催化天麻素或红景天苷合成的糖基转移酶及编码该酶的基因及应用.pdf

本发明公开了一种催化天麻素或红景天苷合成的糖基转移酶及编码该酶的基因及应用，所述催化天麻素或红景天苷合成的糖基转移酶是用SEQ ID No：1所示。实验证明本发明的一种催化天麻素或红景天苷合成的糖基转移酶可以分别催化对羟基苄醇转化为天麻素，酪醇转化为红景天苷，能够显著提高天麻素、红景天苷的产量。

1.  一种催化天麻素或红景天苷合成的糖基转移酶，其特征是用SEQ ID No：1所示。

2.  编码权利要求1催化天麻素或红景天苷合成的糖基转移酶的基因，其特征是用SEQ ID No： 2所示。

3.  含有权利要求2基因的大肠杆菌。

4.  权利要求1的一种催化天麻素或红景天苷合成的糖基转移酶在催化合成天麻素或红景天苷 的应用。

催化天麻素或红景天苷合成的糖基转移酶及编码该酶的基因及应用
技术领域
本发明属于生物工程技术领域，具体地，涉及两种催化天麻素合成、红景天苷的糖基转 移酶及应用。
背景技术
天麻是兰科植物天麻(Gastrodia elata B1.)的茎块，为常用名贵中药。植物天麻生于疏 林下，林中空地、林缘，灌丛边缘，海拔400-3200米，已被世界自然保护联盟(IUCN)评 为易危物种，并被列入《濒危野生动植物物种国际贸易公约》(CITES)的附录Ⅱ中，同时也 被列入中国《国家重点保护野生植物名录(第二批)》中，为Ⅱ级保护植物。其根茎入药用以 治疗头晕目眩、肢体麻木、小儿惊风癫痫抽搐等症。另据研究表明，天麻还具有刺激神经系 统、健脑、延缓衰老、增强机体免疫力和预防骨质疏松等作用。天麻的主要药用活性成分是 天麻素及其苷元对羟基苄醇等。近年来，以天麻素作为主要原料生产的药剂和食品等产品种 类越来越多，其苷元对羟基苄醇是一种具有重要工业价值的酚类化合物，对羟基苄醇及其衍 生物是多种有机化合物的合成前体。人们对天麻素及其苷元对羟基苄醇的关注程度不断提高。 除天麻素和对羟基苄醇外，天麻植物中还含有其它一些化学物质，例如，对羟基苯甲醛。对 羟基苯甲醛主要用于医药工业和香料工业的重要中间体，目前工业生产主要有苯酚、对甲酚、 对硝基甲苯等原料路线。
天麻素(Gastrodin,GAS)具有以下特征：化学名称为4-(hydroxymethyl)phenyl  beta-D-glucopyranoside，分子式为C₁₃H₁₈O₇，分子量为286.1053，CAS号为62499-27-8，结 构式为其苷元对羟基苄醇(4-Hydroxybenzyl alcohol)具有以下特征：化学 名称为p-Hydroxybenzyl alcohol，分子式为C₇H₈O₂，分子量为124.0524，CAS号为623-05-2， 结构式为
目前，天麻素的生产主要是通过化学合成及对天麻植株进行萃取。化学合成法从前体开 始需要多步反应，且副产物多、反应专一性差，另外该过程中需要使用毒性较强的溴素、红 磷等物质造成了严重的三废问题；植株萃取法存在含量太低，资源浪费、成本高、破坏生态 环境等缺陷，比如西藏波密县仿野生种植天麻的天麻素含量在0.41-2.28g/kg，其平均含量为 0.88g/kg，而野生天麻的天麻素含量不到其四分之一。除化学合成和植株萃取外，微生物转化 及组织培养生产天麻素也是研究热点。
周俊等以对溴代2′,3′,4′,6′-四乙酰-α-D-吡喃葡萄糖及对羟基苯甲醛为原料，成功合成 了天麻苷。(周俊，杨雁宾，杨崇仁，天麻的化学研究Ⅱ-天麻苷及其类似物的合成，化学学 报，1980，38(2):162-166)。
戴晓畅等以溴代乙酰糖基化化合物中间体和酚性化合物为底物，探索出了一种无需红磷 和溴素合成天麻苷的方法，产率在20％左右。(戴晓畅，彭啸，吴松福，杨万松，毛宇，天麻 素及其类似酚性糖甙的化学合成工艺研究，催化学报，2004，13(2):83-85)。
朱宏莉等在38株霉菌和12株细菌中筛选出一株华根霉(Rhizopus chinensis Staito  AS3.1165)，具有将对羟基苯甲醛转化成天麻素的能力。转化过程中发挥主要作用的是糖基化 酶和还原酶；底物对羟基苯甲醛的转化率为87.6％，天麻素的得率为11％。(朱宏莉，宋纪蓉， 黄建新，张嘉，马震宇，杨明琰，微生物转化法合成天麻素，药学学报，2006，41(11):1074-1077)。
蔡洁等报道了在人参毛状根中进行天麻素的生物合成，在B₅液体培养基中培养22天 的人参毛状根，添加1M对羟基苄醇的生物转化，24h合成的天麻素含量占干重的6.65％，对 羟基苄醇的转化率达到84.8％。(蔡洁，家宜，华亚男，李楠，人参毛状根生物合成天麻素转 化体系的建立，植物资源与环境学报，2005，14(2)：29-31)。
红景天是生长在高寒无污染地带的珍稀野生植物，是我国藏族人民的习用药物，至今已 有1000多年的应用历史，具有刺激神经系统、增加工作效率、消除疲劳和预防高山症等作用。 除此之外，红景天还具有保护心脑血管，神经细胞以及抗肿瘤抗辐射等功能。红景天的主要 药用活性成分是红景天苷及其苷元酪醇。近年来，以红景天苷作为主要原料生产的药剂、饮 料、食品以及化妆品等产品种类越来越多，其苷元酪醇是一种具有重要工业价值的酚类化合 物，酪醇及其衍生物是多种有机化合物的合成前体。人们对红景天苷及其苷元酪醇的关注程 度不断提高。
红景天苷(Salidroside)具有以下特征：化学名称为 2-(4-hydroxyphenyl)ethyl-β-D-glucopyranoside，分子式为C₁₄H₂₀O₇，分子量为300.304，CAS 号为10338-51-9，结构式为其苷元酪醇(Tyrosol)具有以下特征：化学名 称为4-(2-Hydroxyethyl)phenol，分子式为C₈H₁₀O₂，分子量为138.164，CAS号为501-94-0， 结构式为
目前，红景天苷的生产主要是对红景天植株进行化学提取。野生红景天生长条件恶劣， 植被资源稀有，而且红景天苷的量很低，如现在最常用的高山红景天和大花红景天，其植株 中红景天苷的量只有0.5％-0.8％。人工栽培的红景天成本高而有效成分量低，达不到市场要 求的标准。因而化学提取正面临严峻的现实。除化学提取外，化学合成、微生物转化及组织 培养生产红景天苷也是研究热点。
明海泉以酪醇和溴代四乙酰葡萄糖为原料，以Ag₂CO₃为催化剂，成功合成了红景天甙 (明海泉，红景天甙合成及药理作用，药学通讯，1986，21(6):373)。
王梦亮等以D-葡萄糖和酪醇为底物，探索出了一种借助于微生物合成红景天甙的方法 (王梦亮，张芳，刘滇生，微生物催化D-葡萄糖与酪醇葡糖基转移合成红景天甙的初步研究， 催化学报，2006，27(3):233-236)。
在采用组织培养方式进行红景天苷的生物合成方面，研究成果最为成熟的是Wu等用致 密愈伤组织体系进行的红景天苷高产出率培养条件的研究。从高山红景天的根、茎、叶、子 叶等分离体得到的相应的几种愈伤组织，并对其生长速度、红景天苷量和培养繁殖条件进行 筛选，确定了生成高产出率红景天苷的最佳条件，红景天苷最高收获率可达到干重57.72 mg/g，为野生植株的5～10倍(Wu S,Zu Y,Wu M High yield production of salidroside in the  suspension culture of Rhodiola sachalinensis.J Biotechnol,2003,106(1):331)。
化学合成天麻素工艺较为成熟，但是由于重金属催化剂的添加会对环境造成较大破坏； 而不需要红磷和溴素的化学合成方法，得率较低；化学合成红景天苷工艺过程长不易操作控 制，成本高，难以实现产业化；微生物转化天麻素、红景天苷效率较低，需要添加外源底物； 植物组织培养反应周期长，效价较低。至今还没有天麻素、红景天苷微生物从头合成的相关 报道。因此，实现天麻素、红景天苷的微生物体内生物全合成途径具有重要的科研价值及社 会效益。
发明内容
本发明的目的是克服现有技术的不足，提供一种催化天麻素或红景天苷合成的糖基转移 酶。
本发明的第二个目的是提供一种编码上述催化天麻素或红景天苷合成的糖基转移酶的基 因。
本发明的第三个目的是提供一种含有上述基因的大肠杆菌。
本发明的第四个目的是提供一种催化天麻素或红景天苷合成的糖基转移酶的应用。
本发明的技术方案概述如下：
一种催化天麻素或红景天苷合成的糖基转移酶，是用SEQ ID No：1所示。
编码上述催化天麻素或红景天苷合成的糖基转移酶的基因，是用SEQ ID No：2所示。
含有上述基因的大肠杆菌。
一种催化天麻素或红景天苷合成的糖基转移酶在催化合成天麻素或红景天苷的应用。
本发明的一种催化天麻素或红景天苷合成的糖基转移酶可以分别催化对羟基苄醇转化为 天麻素，酪醇转化为红景天苷，能够显著提高天麻素、红景天苷的产量。
附图说明
图1为菌株发酵产物以及对羟基苄醇或天麻素标准品的HPLC检测结果，其中，
1是对羟基苄醇和天麻素的标准品，
2是菌株BL21(DE3，pET28a)的发酵产物，
3是菌株BL21(DE3，pET28a-ugt73b6)的发酵产物，
4是菌株BL21(DE3，pET28a-ugt73b6^MK)的发酵产物的发酵产物，峰Ⅰ为对羟基苄醇， 峰Ⅱ为天麻素。
图2为菌株BL21(DE3，pET28a-ugt73b6^MK)发酵产物的对羟基苄醇(峰Ⅰ)，天麻素(峰 Ⅱ)的MS图谱。
图3为菌株发酵产物以及酪醇和红景天苷标准品的HPLC检测结果，其中，
1是酪醇和红景天苷的标准品，
2是菌株BL21(DE3，pET28a)的发酵产物，
3是菌株BL21(DE3，pET28a-ugt73b6)的发酵产物，
4是菌株BL21(DE3，pET28a-ugt73b6^MK)的发酵产物的发酵产物，峰Ⅰ为酪醇，峰Ⅱ为 红景天苷。
图4为菌株BL21(DE3，pET28a-ugt73b6^MK)发酵产物的酪醇(峰Ⅰ)、红景天苷(峰Ⅱ) 的MS图谱。
具体实施方式
以下结合附图和实施例对本发明作进一步的说明，应当理解的是，此处所描述的具体实 施方式仅用于说明和解释本发明，并不用于限制本发明。
本发明中，对表达载体的种类没有特殊要求，可以为能够在大肠杆菌中表达目的基因的 本领域常用的各种表达载体，例如质粒等。本领域技术人员应该理解的是，表达载体的构建 方法可以采用本领域常用的各种方法，如将目的基因经过酶切处理后连接至载体中，在此不 再赘述。
以下实施例中，大肠菌株BL21(DE3)和大肠杆菌DH5α均可市售获得，大肠菌株 BL21(DE3)用于本发明中所有基因的表达，大肠杆菌DH5α用于本发明中所有基因的克隆。
大肠杆菌表达载体pET28a，购自Novagen，货号69864。
下列实施例中未注明具体条件的试验方法，按照常规条件进行，例如《分子克隆：实验 室手册》中所述的条件，或按照相应生物学试剂的制造厂商所建议的条件。
实施例1
基因ugt73b6^MK及大肠杆菌表达载体pET28a-ugt73b6^MK获得(方(法：
对ugt73b6(SEQ ID No：3，该序列文献已报道，来源于植物库页红景天 Rhodiola sachalinensis)进行error-PCR随机突变，将得到的片段酶切连接到商业化载体pET28a 中，之后经定向进化筛选(Richard W.Gantt,Pauline Peltier-Pain,Shanteri Singh,Maoquan Zhou, and Jon S.Thorson,Broadening the scope of glycosyltransferase-catalyzed  sugar nucleotide synthesis,PNAS,2013,110(19):7648-7653；Gavin J.Williams,Randal D.Goff, Changsheng Zhang,and Jon S.Thorson,Optimizing glycosyltransferase specificity via‘hot spot’ saturation mutagenesis presents a new catalyst for novobiocin glycorandomization,Chem Biol. 2008,15(4):393-409)，获得含突变基因ugt73b6^MK的大肠杆菌表达载体pET28a-ugt73b6^MK。 具体的糖基转移酶ugt73b6第264位甲硫氨酸突变为赖氨酸，得到催化天麻素或红景天苷合 成的糖基转移酶的氨基酸序列为SEQ ID No：1，相应的碱基由atg突变为aag，其核苷酸序 列为SEQ ID No：2(该序列的最后3个核苷酸为终止密码子)。
在上述步骤中，errorPCR扩增反应的反应程序可以为常规的PCR扩增反应程序，例如可 以为：94-95℃预变性4-5分钟；96-98℃变性20-30秒，55-60℃退火30-60秒，72℃延伸30-120 秒，28-32个循环；72℃延伸8-10分钟。优选为：95℃预变性5分钟；98℃变性20秒，56℃ 退火45秒，72℃延伸2分钟，30个循环；72℃延伸5分钟。
对用于构建大肠杆菌表达菌株的大肠杆菌的种类没有特殊要求，可以为能够表达目的基 因的本领域常用的各种大肠杆菌，例如，大肠杆菌可以为MG1655或BL21(DE3)。为了使目 的基因能够得到更好的表达，所述大肠杆菌优选为BL21(DE3)。
实施例2
含有用SEQ ID No：2所示的催化天麻素或红景天苷合成的糖基转移酶的基因的大肠杆菌 的构建
将质粒pET28a-ugt73b6^MK用化学转化的方法转入大肠杆菌菌株BL21(DE3)：
取100μL感受态大肠杆菌菌株BL21(DE3)细胞于冰上，10分钟后加入2μL质粒 pET28a-ugt73b6^MK，轻轻混匀，冰上放置30分钟后，42℃热激90秒，取出立即于冰上放置2 分钟，加入600μL LB液体培养基，37℃，150rpm摇床复苏培养30分钟，然后将菌液涂布 在含卡那霉素的LB平板上。利用卡那霉素抗性筛选携带表达载体的转化菌株BL21(DE3, pET28a-ugt73b6^MK)，并通过提取质粒进行酶切验证，得到含有用SEQ ID No：2所示的催化 天麻素或红景天苷合成的糖基转移酶的基因的大肠杆菌株BL21(DE3,pET28a-ugt73b6^MK)。
实施例3
菌株BL21(DE3,pET28a-ugt73b6^MK)的发酵培养
将菌株BL21(DE3,pET28a-ugt73b6^MK)在2mL加入有50mg/L卡那霉素的LB液体培养 基中，37℃培养12小时，得到种子液。
然后将种子液按1体积％的转接量(0.5mL)分别转接入50mL加入有50mg/L卡那霉 素及2mM对羟基苄醇的M9Y(M9基本培养基+0.025％yeast extract)液体培养基中，37℃ 培养，当OD₆₀₀约为0.6时加入终浓度为0.1mM的IPTG(异丙基-β-D-硫代吡喃半乳糖苷) 进行诱导，30℃继续培养48个小时。得到表达有天麻素的菌株BL21(DE3,pET28a-ugt73b6^MK) 发酵液。
实施例4
菌株BL21(DE3,pET28a-ugt73b6^MK)的发酵培养
将菌株BL21(DE3,pET28a-ugt73b6^MK)在2mL加入有50mg/L卡那霉素的LB液体培养 基中，37℃培养12小时，得到种子液。
然后将种子液按1体积％的转接量(0.5mL)分别转接入50mL加入有50mg/L卡那霉 素及2mM酪醇的M9Y(M9基本培养基+0.025％yeast extract)液体培养基中，37℃培养， 当OD₆₀₀约为0.6时加入终浓度为0.1mM的IPTG(异丙基-β-D-硫代吡喃半乳糖苷)进行诱 导，30℃继续培养48个小时。得到表达有红景天苷的菌株BL21(DE3,pET28a-ugt73b6^MK)发 酵液。
对比例1
大肠杆菌表达菌株BL21(DE3,pET28a)的发酵培养
将质粒pET28a用化学转化的方法转入大肠杆菌菌株BL21(DE3)，得到菌株BL21(DE3, pET28a)。
将菌株BL21(DE3,pET28a)分别在2mL加入有50mg/L卡那霉素的LB液体培养基中， 37℃培养12小时，得到种子液。
然后将种子液按1体积％的转接量(0.5mL)分别转接入50mL加入有50mg/L卡那霉 素及2mM对羟基苄醇的M9Y液体培养基中，37℃培养，当OD₆₀₀约为0.6时加入终浓度为 0.1mM的IPTG进行诱导，30℃继续培养48个小时。得到菌株BL21(DE3,pET28a)发酵液。
对比例2
大肠杆菌表达菌株BL21(DE3,pET28a)的发酵培养
将质粒pET28a用化学转化的方法转入大肠杆菌菌株BL21(DE3)，得到菌株BL21(DE3, pET28a)。
将菌株BL21(DE3,pET28a)分别在2mL加入有50mg/L卡那霉素的LB液体培养基中， 37℃培养12小时，得到种子液。
然后将种子液按1体积％的转接量(0.5mL)分别转接入50mL加入有50mg/L卡那霉 素及2mM酪醇的M9Y液体培养基中，37℃培养，当OD₆₀₀约为0.6时加入终浓度为0.1mM 的IPTG进行诱导，30℃继续培养48个小时。得到菌株BL21(DE3,pET28a)发酵液。
对比例3
大肠杆菌表达菌株BL21(DE3,pET28a-ugt73b6)的发酵培养
将ugt73b6(SEQ ID No：3)连接到商业化载体pET28a中，将质粒pET28a-ugt73b6用化 学转化的方法转入大肠杆菌菌株BL21(DE3)，得到菌株BL21(DE3,pET28a-ugt73b6)。
将菌株BL21(DE3,pET28a-ugt73b6)分别在2mL加入有50mg/L卡那霉素的LB液体培 养基中，37℃培养12小时，得到种子液。
然后将种子液按1体积％的转接量(0.5mL)分别转接入50mL加入有50mg/L卡那霉 素及2mM对羟基苄醇的M9Y液体培养基中，37℃培养，当OD₆₀₀约为0.6时加入终浓度为 0.1mM的IPTG进行诱导，30℃继续培养48个小时。得到菌株BL21(DE3,pET28a-ugt73b6) 发酵液。
对比例4
大肠杆菌表达菌株BL21(DE3,pET28a-ugt73b6)的发酵培养
将ugt73b6(SEQ ID No：3)连接到商业化载体pET28a中，将质粒pET28a-ugt73b6用化 学转化的方法转入大肠杆菌菌株BL21(DE3)，得到菌株BL21(DE3,pET28a-ugt73b6)。
将菌株BL21(DE3,pET28a-ugt73b6)分别在2mL加入有50mg/L卡那霉素的LB液体培 养基中，37℃培养12小时，得到种子液。
然后将种子液按1体积％的转接量(0.5mL)分别转接入50mL加入有50mg/L卡那霉 素及2mM酪醇的M9Y液体培养基中，37℃培养，当OD₆₀₀约为0.6时加入终浓度为0.1mM 的IPTG进行诱导，30℃继续培养48个小时。得到菌株BL21(DE3,pET28a-ugt73b6)发酵液。
测试例1
对羟基苄醇和天麻素的检测
(1)产物的HPLC检测：分别取实施例3、对比例1和对比例3获得的发酵液各1mL， 12000rpm离心10min后，取上清，进行HPLC分析检测。分析条件如下：仪器为：安捷伦 液相色谱仪，测定条件包括：C18柱(4.6×250mm)；检测波长224nm；流动相A＝水(含0.1％ 体积甲酸)，B＝甲醇；流速＝1mL/min；梯度洗脱条件：0–35min 10％体积B；进样量20μL。
标准品及发酵液的HPLC检测结果见图1。其中，
1是对羟基苄醇和天麻素的标准品，
2是菌株BL21(DE3,pET28a)发酵液，
3是菌株BL21(DE3,pET28a-ugt73b6)发酵液，
4是菌株BL21(DE3,pET28a-ugt73b6^MK)发酵液。
如图所示，菌株BL21(DE3,pET28a-ugt73b6)和BL21(DE3,pET28a-ugt73b6^MK)的发酵液 中在12min时均存在一个峰，与对羟基苄醇标准品(峰Ⅰ)的出峰时间一致；菌株BL21(DE3, pET28a-ugt73b6)和BL21(DE3,pET28a-ugt73b6^MK)的发酵产物除了前述对羟基苄醇峰，在6.5 min时均出现了一个新峰，与天麻素标准品(峰Ⅱ)的出峰时间一致。
(2)产物的LC-MS分析：对步骤(1)中各发酵液中看到的6.5min的新峰进行LC-MS 分析，其中，进行LC-MS分析的条件包括：C18柱(4.6×250mm)；检测波长224nm；流动 相A＝水(含0.1体积％甲酸)，B＝甲醇；流速＝1mL/min；洗脱条件：0–35min 10％体积B； 进样量20μL；ESI正离子源，分子量扫描范围50–800。菌株BL21(DE3,pET28a-ugt73b6^MK) 的LC-MS检测结果见图2。峰Ⅰ的MS图谱上有对羟基苄醇的MS特征峰107.0466。峰Ⅱ的 MS图谱上有天麻素的MS特征峰309.0954。
测试例2
酪醇和红景天苷的检测
(1)产物的HPLC检测：分别取实施例4、对比例2和对比例4获得的发酵液各1mL， 12000rpm离心10min后，取上清，进行HPLC分析检测。分析条件如下：仪器为：安捷伦 液相色谱仪，测定条件包括：C18柱(4.6×250mm)；检测波长224nm；流动相A＝水(含0.1％ 体积甲酸)，B＝甲醇；流速＝1mL/min；梯度洗脱条件：0–35min 10％体积B；进样量20μL。
标准品及发酵液的HPLC检测结果见图3。其中，
1是酪醇和红景天苷的标准品，
2是菌株BL21(DE3,pET28a)发酵液，
3是菌株BL21(DE3,pET28a-ugt73b6)发酵液，
4是菌株BL21(DE3,pET28a-ugt73b6^MK)发酵液。
如图所示，菌株BL21(DE3,pET28a-ugt73b6)和BL21(DE3,pET28a-ugt73b6^MK)的发酵液 中在12min时均存在一个峰，与酪醇标准品(峰Ⅰ)的出峰时间一致；菌株BL21(DE3, pET28a-ugt73b6)和BL21(DE3,pET28a-ugt73b6^MK)的发酵产物除了前述酪醇峰，在8min时均 出现了一个新峰，与红景天苷准品(峰Ⅱ)的出峰时间一致。
(2)产物的LC-MS分析：对步骤(1)中各发酵液中看到的9.5min的新峰进行LC-MS 分析，其中，进行LC-MS分析的条件包括：C18柱(4.6×250mm)；检测波长224nm；流动 相A＝水(含0.1体积％甲酸)，B＝甲醇；流速＝1mL/min；洗脱条件：0–35min 20％体积B； 进样量20μL；ESI正离子源，分子量扫描范围50–800。菌株BL21(DE3,pET28a-ugt73b6^MK) 的LC-MS检测结果见图4。峰Ⅰ的MS图谱上有酪醇的MS特征峰121.0672。峰Ⅱ的MS图 谱上有红景天苷的MS特征峰318.1534。
且经测定，菌株BL21(DE3,pET28a-ugt73b6^MK)发酵液中天麻素的产量为233mg/L或红 景天苷产量为114mg/L，而对比例野生型BL21(DE3,pET28a-ugt73b6)发酵液中天麻素的产量 为52mg/L或红景天苷产量为27mg/L。本发明中的突变体菌株BL21(DE3,pET28a-ugt73b6^MK) 对于对羟基苄醇的转化率是野生型菌株BL21(DE3,pET28a-ugt73b6)的4.5倍，对于酪醇的转 化率是野生型菌株BL21(DE3,pET28a-ugt73b6)的4.2倍，为天麻素或红景天苷的微生物异源 合成奠定了坚实基础。