专利号:

CN201110002992.8

申请日:

2011.01.07

公开号:

CN102049038A

公开日:

2011.05.11

当前法律状态:

授权

有效性:

有权

法律详情:

专利权的转移IPC(主分类):A61K 38/10登记生效日:20151022变更事项:专利权人变更前权利人:南京医科大学变更后权利人:南京森沐生物科技有限公司变更事项:地址变更前权利人:210029 江苏省南京市汉中路140号变更后权利人:211100 江苏省南京市江宁区科学园芝兰路18号|||授权|||著录事项变更IPC(主分类):A61K 38/10变更事项:发明人变更前:韩晓 高璐 沙敏 乔楠 孙玉洁 朱云霞 郑马庆变更后:韩晓 高璐 沙敏 吴越 孙玉洁 朱云霞 郑马庆|||实质审查的生效IPC(主分类):A61K 38/10申请日:20110107|||公开

IPC分类号:

A61K38/10; A61K47/48; A61P35/00

主分类号:

A61K38/10

申请人:

南京医科大学

发明人:

韩晓; 高璐; 沙敏; 乔楠; 孙玉洁; 朱云霞; 郑马庆

地址:

210029 江苏省南京市汉中路140号

优先权:

专利代理机构:

南京苏高专利商标事务所(普通合伙) 32204

代理人:

柏尚春

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内容摘要

本发明公开了一种明胶酶A抑制性多肽的修饰物的应用。该明胶酶A抑制性多肽的修饰物为mPEG-sc对多肽M205C4组氨酸氨基端的单点修饰产物,其分子量为11000~13000,该应用为在制备用于治疗肿瘤药物中的应用。本发明的明胶酶A抑制性多肽的修饰物,克服M205C4活性肽的稳定性差和体内代谢快的不足,其具有活性高、稳定性好、半衰期长等优点,并且在胰腺癌动物模型中发挥了良好的抗肿瘤作用,为其在人体的治疗应用提供了重要基础和保证。

权利要求书

1: 明胶酶 A 抑制性多肽的修饰物在制备用于治疗肿瘤药物中的应用。

说明书


明胶酶 A 抑制性多肽的修饰物的应用

    技术领域 本发明涉及一种明胶酶 A 抑制性多肽 (M205C4), 具体涉及一种明胶酶 A 抑制性多 肽 (M205C4) 的修饰物的应用。明胶酶 A 抑制性多肽的修饰物, 简称为 M205C4-PEG。
     背景技术 局部侵袭和远处转移是恶性肿瘤的主要生物学特征, 也是导致肿瘤患者较高死亡 率的主要原因。目前的研究认为在肿瘤的侵袭、 转移过程中, 细胞外基质 (extracellular matrix, ECM) 的破坏是关键环节。在参与破坏细胞外基质的酶类中基质金属蛋白酶类 (matrix metalloproteinases, MMPs) 是最重要的蛋白水解酶, 尤其是 MMP2、 MMP9 在癌细 胞侵袭转移过程中不仅可以酶解细胞间基质成分, 还能酶解基底膜的主要成分Ⅳ型胶原。 所以设计寻找针对 MMPs 拮抗药物就尤为重要。目前已有人工合成的 MMPs 抑制物, 如: Marimastat、 Batimastat、 Mtastat、 BAY12-9566、 AG-3340、 CGS-27023A 和 SC-204092 等, 正 在进行不同阶段临床试验。虽然这类小分子化合物可以有效抑制基质金属蛋白酶的酶解 作用, 但同时所产生的细胞毒作用会给试用者带来强烈的副作用。由此研究人员把目光转 向了基质金属蛋白酶类的组织抑制因子 (tissue inhibitors of metalloproteinases , TIMPs) 家族。TIMPs 的主要功能是天然地抑制 MMPs 的活性, 在调节细胞外基质的代谢中起 到了重要作用。其中 TIMP-1 被认为是组织中 MMPs 活性主要调节者, 控制着大多数的 MMPs 家族成员。 然而 TIMPs 对肿瘤却是把双刃剑, 一方面, 通过对抗 MMPs 蛋白的水解作用抑制肿 瘤的浸润。但肿瘤也需要对抗自身的过度水解, 所以 TIMPs 对肿瘤生长同样是必须的。另 外, 还对肿瘤细胞增殖、 凋亡、 血管形成等方面起到了关键作用, 因此对肿瘤的发展具有双 向性。因此寻找结合了小分子化合物和 TIMPs 蛋白优势的新型药物是我们的研究重点。
     多 肽 类 药 物 具 备 高 效、 低 毒 和 特 异 性 强 的 显 著 性 优 势。M205C4 是 通 过 噬 菌 体展示技术筛选的特异性 MMP2 抑制性结合肽, 拮抗作用完全模拟了 TIMPs 对 MMPs 活 性调节的方式, 可以有效的抑制肿瘤细胞的侵袭转移并于 2006 年成功报批国家专利 (ZL200610085779.7) 。经后期实验证明, M205C4 对多种肿瘤细胞的生长及血管新生没有明 显的促进作用, 符合我们的新药筛选标准。 但同时也存在肽类药物在体不稳定、 易降解的问 题, 无法使药物在体发挥其特有的生物学活性。而对于药物的修饰同时要考虑到其自身空 间结构改变所导致的活性变化和体内代谢行为两个重要因素以外, 修饰的工艺化问题也是 不容忽视的。所以修饰及其制备方法的选择对于药物的后期研究至关重要。
     发明内容 发明目的 : 针对现有技术中的不足, 本发明的目的是提供一种 M205C4 的修饰物的 应用, 修饰后药物保留了原有生物学活性的同时, 降低了免疫原性, 延长了其在生物体内的 半衰期。
     技术方案 : 为了实现上述发明目的, 本发明采用的技术方案为 : 一种明胶酶 A 抑制性多肽的修饰物, 为 mPEG-sc 对多肽 M205C4 组氨酸氨基端的单点修
     饰产物, 结构式为 , 分 子 量 为 11000~13000 ;结 构 式 中, HNWTRWLLHPDRGGGS 为多肽 M205C4 的氨基酸序列。 明胶酶 A 抑制性多肽的修饰物的修饰方法, 包括以下步骤 : (1) 按摩尔比为 1:1~5 分别称取 M205C4 和 mPEG-SC, 定溶于 pH5.0-8.0 的 PBS 缓冲液 中, M205C4 的反应浓度为 100 uM ; 在静音混合器上, 4℃反应 2.5h 以上, 制得 M205C4-PEG 混 合液 ; (2) 采用 SunfireTM C18 OBDTM 制备色谱柱对步骤 (1) 制得的 M205C4-PEG 混合液进行 液相分离和浓缩, 制得浓缩液 ; 对浓缩液进质谱检测, 纯度及分子量符合标准后, 将浓缩液 分装至 2ml EP 管中, 在液氮中过夜保存 ; (3) 将过夜保存在液氮的制备样品放入冻干仪中浓缩至冻干粉末, 即可。
     步骤 (1) 中, 优选 : 按摩尔比约为 1:3 分别称取 M205C4 和 mPEG -SC, 定溶于 pH7.4 的 PBS 缓冲液中, M205C4 的浓度为 100 uM ; 在静音混合器上, 4℃反应 3h。
     为 mPEG 的 结 构 式,上述的明胶酶 A 抑制性多肽的修饰物在制备用于治疗肿瘤药物中的应用。
     有益效果 : 本发明的明胶酶 A 抑制性多肽的修饰物的应用, 克服 M205C4 活性肽的 稳定性差和体内代谢快的不足, 其具有活性高、 稳定性好、 半衰期长等优点, 并且在胰腺癌 动物模型中发挥了良好的抗肿瘤作用, 为其在人体的治疗应用提供了重要基础和保证。
     附图说明 图 1 是 M205C4 和 M205C4-PEG 的色谱图及质谱图。A、 B、 C 和 D 图均为色谱图, E图 为质谱图。
     图 2 为基质金属蛋白酶 II 酶活检测实验结果图。P 图为修饰后的结果图, Q 图为 未修饰的结果图。
     图 3 是 ICR 小鼠的药代动力学检测结果图。I 图式修饰后的结果图, II 图是未修 饰的结果图。
     图 4 是比格犬实验中药物经修饰后提高了药代动力学行为检测结果图。G 图式修 饰后的结果图, F 图是未修饰的结果图。
     图 5 是给药干预 45 天后测量各组原位肿块 (PNAC-1) 大小的结果图。
     图 6 是给药干预后部分改善了肿瘤细胞侵袭所致的肝功能异常结果图。H 图是天 门冬氨酸氨基转移酶 (AST) 测定结果图, K 图是丙氨酸氨基转移酶 (ALT) 测定结果图。
     图 7 是两种胰腺癌细胞株原位荷瘤鼠的生存曲线结果图。 M 图是腺胰癌 PANC-1 细 胞株, N 图是腺胰癌 CFPAC-1 细胞株。
     具体实施方式
     下面结合具体实施例对本发明做进一步的解释。
     以下实施例所使用的方法和药品具体如下 :M205C4 活性肽为在中国专利 ZL200610085779.7 公开的活性肽, 由上海吉尔生化公司 合成, mPEG-SC(10KD) 购于北京键凯公司。
     SDS-PAGE 电泳法 : 将所要检测的样品与 4× 非还原性上样缓冲液按 3:1 的体积比 混合, 室温放置 15 分钟后进行电泳。胶体共分为 3 层, 上层为浓缩胶 (4%) , 中层为间隔胶 (10%) , 下层为分离胶 (16%) 。 首先采用 80V 恒压进行电泳, 待样品全部进入浓缩胶并压缩成 直线后, 改用 120V 恒压继续进行电泳。电泳结束后, 将胶体浸入固定液 (50% 甲醇 +10% 乙 酸) 中, 室温浸泡 30 分钟后置于染色液 (10% 乙酸 +0.025% 考马斯亮蓝 R250) 中, 室温下染 色过夜, 将胶体转入脱色液 (10% 乙酸) 中, 室温脱色至样品条带清晰为止。 用 BIO-RAD 凝 胶成像系统 Universal Hood Ⅱ对凝胶进行成像。
     冻干仪 : FreeZone(2.5L) , 购于 LABCONCO 公司 ; 其他没有药品和设备均为市售药品或常用药品和设备。
     实施例 1 单修饰 M205C4-PEG 的制备 用分析天平分别精密称取 M205C4 和 mPEG-SC 干粉 1mg 及 15mg( 摩尔比约为 1:3), 定溶 于 5ml PBS 缓冲液 (pH7.4) 中, M205C4 的工作浓度为 100 uM, 4℃反应 3h, 整个反应在静音 混合器上完成。
     制 备 液 相 分 离 和 纯 化 M205C4-PEG : 型号: Waters 2545-2767-UV2489 ; 柱子: SunfireTM C18 OBDTM 制备色谱柱 (30*150 mm, 5 μm) ; 流动相 : 甲醇 - 水 - 三氟乙 酸 (60:40:0.1) ; 流速 : 1.0ml/min ; 柱温 : 25 ℃ ; 检测器 : Waters 2489 (双波长, 220nm 及 330nm) ; 将回收的溶液浓缩并分装至 2ml EP 管中, 进行质谱检测后在液氮中过夜保存。
     M205C4-PEG 冻干粉的制备 : 将过夜保存在液氮的制备样品放入冻干仪中浓缩至 冻干粉末。
     如图 1 所示, A图 : M205C4 标准品直接进样 ; B图 : M205C4 和 mPEG- SC 的反应样品 ; C 图 :M205C4 和 mPEG-SC 的反应样品的 ELSD 检测结果 ; D图: 制备的 M205C4-PEG 样品直接 进样 ; E图: M205C4-PEG 质谱结果, mPEG-SC 为分子量 9000-11000 的长链混合物, 由此所得 到的修饰后产物的分子量区间为 11000-13000, 峰值在 12000 左右。 其中 1 号峰为 M205C4, 2 号峰为 M205C4-PEG, 3 号峰为 PEG。
     mPEG-SC 的分子量约为 9000~11000, 制得的修饰产物为 M205C4-PEG, 是 mPEG-sc 对 多肽 M205C4 组氨酸氨基端的单点修饰产物, 其分子量为 11000~13000。M205C4-PEG 的结构 式为 : , 结构式中, 基酸序列。
     为 mPEG 的结构式, HNWTRWLLHPDRGGGS 为多肽 M205C4 的氨实施例 2 基质金属蛋白酶 II 酶活检测实验 试剂盒 : MMP-2 Fluorimetric Drug Discovery Kit (Biomol)仪器 : 荧光酶标仪 (Molecular Devices 公司、 Gemini EM) 操作方法参照试剂盒说明, 结果如图 2 所示, 为基质金属蛋白酶 II 酶活检测实验结果 图, 由此可得, 修饰后产物对基质金属蛋白酶 II(MMP2) 的半数抑制浓度 (IC50) 为 101.4uM, 是未修饰多肽的 4.1 倍, 即修饰后产物的生物学活性下降到 24.3%。
     实施例 3 M205C4-PEG 在动物中药代动力学行为 一、 M205C4-PEG 在 ICR 小鼠中药代动力学行为 (1) 血药样品的采集 : ICR 小鼠 : 雌性, 6 周龄, 体重 22-24g/ 只。
     分组 : 共 60 只, 随机分成 10 组 (10 个时间点) , 每组 6 只。
     给药及血样的采集 : 尾静脉注射给药, 20mg/kg/ 只 (M205C4/M205C4-PEG), 眼眦取 -1 血, 置于肝素钠抗凝的干燥 2ml EP 管中, 3000 r??min 离心 5min, 每只小鼠取血清 200ul, 用 600ul 乙腈沉淀蛋白, 12000r??min-1 离心 5min, 取上清 600ul 加入 300ul 超纯水及 300ul 氯仿, 涡旋 1min, 静止分层后取上层水相 200ul 浓缩至冻干粉用作含量测定。
     采血的时间点 : 给药前采集空白血样, 给药后 5min, 15min, 30min, 1h, 2h, 4h, 8h, 16h, 24h。 (2) 血药浓度的测定 : 样品处理 : 将每个样品 (冻干粉) 1mg 溶解于 50ul 超纯水, 12000r??min-1 离心 5min, 去 上清 30ul 进样。
     色谱条件 : 型号 : Waters 2690/5 ; 柱子 : GL science C18 (4.6*250mm, 5um) ; 流动 相: 甲醇 - 水 - 三氟乙酸 (10:90:0.1) ; 流速 : 0.8ml/min ; 柱温 : 30℃; 检测器 : Waters 2998 (220nm) 。
     质谱条件及样品处理 质谱仪型号 : Ultraflex II MALDI-TOF/TOF 样品的处理 (溶剂法制样) : 分别称取 1mg M205C4-PEG, 4mg 冻干粉 (血浆) , 溶于 lmL TFA 中, 振荡溶解, 得到淡黄色透明溶液。称取 5mg PA6T 分别溶于不同的样品溶剂 (TFA, THF, FA, ACN, 60% ACN / 5% TFA) 中, 振荡至充分溶解, 得到白色悬浊液。取 2ul 样品溶液点于 Anchorchip 靶板 PAC96 上, 在空气中自然风干后, 再取 2ul 基质溶液点于风干后的样品上, 待溶剂完全挥发后将样品靶送入靶仓。
     质谱条件 : MALDI-TOF 质谱仪的脉冲氮激光 (337nm) 为离子解吸电离源。采用线 性和高分辨率反射分析模型, 加速电压为 20 kV, 平均每次测定样品的激光脉冲次数为 120。 采用外标法标定多肽质谱峰峰位。
     如图 3 所示, 在 ICR 小鼠实验中药物经修饰后显著性的提高了药代动力学行为, 其 半衰期是未修饰多肽的 40.1 倍。
     二、 M205C4-PEG 在比格犬中药代动力学行为 (1) 血药样品的采集 比格犬及其分组 : 6 月龄, 共 10 条, 雌雄各 5 只, 体重 8-10kg/ 条, 购于上海交通大学。
     给药及血样的采集 : 右前肢静脉给药, 15mg/kg (M205C4/M205C4-PEG) , 左前肢静 脉取血, 置于肝素钠抗凝的干燥 15ml EP 管中, 3000 r??min-1 离心 5min, 每只比格犬取血
     清 1ml, 用 4ml 乙腈沉淀蛋白, 12000 r??min-1 离心 5min, 取上清 4ml 分别加入 2ml 超纯水 及氯仿, 涡旋 1min, 静置分层, 取上层水相 1.6ml 浓缩至冻干粉用作含量测定。
     (2) 血药浓度的测定, 方法同 “M205C4-PEG 在 ICR 小鼠中药代动力学行为” 的方法。
     如图 4 所示, 在比格犬实验中药物经修饰后提高了药代动力学行为, 其半衰期是 未修饰多肽的 7.8 倍。
     实施例 4 M205C4-PEG 的抗肿瘤作用 一、 胰腺癌细胞系原位动物模型建立 细胞系 : 胰腺癌细胞 (PANC-1/CFPAC-1) ; BALB/c 裸鼠 : 雌性, 6 周龄, 约 20g/ 只, 购于上海斯莱克公司。
     建立皮下移植肿瘤模型 : 消化对数生长期的细胞, 冷 PBS 洗 3 次, 离心浓缩 (900 转, 5 分钟) , 用无血清无双抗的 DMEM 培养液重悬成 108 个 /ml 的单细胞悬液。将 0.1ml 悬 液接种于裸鼠右腋下。
     建立原位移植肿瘤模型 : 三周左右待皮下瘤块长至 1cm 大小时, 脊椎脱位处死荷 瘤鼠, 消毒皮肤, 剥离肿块, 侵入含有青霉素和链霉素的高糖无血清 DMEM 培养液中, 去除死 3 皮及中央坏死组织, 选取正常肿瘤组织, 剪成约为大小约 5mm 肿块供原位移植用。 1% 戊巴比妥钠溶液 (50mg/kg) 腹腔注射麻醉裸鼠, 75% 酒精消毒皮肤, 于左上腹直 肠旁行 1cm 的纵行切口, 分开胃和脾之间的薄膜, 暴露胰腺, 剪开胰腺被膜, 将 5mm3 肿块植 入胰体尾处, 以 8-0 可吸收线缝合胰腺被膜。将胰腺送回腹腔, 6-0 可吸收线单层缝合腹壁 肌及皮肤。所有操作均在超净台内进行, 术者佩戴外科手术放大镜。
     二、 给药干预后的有益效果 术后十天进行给药干预 分组 : 以肿瘤生长的均一性为标准, 从 40 只术后荷瘤鼠中, 挑选 32 只, 进行随机性分 组, 每组 8 只, 共 4 组。
     给药方式 : 腹腔注射, 每 12 小时给药一次 ; 给药剂量 ( 药物均溶于 PBS 缓冲液 ) ; 治疗组 : M205C4-PEG 50mg/kg ; 对照组 1 : PEG 45.3 mg/kg ; 对照组 2 : PBS0.25ml/ 只 ; 对照组 3: M204C4-PEG 5Omg/kg。 M204C4 为体外实验活性较弱的相关肽, 在 CN1869063A 中 公开。
     M205C4-PEG 对裸鼠原位移植的胰腺癌细胞株 PANC-1 的生长抑制作用 : 待荷瘤鼠 2 发病自然死亡后, 取出腹部肿块。肿瘤的大小 = 长径 × 短径 如图 5 所示, 为试验结果图。图中明显得出, M205C4-PEG 可减缓肿瘤的生长, 与对照组 2 比较治疗组的抑瘤率为 32.7%(P<0.05)。
     M205C4-PEG 对胰腺癌细胞株 PANC-1 荷瘤鼠肝功能的作用 : 测定荷瘤鼠血浆中的 天门冬氨酸氨基转移酶 (AST) 、 丙氨酸氨基转移酶 (ALT) 的含量 。试剂盒购于 USCNLIFETM 公司。方法参照该试剂盒。如图 6 所示, 为试验结果图。给药干预后可部分逆转癌细胞诱 发的肝功能异常。
     M205C4-PEG 对荷瘤鼠的生存率的影响 :: 生存率为对照组 1 和 2 存活率变为最低 时所对应的治疗组的存活率的均值。如图 7 所示, M205C4-PEG 分别显著性的提高了两种胰 腺癌细胞株荷瘤鼠 40% 和 30% 的生存率, 延缓肿瘤的恶性发展。
    

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1、10申请公布号CN102049038A43申请公布日20110511CN102049038ACN102049038A21申请号201110002992822申请日20110107A61K38/10200601A61K47/48200601A61P35/0020060171申请人南京医科大学地址210029江苏省南京市汉中路140号72发明人韩晓高璐沙敏乔楠孙玉洁朱云霞郑马庆74专利代理机构南京苏高专利商标事务所普通合伙32204代理人柏尚春54发明名称明胶酶A抑制性多肽的修饰物的应用57摘要本发明公开了一种明胶酶A抑制性多肽的修饰物的应用。该明胶酶A抑制性多肽的修饰物为MPEGSC对多肽M20。

2、5C4组氨酸氨基端的单点修饰产物,其分子量为1100013000,该应用为在制备用于治疗肿瘤药物中的应用。本发明的明胶酶A抑制性多肽的修饰物,克服M205C4活性肽的稳定性差和体内代谢快的不足,其具有活性高、稳定性好、半衰期长等优点,并且在胰腺癌动物模型中发挥了良好的抗肿瘤作用,为其在人体的治疗应用提供了重要基础和保证。51INTCL19中华人民共和国国家知识产权局12发明专利申请权利要求书1页说明书5页附图6页CN102049042A1/1页21明胶酶A抑制性多肽的修饰物在制备用于治疗肿瘤药物中的应用。权利要求书CN102049038ACN102049042A1/5页3明胶酶A抑制性多肽的修。

3、饰物的应用技术领域0001本发明涉及一种明胶酶A抑制性多肽M205C4,具体涉及一种明胶酶A抑制性多肽M205C4的修饰物的应用。明胶酶A抑制性多肽的修饰物,简称为M205C4PEG。背景技术0002局部侵袭和远处转移是恶性肿瘤的主要生物学特征,也是导致肿瘤患者较高死亡率的主要原因。目前的研究认为在肿瘤的侵袭、转移过程中,细胞外基质EXTRACELLULARMATRIX,ECM的破坏是关键环节。在参与破坏细胞外基质的酶类中基质金属蛋白酶类MATRIXMETALLOPROTEINASES,MMPS是最重要的蛋白水解酶,尤其是MMP2、MMP9在癌细胞侵袭转移过程中不仅可以酶解细胞间基质成分,还能。

4、酶解基底膜的主要成分型胶原。所以设计寻找针对MMPS拮抗药物就尤为重要。目前已有人工合成的MMPS抑制物,如MARIMASTAT、BATIMASTAT、MTASTAT、BAY129566、AG3340、CGS27023A和SC204092等,正在进行不同阶段临床试验。虽然这类小分子化合物可以有效抑制基质金属蛋白酶的酶解作用,但同时所产生的细胞毒作用会给试用者带来强烈的副作用。由此研究人员把目光转向了基质金属蛋白酶类的组织抑制因子(TISSUEINHIBITORSOFMETALLOPROTEINASES,TIMPS)家族。TIMPS的主要功能是天然地抑制MMPS的活性,在调节细胞外基质的代谢中起。

5、到了重要作用。其中TIMP1被认为是组织中MMPS活性主要调节者,控制着大多数的MMPS家族成员。然而TIMPS对肿瘤却是把双刃剑,一方面,通过对抗MMPS蛋白的水解作用抑制肿瘤的浸润。但肿瘤也需要对抗自身的过度水解,所以TIMPS对肿瘤生长同样是必须的。另外,还对肿瘤细胞增殖、凋亡、血管形成等方面起到了关键作用,因此对肿瘤的发展具有双向性。因此寻找结合了小分子化合物和TIMPS蛋白优势的新型药物是我们的研究重点。0003多肽类药物具备高效、低毒和特异性强的显著性优势。M205C4是通过噬菌体展示技术筛选的特异性MMP2抑制性结合肽,拮抗作用完全模拟了TIMPS对MMPS活性调节的方式,可以有。

6、效的抑制肿瘤细胞的侵袭转移并于2006年成功报批国家专利(ZL2006100857797)。经后期实验证明,M205C4对多种肿瘤细胞的生长及血管新生没有明显的促进作用,符合我们的新药筛选标准。但同时也存在肽类药物在体不稳定、易降解的问题,无法使药物在体发挥其特有的生物学活性。而对于药物的修饰同时要考虑到其自身空间结构改变所导致的活性变化和体内代谢行为两个重要因素以外,修饰的工艺化问题也是不容忽视的。所以修饰及其制备方法的选择对于药物的后期研究至关重要。发明内容0004发明目的针对现有技术中的不足,本发明的目的是提供一种M205C4的修饰物的应用,修饰后药物保留了原有生物学活性的同时,降低了免。

7、疫原性,延长了其在生物体内的半衰期。0005技术方案为了实现上述发明目的,本发明采用的技术方案为一种明胶酶A抑制性多肽的修饰物,为MPEGSC对多肽M205C4组氨酸氨基端的单点修说明书CN102049038ACN102049042A2/5页4饰产物,结构式为,分子量为1100013000;结构式中,为MPEG的结构式,HNWTRWLLHPDRGGGS为多肽M205C4的氨基酸序列。0006明胶酶A抑制性多肽的修饰物的修饰方法,包括以下步骤(1)按摩尔比为115分别称取M205C4和MPEGSC,定溶于PH5080的PBS缓冲液中,M205C4的反应浓度为100UM;在静音混合器上,4反应25。

8、H以上,制得M205C4PEG混合液;(2)采用SUNFIRETMC18OBDTM制备色谱柱对步骤(1)制得的M205C4PEG混合液进行液相分离和浓缩,制得浓缩液;对浓缩液进质谱检测,纯度及分子量符合标准后,将浓缩液分装至2MLEP管中,在液氮中过夜保存;(3)将过夜保存在液氮的制备样品放入冻干仪中浓缩至冻干粉末,即可。0007步骤(1)中,优选按摩尔比约为13分别称取M205C4和MPEGSC,定溶于PH74的PBS缓冲液中,M205C4的浓度为100UM;在静音混合器上,4反应3H。0008上述的明胶酶A抑制性多肽的修饰物在制备用于治疗肿瘤药物中的应用。0009有益效果本发明的明胶酶A抑。

9、制性多肽的修饰物的应用,克服M205C4活性肽的稳定性差和体内代谢快的不足,其具有活性高、稳定性好、半衰期长等优点,并且在胰腺癌动物模型中发挥了良好的抗肿瘤作用,为其在人体的治疗应用提供了重要基础和保证。附图说明0010图1是M205C4和M205C4PEG的色谱图及质谱图。A、B、C和D图均为色谱图,E图为质谱图。0011图2为基质金属蛋白酶II酶活检测实验结果图。P图为修饰后的结果图,Q图为未修饰的结果图。0012图3是ICR小鼠的药代动力学检测结果图。I图式修饰后的结果图,II图是未修饰的结果图。0013图4是比格犬实验中药物经修饰后提高了药代动力学行为检测结果图。G图式修饰后的结果图,。

10、F图是未修饰的结果图。0014图5是给药干预45天后测量各组原位肿块(PNAC1)大小的结果图。0015图6是给药干预后部分改善了肿瘤细胞侵袭所致的肝功能异常结果图。H图是天门冬氨酸氨基转移酶(AST)测定结果图,K图是丙氨酸氨基转移酶ALT测定结果图。0016图7是两种胰腺癌细胞株原位荷瘤鼠的生存曲线结果图。M图是腺胰癌PANC1细胞株,N图是腺胰癌CFPAC1细胞株。具体实施方式0017下面结合具体实施例对本发明做进一步的解释。0018以下实施例所使用的方法和药品具体如下说明书CN102049038ACN102049042A3/5页5M205C4活性肽为在中国专利ZL20061008577。

11、97公开的活性肽,由上海吉尔生化公司合成,MPEGSC(10KD)购于北京键凯公司。0019SDSPAGE电泳法将所要检测的样品与4非还原性上样缓冲液按31的体积比混合,室温放置15分钟后进行电泳。胶体共分为3层,上层为浓缩胶(4),中层为间隔胶(10),下层为分离胶(16)。首先采用80V恒压进行电泳,待样品全部进入浓缩胶并压缩成直线后,改用120V恒压继续进行电泳。电泳结束后,将胶体浸入固定液(50甲醇10乙酸)中,室温浸泡30分钟后置于染色液(10乙酸0025考马斯亮蓝R250)中,室温下染色过夜,将胶体转入脱色液(10乙酸)中,室温脱色至样品条带清晰为止。用BIORAD凝胶成像系统UN。

12、IVERSALHOOD对凝胶进行成像。0020冻干仪FREEZONE(25L),购于LABCONCO公司;其他没有药品和设备均为市售药品或常用药品和设备。0021实施例1单修饰M205C4PEG的制备用分析天平分别精密称取M205C4和MPEGSC干粉1MG及15MG摩尔比约为13,定溶于5MLPBS缓冲液PH74中,M205C4的工作浓度为100UM,4反应3H,整个反应在静音混合器上完成。0022制备液相分离和纯化M205C4PEG型号WATERS25452767UV2489;柱子SUNFIRETMC18OBDTM制备色谱柱30150MM,5M;流动相甲醇水三氟乙酸604001;流速10M。

13、L/MIN;柱温25;检测器WATERS2489(双波长,220NM及330NM);将回收的溶液浓缩并分装至2MLEP管中,进行质谱检测后在液氮中过夜保存。0023M205C4PEG冻干粉的制备将过夜保存在液氮的制备样品放入冻干仪中浓缩至冻干粉末。0024如图1所示,A图M205C4标准品直接进样;B图M205C4和MPEGSC的反应样品;C图M205C4和MPEGSC的反应样品的ELSD检测结果;D图制备的M205C4PEG样品直接进样;E图M205C4PEG质谱结果,MPEGSC为分子量900011000的长链混合物,由此所得到的修饰后产物的分子量区间为1100013000,峰值在1200。

14、0左右。其中1号峰为M205C4,2号峰为M205C4PEG,3号峰为PEG。0025MPEGSC的分子量约为900011000,制得的修饰产物为M205C4PEG,是MPEGSC对多肽M205C4组氨酸氨基端的单点修饰产物,其分子量为1100013000。M205C4PEG的结构式为,结构式中,为MPEG的结构式,HNWTRWLLHPDRGGGS为多肽M205C4的氨基酸序列。0026实施例2基质金属蛋白酶II酶活检测实验试剂盒MMP2FLUORIMETRICDRUGDISCOVERYKITBIOMOL说明书CN102049038ACN102049042A4/5页6仪器荧光酶标仪(MOLEC。

15、ULARDEVICES公司、GEMINIEM)操作方法参照试剂盒说明,结果如图2所示,为基质金属蛋白酶II酶活检测实验结果图,由此可得,修饰后产物对基质金属蛋白酶IIMMP2的半数抑制浓度(IC50)为1014UM,是未修饰多肽的41倍,即修饰后产物的生物学活性下降到243。0027实施例3M205C4PEG在动物中药代动力学行为一、M205C4PEG在ICR小鼠中药代动力学行为(1)血药样品的采集ICR小鼠雌性,6周龄,体重2224G/只。0028分组共60只,随机分成10组(10个时间点),每组6只。0029给药及血样的采集尾静脉注射给药,20MG/KG/只M205C4/M205C4PEG。

16、,眼眦取血,置于肝素钠抗凝的干燥2MLEP管中,3000RMIN1离心5MIN,每只小鼠取血清200UL,用600UL乙腈沉淀蛋白,12000RMIN1离心5MIN,取上清600UL加入300UL超纯水及300UL氯仿,涡旋1MIN,静止分层后取上层水相200UL浓缩至冻干粉用作含量测定。0030采血的时间点给药前采集空白血样,给药后5MIN,15MIN,30MIN,1H,2H,4H,8H,16H,24H。0031(2)血药浓度的测定样品处理将每个样品(冻干粉)1MG溶解于50UL超纯水,12000RMIN1离心5MIN,去上清30UL进样。0032色谱条件型号WATERS2690/5;柱子G。

17、LSCIENCEC1846250MM,5UM;流动相甲醇水三氟乙酸109001;流速08ML/MIN;柱温30;检测器WATERS2998(220NM)。0033质谱条件及样品处理质谱仪型号ULTRAFLEXIIMALDITOF/TOF样品的处理(溶剂法制样)分别称取1MGM205C4PEG,4MG冻干粉(血浆),溶于LMLTFA中,振荡溶解,得到淡黄色透明溶液。称取5MGPA6T分别溶于不同的样品溶剂TFA,THF,FA,ACN,60ACN5TFA中,振荡至充分溶解,得到白色悬浊液。取2UL样品溶液点于ANCHORCHIP靶板PAC96上,在空气中自然风干后,再取2UL基质溶液点于风干后的样。

18、品上,待溶剂完全挥发后将样品靶送入靶仓。0034质谱条件MALDITOF质谱仪的脉冲氮激光337NM为离子解吸电离源。采用线性和高分辨率反射分析模型,加速电压为20KV,平均每次测定样品的激光脉冲次数为120。采用外标法标定多肽质谱峰峰位。0035如图3所示,在ICR小鼠实验中药物经修饰后显著性的提高了药代动力学行为,其半衰期是未修饰多肽的401倍。0036二、M205C4PEG在比格犬中药代动力学行为(1)血药样品的采集比格犬及其分组6月龄,共10条,雌雄各5只,体重810KG/条,购于上海交通大学。0037给药及血样的采集右前肢静脉给药,15MG/KGM205C4/M205C4PEG,左前。

19、肢静脉取血,置于肝素钠抗凝的干燥15MLEP管中,3000RMIN1离心5MIN,每只比格犬取血说明书CN102049038ACN102049042A5/5页7清1ML,用4ML乙腈沉淀蛋白,12000RMIN1离心5MIN,取上清4ML分别加入2ML超纯水及氯仿,涡旋1MIN,静置分层,取上层水相16ML浓缩至冻干粉用作含量测定。0038(2)血药浓度的测定,方法同“M205C4PEG在ICR小鼠中药代动力学行为”的方法。0039如图4所示,在比格犬实验中药物经修饰后提高了药代动力学行为,其半衰期是未修饰多肽的78倍。0040实施例4M205C4PEG的抗肿瘤作用一、胰腺癌细胞系原位动物模型。

20、建立细胞系胰腺癌细胞(PANC1/CFPAC1);BALB/C裸鼠雌性,6周龄,约20G/只,购于上海斯莱克公司。0041建立皮下移植肿瘤模型消化对数生长期的细胞,冷PBS洗3次,离心浓缩(900转,5分钟),用无血清无双抗的DMEM培养液重悬成108个/ML的单细胞悬液。将01ML悬液接种于裸鼠右腋下。0042建立原位移植肿瘤模型三周左右待皮下瘤块长至1CM大小时,脊椎脱位处死荷瘤鼠,消毒皮肤,剥离肿块,侵入含有青霉素和链霉素的高糖无血清DMEM培养液中,去除死皮及中央坏死组织,选取正常肿瘤组织,剪成约为大小约5MM3肿块供原位移植用。00431戊巴比妥钠溶液(50MG/KG)腹腔注射麻醉裸。

21、鼠,75酒精消毒皮肤,于左上腹直肠旁行1CM的纵行切口,分开胃和脾之间的薄膜,暴露胰腺,剪开胰腺被膜,将5MM3肿块植入胰体尾处,以80可吸收线缝合胰腺被膜。将胰腺送回腹腔,60可吸收线单层缝合腹壁肌及皮肤。所有操作均在超净台内进行,术者佩戴外科手术放大镜。0044二、给药干预后的有益效果术后十天进行给药干预分组以肿瘤生长的均一性为标准,从40只术后荷瘤鼠中,挑选32只,进行随机性分组,每组8只,共4组。0045给药方式腹腔注射,每12小时给药一次;给药剂量药物均溶于PBS缓冲液;治疗组M205C4PEG50MG/KG;对照组1PEG453MG/KG;对照组2PBS025ML/只;对照组3M2。

22、04C4PEG5OMG/KG。M204C4为体外实验活性较弱的相关肽,在CN1869063A中公开。0046M205C4PEG对裸鼠原位移植的胰腺癌细胞株PANC1的生长抑制作用待荷瘤鼠发病自然死亡后,取出腹部肿块。肿瘤的大小长径短径2如图5所示,为试验结果图。图中明显得出,M205C4PEG可减缓肿瘤的生长,与对照组2比较治疗组的抑瘤率为327P005。0047M205C4PEG对胰腺癌细胞株PANC1荷瘤鼠肝功能的作用测定荷瘤鼠血浆中的天门冬氨酸氨基转移酶(AST)、丙氨酸氨基转移酶ALT的含量。试剂盒购于USCNLIFETM公司。方法参照该试剂盒。如图6所示,为试验结果图。给药干预后可部。

23、分逆转癌细胞诱发的肝功能异常。0048M205C4PEG对荷瘤鼠的生存率的影响生存率为对照组1和2存活率变为最低时所对应的治疗组的存活率的均值。如图7所示,M205C4PEG分别显著性的提高了两种胰腺癌细胞株荷瘤鼠40和30的生存率,延缓肿瘤的恶性发展。说明书CN102049038ACN102049042A1/6页8图1AD图说明书附图CN102049038ACN102049042A2/6页9图1E图说明书附图CN102049038ACN102049042A3/6页10图2说明书附图CN102049038ACN102049042A4/6页11图3图4说明书附图CN102049038ACN102049042A5/6页12图5图6说明书附图CN102049038ACN102049042A6/6页13图7说明书附图CN102049038A。

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