狭鳕鱼皮活性寡肽及其合成方法和应用.pdf

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摘要
申请专利号:

CN201610327636.6

申请日:

20160517

公开号:

CN105906709A

公开日:

20160831

当前法律状态:

有效性:

审查中

法律详情:

IPC分类号:

C07K14/78,C07K1/06,C07K1/04,C07K1/16,A61K38/05,A61K38/06,A61P19/10,A61P19/02,A61P29/00

主分类号:

C07K14/78,C07K1/06,C07K1/04,C07K1/16,A61K38/05,A61K38/06,A61P19/10,A61P19/02,A61P29/00

申请人:

青岛海博瑞克生物科技有限公司

发明人:

王春波,苗德森,赵晨懿,韩彦弢,张德岩,高圣杰

地址:

266000 山东省青岛市市北区辽宁路247-263号2002室

优先权:

CN201610327636A

专利代理机构:

北京联瑞联丰知识产权代理事务所(普通合伙)

代理人:

郑自群

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内容摘要

本发明提出了狭鳕鱼皮活性寡肽及其合成方法和应用,所述寡肽的氨基酸序列为Pro‑Hyp或者Gly‑Pro‑Hyp,通过固相合成法合成上述多肽。该多肽能够制备成注射液或者口服液用于预防与治疗骨质疏松与关节炎。

权利要求书

1.一种狭鳕鱼皮活性寡肽,其特征在于,所述寡肽的氨基酸序列为Pro-Hyp或者Gly-Pro-Hyp。 2.一种权利要求1所述的狭鳕鱼皮活性寡肽在制备预防与治疗骨质疏松药物方面的应用。 3.根据权利要求2所述的狭鳕鱼皮活性寡肽在制备预防与治疗骨质疏松药物方面的应用,其特征在于,所述药物为注射液或者口服液。 4.一种权利要求1所述的狭鳕鱼皮活性寡肽在制备预防与治疗关节炎药物方面的应用。 5.根据权利要求4所述的狭鳕鱼皮活性寡肽在制备预防与治疗关节炎药物方面的应用,其特征在于,所述药物为注射液或者口服液。 6.如权利要求1所述的狭鳕鱼皮活性寡肽的合成方法,其特征在于,所述Pro-Hyp的合成采用固相合成法,包括以下步骤:1)树脂预处理:将Fmoc-Hyp(tBu)-Wang树脂在DCM中搅拌,使其充分溶胀;2)脱除Fmoc保护基:在溶胀的树脂中加入哌啶以及DMF混合溶液;3)连接子缩合:将等摩尔比的Fmoc-Pro-COOH、HBTU、HOBT、DIEA完全溶解于DMF中,混匀后加入步骤2)脱除Fmoc基团保护的树脂中进行反应;4)茚检:将步骤3)缩合反应结束后的溶剂抽干,用DMF洗涤,用茚三酮检验无色,按照步骤2)方法脱除Fmoc保护基,得到脱除保护的肽树脂;5)肽链从树脂上切割:用95wt%TFA水溶液酸化树脂,反应2-3小时,过滤得到滤液,向滤液中加入乙醚析出,得到多肽粗品。 7.根据权利要求6所述的狭鳕鱼皮活性寡肽的合成方法,其特征在于,所述步骤5)之后还包括对多肽粗品进行高效液相色谱进行纯化。 8.如权利要求1所述的狭鳕鱼皮活性寡肽的合成方法,其特征在于,所述Gly-Pro-Hyp的合成采用固相合成法,包括以下步骤:1)树脂预处理:将Fmoc-Hyp(tBu)-Wang树脂在DCM中搅拌,使其充分溶胀;2)脱除Fmoc保护基:在溶胀的树脂中加入哌啶以及DMF混合溶液;3)连接子Pro缩合:将等摩尔比的Fmoc-Pro-COOH、HBTU、HOBT、DIEA完全溶解于DMF中,混匀后加入步骤2)脱除Fmoc基团保护的树脂中进行反应;4)第一次茚检:将步骤3)缩合反应结束后的溶剂抽干,用DMF洗涤,用茚三酮检验无色,按照步骤2)方法脱除Fmoc保护基,得到脱除保护的Pro-Hyp肽树脂;5)连接子Gly缩合:将等摩尔比的Fmoc-Gly-COOH、HBTU、HOBT、DIEA完全溶解于DMF中,混匀后加入步骤4)脱除保护的Pro-Hyp肽树脂中进行反应;6)第二次茚检:将步骤5)缩合反应结束后的溶剂抽干,用DMF洗涤,用茚三酮检验无色,按照步骤2)方法脱除Fmoc保护基,得到脱除保护的Gly-Pro-Hyp肽树脂;7)肽链从树脂上切割:用95wt%TFA水溶液酸化步骤6)的肽树脂,反应2-3小时,过滤得到滤液,向滤液中加入乙醚析出,得到多肽粗品。 9.根据权利要求8所述的狭鳕鱼皮活性寡肽的合成方法,其特征在于,所述步骤7)之后还包括对多肽粗品进行高效液相色谱进行纯化。 10.如权利要求1所述的狭鳕鱼皮活性寡肽的分离方法,其特征在于,所述Pro-Hyp与Gly-Pro-Hyp采用高效液相色谱梯度洗脱方法进行分离,具体条件如下:色谱柱:venusicASB-C18(250mm×4.6mm,5um),柱温:40℃,流动相A为0.1wt%三氟乙酸的乙腈溶液,流动相B为0.1wt%三氟乙酸的水溶液,流速:1.0ml/min;检测波长:220nm;梯度洗脱第一阶段的时间为0-20min,流动相A的比例为2%-22%,流动相B的比例为78%-98%;梯度洗脱第二阶段的时间为20.1-25min,流动相A的比例为100%;梯度洗脱第三阶段的时间为25.1-35min,流动相A的比例为2%,流动相B的比例为98%。

说明书

技术领域

本发明属于生物活性肽领域,具体涉及一种狭鳕鱼皮活性寡肽及其合成方法和应用。

背景技术

生物体的遗传基因被存储在多聚核苷酸链上,遗传基因编码着执行生物学功能的蛋白质。生物体内的蛋白质多种多样,它们行使着各种生物学功能维持生命活动。蛋白质的种类虽然多不胜举,但它们基本上都是由20个自然界存在的天然氨基酸组成。由于氨基酸的组成和排列顺序的差异导致了蛋白质的千差万别。一般来说,含有50个以上氨基酸的分子被称为蛋白质,般超过10个氨基酸的肽链被称为多肽,少于10个氨基酸的肽链被称做寡肽。目前发现最小的功能小肽只有2个氨基酸,通常较为常见的是4个以上的功能小肽。

随着我国海洋渔业的发展,水产品加工过程会产生大量的鱼皮、鱼骨、内脏等废弃物,狭鳕鱼是生活在北太平洋海域的一种低温型鱼类,我国狭鳕鱼年加工量约50万吨,因此会产生大量狭鳕鱼皮等废弃物,干鱼皮含70%胶原蛋白,胶原多肽是以胶原组织为原料。近年来,水产品胶原蛋白的研究成为国内外热点,但对狭鳕鱼胶原多肽的研究鲜有报道。樊洁等2013年在青岛大学医学院学报中公开了狭鳕鱼皮胶原多肽理化性质研究,其主要研究5种制备工艺获得的狭鳕鱼皮胶原多肽的理化性质。但是,对于狭鳕鱼皮多肽在预防治疗疾病等发明的研究未见报道,并且缺乏报道该类多肽的人工合成方法。

发明内容

为解决现有狭鳕鱼皮胶原多肽具体应用研究缺乏的问题,本发明提出一种狭鳕鱼皮活性寡肽,该活性寡肽不仅序列清楚,而且具有良好的医学功效。

本发明的技术方案是这样实现的:

一种狭鳕鱼皮活性寡肽,所述寡肽的氨基酸序列为Pro-Hyp或者Gly-Pro-Hyp。

本发明的另一个目的是提供一种狭鳕鱼皮活性寡肽在制备预防与治疗骨质疏松药物方面的应用。

进一步,所述药物为注射液或者口服液。

本发明的另一个目的是提供一种狭鳕鱼皮活性寡肽在制备预防与治疗关节炎药物方面的应用。

进一步,所述药物为注射液或者口服液。

狭鳕鱼皮活性寡肽的合成方法,所述Pro-Hyp的合成采用固相合成法,包括以下步骤:

1)树脂预处理:将Fmoc-Hyp(tBu)-Wang树脂在DCM中搅拌,使其充分溶胀;

2)脱除Fmoc保护基:在溶胀的树脂中加入哌啶以及DMF混合溶液;

3)连接子缩合:将等摩尔比的Fmoc-Pro-COOH、HBTU、HOBT、DIEA完全溶解于DMF中,混匀后加入步骤2)脱除Fmoc基团保护的树脂中进行反应;

4)茚检:将步骤3)缩合反应结束后的溶剂抽干,用DMF洗涤,用茚三酮检验无色,按照步骤2)方法脱除Fmoc保护基,得到脱除保护的肽树脂;

5)肽链从树脂上切割:用95wt%TFA水溶液酸化树脂,反应2-3小时,过滤得到滤液,向滤液中加入乙醚析出,得到多肽粗品。

进一步,所述步骤5)之后还包括对多肽粗品进行高效液相色谱进行纯化。

狭鳕鱼皮活性寡肽的合成方法,所述Gly-Pro-Hyp的合成采用固相合成法,包括以下步骤:

1)树脂预处理:将Fmoc-Hyp(tBu)-Wang树脂在DCM中搅拌,使其充分溶胀;

2)脱除Fmoc保护基:在溶胀的树脂中加入哌啶以及DMF混合溶液;

3)连接子Pro缩合:将等摩尔比的Fmoc-Pro-COOH、HBTU、HOBT、DIEA完全溶解于DMF中,混匀后加入步骤2)脱除Fmoc基团保护的树脂中进行反应;

4)第一次茚检:将步骤3)缩合反应结束后的溶剂抽干,用DMF洗涤,用茚三酮检验无色,按照步骤2)方法脱除Fmoc保护基,得到脱除保护的Pro-Hyp肽树脂;

5)连接子Gly缩合:将等摩尔比的Fmoc-Gly-COOH、HBTU、HOBT、DIEA完全溶解于DMF中,混匀后加入步骤4)脱除保护的Pro-Hyp肽树脂中进行反应;

6)第二次茚检:将步骤5)缩合反应结束后的溶剂抽干,用DMF洗涤,用茚三酮检验无色,按照步骤2)方法脱除Fmoc保护基,得到脱除保护的Gly-Pro-Hyp肽树脂;

7)肽链从树脂上切割:用95wt%TFA水溶液酸化步骤6)的肽树脂,反应2-3小时,过滤得到滤液,向滤液中加入乙醚析出,得到多肽粗品。

进一步,所述步骤7)之后还包括对多肽粗品进行高效液相色谱进行纯化。

本发明的再一个目的是提供一种狭鳕鱼皮活性寡肽的分离方法,所述Pro-Hyp与Gly-Pro-Hyp采用高效液相色谱梯度洗脱方法进行分离,具体条件如下:色谱柱:venusic ASB-C18(250mm×4.6mm,5um),柱温:40℃,流动相A为0.1wt%三氟乙酸的乙腈溶液,流动相B为0.1wt%三氟乙酸的水溶液,流速:1.0ml/min;检测波长:220nm;梯度洗脱第一阶段的时间为0-20min,流动相A的比例为2%-22%,流动相B的比例为78%-98%;梯度洗脱第二阶段的时间为20.1-25min,流动相A的比例为100%;梯度洗脱第三阶段的时间为25.1-35min,流动相A的比例为2%,流动相B的比例为98%。

本发明中的HBTU的中文名称为O-苯并三氮唑-四甲基脲六氟磷酸酯,HOBT的中文名称为1-羟基苯并三唑,DIEA的中文名称为N,N-二异丙基乙胺,DMF中文名称为二甲基甲酰胺。

本发明有益效果:

1、在对地塞米松损伤骨细胞OCN蛋白表达量研究,狭鳕鱼皮活性寡肽蛋白表达量较模型组明显升高,并呈剂量依赖性,提示活性寡肽能有效拮抗地塞米松致成骨细胞的损伤,促进其成熟和分化。

2、经统计分析模型组血液上清中Pro-Hyp的含量较正常组显著降低(p<0.05),预防给药组中Pro-Hyp的含量较模型组显著升高(p<0.01),提示Pro-Hyp可能对抗地塞米松导致的损伤具有一定的自我修复作用。

3、Pro-Hyp与Gly-Pro-Hyp采用高效液相色谱梯度洗脱方法进行分离,分离效果好,回收率高。

附图说明

为了更清楚地说明本发明实施例或现有技术中的技术方案,下面将对实施例或现有技术描述中所需要使用的附图作简单地介绍,显而易见地,下面描述中的附图仅仅是本发明的一些实施例,对于本领域普通技术人员来讲,在不付出创造性劳动的前提下,还可以根据这些附图获得其他的附图。

图1为Western Blot检测组成骨细胞中OCN蛋白表达结果图;

图2为Gly-Pro-Hyp粗产品第一次高效液相色谱图谱;

图3为Gly-Pro-Hyp粗产品第二次高效液相色谱图谱;

图4为Pro-Hyp粗产品第一次高效液相色谱图谱;

图5为Pro-Hyp粗产品第二次高效液相色谱图谱。

具体实施方式

下面将结合本发明实施例中的附图,对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述,显然,所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例,而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例,本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例,都属于本发明保护的范围。

实施例1

狭鳕鱼皮活性寡肽对地塞米松损伤成骨细胞修复的研究

经10-5mol/L地塞米松损伤成骨细胞48h后,其细胞存活率较正常组显著降低,仅为正常组的50.67%,(P<0.05);将10μmol/L地塞米松拮抗剂(RU-486)提前2h预孵育成骨细胞,该组细胞存活率较模型组显著性升高,为86.82%(P<0.01);狭鳕鱼皮胶原蛋白肽在实验剂量下均能提高细胞存活率(P<0.01),但组间差异无显著性(P>0.05);小分子肽组提高成骨细胞存活率高达139.47%,远高于胶原蛋白肽三个剂量组(P<0.01),分析认为胶原蛋白肽的活性分子为三肽Gly-Pro-Hyp,结果见表1。

表1 胶原蛋白肽对成骨细胞存活率作用

和正常组比,*P<0.05;分别和模型组比,**P<0.01;分别和三肽组相比,##P<0.01。

利用Western Blot检测OCN蛋白表达,地塞米松模型组成骨细胞OCN蛋白表达量较正常组显著降低(P<0.05),经胶原蛋白肽(三个剂量)保护48h后,该蛋白表达量较模型组明显升高(P<0.05),并呈剂量依赖性,提示胶原蛋白肽能有效拮抗地塞米松致成骨细胞的损伤,促进其成熟和分化;Gly-Pro-Hyp预保护48h组,OCN蛋白表达量较胶原蛋白肽组显著升高(P<0.01),见图1。图1中和正常组比,*P<0.05;分别和地塞米松模型组比,#P<0.05,##P<0.01;分别和三肽组相比,**P<0.01。折算临床用量:以狭鳕鱼皮胶原蛋白肽分子量 3000Da计,Gly-Pro-Hyp分子量为289。临床服用胶原蛋白肽5-10g,根据高效液相色谱法检测结果,折算为小分子活性肽量为2-4g。这里面OCN的全称为Osteocalcin,中文名称为骨钙素。

实施例2

血清Pro-Hyp和Gly-Pro-Hyp含量的测定结果

经统计分析模型组血液上清中Pro-Hyp的含量较正常组显著降低(p<0.05),预防给药组中Pro-Hyp的含量较模型组显著升高(p<0.01),提示Pro-Hyp可能对抗地塞米松导致的损伤具有一定的自我修复作用;另外预防给药组中Gly-Pro-Hyp的含量也较模型组显著性升高(p<0.01),而模型组较正常组显著降低(p<0.05),提示狭鳕鱼皮胶原蛋白肽可能通过转化为Gly-Pro-Hyp的形式被吸收,详见表2。

表2 大鼠各组血清中Pro-Hyp含量

和正常组比,#P<0.05,和模型组比,**P<0.01。

实施例3

Gly-Pro-Hyp合成工艺:

1)、将购买好的Fmoc-Hyp(tBu)-wang resin 0.7mmol/g 2g用DCM溶胀待用

2)、用20%哌啶/DMF溶液脱去Fmoc-Hyp(tBu)-wang resin的Fmoc基团,用DMF洗涤六次。

3)、称取4.8mmol Fmoc-Pro-COOH、4.8mmol HBTU、4.8mmol HOBT、 4.8mmolDIEA用20ml DMF溶解完全加到树脂反应30min。

4)、反应30min后抽去反应液,用DMF洗涤6次,用茚三酮检测无色,重复第3步与第4步。

5)、用20%哌啶/DMF溶液脱去Fmoc-pro-Hyp(tBu)-wang resin的Fmoc基团,用DMF洗涤6次。

6)、称取4.8mmol Fmoc-Gly-COOH、4.8mmol HBTU、4.8mmol HOBT、4.8mmol DIEA用20ml DMF溶解完全加到树脂反应30min。

7)、反应30min后抽去反应液,用DMF洗涤6次,用茚三酮检测无色,重复第6步与第7步。

8)、用20%哌啶/DMF溶液脱去Fmoc-Gly-Pro-Hyp(tBu)-wang resin的Fmoc基团,用DMF洗涤6次,甲醇洗涤3次,抽干树脂

9)、用TFA(三氟乙酸)和水混合溶液(95%TFA),酸化树脂2小时,过滤去除树脂,加10倍体积低温乙醚将多肽在TFA中析出。将析出多肽过滤抽干,进行分离纯化。

纯化工艺:

取1mg粗产品用1ml纯水超声溶解,用高效液相色谱进行粗产品分析,条件为:A(乙腈+0.1%TFA)B(纯水+0.1%TFA),A相0-25min(10-100%),检测波长:220nm,流速1ml\min,进样量20微升,分析图谱见图2。

取400mg粗产品用水溶解,用得出的保留时间换算出制备色谱条件:条件为:A(乙腈)B(纯水+0.1%TFA),A相0-30min(2-12%),检测波长:220nm,流速30ml\min,进样量400mg,分析图谱见图3。

把收集的馏分送质谱鉴定分子量,把质谱正确的液体用分析液相检测纯度。检测条件如下:A(乙腈+0.1%TFA)B(纯水+0.1%TFA),A相0-25min(2-27%),检测波长:220nm,流速1ml\min,进样量20微升。

实施例4

Pro-Hyp合成工艺:

1)、将购买好的Fmoc-Hyp(tBu)-wang resin 0.7mmol/g 2g用DCM溶胀待用;

2)、用20%哌啶/DMF溶液脱去Fmoc-Hyp(tBu)-wang resin的Fmoc基团,用DMF洗涤六次;

3)、称取4.8mmol Fmoc-Pro-COOH、4.8mmol HBTU、4.8mmol HOBT、4.8mmol DIEA用20mlDMF溶解完全加到树脂反应30min。

4)、反应30min后抽去反应液,用DMF洗涤6次,用茚三酮检测无色,重复第3步与第4步。

5)、用20%哌啶/DMF溶液脱去Fmoc-Pro-Hyp(tBu)-wang resin的Fmoc基团,用DMF洗涤6次,甲醇洗涤3次,抽干树脂,再次重复一次。

6)、用TFA和水混合溶液(95%TFA),酸化树脂2小时,过滤去除树脂,加10倍体积乙醚将多肽在TFA中析出。将析出多肽过滤抽干,进行分离纯化。

纯化工艺:

取1mg粗产品用1ml纯水超声溶解。用高效液相色谱进行粗产品分析,条件为:A(乙腈+0.1%TFA)B(纯水+0.1%TFA),A相0-25min(10-100%),检测波长:220nm,流速1\min,进样量20微升,分析图谱见图4。

取400mg粗产品用水溶解,用得出的保留时间换算出制备色谱条件:条件为:A(乙腈)B(纯水+0.1%TFA),A相0-30min(2-7%),检测波长:220nm,流速30ml\min,进样量400mg,分析图谱见图5。

把收集的馏分送质谱鉴定分子量,把质谱正确的液体用分析液相检测纯度。检测条件如下:A(乙腈+0.1%TFA),B(纯水+0.1%TFA),A相0-25min(2-27%),检测波长:220nm,流速1ml\min,进样量20微升。

把检测合格的样品用旋转蒸发器浓缩,浓缩液经低温冰箱预冻后上冻干机真空冷冻干燥。称量,质检。

实施例5

Pro-Hyp与Gly-Pro-Hyp分离

1、色谱条件

色谱柱:venusic ASB-C18(250mm×4.6mm,5um);柱温:40℃;流动相:梯度洗脱(0-20min:乙腈(0.1%三氟乙酸)A:2%-22%,纯水(0.1%三氟乙酸)B:98%-78%;20.1-25min:乙腈(0.1%三氟乙酸)A:100%,纯水(0.1%三氟乙酸)B:0%;25.1-35min:乙腈(0.1%三氟乙酸)A:2%,纯水(0.1%三氟乙酸)B:98%);流速:1.0ml/min;检测波长:220nm。

2、检测方法

取上述方法获得的超滤液按照上述色谱条件自动进样各50μl,根据峰面积积分值计算供试品的浓度。

3、线性关系验证结果

Pro-Hyp标准对照品溶液的制备:精密称取100mg Pro-Hyp(纯度>99%)对照品溶于1ml双蒸水中,依次用双蒸水稀释成浓度分别为0.5mg/ml、0.25mg/ml、0.1mg/ml、0.05mg/ml、0.01mg/ml、0.005mg/ml梯度溶液。

Gly-Pro-Hyp标准对照品溶液的制备:精密称取100mg Pro-Hyp(纯度>99%)对照品溶于1ml双蒸水中,依次用双蒸水稀释成浓度分别为1mg/ml、0.5mg/ml、0.25mg/ml、0.1mg/ml、0.05mg/ml、0.025mg/ml梯度溶液。

将上述Pro-Hyp和Gly-Pro-Hyp标准对照品梯度溶液按照该色谱条件自动进样各50μl,计算各峰面积积分值,以标准品浓度为横坐标(X),峰面积积分值为纵坐标(Y)。得到Pro-Hyp回归方程:y=7E+06x,R2=0.9999,结果表明:Pro-Hyp的浓度在0.005mg/ml~0.5mg/ml内和其峰面积积分值有良好的线性关系;得到Gly-Pro-Hyp回归方程:y=2E+07x,R2=0.9998,结果表明:Gly-Pro-Hyp的浓度在0.01mg/ml~1mg/ml内和其峰面积积分值有良好的线性关系。

4、加样回收率验证结果

取血液上清供试品9份各100μl(Pro-Hyp和Gly-Pro-Hyp浓度分别为0.045mg/ml和0.075mg/ml),低浓度组中各加入45μl Pro-Hyp和75μl Gly-Pro-Hyp;中浓度组中各加入90μl Pro-Hyp和150μl Gly-Pro-Hyp;高浓度组中各加入135μl Pro-Hyp和225μl Gly-Pro-Hyp。Pro-Hyp不同浓度的平均回收率 分别为99.26%、98.77和99.07,RSD分别为1.71,2.63和2.33;Gly-Pro-Hyp不同浓度的平均回收率分别为98.89%,98.22%和99.57%,RSD分别为1.70,1.20和0.84;结果见表3和表4。表明Pro-Hyp和Gly-Pro-Hyp的加样回收率良好。

表3 Pro-Hyp加样回收率结果

表4 Gly-Pro-Hyp加样回收率结果

以上所述仅为本发明的较佳实施例而已,并不用以限制本发明,凡在本发明的精神和原则之内,所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。

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1、(19)中华人民共和国国家知识产权局 (12)发明专利申请 (10)申请公布号 (43)申请公布日 (21)申请号 201610327636.6 (22)申请日 2016.05.17 (71)申请人 青岛海博瑞克生物科技有限公司 地址 266000 山东省青岛市市北区辽宁路 247-263号2002室 (72)发明人 王春波苗德森赵晨懿韩彦弢 张德岩高圣杰 (74)专利代理机构 北京联瑞联丰知识产权代理 事务所(普通合伙) 11411 代理人 郑自群 (51)Int.Cl. C07K 14/78(2006.01) C07K 1/06(2006.01) C07K 1/04(2006.01) C0。

2、7K 1/16(2006.01) A61K 38/05(2006.01) A61K 38/06(2006.01) A61P 19/10(2006.01) A61P 19/02(2006.01) A61P 29/00(2006.01) (54)发明名称 狭鳕鱼皮活性寡肽及其合成方法和应用 (57)摘要 本发明提出了狭鳕鱼皮活性寡肽及其合成 方法和应用, 所述寡肽的氨基酸序列为Pro-Hyp 或者Gly-Pro-Hyp, 通过固相合成法合成上述多 肽。 该多肽能够制备成注射液或者口服液用于预 防与治疗骨质疏松与关节炎。 权利要求书2页 说明书8页 附图3页 CN 105906709 A 2016.。

3、08.31 CN 105906709 A 1.一种狭鳕鱼皮活性寡肽, 其特征在于, 所述寡肽的氨基酸序列为Pro-Hyp或者Gly- Pro-Hyp。 2.一种权利要求1所述的狭鳕鱼皮活性寡肽在制备预防与治疗骨质疏松药物方面的应 用。 3.根据权利要求2所述的狭鳕鱼皮活性寡肽在制备预防与治疗骨质疏松药物方面的应 用, 其特征在于, 所述药物为注射液或者口服液。 4.一种权利要求1所述的狭鳕鱼皮活性寡肽在制备预防与治疗关节炎药物方面的应 用。 5.根据权利要求4所述的狭鳕鱼皮活性寡肽在制备预防与治疗关节炎药物方面的应 用, 其特征在于, 所述药物为注射液或者口服液。 6.如权利要求1所述的狭鳕鱼。

4、皮活性寡肽的合成方法, 其特征在于, 所述Pro-Hyp的合 成采用固相合成法, 包括以下步骤: 1)树脂预处理: 将Fmoc-Hyp(tBu)-Wang树脂在DCM中搅拌, 使其充分溶胀; 2)脱除Fmoc保护基: 在溶胀的树脂中加入哌啶以及DMF混合溶液; 3)连接子缩合: 将等摩尔比的Fmoc-Pro-COOH、 HBTU、 HOBT、 DIEA完全溶解于DMF中, 混匀 后加入步骤2)脱除Fmoc基团保护的树脂中进行反应; 4)茚检: 将步骤3)缩合反应结束后的溶剂抽干, 用DMF洗涤, 用茚三酮检验无色, 按照步 骤2)方法脱除Fmoc保护基, 得到脱除保护的肽树脂; 5)肽链从树脂。

5、上切割: 用95wtTFA水溶液酸化树脂, 反应2-3小时, 过滤得到滤液, 向 滤液中加入乙醚析出, 得到多肽粗品。 7.根据权利要求6所述的狭鳕鱼皮活性寡肽的合成方法, 其特征在于, 所述步骤5)之后 还包括对多肽粗品进行高效液相色谱进行纯化。 8.如权利要求1所述的狭鳕鱼皮活性寡肽的合成方法, 其特征在于, 所述Gly-Pro-Hyp 的合成采用固相合成法, 包括以下步骤: 1)树脂预处理: 将Fmoc-Hyp(tBu)-Wang树脂在DCM中搅拌, 使其充分溶胀; 2)脱除Fmoc保护基: 在溶胀的树脂中加入哌啶以及DMF混合溶液; 3)连接子Pro缩合: 将等摩尔比的Fmoc-Pro。

6、-COOH、 HBTU、 HOBT、 DIEA完全溶解于DMF中, 混匀后加入步骤2)脱除Fmoc基团保护的树脂中进行反应; 4)第一次茚检: 将步骤3)缩合反应结束后的溶剂抽干, 用DMF洗涤, 用茚三酮检验无色, 按照步骤2)方法脱除Fmoc保护基, 得到脱除保护的Pro-Hyp肽树脂; 5)连接子Gly缩合: 将等摩尔比的Fmoc-Gly-COOH、 HBTU、 HOBT、 DIEA完全溶解于DMF中, 混匀后加入步骤4)脱除保护的Pro-Hyp肽树脂中进行反应; 6)第二次茚检: 将步骤5)缩合反应结束后的溶剂抽干, 用DMF洗涤, 用茚三酮检验无色, 按照步骤2)方法脱除Fmoc保护。

7、基, 得到脱除保护的Gly-Pro-Hyp肽树脂; 7)肽链从树脂上切割: 用95wtTFA水溶液酸化步骤6)的肽树脂, 反应2-3小时, 过滤得 到滤液, 向滤液中加入乙醚析出, 得到多肽粗品。 9.根据权利要求8所述的狭鳕鱼皮活性寡肽的合成方法, 其特征在于, 所述步骤7)之后 还包括对多肽粗品进行高效液相色谱进行纯化。 10.如权利要求1所述的狭鳕鱼皮活性寡肽的分离方法, 其特征在于, 所述Pro-Hyp与 权利要求书 1/2 页 2 CN 105906709 A 2 Gly-Pro-Hyp采用高效液相色谱梯度洗脱方法进行分离, 具体条件如下: 色谱柱: venusic ASB-C18(。

8、250mm4.6mm, 5um), 柱温: 40, 流动相A为0.1wt三氟乙酸的乙腈溶液, 流动相 B为0.1wt三氟乙酸的水溶液, 流速: 1.0ml/min; 检测波长: 220nm; 梯度洗脱第一阶段的时 间为0-20min, 流动相A的比例为2-22, 流动相B的比例为78-98; 梯度洗脱第二阶段 的时间为20.1-25min, 流动相A的比例为100; 梯度洗脱第三阶段的时间为25.1-35min, 流 动相A的比例为2, 流动相B的比例为98。 权利要求书 2/2 页 3 CN 105906709 A 3 狭鳕鱼皮活性寡肽及其合成方法和应用 技术领域 0001 本发明属于生物活。

9、性肽领域, 具体涉及一种狭鳕鱼皮活性寡肽及其合成方法和应 用。 背景技术 0002 生物体的遗传基因被存储在多聚核苷酸链上, 遗传基因编码着执行生物学功能的 蛋白质。 生物体内的蛋白质多种多样, 它们行使着各种生物学功能维持生命活动。 蛋白质的 种类虽然多不胜举, 但它们基本上都是由20个自然界存在的天然氨基酸组成。 由于氨基酸 的组成和排列顺序的差异导致了蛋白质的千差万别。 一般来说, 含有50个以上氨基酸的分 子被称为蛋白质, 般超过10个氨基酸的肽链被称为多肽, 少于10个氨基酸的肽链被称做寡 肽。 目前发现最小的功能小肽只有2个氨基酸, 通常较为常见的是4个以上的功能小肽。 0003 。

10、随着我国海洋渔业的发展, 水产品加工过程会产生大量的鱼皮、 鱼骨、 内脏等废弃 物, 狭鳕鱼是生活在北太平洋海域的一种低温型鱼类, 我国狭鳕鱼年加工量约50万吨, 因此 会产生大量狭鳕鱼皮等废弃物, 干鱼皮含70胶原蛋白, 胶原多肽是以胶原组织为原料。 近 年来, 水产品胶原蛋白的研究成为国内外热点, 但对狭鳕鱼胶原多肽的研究鲜有报道。 樊洁 等2013年在青岛大学医学院学报中公开了狭鳕鱼皮胶原多肽理化性质研究, 其主要研究5 种制备工艺获得的狭鳕鱼皮胶原多肽的理化性质。 但是, 对于狭鳕鱼皮多肽在预防治疗疾 病等发明的研究未见报道, 并且缺乏报道该类多肽的人工合成方法。 发明内容 0004 。

11、为解决现有狭鳕鱼皮胶原多肽具体应用研究缺乏的问题, 本发明提出一种狭鳕鱼 皮活性寡肽, 该活性寡肽不仅序列清楚, 而且具有良好的医学功效。 0005 本发明的技术方案是这样实现的: 0006 一种狭鳕鱼皮活性寡肽, 所述寡肽的氨基酸序列为Pro-Hyp或者Gly-Pro-Hyp。 0007 本发明的另一个目的是提供一种狭鳕鱼皮活性寡肽在制备预防与治疗骨质疏松 药物方面的应用。 0008 进一步, 所述药物为注射液或者口服液。 0009 本发明的另一个目的是提供一种狭鳕鱼皮活性寡肽在制备预防与治疗关节炎药 物方面的应用。 0010 进一步, 所述药物为注射液或者口服液。 0011 狭鳕鱼皮活性寡。

12、肽的合成方法, 所述Pro-Hyp的合成采用固相合成法, 包括以下步 骤: 0012 1)树脂预处理: 将Fmoc-Hyp(tBu)-Wang树脂在DCM中搅拌, 使其充分溶胀; 0013 2)脱除Fmoc保护基: 在溶胀的树脂中加入哌啶以及DMF混合溶液; 0014 3)连接子缩合: 将等摩尔比的Fmoc-Pro-COOH、 HBTU、 HOBT、 DIEA完全溶解于DMF中, 混匀后加入步骤2)脱除Fmoc基团保护的树脂中进行反应; 说明书 1/8 页 4 CN 105906709 A 4 0015 4)茚检: 将步骤3)缩合反应结束后的溶剂抽干, 用DMF洗涤, 用茚三酮检验无色, 按 。

13、照步骤2)方法脱除Fmoc保护基, 得到脱除保护的肽树脂; 0016 5)肽链从树脂上切割: 用95wtTFA水溶液酸化树脂, 反应2-3小时, 过滤得到滤 液, 向滤液中加入乙醚析出, 得到多肽粗品。 0017 进一步, 所述步骤5)之后还包括对多肽粗品进行高效液相色谱进行纯化。 0018 狭鳕鱼皮活性寡肽的合成方法, 所述Gly-Pro-Hyp的合成采用固相合成法, 包括以 下步骤: 0019 1)树脂预处理: 将Fmoc-Hyp(tBu)-Wang树脂在DCM中搅拌, 使其充分溶胀; 0020 2)脱除Fmoc保护基: 在溶胀的树脂中加入哌啶以及DMF混合溶液; 0021 3)连接子Pr。

14、o缩合: 将等摩尔比的Fmoc-Pro-COOH、 HBTU、 HOBT、 DIEA完全溶解于DMF 中, 混匀后加入步骤2)脱除Fmoc基团保护的树脂中进行反应; 0022 4)第一次茚检: 将步骤3)缩合反应结束后的溶剂抽干, 用DMF洗涤, 用茚三酮检验 无色, 按照步骤2)方法脱除Fmoc保护基, 得到脱除保护的Pro-Hyp肽树脂; 0023 5)连接子Gly缩合: 将等摩尔比的Fmoc-Gly-COOH、 HBTU、 HOBT、 DIEA完全溶解于DMF 中, 混匀后加入步骤4)脱除保护的Pro-Hyp肽树脂中进行反应; 0024 6)第二次茚检: 将步骤5)缩合反应结束后的溶剂抽。

15、干, 用DMF洗涤, 用茚三酮检验 无色, 按照步骤2)方法脱除Fmoc保护基, 得到脱除保护的Gly-Pro-Hyp肽树脂; 0025 7)肽链从树脂上切割: 用95wtTFA水溶液酸化步骤6)的肽树脂, 反应2-3小时, 过 滤得到滤液, 向滤液中加入乙醚析出, 得到多肽粗品。 0026 进一步, 所述步骤7)之后还包括对多肽粗品进行高效液相色谱进行纯化。 0027 本发明的再一个目的是提供一种狭鳕鱼皮活性寡肽的分离方法, 所述Pro-Hyp与 Gly-Pro-Hyp采用高效液相色谱梯度洗脱方法进行分离, 具体条件如下: 色谱柱: venusic ASB-C18(250mm4.6mm, 5。

16、um), 柱温: 40, 流动相A为0.1wt三氟乙酸的乙腈溶液, 流动相 B为0.1wt三氟乙酸的水溶液, 流速: 1.0ml/min; 检测波长: 220nm; 梯度洗脱第一阶段的时 间为0-20min, 流动相A的比例为2-22, 流动相B的比例为78-98; 梯度洗脱第二阶段 的时间为20.1-25min, 流动相A的比例为100; 梯度洗脱第三阶段的时间为25.1-35min, 流 动相A的比例为2, 流动相B的比例为98。 0028 本发明中的HBTU的中文名称为O-苯并三氮唑-四甲基脲六氟磷酸酯, HOBT的中文 名称为1-羟基苯并三唑, DIEA的中文名称为N,N-二异丙基乙胺。

17、, DMF中文名称为二甲基甲酰 胺。 0029 本发明有益效果: 0030 1、 在对地塞米松损伤骨细胞OCN蛋白表达量研究, 狭鳕鱼皮活性寡肽蛋白表达量 较模型组明显升高, 并呈剂量依赖性, 提示活性寡肽能有效拮抗地塞米松致成骨细胞的损 伤, 促进其成熟和分化。 0031 2、 经统计分析模型组血液上清中Pro-Hyp的含量较正常组显著降低(p0.05), 预 防给药组中Pro-Hyp的含量较模型组显著升高(p0.01), 提示Pro-Hyp可能对抗地塞米松导 致的损伤具有一定的自我修复作用。 0032 3、 Pro-Hyp与Gly-Pro-Hyp采用高效液相色谱梯度洗脱方法进行分离, 分离。

18、效果 好, 回收率高。 说明书 2/8 页 5 CN 105906709 A 5 附图说明 0033 为了更清楚地说明本发明实施例或现有技术中的技术方案, 下面将对实施例或现 有技术描述中所需要使用的附图作简单地介绍, 显而易见地, 下面描述中的附图仅仅是本 发明的一些实施例, 对于本领域普通技术人员来讲, 在不付出创造性劳动的前提下, 还可以 根据这些附图获得其他的附图。 0034 图1为WesternBlot检测组成骨细胞中OCN蛋白表达结果图; 0035 图2为Gly-Pro-Hyp粗产品第一次高效液相色谱图谱; 0036 图3为Gly-Pro-Hyp粗产品第二次高效液相色谱图谱; 00。

19、37 图4为Pro-Hyp粗产品第一次高效液相色谱图谱; 0038 图5为Pro-Hyp粗产品第二次高效液相色谱图谱。 具体实施方式 0039 下面将结合本发明实施例中的附图, 对本发明实施例中的技术方案进行清楚、 完 整地描述, 显然, 所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例, 而不是全部的实施例。 基于 本发明中的实施例, 本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其他 实施例, 都属于本发明保护的范围。 0040 实施例1 0041 狭鳕鱼皮活性寡肽对地塞米松损伤成骨细胞修复的研究 0042 经10-5mol/L地塞米松损伤成骨细胞48h后, 其细胞存活率较正常组显著降低,。

20、 仅为 正常组的50.67, (P0.05); 将10 mol/L地塞米松拮抗剂(RU-486)提前2h预孵育成骨细 胞, 该组细胞存活率较模型组显著性升高, 为86.82(P0.01); 狭鳕鱼皮胶原蛋白肽在实 验剂量下均能提高细胞存活率(P0.05); 小分子肽组提高 成骨细胞存活率高达139.47, 远高于胶原蛋白肽三个剂量组(P0.01), 分析认为胶原蛋 白肽的活性分子为三肽Gly-Pro-Hyp, 结果见表1。 0043表1胶原蛋白肽对成骨细胞存活率作用 说明书 3/8 页 6 CN 105906709 A 6 0044 0045 和正常组比, *P0.05; 分别和模型组比, *。

21、P0.01; 分别和三肽组相比, #P0.01。 0046 利用WesternBlot检测OCN蛋白表达, 地塞米松模型组成骨细胞OCN蛋白表达量较 正常组显著降低(P0.05), 经胶原蛋白肽(三个剂量)保护48h后, 该蛋白表达量较模型组明 显升高(P0.05), 并呈剂量依赖性, 提示胶原蛋白肽能有效拮抗地塞米松致成骨细胞的损 伤, 促进其成熟和分化; Gly-Pro-Hyp预保护48h组, OCN蛋白表达量较胶原蛋白肽组显著升 高(P0.01), 见图1。 图1中和正常组比, *P0.05; 分别和地塞米松模型组比, #P0.05, #P 0.01; 分别和三肽组相比, *P0.01。。

22、 折算临床用量: 以狭鳕鱼皮胶原蛋白肽分子量3000Da 计, Gly-Pro-Hyp分子量为289。 临床服用胶原蛋白肽5-10g, 根据高效液相色谱法检测结果, 折算为小分子活性肽量为2-4g。 这里面OCN的全称为Osteocalcin, 中文名称为骨钙素。 0047 实施例2 0048 血清Pro-Hyp和Gly-Pro-Hyp含量的测定结果 0049 经统计分析模型组血液上清中Pro-Hyp的含量较正常组显著降低(p0.05), 预防 给药组中Pro-Hyp的含量较模型组显著升高(p0.01), 提示Pro-Hyp可能对抗地塞米松导致 的损伤具有一定的自我修复作用; 另外预防给药组中。

23、Gly-Pro-Hyp的含量也较模型组显著 性升高(p0.01), 而模型组较正常组显著降低(p0.05), 提示狭鳕鱼皮胶原蛋白肽可能通 过转化为Gly-Pro-Hyp的形式被吸收, 详见表2。 0050表2大鼠各组血清中Pro-Hyp含量 说明书 4/8 页 7 CN 105906709 A 7 0051 0052 和正常组比, #P0.05, 和模型组比, *P0.01。 0053 实施例3 0054 Gly-Pro-Hyp合成工艺: 0055 1)、 将购买好的Fmoc-Hyp(tBu)-wangresin0.7mmol/g2g用DCM溶胀待用 0056 2)、 用20哌啶/DMF溶液。

24、脱去Fmoc-Hyp(tBu)-wangresin的Fmoc基团,用DMF洗涤 六次。 0057 3)、 称取4.8mmolFmoc-Pro-COOH、 4.8mmolHBTU、 4.8mmolHOBT、 4.8mmolDIEA用 20mlDMF溶解完全加到树脂反应30min。 0058 4)、 反应30min后抽去反应液, 用DMF洗涤6次, 用茚三酮检测无色,重复第3步与第4 步。 0059 5)、 用20哌啶/DMF溶液脱去Fmoc-pro-Hyp(tBu)-wangresin的Fmoc基团, 用DMF 洗涤6次。 0060 6)、 称取4.8mmolFmoc-Gly-COOH、 4.8。

25、mmolHBTU、 4.8mmolHOBT、 4.8mmolDIEA用 20mlDMF溶解完全加到树脂反应30min。 0061 7)、 反应30min后抽去反应液, 用DMF洗涤6次, 用茚三酮检测无色, 重复第6步与第7 步。 0062 8)、 用20哌啶/DMF溶液脱去Fmoc-Gly-Pro-Hyp(tBu)-wangresin的Fmoc基团, 用DMF洗涤6次, 甲醇洗涤3次, 抽干树脂 0063 9)、 用TFA(三氟乙酸)和水混合溶液(95TFA), 酸化树脂2小时, 过滤去除树脂, 加 10倍体积低温乙醚将多肽在TFA中析出。 将析出多肽过滤抽干, 进行分离纯化。 0064 纯。

26、化工艺: 0065 取1mg粗产品用1ml纯水超声溶解, 用高效液相色谱进行粗产品分析, 条件为: A(乙 腈+0.1TFA)B(纯水+0.1TFA), A相0-25min(10-100), 检测波长: 220nm, 流速1mlmin, 进样量20微升, 分析图谱见图2。 0066 取400mg粗产品用水溶解, 用得出的保留时间换算出制备色谱条件: 条件为: A(乙 腈)B(纯水+0.1TFA), A相0-30min(2-12), 检测波长: 220nm, 流速30mlmin, 进样量 400mg, 分析图谱见图3。 0067 把收集的馏分送质谱鉴定分子量, 把质谱正确的液体用分析液相检测纯度。

27、。 检测 条件如下: A(乙腈+0.1TFA)B(纯水+0.1TFA), A相0-25min(2-27), 检测波长: 220nm, 说明书 5/8 页 8 CN 105906709 A 8 流速1mlmin, 进样量20微升。 0068 实施例4 0069 Pro-Hyp合成工艺: 0070 1)、 将购买好的Fmoc-Hyp(tBu)-wangresin0.7mmol/g2g用DCM溶胀待用; 0071 2)、 用20哌啶/DMF溶液脱去Fmoc-Hyp(tBu)-wangresin的Fmoc基团,用DMF洗涤 六次; 0072 3)、 称取4.8mmolFmoc-Pro-COOH、 4.。

28、8mmolHBTU、 4.8mmolHOBT、 4.8mmolDIEA用 20mlDMF溶解完全加到树脂反应30min。 0073 4)、 反应30min后抽去反应液, 用DMF洗涤6次, 用茚三酮检测无色, 重复第3步与第4 步。 0074 5)、 用20哌啶/DMF溶液脱去Fmoc-Pro-Hyp(tBu)-wangresin的Fmoc基团, 用DMF 洗涤6次, 甲醇洗涤3次, 抽干树脂, 再次重复一次。 0075 6)、 用TFA和水混合溶液(95TFA), 酸化树脂2小时, 过滤去除树脂, 加10倍体积乙 醚将多肽在TFA中析出。 将析出多肽过滤抽干, 进行分离纯化。 0076 纯化。

29、工艺: 0077 取1mg粗产品用1ml纯水超声溶解。 用高效液相色谱进行粗产品分析, 条件为: A(乙 腈+0.1TFA)B(纯水+0.1TFA), A相0-25min(10-100), 检测波长: 220nm, 流速1min, 进 样量20微升, 分析图谱见图4。 0078 取400mg粗产品用水溶解, 用得出的保留时间换算出制备色谱条件: 条件为: A(乙 腈)B(纯水+0.1TFA), A相0-30min(2-7), 检测波长: 220nm, 流速30mlmin, 进样量 400mg, 分析图谱见图5。 0079 把收集的馏分送质谱鉴定分子量, 把质谱正确的液体用分析液相检测纯度。 检。

30、测 条件如下: A(乙腈+0.1TFA), B(纯水+0.1TFA), A相0-25min(2-27), 检测波长: 220nm, 流速1mlmin, 进样量20微升。 0080 把检测合格的样品用旋转蒸发器浓缩, 浓缩液经低温冰箱预冻后上冻干机真空冷 冻干燥。 称量, 质检。 0081 实施例5 0082 Pro-Hyp与Gly-Pro-Hyp分离 0083 1、 色谱条件 0084 色谱柱: venusicASB-C18(250mm4.6mm, 5um); 柱温: 40; 流动相: 梯度洗脱(0- 20min:乙腈(0.1三氟乙酸)A: 2-22, 纯水(0.1三氟乙酸)B: 98-78;。

31、 20.1- 25min:乙腈(0.1三氟乙酸)A: 100, 纯水(0.1三氟乙酸)B: 0; 25.1-35min: 乙腈 (0.1三氟乙酸)A: 2, 纯水(0.1三氟乙酸)B: 98); 流速: 1.0ml/min; 检测波长: 220nm。 0085 2、 检测方法 0086 取上述方法获得的超滤液按照上述色谱条件自动进样各50 l, 根据峰面积积分值 计算供试品的浓度。 0087 3、 线性关系验证结果 0088 Pro-Hyp标准对照品溶液的制备: 精密称取100mgPro-Hyp(纯度99)对照品溶 说明书 6/8 页 9 CN 105906709 A 9 于1ml双蒸水中, 。

32、依次用双蒸水稀释成浓度分别为0.5mg/ml、 0.25mg/ml、 0.1mg/ml、 0.05mg/ ml、 0.01mg/ml、 0.005mg/ml梯度溶液。 0089 Gly-Pro-Hyp标准对照品溶液的制备:精密称取100mgPro-Hyp(纯度99)对照 品溶于1ml双蒸水中, 依次用双蒸水稀释成浓度分别为1mg/ml、 0.5mg/ml、 0.25mg/ml、 0.1mg/ml、 0.05mg/ml、 0.025mg/ml梯度溶液。 0090 将上述Pro-Hyp和Gly-Pro-Hyp标准对照品梯度溶液按照该色谱条件自动进样各 50 l, 计算各峰面积积分值, 以标准品浓度。

33、为横坐标(X), 峰面积积分值为纵坐标(Y)。 得到 Pro-Hyp回归方程: y7E+06x,R20.9999, 结果表明: Pro-Hyp的浓度在0.005mg/ml 0.5mg/ml内和其峰面积积分值有良好的线性关系; 得到Gly-Pro-Hyp回归方程: y2E+07x, R20.9998, 结果表明: Gly-Pro-Hyp的浓度在0.01mg/ml1mg/ml内和其峰面积积分值有 良好的线性关系。 0091 4、 加样回收率验证结果 0092 取血液上清供试品9份各100 l(Pro-Hyp和Gly-Pro-Hyp浓度分别为0.045mg/ml和 0.075mg/ml), 低浓度组。

34、中各加入45 lPro-Hyp和75 lGly-Pro-Hyp; 中浓度组中各加入90 lPro-Hyp和150 lGly-Pro-Hyp; 高浓度组中各加入135 lPro-Hyp和225 lGly-Pro- Hyp。 Pro-Hyp不同浓度的平均回收率分别为99.26、 98.77和99.07, RSD分别为1.71, 2.63 和2.33; Gly-Pro-Hyp不同浓度的平均回收率分别为98.89, 98.22和99.57, RSD分别 为1.70, 1.20和0.84; 结果见表3和表4。 表明Pro-Hyp和Gly-Pro-Hyp的加样回收率良好。 0093 表3Pro-Hyp加样。

35、回收率结果 0094 0095 表4Gly-Pro-Hyp加样回收率结果 说明书 7/8 页 10 CN 105906709 A 10 0096 0097 0098 以上所述仅为本发明的较佳实施例而已, 并不用以限制本发明, 凡在本发明的精 神和原则之内, 所作的任何修改、 等同替换、 改进等, 均应包含在本发明的保护范围之内。 说明书 8/8 页 11 CN 105906709 A 11 图1 图2 说明书附图 1/3 页 12 CN 105906709 A 12 图3 图4 说明书附图 2/3 页 13 CN 105906709 A 13 图5 说明书附图 3/3 页 14 CN 105906709 A 14 。

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