一种人原代角质细胞分离制备的方法.pdf

上传人:南*** 文档编号:8844800 上传时间:2021-01-07 格式:PDF 页数:5 大小:492.16KB
返回 下载 相关 举报
摘要
申请专利号:

CN201410321577.2

申请日:

20140704

公开号:

CN105219697A

公开日:

20160106

当前法律状态:

有效性:

审查中

法律详情:

IPC分类号:

C12N5/071

主分类号:

C12N5/071

申请人:

赫柏慧康生物科技无锡有限公司

发明人:

刘洪,李琳,杨熙

地址:

214000 江苏省无锡市滨湖区马山梅梁路138号-1

优先权:

CN201410321577A

专利代理机构:

北京联瑞联丰知识产权代理事务所(普通合伙)

代理人:

曾少丽

PDF下载: PDF下载
内容摘要

本发明公开了一种人原代角质细胞分离制备的方法,其包括以下步骤:(1)原代角质细胞分离;(2)原代角质细胞培养;(3)原代角质细胞冻存;(4)原代角质细胞活性检测。本发明提供的角质细胞分离制备的方法,采用DKSFM成分限定的无血清角质细胞专用培养体系,不含牛血清成分及滋养层细胞,避免了非人源活性蛋白及其它生物成分的引入,使下游研究体系更单一;直接冻存原代细胞,复苏后细胞具有更高的存活率,同时由于采用成分限定的无血清角质细胞专用培养基,减少了促进细胞分化的因子含量,有利于角质细胞体外培养周期的延长,表现出更多的倍增次数,使下游研究体系更稳定。

权利要求书

1.一种人原代角质细胞分离制备的方法,其特征在于,包括以下步骤:(1)原代角质细胞分离:取新鲜皮肤样本经乙醇消毒,去除皮肤表面微生物的污染,之后用磷酸盐缓冲液清洗若干次,去除样本上的残余乙醇,将样本切割成直径为2mm的微小颗粒;用35~45mL酶活为150-300U/mL的胶原蛋白酶处理所得微小颗粒,4℃过夜放置;过滤收集含角质细胞的表皮组织,并放入胰酶-EDTA中35~40℃处理1-3小时,分离角质细胞;在转速为1800rpm下离心收集细胞沉淀;用40mLDMEM细胞培养基洗涤细胞2次;收集到的皮肤细胞用角质细胞专用培养液DKSFM重悬,使用血细胞计数仪对细胞数量及活性进行计算;调整为5×10cells/cm后接种在直径为100mm细胞培养皿上;(2)原代角质细胞培养:接种后第2天,倒置显微镜下观察细胞贴壁生长状态,记录生长状态;细胞接种后每天更换新鲜DKSFM培养基;细胞接种后每天观察记录细胞贴壁生长情况;(3)原代角质细胞冻存:细胞接种培养3-7天后达到60-90%的汇合度,弃去培养基,用磷酸盐缓冲液清洗数遍;用5mLTrypLE处理细胞,在37℃,5-10分钟;显微镜下观察细胞收缩情况,待所有细胞变圆后加入10mLDKSFM,轻微吹打使细胞分散成悬液,取出100ul细胞进行细胞计数,在1800rpm下离心收集细胞沉淀;90%DKSFM+10%DMSO配置细胞冻存液,根据细胞计数结果,按照1×10cells/mL添加细胞冻存液,重悬细胞,置入程序性降温盒,放入零下80℃超低温冰箱过夜冻存细胞;从上步冻存盒中取出细胞,放入液氮罐中长期保存,并记录保存批次及数量;(4)原代角质细胞活性检测:从同一批冻存的原代角质细胞中任意选取1管,37摄氏度水浴中迅速融化细胞,加入不含抗生素的DKSFM细胞培养液,取出100ul进行细胞数量和存活率的计算;细胞悬液1800rpm离心,收集细胞沉淀;DKSFM重悬细胞,使细胞均匀分散,接种细胞培养皿;之后在37℃下采用5%的CO培养;隔天更换培养基,至细胞汇合度达到40-60%时,改为每天更换培养基;每天用倒置显微镜观察细胞生长状态及有否细菌感染情况,并拍照记录;细胞汇合度达到60-90%时,传代细胞;细胞持续培养至完全分化,停止增殖时,根据最终细胞数量及复苏时起始细胞数量,计算倍增周期及次数。

说明书

技术领域

本发明涉及一种人原代角质细胞分离制备的方法。

背景技术

人角质细胞是组成人表皮的主要细胞,由于培养的表皮细胞膜片可以用于临 床移植治疗烧伤、白癜风等多种皮肤疾病,获得稳定高存活率的人表皮角质细胞 对于基础和临床研究都十分重要。目前普遍的角质细胞分离和培养体系大多会引 入非人源的成分,比如使用血清和滋养层细胞,大大带来安全风险。同时角质细 胞是一种非常容易终末分化的原代细胞,而作为研究对象,往往需要比较好的稳 定性和传代能力,这就需要对分离和培养体系进行改进。

发明内容

本发明要解决的技术问题是克服现有技术的缺陷,提供一种角质细胞分离制 备的方法。

为了解决上述技术问题,本发明提供了如下的技术方案:

本发明一种人原代角质细胞分离制备的方法,其包括以下步骤:

(1)原代角质细胞分离:取新鲜皮肤样本经乙醇消毒,去除皮肤表面微生 物的污染,之后用磷酸盐缓冲液清洗若干次,去除样本上的残余乙醇,将样本切 割成1.8~2.2mm直径的微小颗粒;用35~45mL酶活为150-300U/mL的胶原蛋 白酶处理所得微小颗粒,4℃过夜放置;过滤收集含角质细胞的表皮组织,并放 入胰酶-EDTA中35~40℃处理1-3小时,分离角质细胞;在转速为1800rpm下离 心收集细胞沉淀;用40mLDMEM细胞培养基洗涤细胞2次;收集到的皮肤细 胞用角质细胞专用培养液DKSFM重悬,使用血细胞计数仪对细胞数量及活性进 行计算;按照5×104cells/cm2接种在直径为100mm细胞培养皿;

(2)原代角质细胞培养:接种后第2天,倒置显微镜下观察细胞贴壁生长 状态,记录生长状态;细胞接种后每天更换新鲜培养基;细胞接种后每天观察记 录细胞贴壁生长情况;

(3)原代角质细胞冻存:细胞接种培养3-7天后达到60-90%的汇合度,弃 去培养基,用磷酸盐缓冲液清洗数遍;用5mLTrypLE处理细胞,在37℃,5-10 分钟;显微镜下观察细胞收缩情况,待所有细胞变圆后加入10mLDKSFM,轻 微吹打使细胞分散成悬液,取出100ul细胞进行细胞计数,在1800rpm下离心收 集细胞沉淀;90%DKSFM+10%DMSO配置细胞冻存液,根据细胞计数结果, 按照1×106cells/mL添加细胞冻存液,重悬细胞,置入程序性降温盒,放入零下 80℃超低温冰箱过夜冻存细胞;从上步冻存盒中取出细胞,放入液氮罐中长期保 存,并记录保存批次及数量;

(4)原代角质细胞活性检测:从同一批冻存的原代角质细胞中任意选取1 管,37摄氏度水浴中迅速融化细胞,加入不含抗生素的DKSFM细胞培养液, 取出100ul进行细胞数量和存活率的计算;细胞悬液1800rpm离心,收集细胞沉 淀;DKSFM重悬细胞,使细胞均匀分散,接种细胞培养皿;之后在37℃下采用 5%的CO2培养;隔天更换培养基,至细胞汇合度达到40-60%时,改为每天更换 培养基;每天用倒置显微镜观察细胞生长状态及有否细菌感染情况,并拍照记录; 细胞汇合度达到60-90%时,传代细胞;细胞持续培养至完全分化,停止增殖时, 根据最终细胞数量及复苏时起始细胞数量,计算倍增周期及次数。

本发明所达到的有益效果是:

(1)采用DKSFM(Definedkeratinocyte-SFM)成分限定的无血清角质细 胞专用培养体系,不含牛血清成分及滋养层细胞,避免了非人源活性蛋白及其它 生物成分的引入,使下游研究体系更单一;

(2)直接冻存原代细胞,复苏后细胞具有更高的存活率,可以高达75%以 上,同时由于采用成分限定的无血清角质细胞专用培养基,减少了促进细胞分化 的因子含量,有利于角质细胞体外培养周期的延长,表现出更多的倍增次数,大 于26次,使下游研究体系更稳定。

具体实施方式

以下对本发明的优选实施例进行说明,应当理解,此处所描述的优选实施例 仅用于说明和解释本发明,并不用于限定本发明。

本发明一种角质细胞分离制备的方法,其包括以下步骤:

(1)原代角质细胞分离:取新鲜包皮环切术后皮肤样本经乙醇消毒,去除 皮肤表面微生物的污染,之后用磷酸盐缓冲液清洗若干次,去除样本上的残余乙 醇,将样本切割成2mm直径的微小颗粒;用35~45mL酶活为150-300U/mL的 胶原蛋白酶处理所得微小颗粒,4℃过夜放置;过滤收集含角质细胞的表皮组织, 并放入胰酶-EDTA中35℃处理1小时,分离角质细胞;在转速为1800rpm下离 心收集细胞沉淀;用40mLDMEM(高糖)细胞培养基洗涤细胞2次;收集到的 皮肤细胞(含大量角质细胞,少量黑素细胞和成纤维细胞等)用角质细胞专用培 养液DKSFM(Gibco,ThermoFisher,USA)重悬,使用血细胞计数仪对细胞数 量及活性进行计算;按照5×104cells/cm2接种在直径为100mm细胞培养皿 (Corning,USA);

(2)原代角质细胞培养:接种后第2天起,在倒置显微镜下观察并记录细 胞贴壁生长状态;细胞接种后每天更换新鲜培养基;细胞接种后每天观察记录细 胞贴壁生长情况;

(3)原代角质细胞冻存:细胞接种培养3-7天后达到60%的汇合度,弃去 培养基,用磷酸盐缓冲液清洗数遍;用5mLTrypLE(Gibco,ThermoFisher,USA) 处理细胞,在37℃,5-10分钟;显微镜下观察细胞收缩情况,待所有细胞变圆 后加入10mLDKSFM,轻微吹打使细胞分散成悬液,取出100ul细胞进行细胞计 数,在1800rpm下离心收集细胞沉淀;90%DKSFM+10%DMSO配置细胞冻存 液,根据细胞计数结果,按照1X106cells/mL添加细胞冻存液,重悬细胞,置入 程序性降温盒,放入零下80℃超低温冰箱过夜冻存细胞;从上步冻存盒中取出 细胞,放入液氮罐中长期保存,并记录保存批次及数量;

(4)原代角质细胞活性检测:从同一批冻存的原代角质细胞中任意选取1 管,37摄氏度水浴中迅速融化细胞,加入不含抗生素的DKSFM细胞培养液, 取出100ul进行细胞数量和存活率的计算(活细胞/细胞总数);细胞悬液 1800rpm离心,收集细胞沉淀;DKSFM重悬细胞,使细胞均匀分散,接种细胞 培养皿;之后在37℃下采用5%的CO2培养;隔天更换培养基,至细胞汇合度达 到40-60%时,改为每天更换培养基;每天用倒置显微镜观察细胞生长状态及有 否细菌感染情况,并拍照记录;细胞汇合度达到60%时,传代细胞;细胞持续培 养至完全分化,停止增殖时,根据最终细胞数量及复苏时起始细胞数量,计算倍 增周期及次数。

最后应说明的是:以上所述仅为本发明的优选实施例而已,并不用于限制本 发明,尽管参照前述实施例对本发明进行了详细的说明,对于本领域的技术人员 来说,其依然可以对前述各实施例所记载的技术方案进行修改,或者对其中部分 技术特征进行等同替换。凡在本发明的精神和原则之内,所作的任何修改、等同 替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。

一种人原代角质细胞分离制备的方法.pdf_第1页
第1页 / 共5页
一种人原代角质细胞分离制备的方法.pdf_第2页
第2页 / 共5页
一种人原代角质细胞分离制备的方法.pdf_第3页
第3页 / 共5页
点击查看更多>>
资源描述

《一种人原代角质细胞分离制备的方法.pdf》由会员分享,可在线阅读,更多相关《一种人原代角质细胞分离制备的方法.pdf(5页珍藏版)》请在专利查询网上搜索。

本发明公开了一种人原代角质细胞分离制备的方法,其包括以下步骤:(1)原代角质细胞分离;(2)原代角质细胞培养;(3)原代角质细胞冻存;(4)原代角质细胞活性检测。本发明提供的角质细胞分离制备的方法,采用DKSFM成分限定的无血清角质细胞专用培养体系,不含牛血清成分及滋养层细胞,避免了非人源活性蛋白及其它生物成分的引入,使下游研究体系更单一;直接冻存原代细胞,复苏后细胞具有更高的存活率,同时由于采用。

展开阅读全文
相关资源
猜你喜欢
相关搜索

当前位置:首页 > 化学;冶金 > 生物化学;啤酒;烈性酒;果汁酒;醋;微生物学;酶学;突变或遗传工程


copyright@ 2017-2020 zhuanlichaxun.net网站版权所有
经营许可证编号:粤ICP备2021068784号-1