技术领域
本发明提供筛选评价干燥肌肤、特别是由特应性皮炎引起的干燥肌肤 的改善剂的方法、改善或预防由特应性皮炎引起的干燥肌肤的方法、以及 由特应性皮炎引起的干燥肌肤的诊断方法。
背景技术
表皮的颗粒层的角蛋白纤维在角化时与被称为丝聚蛋白的蛋白质结合 而凝聚，形成被称为“角蛋白模型”的特异性形态。颗粒细胞内的透明角 质颗粒中存在大量作为丝聚蛋白的前体物质的丝聚蛋白原(由10～12个丝 聚蛋白单元纵向排列而成)，角化时，在生成丝聚蛋白单体的同时通过去磷 酸化而使角蛋白纤维凝聚。然后，通过称作肽基精氨酸脱亚氨酶(PAD)的 酶的作用而被脱亚氨基化，游离为角蛋白，然后在角质层上层被分解成氨 基酸等。已知这些氨基酸被称为天然保湿因子(natural moisturizing factor， NMF)，对角质层水分量的保持承担重要的作用，此外具有紫外线吸收能 力(Blank I.H.J.I.Dermatol.,18,433(1952);Blank I.H.J.I.Dermatol.,21、 259(1953))。
自从明确了作为NMF的主成分的氨基酸来自丝聚蛋白以来，对于呈 现干燥肌肤的病态与丝聚蛋白的相关性进行了研究。近年来，明确了在老 年性干皮病、特应性疾病等的干燥肌肤中，角质层中的氨基酸减少(Horii I. et al.,Br.J.Dermatol.,121、587-592(1989);Tanaka M.et al.,Br.J. Dermatol.,139,618-621(1989))。
PAD与丝聚蛋白的精氨酸残基作用而脱亚氨基化，转换成瓜氨酸残 基。认为这样通过丝聚蛋白被脱亚氨基化，丝聚蛋白与角蛋白纤维的亲和 性变弱，角蛋白纤维游离，其结果是丝聚蛋白容易受到蛋白酶的作用，最 终被分解成NMF。
本发明者明确了，作为将以PAD脱亚氨基化后的丝聚蛋白分解的酶， 特定为钙蛋白酶-1，作为其分解产物的小的肽片段被博来霉素水解酶(BH) 分解成氨基酸单元、即NMF(Journal of Investigative Dermatology(2008), Volume 128,ABSTRACTS,S90,539；第30回日本分子生物学会年会·第 80回日本生化学会大会合同大会讲演要旨集，第583页；JOURNAL OF BIOLOGICAL CHEMISTRY 284,NO.19,pp.12829-12836,2009， 3P-0251；和日本特愿2008-135944号(以下称为第944号申请))。
最近的研究已知，特应性皮炎的一部分是由于丝聚蛋白原基因的异常 而产生的，在特应性皮炎患者的5-50%左右中发现该基因的异常(Smith FJD,et al.Nat Genet 38:337-42(2006);Aileen Sandilands 1、et al.,J.I. Dermatol.,127,1282-1284(2007)和Nomura T,et al.,J.I.Dermatol., 128(6):1436-41(2008))。然而，特应性皮炎患者的皮肤中，丝聚蛋白的表达 不是一定会剧烈降低。
现有技术文献
非专利文献
非专利文献1：Blank I.H.J.I.Dermatol.,18,433(1952)
非专利文献2：Blank I.H.J.I.Dermatol.,21、259(1953)
非专利文献3：Horii I.et al.,Br.J.Dermatol.,121、587-592(1989)
非专利文献4：Tanaka M.et al.,Br.J.Dermatol.,139,618-621(1989)
非专利文献5：Kamata et al.,J.Biochem.,141、69-76,2007
非专利文献6：Journal of Investigative Dermatology(2008),Volume 128,ABSTRACTS,S90,539
非专利文献7：第30回日本分子生物学会年会·第80回日本生化学 会大会合同大会讲演要旨集，第583页，3P-0251
非专利文献8：JOURNAL OF BIOLOGICAL CHEMISTRY 284,NO. 19,pp.12829-12836,2009
非专利文献9：Smith FJD,et al.Nat Genet 38:337-42(2006)
非专利文献10：Aileen Sandilands1、et al.,J.I.Dermatol.,127, 1282-1284
发明内容
发明所要解决的课题
本发明的课题在于，基于由于NMF产生酶的表达变化的新的肌粗糙 机制，提供筛选用于改善或预防由特应性皮炎引起的干燥肌肤的药剂的方 法、评价由特应性皮炎引起的干燥肌肤的方法、改善或预防由特应性皮炎 引起的干燥肌肤的方法、以及诊断由特应性皮炎引起的干燥肌肤的方法。
用于解决课题的方法
在上述第944号申请中，本发明者明确了博来霉素水解酶的活性增强 介由NMF的产生而改善皮肤屏障功能。这样，认为博来霉素水解酶在NMF 产生的最终阶段起作用。然而，有趣的是，关于由于特应性皮炎而产生的 干燥肌肤，在多数特应性皮炎患者中依然可见丝聚蛋白的表达，因此预想 是由于与丝聚蛋白基因的异常不同的原因而产生的。
本发明者基于人皮肤中的博来霉素水解酶的表达降低不仅与由于 MMF产生机制的异常而产生的皮肤屏障功能的降低有关，而且与主要由 免疫异常引起的的特应性皮炎、以及由于该皮炎而产生的干燥皮肤等有关 这一假说，对由干燥肌肤人试验得到的该酶的表达变化进行了验证，并且 进行了其表达控制机制的分析等。其结果是，本发明者发现，博来霉素水 解酶的表达降低与由于特应性皮炎而产生的干燥肌肤相关，并且在编码该 酶的基因的5’旁侧区内存在显著诱导该酶的表达的调控区。具体而言，本 发明者对BH的5’-旁侧区进行了克隆化。在其缺失分析中，在-216bp上游 中鉴定了出对BH启动子活性重要的区。在电泳迁移率变动分析中，明确 了在试管内MZF-1、Sp-1和干扰素调节因子(IRF)-1/2可以与该区结合。 而且，在MZF-1和Sp-1基序的定点诱变中，BH启动子活性大大降低。 这些数据暗示出BH表达介由MZF-1和Sp-1而被增量调节。有趣的是， 作为Th1细胞因子的干扰素(IFN)-γ使BH的表达显著减少。在定点诱变 和使用了小干扰RNA的分析中，证实了IFN-γ对BH表达的抑制效果。 另一方面，作为Th2细胞因子的IL-4对BH表达完全不显示直接作用。然 而，由于IL-4在培养角质形成细胞中对MZF-1和Sp-1进行减量调节，因 此暗示出IL-4可以作为BH调整的抑制基因起作用。最后，研究了患有 AD的患者的皮肤中的BH表达。BH活性和表达在AD病变皮肤中大大减 少，因此暗示出AD中的丝聚蛋白分解途径的缺陷。如上，本发明者发现， BH的转录在分化中和炎症中这两者中被调节，从而完成了本申请发明。
因此，本申请包含以下发明。
(1).一种筛选评价由特应性皮炎引起的干燥肌肤的改善剂的方法，在 候选药剂与对照药剂相比显著增强博来霉素水解酶的表达和/或活性的情 况下，将该候选药剂评价为由特应性皮炎引起的干燥肌肤的改善剂。
(2).根据(1)所述的方法，在编码博来霉素水解酶的基因的转录活性与 对照相比显著增强的情况下，判断为所述表达和/或活性显著增强。
(3).根据(2)所述的方法，在转录因子IRF-1、IRF-2、MZF-1、SP-1 和/或GATA-1对编码博来霉素水解酶的基因的转录调控区的结合活性与 对照相比显著增强的情况下，判断为所述转录活性显著增强。
(4).一种改善或预防由特应性皮炎引起的干燥肌肤的方法，通过使皮 肤组织中的博来霉素水解酶的表达和/或活性显著增强来实现。
(5).根据(4)所述的方法，通过使编码博来霉素水解酶的基因的转录活 性增强，从而所述表达和/或活性被显著增强。
(6).根据(5)所述的方法，通过使转录因子IRF-1、IRF-2、MZF-1、SP-1 和/或GATA-1对编码博来霉素水解酶的基因的转录调控区的结合活性增 强，从而所述表达和/或活性被显著增强。
(7).一种诊断由特应性皮炎引起的干燥肌肤的素质的方法，在皮肤组 织中的博来霉素水解酶的表达和/或活性与对照的皮肤相比显著降低的情 况下，诊断为有由特应性皮炎引起的干燥肌肤的倾向，如果皮肤组织中的 博来霉素水解酶的表达和/或活性与对照的皮肤相比为同等程度以上，则诊 断为没有由特应性皮炎引起的干燥肌肤的倾向。
(8).根据(7)所述的方法，在编码博来霉素水解酶的基因的转录活性与 对照相比显著降低的情况下，判断为所述表达和/或活性显著降低。
(9).根据(8)所述的方法，在转录因子IRF-1、IRF-2、MZF-1、SP-1 和/或GATA-1的结合活性与对照相比显著降低的情况下，判断为所述转录 活性降低。
发明的效果
基于本发明所确立的由于博来霉素水解酶的表达变化的新的肌粗糙机 制，特别是基于以博来霉素水解酶的表达和/或活性为指标的筛选体系，可 以探索由特应性皮炎引起的干燥肌肤的新的改善剂。此外，认为本申请发 明的方法也能够适用于与特应性皮炎无关的通常的干燥肌肤的改善剂的探 索。事实上，本申请的实施例中，在博来霉素水解酶的表达和/或活性低的 组中，屏障功能(透皮水分蒸发量：TEWL)显著降低，角质层水分量也降 低。
附图说明
图1是显示通过胶带剥离(tape stripping)而获得的人皮肤提取液中的 博来霉素酶量与胶带剥离的次数的关系的蛋白质印迹图。
图2是显示人皮肤提取液中的博来霉素酶量与干燥肌肤的关系的蛋白 质印迹图。T、A：来自不感觉干燥的被检者的样品；N：来自感觉略干燥 的被检者的样品，以及M：来自感觉干燥的被检者的样品。
图3是显示人的腕的角质层提取液中的博来霉素水解酶量与其酶活性 的关系的图。横轴的编号表示被检者的识别编号。
图4是对于图3中所得的博来霉素水解酶量与活性的关系通过最小二 乘法得到的一次近似。
图5是关于人的腕的角质层提取液中的博来霉素水解酶和皮肤参数 (A：游离氨基酸，B：活性，C：TEWL)的统计学分析。BH low:博来霉 素水解酶量＜10，活性＜1.5(nmol/分钟/ml);BH high:博来霉素水解酶量 ≥10，活性≥1.5(nmol/分钟/ml)。
图6是肌肤分类用问卷调查流程图。
图7是按照图6的流程图分类后的被检者的角质层的皮肤参数测定结 果。
图8是显示正常皮肤中的博来霉素水解酶和丝聚蛋白的局部存在的组 织染色图。
图9是显示特应性患者皮肤中的博来霉素水解酶和丝聚蛋白的局部存 在的组织染色图。
图10是显示使用定量PCR得到的角质形成细胞的分化与博来霉素水 解酶的表达量的关系的图。纵轴的值表示将80%汇合的表达量设为1的情 况下的相对量。
图11是显示编码博来霉素水解酶的基因的5’旁侧区的示意图。
图12是显示使用了人表皮角质形成细胞的BH启动子的萤光素酶检测 的结果的图。
图13是显示转录因子SP1、MZF1和GATA1的表达与UV照射的关 系的图。
图14是显示正常人表皮角化细胞中的博来霉素水解酶和蛋白酶的表 达与UV照射的关系的图。
图15是为了通过PCR制成BH的5’-旁侧区的连续5’-缺失突变株而 使用的引物。
图16是为了通过实时定量RT-PCR来分析BH和相关因子的转录水 平而使用的引物。
图17是电泳迁移率变动分析中使用的探针。
图18(A)显示人BH的5’-旁侧区的示意图。5’-旁侧区内的推定转录因 子结合部位是通过采用Genome Net MOTIF程序进行的检索而明确的。(B) 缺失分析中确定的BH的启动子区。(C)对包含表示BH的最小启动子的序 列和推定转录因子结合部位的-216/-1区的核苷酸序列的推定转录因子结合 部位加了下划线。
图19(A)通过定点诱变进行的BH启动子中的转录因子结合部位的特 性确定。显示推定转录因子结合部位的缺失构建体的示意图和培养角质形 成细胞中的其萤光素酶活性。定点诱变在跨越-616/+1区的核苷酸序列的 构建体中实施。(B)显示MZF-1、Sp-1、GATA-1或IRF-1/2对BH启动子 的顺式作用元件的结合。实验通过使用来自培养角质形成细胞的核提取物、 和包含推定转录因子结合部位MZF-1、Sp-1、GATA-1或IRF-1/2的生物 素化双链寡核苷酸探针的电泳迁移率变动分析(EMSA)来进行。道1表示核 提取物中的生物素化探针的结合图，道2表示与2倍过量的非标记探针竞 争后的生物素化探针的结合图。
图20(A)BH表达的实时RT-PCR分析。显示Th1、Th2和Th17细 胞因子对BH基因表达的效果。(B)IRF-1/2结合部位的突变分析。显示在 IFN-γ存在下的培养角质形成细胞中的BH启动子活性。将角质形成细胞 用包含BH启动子区的完整IRF-1/2结合部位的pGL3-216进行转染，用 IFN-γ处理24小时(上画面)。将角质形成细胞用△pGL3-616(IRF-1/2缺失 突变体)转染，在10ng/ml的IFN-γ或IL-4存在下或不存在下处理24小时 (下画面)。(C)用于判断IRF-1/2是否为BH的IFN-γ诱导性减量调节的必 须介质的使用了小干扰RNA(siRNA)的IRF-1和IRF-2基因表达的测定。 将角质形成细胞用IRF-1或IRF-2的siRNA(40nM)转染，培养24小时， 用10ng/ml的IFN-γ处理，再培养24小时，然后进行RNA分离。右画面 显示IRF-1和IRF-2的沉默的效果。
图21(A)用于调查表皮中的转录调节机制的通过实时PCR法进行的增 殖型或分化型细胞中的BH、钙蛋白酶I和推定转录因子的表达分析。(B) 培养角质形成细胞中的转录因子MZF-1、Sp-1、GATA-1、IRF-1和IRF-2 表达谱分析。
图22(A)是IFN-γ对推定转录因子IRF-1和IRF-2的表达的效果。(B) 是IL-4对推定转录因子IRF-1、IRF-2、MZF-1和Sp-1的表达的效果。
图23(A)是正常表皮中的通过用抗BH抗体和抗丝聚蛋白抗体的双重 染色而显示的、颗粒层中的BH与丝聚蛋白的同时局部存在。(B)来自AD 患者的病变皮肤与非病变皮肤的提取物的BH活性。
具体实施方式
在本发明的第一观点中，提供一种筛选评价由特应性皮炎引起的干燥 肌肤的改善剂的方法，在候选药剂与对照药剂相比显著增强博来霉素水解 酶的表达和/或活性的情况下，将该候选药剂评价为由特应性皮炎引起的干 燥肌肤的改善剂。
博来霉素水解酶是分子量250～280kDa(六聚体)的细胞质半胱氨酸肽 水解酶，最初知道的功能是在癌的组合化学疗法中频繁使用的糖肽博来霉 素的代谢失活。包含半胱氨酸蛋白质分解酶木瓜蛋白酶超家族的特征性活 性部位残基，编码基因在人中存在于基因座17q11.2(Takeda et al.,J Biochem.,119,29-36,1996)。存在于所有组织，也已知其存在于皮肤中 (Kamata et al.,J.Biochem.,141,69-76,2007)，但关于与丝聚蛋白的关系， 在本发明者搞清楚之前还完全不清楚。
由组织染色的结果明确了，博来霉素水解酶与丝聚蛋白同样地在正常 皮肤中在表皮上层大量表达(图8)。另一方面，在特应性皮炎患者中，在特 应性皮疹部该酶和丝聚蛋白的表达降低(图9)。这强烈启示，不是丝聚蛋白 原基因的异常而是其分解酶系的异常成为特应性皮炎的原因。此外，特应 性皮炎患者的皮肤中，不仅病变部博来霉素水解酶活性显著低，而且非病 变部博来霉素水解酶活性也显著低(数据未显示)。
此外，对于博来霉素水解酶的表达量的变化，使用培养角质形成细胞 进行了研究，结果可知，该酶在未分化的角质形成细胞中不怎么表达，与 此相对，在达到汇合并进行分化后的角质形成细胞中高表达，在基底细胞 中几乎不表达，而在分化进行并向表皮细胞转变后高表达(图10)。该结果 支持了上述细胞染色的结果。
本发明所涉及的博来霉素水解酶的表达和/或活性的测定，可以按照能 够测定该酶的表达和/或活性的任意方法定量或定性地实施，可以按照例如 利用对博来霉素水解酶特异性的抗体的免疫测定方法、例如利用酶标记的 ELISA法、利用放射性标记的RIA法、免疫比浊法、蛋白质印迹法、胶乳 凝聚法、红血球凝聚法等。免疫测定的方式中可列举竞争法、夹心法。更 具体而言，上述活性的测定可以如下进行：利用例如瓜氨酸为对博来霉素 水解酶基本特异性的底物这样的性质，用荧光分光光度计评价作为其荧光 合成底物的Cit-MCA的分解。博来霉素水解酶量的测定也可以通过编码该 酶的基因的表达量的测定来进行。该情况下，优选通过测定细胞内的编码 博来霉素水解酶的mRNA的量来确定博来霉素水解酶的表达量。mRNA 的提取、其量的定量或定性测定也在本领域中是公知的，可以通过例如 PCR法、3SR法、NASBA法、TMA法等各种公知方法来实施。此外，博 来霉素水解酶可以通过原位杂交法和/或其生物活性的测定来定性地确定。
本发明的筛选评价由特应性皮炎引起的干燥肌肤的改善剂的方法中， 在候选药剂与对照药剂相比显著增强博来霉素水解酶的表达和/或活性的 情况下，该药剂被评价为由特应性皮炎引起的干燥肌肤的改善剂。认为按 照本发明的方法筛选的药剂对干燥肌肤、特别是由特应性皮炎引起的干燥 肌肤有效。
根据日本皮肤科学会特应性皮炎诊疗方针，所谓“特应性皮炎”，是 指反复恶化、好转的以有搔痒的湿疹为主病变的疾病，该疾病可以基于有 无搔痒、有无作为特征性皮疹的红斑、湿润性红斑、丘疹、浆液性丘疹、 鳞屑、痂皮等的急性病变、和/或浸润性红斑-苔藓化病变、痒疹、鳞屑、 痂皮等的慢性病变来诊断。在本说明书中使用的情况下，所谓“由特应性 皮炎引起的干燥肌肤”，是指包含丝聚蛋白基因的异常，伴随根据上述定 义确诊了的特应性皮炎的干燥肌肤。
本发明的筛选方法有：在试验药剂存在下通过通常的PCR来测定编码 博来霉素水解酶的mRNA的表达增强的方法；将参与该酶表达的启动子区 插入萤光素酶基因载体，作为启动子分析系统直接测定表达强弱的方法等。 在后者的情况下，BH的启动子区优选使用BH表达最大的-216bp至-816bp 的区。此外，表达量的测定不仅可以使用萤光素酶，而且可以使用在本领 域中一般使用的Azami-Green等荧光蛋白。将这些包含融合基因的载体导 入细胞中，在药剂存在下培养细胞，通常24小时后溶解细胞，测定萤光素 酶活性，从而可以测定药剂对BH表达所起的作用。所用的细胞可以使用 市售的正常表皮细胞(NHEK：クラボ一等)、无限增殖化的HaCaT细胞等， 但不限于此。萤光素酶活性的测定中优选通过使用ロツシユダイアグノス テイカ的リスフエラ一ゼアツセイキツト等来实施。
在本说明书中使用的情况下，所谓“与对照药剂相比显著增强博来霉 素水解酶的表达和/或活性”，是指与没有干燥肌肤改善效果、特别是对由 特应性皮炎引起的干燥肌肤没有改善效果的对照药剂相比，测定得到的博 来霉素水解酶的表达量或活性、或者这两者例如分别为120%以上、或 150%以上、或200%以上的情况。
博来霉素水解酶的表达和/或活性的增强也可以通过增强编码该酶的 基因的转录活性来实现。图11表示编码博来霉素水解酶的基因的5’-旁侧 区、特别是转录调控区、和与该区结合的转录因子。为了博来霉素水解酶 表达，上述转录调控区只要具有从该酶的编码序列至216bp～1216bp下游 的区即可。从获得高的博来霉素水解酶活性的观点考虑，该转录调控区优 选包含直到816bp下游的区。
为了博来霉素水解酶的表达，只要包含从该酶的编码序列至至少 216bp下游的区即可。认为在图11所记载的转录因子中，通过增强该区所 含的IRF-1、IRF-2、MZF-1、SP-1、GATA-1的结合活性，从而博来霉素 水解酶的表达特别增强。事实上，博来霉素水解酶通过紫外线(UV)照射而 其表达被增强(数据未显示)，此时MZF-1、GATA-1的表达增强与UV的 强度和照射时间之间可见相关关系(图13)。
这里，在通过候选药剂而使编码博来霉素水解酶的基因的转录活性或 转录因子对该基因的转录调控区的结合活性与对照药剂相比显著增强到例 如分别为120%以上、或150%以上、或200%以上的情况下，可以视为博 来霉素水解酶的表达量和/或活性被显著增强。
博来霉素水解酶的表达和/或活性也会受到细胞因子影响。例如，已知 与特应性皮炎相关的、作为Th2细胞因子的一种的白介素-4(IL-4)，对博 来霉素水解酶的表达进行减量调节。这证实了特应性皮炎患者的皮肤中所 见的博来霉素水解酶的低表达。另一方面，与IL-4相反地具有抑制IgE产 生的作用的Th1细胞因子的代表、干扰素γ会显著增强博来霉素水解酶的 表达。此外，Th2细胞因子中作为炎症性细胞因子的代表的肿瘤细胞坏死 因子α(TNFα)也使该酶的表达显著增强。不仅是这些物质，博来霉素水解 酶的表达和/或活性也会由于UV照射而被增强。虽然结果未显示，但确认 了在体表中，容易受到紫外线照射的面颊等的皮肤中的博来霉素水解酶的 活性由于UV照射而被增强。
本发明在第二观点中，提供一种改善或预防由特应性皮炎引起的干燥 肌肤的方法，通过使皮肤组织中的博来霉素水解酶的表达和/或活性显著增 强来实现。
本发明的改善或预防由特应性皮炎引起的干燥肌肤的方法中，例如与 实施该处置方法之前的皮肤中的表达和/或活性相比，使皮肤中的博来霉素 水解酶的表达和/或活性显著增强。所谓“显著增强”，是指例如使博来霉 素水解酶的表达和/或活性为120%以上、或150%以上、或200%以上的值 的情况。
本发明的方法中，可使用使博来霉素水解酶的表达和/或活性显著增强 的任意药剂。此外，只要是增强该酶的表达和/或活性，则对药剂没有限定。 本发明的方法中使用的药剂等只要可以对皮肤适用且可以达成本发明的目 的即可，可以以任意形态适用于皮肤，而且可以单独适用，或也可以与其 它任意成分一起配合适用。此外，对所适用的皮肤的部位也不限定，包括 含头皮在内的体表的所有皮肤。
本发明在第三观点中，提供一种诊断由特应性皮炎引起的干燥肌肤的 素质的方法，在皮肤组织中的博来霉素水解酶的表达和/或活性与对照的皮 肤相比显著降低的情况下，诊断为有由特应性皮炎引起的干燥肌肤的倾向， 如果皮肤组织中的博来霉素水解酶的表达和/或活性与对照的皮肤相比为 同等程度以上，则诊断为没有由特应性皮炎引起的干燥肌肤的倾向。
被检者的肌肤是否为干燥肌肤通过被检者、医师等的主观来判断，或 者通过使用皮表水分测定仪测定皮肤的水分量来客观地判断。例如，也可 以如本说明书的实验3中说明的那样，按照图6所记载的流程图，基于出 油、容易缺水性等，通过被检者等的主观来判断是否为“干燥肌肤”。
干燥肌肤的判定可以容易地进行，但有时难以判断被检者的肌肤是否 具有“由特应性皮炎引起的干燥肌肤”的素质。根据本发明的诊断方法， 不仅能够诊断被检者的现在的肌肤状态，而且能够诊断是否容易罹患由特 应性皮炎引起的干燥肌肤。
所谓“博来霉素水解酶的表达和/或活性与对照的皮肤相比显著降低”， 是指例如与从皮肤医学的观点考虑由医师判断为湿润肌肤的正常的“对照 的皮肤”相比，测定得到的博来霉素水解酶的表达和/或活性为80%以下、 或70%以下、或60%以下、或50%以下、或30%以下、或10%以下的情 况。所谓“与对照的皮肤相比为同等程度以上”，是指例如与从皮肤医学 的观点考虑由医师判断为湿润肌肤的正常的“对照的皮肤”相比，测定得 到的博来霉素水解酶的表达和/或活性为例如80%以上、或90%以上、或 100%以上的情况。
作为被检样品的皮肤角质层样品的采集可以通过任意方法实施，但从 简便性的观点考虑优选胶带剥离法。所谓胶带剥离，是指在皮肤表层粘贴 胶带片，剥离，使皮肤角质层附着于该剥离的胶带，从而采集角质层样品 的方法。如果利用胶带剥离法，则能够仅通过一片胶带采集角质层而进行 博来霉素水解酶的表达和/或活性的测定，能够实现以博来霉素水解酶为指 标的、对于由特应性皮炎引起的干燥肌肤的非侵入性的评价方法。胶带剥 离的优选方法如下进行：首先将皮肤的表层用例如乙醇等清洁来除去皮脂、 污垢等，将切成适当尺寸(例如5×5cm)的胶带片轻轻放在皮肤表面上，向 整个胶带施加均等的力平坦地按压，然后用均等的力剥除胶带。胶带可以 为市售的赛璐玢胶带等，也可以使用例如Scotch Superstrength Mailing Tape(3M社制)、赛璐玢胶带(セロテ一プ(注册商标)；ニチバン株式会社) 等。
以下，列举具体例更具体地说明本发明。另外，本发明不受这些具体 例限定。
[实施例]
本实验中使用了以下材料。
钙蛋白酶I从EMD Bioscience社购入。博来霉素水解酶从人表皮角质 层按照非专利文献5来制作。人IL-4和IFN-γ从PEPROTECH EC(London, England)购入。人IL-13和IL-17A/F为R&D SYSTEM(MINNEAPOLIS, MN)制。由Bachem Bioscience(Bubendorf，Switzerland)获得瓜氨酸4-甲基 香豆酰-7-酰胺(Cit-MCA)。所使用的其它全部化学物质均为试剂级。
角质形成细胞的培养
将来自新生儿期表皮的正常人表皮角质形成细胞(Kurabo，Osaka, Japan)在包含低浓度(0.03mM)的钙和HKGS Growth Supplement(Cascade Biologics)的EpiLife培养基(Cascade Biologics，Portland,OR)中培养。对 全部的细胞一边加入5%的CO2一边在37℃孵育，然后传代4代以内使用。 在汇合70%、汇合100%、汇合2天后和在2mM的钙中汇合2天后采集 角质形成细胞。
实验1
考虑博来霉素水解酶在NMF产生的最终阶段起作用。在该情况下， 可能在干燥肌肤中本酶的表达降低。本实验中，对于皮肤中的博来霉素水 解酶的表达和/或活性的降低是否与干燥肌肤相关进行了研究。
通过在腕的皮肤表面粘贴透明胶带(セロテ一プ(注册商标) (NICHIBAN))之后剥离的胶带剥离来采集皮肤角质层样品。裁切附着有皮 肤角质层的该胶带，浸渍在提取缓冲液(0.1M Tris-HCl(pH8.0),0.14M NaCl, 0.1%Tween-20,1ml)中，进行超声波处理(20秒×4)，制成角质层提取液。 将该提取液进行蛋白质印迹。所用的抗博来霉素水解酶(BH)抗体使用由镰 田等(Journal of Biological Chemistry 2009)制作的抗体。具体而言，将角质 层提取液进行SDS电泳后，转印至Immobilon-P(Millipore社)，将该被转 印的膜洗涤后，与抗BH抗体在室温反应1小时。再通过洗涤除去抗体后， 与HRP结合二抗反应。洗涤后，将通过ECL Plus Western Blotting Detection Kit(GE Healthcare)而发光了的BH蛋白带印相于X射线膜，通 过带的浓淡来推定表达量。将结果示于图1和图2中。
图1中，样品1是本人自己认为是干燥肌肤的人的皮肤角质层样品， 样品2是认为不是干燥肌肤的健康学生的皮肤角质层样品。此外，图2中 的样品T和A来自不感觉干燥的被检者，样品N来自感觉略干燥的被检 者，此外样品M来自感觉干燥的被检者。样品1中的博来霉素水解酶的表 达量少，另一方面，样品2中的该酶表达量多。由该结果可知，样品1、2 分别来自干燥肌肤、湿润肌肤。此外，由使用了样品1的结果可知，在干 燥肌肤中，越接近作为NMF产生场所的表皮表面，博来霉素水解酶量越 低。图2中，样品T和A表示由不特别感觉干燥的样品得到的提取液的蛋 白质印迹图像，样品N和M表示由强烈意识到干燥的样品得到的提取液 的蛋白质印迹图像。
实验2
本实验中，对于人皮肤中的博来霉素水解酶的量、活性的个体差异和 该酶量与活性的相关进行了研究。按照实验1中记载的方法，由20～25 岁的40名女学生的腕的皮肤制成角质层提取液。按照Kamata等(J.Biol. Chem.,Vol.284,Issue 19,12829-12836,May 8,2009)的方法测定该提取液 中的博来霉素水解酶量及其酶活性。表达量通过蛋白质印迹进行评价，此 外关于酶活性，通过测定作为荧光底物的Cit-β-NA的分解量来对该酶的氨 肽酶活性进行评价。将结果示于图3，此外将其相关图示于图4。由图4 的结果明确了，博来霉素水解酶量与其活性之间存在相关关系。
接下来，对于上述角质层提取液，关于博来霉素水解酶和各种皮肤参 数进行了统计学分析。本实验中，将40人的角质层提取液分成以下2种。 在用光密度计将由蛋白质印迹的结果明确了的博来霉素水解酶量进行了数 值化，然后以1作为任意单位而表示的情况下，博来霉素水解酶量小于10 并且该酶的活性小于1.5nmol/分钟/ml的提取液：博来霉素水解酶的蛋白质 量少，并且活性低的提取液(BH low)；除此以外的提取液：蛋白质量多， 并且活性高的提取液(BH high)。
游离氨基酸按照Kamata等(J.Biol.Chem.,Vol.284,Issue 19, 12829-12836,May 8,2009)的方法进行测定。具体而言，使以钙蛋白酶I分 解后的丝聚蛋白肽与各提取液反应，使用荧光胺来定量氨基，从而测定游 离氨基酸量。将游离氨基酸的测定结果示于图5A。图5A中的纵轴的单位 表示测定样品3ml中的总游离氨基酸量(nmol)。
关于博来霉素水解酶的活性，如上所述，通过测定作为荧光底物的 Cit-β-NA的分解量来评价该酶的氨肽酶活性。将博来霉素水解酶活性的测 定结果示于图5B。图5B中的纵轴的单位表示Cit-β-NA的分解量(nmol/ 分钟/ml))。
上述学生的皮肤的TEWL使用Vapometer(经皮水分流失TEWL测量 仪)(Delfin Technologies,Ltd,Finland)进行测定，作为g/m2/小时而表示。 将TEWL的测定结果示于图5C。
如图5C所示，在博来霉素水解酶活性低的组(2.5U＜)和高的组之间， 角质层水分量存在显著差别。此外，在该酶的量与活性这两者都低的组中， 游离氨基酸少，而且TEWL也高(图5A和5C)。
虽然数据未显示，但在游离氨基酸低的组(1000<)和高的组之间，NMF、 尿刊酸的量存在显著差别，而且在NMF低的组(0.8<)和高的组之间，尿刊 酸存在显著差别。此外，在TEWL低的组(2.5<)和高的组之间，NMF、乳 酸、脲存在显著差别。如果考虑到尿刊酸由丝聚蛋白中大量包含的组氨酸 形成，则可知博来霉素水解酶在丝聚蛋白分解中是重要的。
由本实验的结果可知，在博来霉素水解酶的绝对量少的情况下，游离 氨基酸量和屏障功能都显著降低。虽然数据未显示，但在使用了来自面颊 的角质层提取液的情况下，也确认了博来霉素水解酶量与屏障功能的比例 关系。
实验3
本实验中，基于图6所记载的流程图对上述女学生进行问卷调查，将 各学生的肌肤分成湿润肌肤、干燥肌肤、干燥型油性肌肤、油性肌肤这4 类。将问卷调查结果与上述实验2中测定的皮肤参数的结果的相关关系示 于图7。由图7可知，分类成油性干燥肌肤的学生的博来霉素水解酶活性 显著高。
实验4
本实验中，对于皮肤中的博来霉素水解酶与丝聚蛋白的局部存在进行 研究。
免疫组织化学染色
免疫组织化学染色通过Kamata等(J.Biol.Chem.,Vol.284,Issue 19, 12829-12836,May 8,2009)所记载的方法来进行。材料使用5μm厚的人皮 肤的冷冻切片、以及抗大鼠BH IgG。具体而言，在知情同意的基础上， 由东京医科大学的患有特应性皮炎的患者获得人皮肤标本。本研究被与伦 理(Human Ethics)有关的东京医科大学施设内审查委员会和资生堂特别部 会承认。
将人特应性皮炎(病变皮肤与非病变皮肤)和正常皮肤的切片与抗大鼠 BH IgG和抗人丝聚蛋白IgG一起在室温孵育1小时，然后，用PBS洗涤， 然后与作为荧光结合二抗的Alexa Fluor 555或488(molecular Probes Inc., Eugene,OR)一起进一步孵育。将DAPI(4’,6’-二脒基-2-苯基吲哚； Molecular Probes)用于核的可视化。
将正常皮肤的组织染色结果示于图8，然后将来自健常者的皮肤(正常 皮肤)与来自特应性皮炎患者的皮肤(特应性皮疹部)的对比结果示于图9。 如图8所示，博来霉素水解酶在表皮上层高表达，显示与丝聚蛋白同一的 局部存在。另一方面，特应性皮疹部与正常皮肤相比，博来霉素水解酶和 丝聚蛋白的表达低(图9)。
定量PCR
角质形成细胞中的博来霉素水解酶的表达量按照以下方法通过定量 PCR来测定。Light Cycler 480(Roche Diagnostics GmbH,Mannheim, Germany,试剂使用Light Cycler FastStart DNA Master CYBR Green I。 在SYBR Green I master mix 10μl中分别加入以下的博来霉素水解酶引物 0.6μl、水6.8μl，使总量为20μl，以95℃15秒、55℃20秒、72℃20 秒进行45个循环的PCR。所得的结果通过与作为持家基因的G3PDH的 结果比较来进行校正。
正向引物：TGTGGTTTGGCTGTGATGTT(序列号1)
反向引物：GCACCATCCTGATCATCCTT(序列号2)
将上述定量PCR的结果示于图10。如图10所示，与80%汇合的角质 形成细胞即未分化的角质形成细胞相比，博来霉素水解酶在达到汇合即分 化后的角质形成细胞中高表达。换言之，由本实验结果可知，该酶在分化 前的基底细胞中不太表达。该定量PCR的结果证实了上述组织染色的结 果。
实验5
1)使用了人表皮角质形成细胞的BH启动子的萤光素酶检测：
在增殖期(约80%汇合)或分化后(汇合后，曝露于空气，添加2mM钙， 然后继续培养2天得到的)的角质形成细胞中加入裂解液(200μl，使细胞溶 解。测定中使用了Bright-Glo Luciferase assay System(Promega Co., Madison,WI,USA)。将样品20μl移至规定的管中，使用Auto Lumat Plus (LB953)8Berthhold GmbH & Co.KG.Bad Wildbad Germany)进行测定。 由图12的结果可知，为了博来霉素水解酶表达，上述转录调控区只要具有 从该酶的编码序列到至少216bp下游的区即可。
2)对NHEK的UV照射:
照射30mJ或60mJ的UVB(Torex Fl20S-E-30/DMR,20W,Toshiba Medical Supply)，在3小时后、24小时后、48小时后用规定的方法回收 RNA，通过定量PCR来测定博来霉素水解酶和钙蛋白酶的mRNA表达。 测定的结果是，30mJ照射后48小时回收的样品最高表达博来霉素水解酶 的mRNA(图13)。
3)细胞因子对博来霉素表达的影响
将IL-4(终浓度：0.1、1.0、10ng/ml)、TNFα(终浓度：0.1、1.0、10ng/ml)、 IFNγ(终浓度：1.0,10,100ng/ml)分别添加至增殖期的培养角质形成细胞 中，孵育24小时后，使用Isogen采集RNA。通过定量PCR来测定博来 霉素水解酶的mRNA表达。将结果示于图14。由图14的结果可知，作为 Th2细胞因子的一种的白介素-4(IL-4)对博来霉素水解酶的表达进行减量 调节。
实验6
人BH基因的特性确定
1)BH的5’-旁侧区的克隆化
基于人BH基因的核苷酸序列，使用基因特异性引物1(GSP1) 5’-tccctcgagtctgtatcagagcagctaca-3’(序列号3)和基因特异性引物2(GSP2) 5’-tgaacacgcgtccgagctgctcatggcg-3’(序列号4)，按照制造商的操作说明书使 用Genome Walker Kit(Clontech，Mountain View,CA)对5’-旁侧区扩增。 简而言之，在5%的二甲亚砜的存在下，使用Ex Taq DNA聚合酶(Takara， Shiga,Japan)，使用制造商推荐的两步PCR方案：将94℃25秒、然后 72℃4分钟进行7个循环，接着将94℃25秒、然后67℃4分钟进行32 个循环，接着最后的延伸67℃4分钟，使用GSP1和接头引物(AP)1进行 一次PCR。接下来，将一次PCR混合物进行稀释，然后作为使用了GSP2 和AP2的二次PCR扩增的模板来使用。代替7个循环而使用5个循环的 初次循环，接着代替32个循环而使用20个循环，除此以外，二次PCR与 一次PCR相同。通过使用图15所列举的引物的PCR来产出BH的5’-旁 侧区的连续5’-缺失突变株。扩增后，将全部PCR产物克隆化到pGEM-T 简易载体(Promega，Madison,WI)内，然后使用ABI Prism 310Genetic Analyzer(Applied Biosystems，Foster City,CA)进行序列确定。
为了构建报告质粒pGL3-1216/+1，在以下条件下进行PCR：最初的 变性94℃4分钟、将94℃30秒、60℃1分钟、72℃1分钟进行30个循 环，接着最后延伸72℃4分钟，使用作为模板的pGEM-T-1216/+1以及 包含限制位点Kpn I和Mlu I的1组特异性BH引物 (5’-ccgggtaccatcagagttccttagaa-3’(序列号5)和 5’-taaatacgcgttggcgcccacgctgccg-3’)(序列号6)。将所得的PCR产物用Kpn I和Mlu I消化，然后克隆化到pGL3-Basic载体(Promega)内。另外， pGL3-Basic载体包含萤火虫萤光素酶基因。通过使用QIAGEN Plasmid Midi Kit(QIAGEN，Duesseldorf，Germany)来调制全部构建物。
2)定点诱变
按照制造商的操作说明书，使用Quick change site-directed mutagenesis Kit(Stratagene，La Jolla,CA)来实施MZF-1、Sp-1和IRF-1/2 结合部位的突变诱导。为了对Sp-1制作缺失变异，使用 5’-ggaccccgtttcagcctccccgcc-3’(序列号7)(突变体Sp-1位点的正向引物)和 5’-ggcggggaggctgaaacggggtcc-3’(序列号8)(突变体Sp-1位点的反向引物)。 关于MZF-1突变体，使用5’-gactcagcaacgcggttttgtccctccgc-3’(序列号9)(突 变体MZF-1位点的正向引物)和5’-gcggagggacaaaaccgcgttgctgagtca-3’(序 列号10)(突变体MZF-1位点的反向引物)。关于IRF-1/2突变体，使用 5’-gccgccgagcctccggcgctcc-3’(序列号11)(突变体IRF-1/2位点的正向引物) 和5’-ggagcgccggaggctcggcggc-3’(序列号12)(IRF-1/2位点的反向引物)。
3)转染和启动子活性的计测
将角质形成细胞以5×104细胞/孔的密度在12孔组织培养板内培养， 然后使用FuGene HD Transfection试剂(Roche Diagnostics，Basel, Switzerland)，使用各个构建物1μg进行转染。为了校正转染效率，在全部 细胞中同时转染包含处于HSV-TK启动子控制下的海肾(Renilla)萤光素酶 基因的pGL4.74[hRluc-TK]载体(Promega)。只要没有特别的限制，则在转 染24小时后收集细胞，然后每1孔使用250μl的Passive裂解液(Promega) 进行溶解。使用Dual Luciferase Reporter Assay System(Promega)和 Autolumat plus luminometer(Berthold Technologies，Bad Wildbad, Germany)分析萤光素酶活性。将海肾萤光素酶活性，对于萤火虫萤光素酶 活性进行标准化。关于各构建物，独立地实施3次转染，然后将结果作为 平均值来表示。
4)实时定量RT-PCR分析
通过实时定量RT-PCR来分析BH和相关因子的转录水平。按照制造 商的操作说明书使用ISOGEN(Nippon Gene，Tokyo,Japan)从培养细胞提 取总RNA。使用SuperScript(商标)II(Invitrogen，Carlsbad,CA)反转录成 cDNA。按照制造商的操作说明书使用LightCycler 480SYBR Green I Master(Roche Diagnostics)通过LightCycler raid cycler系统来进行实时 RT-PCR。关于所使用的引物的信息示于图16。使用甘油醛-3-磷酸脱氢酶 (GAPDH)作为基准基因。通过由LightCycler分析软件得到的融解曲线的 定量分析确认了扩增后的片段的特异性。将mRNA的量相对于GAPDH的 mRNA进行标准化，然后最终作为相对于未处理对照的mRNA的比来显 示。
5)IRF-1和-2的基于siRNA的抑制
按照制造商的操作说明书，使用40nM的siIRF-1、siIRF-2和siControl A(Santa Cruz Biotechnology，Santa Cruz,CA)以及Lipofectamine RNAi Max(Invitrogen，Carlsbad,CA)来转染培养角质形成细胞。将该细胞在不 含抗生素的培养基中培养24小时，然后，提取总RNA，并且如上所述， 通过实时RT-PCR进行分析。
6)电泳迁移率变动分析(EMSA)
通过将单链生物素化寡核苷酸和单链未标记寡核苷酸进行退火来调制 双链寡核苷酸探针(图17)。通过使用Nuclear Extraction Kit和EMSA gel shift Kit(Panomics，Santa Clara,CA)来进行核的提取和EMSA。将核提取 物(4μg)与1×结合缓冲液和1μg多聚d(I-C)、以及与MZF-1、Sp-1、IRF-1/2 和GATA-1结合部位对应的生物素化探针(50pmol)一起在15℃孵育30分 钟。为了进行竞争分析，将2倍过量的未标记探针在添加生物素化探针前 加入至结合反应。接下来将这些孵育混合物与0.5×TBE缓冲液一起在8% 的聚丙烯酰胺凝胶中进行电泳，然后转印至Biodyne B尼龙膜(Pall，Port Washington,NY)。通过使用EMSA gel shift Kit中的化学发光检测试剂将 带可视化。
7)结果
人BH基因启动子的分离和特性确定
通过采用Genome Net MOTIF程序进行的检索，明确了人BH的5’- 旁侧区内的多数推定转录因子结合部位(图18A)。特别是，在靠近转录起 始位点的位置的-216/＋1区中，存在与被MZF1、Sp-1、IRF-1/2和 GATA-1/2识别的共有序列高度一致的序列，因此启示这些转录因子与BH 启动子活性的调节有关。为了更严密地确定BH的启动子区，进行了缺失 分析(图18B)。在用pGL3-816进行了转染的分化型角质形成细胞中检测到 了最高水平的萤光素酶活性。然而，缺失质粒的相对萤光素酶活性高地残 留直到缺失进入pGL3-216为止。在构建体中，包含(表示成pGL3-444)片 段-444/+1的质粒在培养角质形成细胞中显示显著低的活性，启示 -616/-444区中的上游抑制基因活性的存在。这些结果证实了-216/-1区包含 用于BH基因转录的最小启动子，因此将其核苷酸序列示于图18C。该序 列未包含TATA-盒或CCAAT-盒，因此启示该基因的持家性质。另一方面， 若干转录性因子结合部位，例如MZF-1、Sp-1、IRF-1/2和GATA-1/2等 存在于该核心启动子区。
参与BH基因调节的潜在性顺式元件的鉴定
为了确定参与BH基因表达的转录调节的最小启动子的潜在性顺式元 件，构建了以各顺式元件作为靶标的新的一系列缺失突变株。在MZF-1、 Sp-1和IRF-1/2的结合部位缺失的情况下，启动子活性被大幅减量调节(图 19A)。
此外，调查了这些转录因子是否分别可以与推定结合部位实际结合。 因此，使用包含来自培养角质形成细胞的核提取物以及MZF-1、Sp-1、 GATA-1或IRF-1/2结合部位的生物素化双链寡核苷酸探针来进行电泳迁 移率变动分析(EMSA)。如图19B所示，Sp-1、MZF-1和IRF1/2与BH启 动子的对应的靶标部位结合，但GATA-1/2不结合。这些结果显示出-216～ -105bp的启动子区的这些结合部位在用于BH转录的顺式元件中是不可缺 少的。
BH基因表达的细胞因子介导的调节
BH是NMF产生酶，因此也可能参与AD的病态生理。因此，调查了 Th1、Th2和Th17细胞因子对BH基因表达的效果。图20A显示，在增殖 型角质形成细胞中，作为Th1细胞因子的IFN-γ以用量依赖方式对BH mRNA表达进行减量调节。另一方面，Th2和Th17细胞因子对BH的表 达完全不显示显著的效果。由分化型角质形成细胞得到同样的结果(数据未 登载)。为了阐明IFN-γ在BH基因表达的调节中的作用，进行启动子分析， 特定细胞因子应答要素。如图20B所示，用在-131～-120之间包含IRF-1/2 结合序列的pGL3-BH-616转染后的培养角质形成细胞中，IFN-γ对BH启 动子活性进行减量调节。该序列缺失后，IFN-γ也不再抑制启动子活性(图 20B)。此外，为了判断IRF-1/2是否是BH的IFN-γ诱导性减量调节的必 须介质，使用小干扰RNA(siRNA)来抑制IRF-1和IRF-2基因表达。IFN-γ 的活性在用IRF-1或IRF-2的siRNA(40nM)的任一者转染后的培养角质形 成细胞中显著地被抑制(图20C)。这些结果强烈启示，IRF-1/2结合序列对 于BH基因表达的IFN-γ诱导性减量调节是不可缺少的。
培养角质形成细胞中的BH和相关因子的表达
为了调查表皮中的转录调节的机制，通过实时PCR法来分析增殖型或 分化型细胞中的BH、钙蛋白酶I和推定转录因子的表达。如图21A所示， 与例如增殖型角质形成细胞相比，如集密期的2天后(3.6倍)和以高钙浓度 培养后(8.6倍)等那样，BH mRNA在分化型角质形成细胞中被增量调节。 这些结果与启动子分析数据一致(图18B)。关于钙蛋白酶I(约2.5倍的增量 调节)也得到同样的结果。此外，在培养角质形成细胞中，研究了各种转录 因子例如MZF-1、Sp-1、GATA-1、IRF-1和IRF-2等的表达谱。如图21B 所示，这些转录因子沿着BH的表达而在分化型角质形成细胞中被增量调 节。然而，GATA-1mRNA表达与其它因子相比显著低(＜1/32)。可以认 为GATA-1在角质形成细胞中并未承担重要的作用。因此启示BH介由 MZF-1和Sp-1以分化依赖方式被合成。IRF-1和IRF-2还通过分化刺激 被增量调节的事实，显示出BH表达对IFN-γ为非常敏感性。
Th1和Th2细胞因子对推定转录因子的表达的效果
对于这些转录因子的细胞因子依赖性调节进一步进行调查。图22A显 示IFN-γ以用量依赖式对IRF-1mRNA表达进行强烈的增量调节。同样地， IRF-2表达在IFN-γ的存在下被增量调节。对比之下，IRF-1和IRF-2的 表达仅在100ng/ml的IL-4存在下被显著增强(图22B)。有趣的是，MZF-1 和Sp-1都在10ng/ml的IL-4存在下最有效地被减量调节(图22C)。这些结 果启示，BH表达分别直接和间接地通过Th1和Th2细胞因子被调节。
特应性皮炎皮肤中BH被减量调节
FLG的功能丧失型突变与AD的发病机制相关，但可能不仅基因缺损， 而且分解途径的障碍也与AD的病理相关。因此，接下来研究AD患者的 病变皮肤和非病变皮肤中的BH和丝聚蛋白的局部存在以及BH活性。对 于正常表皮，用抗BH抗体和抗丝聚蛋白抗体的双重染色显示，在上面表 皮中BH和丝聚蛋白的同时局部存在，特别是如先前所报告地那样，在颗 粒层中BH和丝聚蛋白的同时局部存在(图23A)。在更高的倍率下明确显 示，BH从颗粒层至角化层局部存在，另一方面，丝聚蛋白被限定在颗粒 细胞中。对比之下，BH表达在该研究中诊察的AD患者(n＝7)的病变皮肤 和非病变皮肤中急剧减少。虽然全部这些患者通常检测到显著染色，但是 显示比较弱的丝聚蛋白染色(图23A)。除了免疫组织化学以外，在来自由 18个AD患者和30个健康志愿者得到的胶带剥离样品的角质细胞提取物 中计测BH活性。来自AD患者的病变皮肤和非病变皮肤的提取物与来自 健常人的相比，显示(分别低至27.1和8.8%)实质上低的BH活性(图23B)。 这些结果证实，BH与丝聚蛋白同时被局部存在化，而且其活性在患有AD 的患者的皮肤中急剧被降低。
考察
该研究中，通过启动子区的克隆化和功能的特征化研究了BH基因表 达的调节机制。启动子分析中，在-216bp上游中鉴定出对BH启动子活性 而言重要的区(图18B)。该区中，推定MZF-1和Sp-1结合部位对BH启动 子活性显示显著的效果(图18C和19A)。有趣的是，报告了Sp-1和MZF-1 也参与作为对于丝聚蛋白分解的开始而言重要的酶的PAD1的调节。Sp-1 为在哺乳动物细胞中作为转录因子起作用的锌指蛋白质Sp/Kruppel样家 族的典型成员。认为参与包含增殖、凋亡、分化和肿瘤性转化的细胞功能 的几乎全部方面。在人表皮中，Sp-1是包含套膜蛋白(involucrin)、兜甲蛋 白(loricrin)、谷氨酰胺转胺酶、PAD1、2和3的基因在内的参加表皮分化 的基因的重要调节因子。MZF-1是属于锌指蛋白质Krupple家族的转录因 子，在分化全能性造血性细胞以及骨髓祖细胞中被表达。然而，并未报告 在哺乳动物表皮中的转录调节中的MZF-1的功能。与增殖型角质形成细胞 相比，发现在分化型角质形成细胞中使MZF-1和Sp-1以及BH同时增量 调节(图21B)，与持家的作用相比，更加显示分化中的BH的作用。我们的 结果明确显示，这些转录因子作为用于角质形成细胞最终分化中的BH的 基本转录调节的活化因子起作用。
另一方面，顺式作用元件的调查进一步规定了该区内的IRF-1/2结合 部位。使用EMSA，确认了IRFs对BH启动子区的直接结合(图19B)。该 结合序列的定点诱变导致BH启动子活性的显著减少(图19A)。因此， IRF-1/2转录因子在基本条件下对于BH基因的最小启动子活性也是必要 的。IRF家族是转录因子的群，迄今为止，9个IRF成员(IRF-1～-9)在各 种细胞型和组织中被鉴定。这些IRF分子在由IFN-α、IFN-β和IFN-γ的 刺激下在抗病毒防御、免疫应答/调节和细胞生长调节中发挥作用。IRF-1 和IRF-2显示作为参与大量IFN-γ诱导性基因的调节的激动剂-拮抗剂对起 作用。有趣的是，IFN-γ显著地抑制BH mRNA表达(图20A和B)。在敲 低(knock down)和定点诱变分析中，确认了IRF-1/2结合部位参与BH表 达的IFN-γ介导的抑制(图20B和C)。这些结果明确显示出，IRF-1/2为人 角质形成细胞中的BH基因的IFN-γ介导的减量调节的介质。另一方面， 作为Th2细胞因子的IL-4和IL-13在24小时孵育期间完全不显示直接作 用(图20A)。然而，这些Th2细胞因子显著地抑制了作为激活分子的MZF-1 和Sp-1的表达。因此，Th2细胞因子负调节BH表达是妥当的。
此外，也显示BH在病变和非病变AD皮肤中急剧地被减量调节(图23A 和B)。丝聚蛋白突变是AD等的屏障障碍相关疾病的主要危险因子，但在 突变分析中，被指出爱尔兰的发生比例低于50%，此外日本的仅占～20% 的比例。假定了不仅丝聚蛋白合成不全，而且丝聚蛋白的分解伤害参与屏 障功能的崩溃。明确的是，NMF的减少导致干燥肌肤，这会促进屏障的崩 溃。公知AD为Th2极性化疾病。然而，最近的报告启示，Th1细胞因子 也在AD中承担作用。例如，“内源性AD”的免疫学特征在于IL-4、IL-5 和IL-13的低表达以及IFN-γ的高表达。此外，从Th1向Th2的移动在 AD皮肤中从急性相向慢性相之间发生。我们的结果显示出，在AD中， IFN-γ可能承担比预想更重要的作用。
作为结论，我们的结果显示出，人表皮中的BH转录以双重方式被调 节。一个途径处于角质形成细胞最终分化的控制下，而另一途径依赖于Th1 和Th2细胞因子。这些途径相互相关，因此平衡向着BH表达的减量调节 容易地移动。BH的降低导致NMF的不足，由此引起干燥肌肤，或者进而 引起屏障的崩溃。这些结果对BH调节和AD的发病机制提供了新的见解。