一种油茶原生质体的制备和纯化方法.pdf

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摘要
申请专利号:

CN201610559094.5

申请日:

20160715

公开号:

CN105969718A

公开日:

20160928

当前法律状态:

有效性:

审查中

法律详情:

IPC分类号:

C12N5/04

主分类号:

C12N5/04

申请人:

湖南科技学院

发明人:

黄国文

地址:

425199 湖南省永州市零陵区杨梓塘路130号

优先权:

CN201610559094A

专利代理机构:

北京国坤专利代理事务所(普通合伙)

代理人:

郭伟红

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内容摘要

本发明公开了一种油茶原生质体的制备和纯化方法,属于植物原生质体技术领域。本发明的油茶原生质体的制备和纯化方法与酶法制备原生质体相比,本发明制备的原生质体不会受酶等化学试剂的伤害,所需时间短,费用低。本发明的油茶原生质体的制备和纯化方法能够为油茶原生质体的培养、融合和基因转化等原生质体下游实验提供大量材料。

权利要求书

1.一种油茶原生质体的制备和纯化方法,其特征在于:所述方法的具体步骤如下:A制备方法:A1从室外切取油茶一年生枝条,带回水培1-2天;A2取6片成熟叶,用刀片切去叶片的边缘和叶片主脉,并在叶片每隔0.5-1cm的位置切上一些缝隙,但不要切断叶片;A3将带有缝隙的叶块浸入蔗糖溶液中进行质壁分离0.5-1h,期间用镊子将上浮叶块压入蔗糖溶液中;A4取出叶块,用刀片与叶块成45°把叶块切成细长条,越细越好;A5将细叶条转移到盛有叶条洗涤液的容器中,放置30s-1min;6片叶可以分3-4批来切条加入到洗涤液中,以材料在洗涤液中不拥挤为限度;A6用镊子将每次洗涤过的叶条取出,放入13%甘露醇CPW溶液中,放置5-15min;3-4批细叶条的原生质体依次收集在同一管溶液中;A7用镊子去掉叶条,得到油茶原生质体溶液;B原生质体纯化:B1在油茶原生质体溶液的底层加入蔗糖溶液,原生质体溶液与蔗糖溶液的体积比是1∶1,漂洗原生质体1-5min;B2转移上层原生质体溶液到离心管中,进行离心,去掉上清液;B3沉淀用等量蔗糖溶液悬浮,再离心,去掉上清液;B4沉淀用等量蔗糖溶液悬浮,再离心,留下上清液,去掉沉淀;B5上清液经再次离心,去掉上清液,沉淀用200μL质量-体积百分比浓度为18%蔗糖溶液悬浮原生质体并转移到离心管中;B6将原生质体悬浮液加在蔗糖溶液上漂洗1-5min,取出上层液即为纯化的原生质体溶液。 2.如权利要求1所述的油茶原生质体的制备和纯化方法,其特征在于:步骤A3和B1中,蔗糖溶液的质量-体积百分比浓度为35%。 3.如权利要求1所述的油茶原生质体的制备和纯化方法,其特征在于:步骤A5中,所述的叶条洗涤液的成分是含有0.03%CaCl、0.1%NaCl和0.075%MgCl的35%蔗糖溶液,其中,各种成分的浓度均为质量-体积百分比浓度,单位为g/ml。 4.如权利要求1所述的油茶原生质体的制备和纯化方法,其特征在于:步骤A6中,所述的13%甘露醇CPW溶液的成分为:101.0mg/L硝酸钾,27.2mg/L碳酸二氢钾,1480.0mg/L二水氯化钙,264.0mg/L七水硫酸镁,0.16mg/L碘化钾,0.025mg/L五水硫酸铜,13%W/V甘露醇。 5.如权利要求1所述的油茶原生质体的制备和纯化方法,其特征在于:步骤B2中,离心的速率为1500rpm,时间为8min;步骤B3中,离心的速率为1000rpm,时间为8min。 6.如权利要求1所述的油茶原生质体的制备和纯化方法,其特征在于:步骤B4中,离心的速率为100rpm,时间为1-2min。 7.如权利要求1所述的油茶原生质体的制备和纯化方法,其特征在于:步骤B2和B3中,所述的蔗糖溶液的质量-体积百分比浓度为18%。 8.如权利要求1所述的油茶原生质体的制备和纯化方法,其特征在于:步骤B5中,离心的速率为500rpm,时间为12min。 9.如权利要求1所述的油茶原生质体的制备和纯化方法,其特征在于:步骤B6中,所述的蔗糖溶液的质量-体积百分比浓度为25%。

说明书

技术领域

本发明涉及植物原生质体技术领域,尤其涉及一种油茶原生质体的制备和纯化方法。

背景技术

油茶属常绿小乔木。因其种子可榨油(茶油)供食用,故名。茶油色清味香,营养丰富,耐贮藏,是优质食用油;也可作为润滑油、防锈油用于工业。茶饼既是农药,又是肥料,可提高农田蓄水能力和防治稻田害虫。果皮是提制栲胶的原料。

油茶喜温暖,怕寒冷,要求年平均气温16~18℃,花期平均气温为12~13℃。突然的低温或晚霜会造成落花、落果。要求有较充足的阳光,否则只长枝叶,结果少,含油率低。要求水分充足,年降水量一般在1000毫米以上,但花期连续降雨,影响授粉。要求在坡度和缓、侵蚀作用弱的地方栽植,对土壤要求不甚严格,一般适宜土层深厚的酸性土,而不适于石块多和土质坚硬的地方。

原生质体(protoplast):脱去细胞壁的细胞叫原生质体,是一生物工程学的概念。原生质体一词来源于原生质(protoplasm)。原生质指组成细胞的有生命物质的总称,是物质的概念。原生质体是组成细胞的一个形态结构单位。在细胞学历史上,"细胞"(cell)一词是由Hooke提出的,意为"小室"。后来发现了原生质,对细胞的认识与Hooke时期不同了,1880年Hanstein提出"原生质体"一词。由于细胞一词的出现 较原生质体早,故沿用至今。

植物原生质体在科学研究中具有重要作用,在研究细胞壁再生机理、细胞对激素的作用机理、体细胞杂种的培育、转入外源基因培育转基因植株等方面都有应用。一般制备原生质体的方法有机械法和酶法。酶法由于操作简单,获得的细胞数目多,目前应用广泛,但是酶等化学试剂会对细胞产生不良影响,影响原生质体的下游实验。机械法由于制备原生质体的数量少没有受到重视。机械法不受酶等试剂的影响,制备的原生质体形态完整并且有活性,所需时间短,费用低,是一种很有发展前景的方法。目前,油茶原生质体的制备研究报道很少,用机械法制备油茶原生质体的研究还没有报道。

发明内容

本发明提供了一种油茶原生质体的制备和纯化方法。

本发明采用如下技术方案:

本发明的油茶原生质体的制备和纯化方法的具体步骤如下:

A制备方法:

A1从室外切取油茶一年生枝条,带回水培1-2天;

A2取6片成熟叶,用刀片切去叶片的边缘和叶片主脉,并在叶片每隔0.5-1cm的位置切上一些缝隙,但不要切断叶片;

A3将带有缝隙的叶块浸入蔗糖溶液中进行质壁分离0.5-1h,期间用镊子将上浮叶块压入蔗糖溶液中;

A4取出叶块,用锋利的刀片与叶块成45°把叶块切成细长条,越细越好;

A5将细叶条转移到盛有3ml叶条洗涤液的容器中,放置30s-1min;6片叶可以分3-4批来切条加入到洗涤液中,以材料在溶液中不拥挤为限度;

A6用镊子将每次洗涤过的叶条取出,放入2ml 13%甘露醇CPW溶液中,放置5-15min;3-4批细叶条的原生质体依次收集在同一管溶液中;

A7用镊子去掉叶条,得到油茶原生质体溶液。

2原生质体纯化:

B1在油茶原生质体溶液的底部加入蔗糖溶液,原生质体溶液与蔗糖溶液的体积比是1∶1,漂洗原生质体1-5min;

B2转移上层原生质体溶液到离心管中,进行离心,去掉上清液;

B3沉淀用等量蔗糖溶液悬浮,再离心,去掉上清液;

B4沉淀用等量蔗糖溶液悬浮,再离心,留下上清液,去掉沉淀;

B5上清液经再次离心,去掉上清液,沉淀用少量的质量-体积百分比浓度是18%蔗糖溶液悬浮并转移到新离心管中;

B6将原生质体悬浮液加在蔗糖溶液上漂洗1-5min,取出上层液即为纯化的原生质体溶液。

步骤A3和B1中,蔗糖溶液的质量-体积百分比浓度为35%。

步骤A5中,所述的叶条洗涤液的成分是含有0.03%CaCl2、0.1%NaCl和0.075%MgCl2的35%蔗糖溶液,其中,各种成分的浓度均为质量-体积百分浓度,单位为g/ml。

步骤A6中,所述的13%甘露醇CPW溶液的成分为:10A0mg/L硝酸钾,27.2mg/L碳酸二氢钾,1480.0mg/L二水氯化钙,264.0mg/L 七水硫酸镁,0.16mg/L碘化钾,0.025mg/L五水硫酸铜,13%W/V甘露醇。

步骤B2中,离心的速率为1500rpm,时间为8min。

步骤B3中,离心的速率为1000rpm,时间为8min

步骤B4中,离心的速率为100rpm,时间为1-2min。

步骤B2和B3中,所述的蔗糖溶液的质量-体积百分比浓度为18%。

步骤B5中,离心的速率为500rpm,时间为12min。

步骤B6中,所述的蔗糖溶液的质量-体积百分比浓度为25%。

本发明的积极效果如下:

本发明的油茶原生质体的制备和纯化方法与酶法制备原生质体相比,本发明制备的原生质体不会受酶等化学试剂的伤害,所需时间短,费用低。本发明的油茶原生质体的制备和纯化方法能够为油茶原生质体的培养、融合和基因转化等原生质体下游实验提供大量材料。

附图说明

图1是机械法制备的原生质体的显微镜图。

①原生质体,②杂质。

取一年生的油茶枝条带入室内水培1-2天,能够促使叶片细胞中淀粉转化成可溶性糖,增加细胞对逆境的抵抗力,有利于叶片细胞在质量-体积百分比为35%蔗糖溶液中进行质壁分离的条件下保持细胞的活性。把经过质壁分离的成熟油茶叶片切条后放入洗涤液中 30s-1min,能够除去细胞中大量的果胶、多糖、蛋白质和单宁等物质和叶片碎块;同时洗涤液中含有较高浓度的Na+能够减少细胞壁中果胶和多糖等物质与原生质体的相互作用,Ca2+和Mg2+能够保持原生质膜的稳定性并且能够使果胶等物质聚集,使个得细叶条从洗涤液转移到13%甘露醇CPW溶液中进行质壁分离复员的时候,从叶片的切口处顺利流出原生质体干净得多了。另外一方面,质壁分离后的细叶条分批次地转移到少量的13%甘露醇CPW溶液(2ml)中通过质壁分离复员方法可以收集到6片油茶叶(1.2g左右)的原生质体,这样可以减少细叶条中果胶和多糖等物质的流出,但不影响细胞的流出。所以,用这种方法制备的原生质体溶液中细胞数量多并且形态清晰(图1),杂质相对较少,有利于原生质体的纯化。

图2是本发明实施例3制备、纯化的原生质体的显微镜图。

①原生质体,②杂质

用13%甘露醇CPW溶液收集到的原生质体溶液(2ml),体积较大并且还存在杂质多。在纯化过程中,这种溶液经过3次降速离心和2次降低浓度的蔗糖溶液漂浮去掉了大量的杂质,获得了较纯的原生质体。原生质体溶液的体积由纯化前的2ml降低到了200μL,使得在溶液中的原生质体的密度大大地提高了(图2),密度为3.1×106/ml,杂质少了。纯化后的原生质体的形态完整,细胞膜边缘干净。用这种方法制备的原生质体的数量能够达到5.1×105个/g·FW,因此.用这种方法制备原生质体具有应用价值。

图3是经苔盼蓝染色的原生质体的显微镜图。

①原生质体

用苔盼蓝染色原生质体的的方法:取含质量-体积百分数为18%蔗糖的原生质体溶液1滴,滴在载玻片上。用浓度为0.4%的苔盼蓝溶液染色,使染色的终浓度达到0.04%。染色3-5min。时间不能过长,否则活细胞也会被染色。放在显微镜下观察,染上蓝色的为死细胞,没有染上颜色的为活细胞。图3显示,原生质体没有变蓝色,说明用这种方法制备的原生质体是有活力的。

图4是融合的原生质体的显微镜图。

①2个细胞正在融合的原生质体

用PEG结合高Ca2+-高pH的诱导融合法来融合油茶叶片的原生质体。步骤是:①用胶头滴管取原生质体溶液,滴2滴在一块干净的载玻片上静置8-10min,使原生质体在载玻片上形成一薄层。②将2滴PEG融合液滴在原生质体上,静置10-15min,使原生质体之间粘连在一起。③每隔5min滴2滴高Ca2+-高pH溶液在原生质体上,进行3次共6滴。④盖上盖玻片,用吸水纸吸去多余的溶液,置于显微镜下观察细胞融合情况(图4)。可以观察到2个细胞融合的百分数是11%,说明用这种方法制备的原生质体是有活性的。原生质体经过苔盼蓝染色和细胞融合实验,结果都表明用这种方法制备的原生质体是有活性的,因此,用这种机械法制备的原生质体可以用于细胞培养、融合和转基因等原生质体的下游实验。

具体实施方式

下面的实施例是对本发明的进一步详细描述。

实施例1

本发明的油茶原生质体的制备和纯化方法的具体步骤如下:

1制备方法:

A1从室外切取油茶一年生枝条,带回水培1-2天;

A2取6片成熟叶,用刀片切去叶片的边缘和叶片主脉,并在叶片每隔0.5cm的位置切上一些缝隙,但不要切断叶片;

A3将带有缝隙的叶块浸入蔗糖溶液中进行质壁分离0.5h,期间用镊子将上浮叶块压入蔗糖溶液中;

A4取出叶块,用锋利的刀片与叶块成45°把叶块切成细长条,越细越好;

A5将细叶条转移到盛有叶条洗涤液的容器中,放置30s左右;6片叶可以分3-4批加入到洗涤液中,以材料在溶液中不拥挤为限度;

A6用镊子将每次洗涤过的叶条取出,放入13%甘露醇CPW溶液中,放置5min;3-4批细叶条的原生质体依次收集在同一管溶液中;

A7用镊子去掉叶条,得到油茶原生质体溶液;

2原生质体纯化:

B1在油茶原生质体溶液的底部加入蔗糖溶液,原生质体溶液与蔗糖溶液的体积比是1∶1,漂洗原生质体1min;

B2转移上层原生质体溶液到离心管中,进行离心,去掉上清液;

B3沉淀用等量蔗糖溶液悬浮,再离心,去掉上清液;

B4沉淀用等量蔗糖溶液悬浮,再离心,留下上清液,去掉沉淀;

B5上清液经再次离心,去掉上清液,沉淀用少量的质量-体积百分比 浓度为18%蔗糖溶液悬浮原生质体并转移到离心管中;

B6将原生质体悬浮液加在蔗糖溶液上漂洗1-5min,取出上层液即为纯化的原生质体溶液。

步骤A3和B1中,蔗糖溶液的质量-体积百分比浓度为35%。

步骤A5中,所述的叶条洗涤液的成分是含有0.03%CaCl2、0.1%NaCl和0.075%MgCl2的35%蔗糖溶液,其中,各种成分的浓度均为质量-体积百分比浓度,单位为g/ml。

步骤A6中,所述的13%甘露醇CPW溶液的成分为:10A0mg/L硝酸钾,27.2mg/L碳酸二氢钾,1480.0mg/L二水氯化钙,264.0mg/L七水硫酸镁,0.16mg/L碘化钾,0.025mg/L五水硫酸铜,13%W/V甘露醇。

步骤B2中,离心的速率为1500rpm,时间为8min。

步骤B3中,离心的速率为1000rpm,时间为8min。

步骤B4中,离心的速率为100rpm,时间为1-2min。

步骤B2和B3中,所述的蔗糖溶液的质量-体积百分比浓度为18%。

步骤B5中,离心的速率为500rpm,时间为12min。

步骤B6中,所述的蔗糖溶液的质量-体积百分比浓度为25%。

实施例2

本发明的油茶原生质体的制备和纯化方法的具体步骤如下:

1制备方法:

A1从室外切取油茶一年生枝条,带回水培1-2天;

A2取6片叶,用刀片切去叶片的边缘和叶片主脉,并将叶片每隔1cm的位置切上一些缝隙,但不要切断叶片;

A3将带有缝隙的叶块浸入蔗糖溶液中进行质壁分离1h,期间用镊子将上浮叶块压入蔗糖溶液中;

A4取出叶块,用锋利的刀片与叶块成45o把叶块切成细长条;

A5将细叶条转移到盛有叶条洗涤液的容器中,放置1min;6片叶可以分3-4批加入到洗涤液中,以材料在溶液中不拥挤为限度;

A6用镊子将每次洗涤过的叶条取出,放入13%甘露醇CPW溶液中,放置15min;3-4批细叶条的原生质体依次收集在同一管溶液中;

A7用镊子去掉叶条,得到油茶原生质体溶液;

2原生质体纯化:

B1在油茶原生质体溶液的底部加入蔗糖溶液,原生质体溶液与蔗糖溶液的体积比是1∶1,漂洗原生质体5min;

B2转移上层原生质体溶液到离心管中,进行离心,去掉上清液;

B3沉淀用等量蔗糖溶液悬浮,再离心,去掉上清液;

B4沉淀用等量蔗糖溶液悬浮,再离心,留下上清液,去掉沉淀;

B5上清液经再次离心,去掉上清液,沉淀用少量的质量-体积百分比浓度是18%的蔗糖溶液悬浮原生质体并转移到离心管中;

B6将原生质体悬浮液加在蔗糖溶液上漂洗5min,取出上层液即为纯化的原生质体溶液。

步骤A3和B1中,蔗糖溶液的质量-体积百分比浓度为35%。

步骤A5中,所述的叶条洗涤液的成分是含有0.03%CaCl2、 0.1%NaCl和0.075%MgCl2的35%蔗糖溶液,其中,各种成分的浓度均为质量-体积百分比浓度,单位为g/ml。

步骤A6中,所述的13%甘露醇CPW溶液的成分为:10A0mg/L硝酸钾,27.2mg/L碳酸二氢钾,1480.0mg/L二水氯化钙,264.0mg/L七水硫酸镁,0.16mg/L碘化钾,0.025mg/L五水硫酸铜,13%W/V甘露醇。

步骤B2中,离心的速率为1500rpm,时间为8min。

步骤B3中,离心的速率为1000rpm,时间为8min。

步骤B4中,离心的速率为100rpm,时间为1-2min。

步骤B2和B3中,所述的蔗糖溶液的质量-体积百分比浓度为18%。

步骤B5中,离心的速率为500rpm,时间为12min。

步骤B6中,所述的蔗糖溶液的质量-体积百分比浓度为25%。

实施例3

本发明的油茶原生质体的制备和纯化方法的具体步骤如下:

制备方法;

A从室外切取油茶一年生枝条,带回实验室水培1-2天,B取6片叶,用刀片切去叶片的边缘和叶片主脉,并将叶片每隔0.5-1CM的位置切上一些缝隙,但不要切断叶片。

3.将带有缝隙的叶块浸入35%蔗糖溶液中进行质壁分离0.5-1h左右,期间用镊子将上浮叶块压入蔗糖溶液中。

4.取出叶块放在载玻片上,用锋利的刀片与叶块成45°把叶块切成 0.5mm宽的长条,越细越好。

5.将细叶条转移到盛有3ml叶条洗涤液的试管中,放置30s-1min左右。6片叶可以分3-4批加入到洗涤液中,以材料在溶液中不拥挤为限度。

6.用镊子将每次洗涤过的叶条取出,放入2ml的13%甘露醇CPW溶液中,放置10min左右。3-4批细叶条的原生质体依次收集在同一管溶液中;

7.用镊子去掉叶条,得到油茶原生质体溶液。

原生质体纯化方法:

A用移液枪在油茶原生质体溶液的试管底部放入2ml 35%蔗糖溶液,漂洗原生质体3min左右。

B转移上层原生质体溶液到离心管中,1500rpm离心8min,去掉上清液。

3.沉淀用2ml 18%蔗糖溶液悬浮,1000rpm离心8min,去掉上清液。

4.沉淀用2ml 18%蔗糖溶液悬浮,100rpm离心1-2min,留下上清液,去掉沉淀。

5.上清液经500rpm离心12min,去掉上清液,沉淀用200μL质量-体积百分比浓度为18%蔗糖溶液悬浮原生质体并转移到A5ml的离心管中。

6.将原生质体悬浮液加在质量-体积百分比浓度为25%蔗糖溶液上漂洗3min左右,取出上清液即为纯化的原生质体溶液。

尽管已经示出和描述了本发明的实施例,对于本领域的普通技术人员而言,可以理解在不脱离本发明的原理和精神的情况下可以对这些实施例进行多种变化、修改、替换和变型,本发明的范围由所附权利要求及其等同物限定。

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1、(19)中华人民共和国国家知识产权局 (12)发明专利申请 (10)申请公布号 (43)申请公布日 (21)申请号 201610559094.5 (22)申请日 2016.07.15 (71)申请人 湖南科技学院 地址 425199 湖南省永州市零陵区杨梓塘 路130号 (72)发明人 黄国文 (74)专利代理机构 北京国坤专利代理事务所 (普通合伙) 11491 代理人 郭伟红 (51)Int.Cl. C12N 5/04(2006.01) (54)发明名称 一种油茶原生质体的制备和纯化方法 (57)摘要 本发明公开了一种油茶原生质体的制备和 纯化方法, 属于植物原生质体技术领域。 本发明 的。

2、油茶原生质体的制备和纯化方法与酶法制备 原生质体相比, 本发明制备的原生质体不会受酶 等化学试剂的伤害, 所需时间短, 费用低。 本发明 的油茶原生质体的制备和纯化方法能够为油茶 原生质体的培养、 融合和基因转化等原生质体下 游实验提供大量材料。 权利要求书2页 说明书6页 附图2页 CN 105969718 A 2016.09.28 CN 105969718 A 1.一种油茶原生质体的制备和纯化方法, 其特征在于: 所述方法的具体步骤如下: A制备方法: A1从室外切取油茶一年生枝条, 带回水培1-2天; A2取6片成熟叶, 用刀片切去叶片的边缘和叶片主脉, 并在叶片每隔0.5-1cm的位置。

3、切 上一些缝隙, 但不要切断叶片; A3将带有缝隙的叶块浸入蔗糖溶液中进行质壁分离0.5-1h, 期间用镊子将上浮叶块压 入蔗糖溶液中; A4取出叶块, 用刀片与叶块成45 把叶块切成细长条, 越细越好; A5将细叶条转移到盛有叶条洗涤液的容器中, 放置30s-1min; 6片叶可以分3-4批来切 条加入到洗涤液中, 以材料在洗涤液中不拥挤为限度; A6用镊子将每次洗涤过的叶条取出, 放入13甘露醇CPW溶液中, 放置5-15min; 3-4批 细叶条的原生质体依次收集在同一管溶液中; A7用镊子去掉叶条, 得到油茶原生质体溶液; B原生质体纯化: B1在油茶原生质体溶液的底层加入蔗糖溶液, 。

4、原生质体溶液与蔗糖溶液的体积比是1 1, 漂洗原生质体1-5min; B2转移上层原生质体溶液到离心管中, 进行离心, 去掉上清液; B3沉淀用等量蔗糖溶液悬浮, 再离心, 去掉上清液; B4沉淀用等量蔗糖溶液悬浮, 再离心, 留下上清液, 去掉沉淀; B5上清液经再次离心, 去掉上清液, 沉淀用200 L质量-体积百分比浓度为18蔗糖溶 液悬浮原生质体并转移到离心管中; B6将原生质体悬浮液加在蔗糖溶液上漂洗1-5min,取出上层液即为纯化的原生质体溶 液。 2.如权利要求1所述的油茶原生质体的制备和纯化方法, 其特征在于: 步骤A3和B1中, 蔗糖溶液的质量-体积百分比浓度为35。 3.如。

5、权利要求1所述的油茶原生质体的制备和纯化方法, 其特征在于: 步骤A5中, 所述 的叶条洗涤液的成分是含有0.03CaCl2、 0.1NaCl和0.075MgCl2的35蔗糖溶液, 其 中, 各种成分的浓度均为质量-体积百分比浓度, 单位为g/ml。 4.如权利要求1所述的油茶原生质体的制备和纯化方法, 其特征在于: 步骤A6中, 所述 的13甘露醇CPW溶液的成分为: 101.0mg/L硝酸钾, 27.2mg/L碳酸二氢钾, 1480.0mg/L二水 氯化钙, 264.0mg/L七水硫酸镁, 0.16mg/L碘化钾, 0.025mg/L五水硫酸铜, 13W/V甘露醇。 5.如权利要求1所述的。

6、油茶原生质体的制备和纯化方法, 其特征在于: 步骤B2中, 离心 的速率为1500rpm, 时间为8min; 步骤B3中, 离心的速率为1000rpm, 时间为8min。 6.如权利要求1所述的油茶原生质体的制备和纯化方法, 其特征在于: 步骤B4中, 离心 的速率为100rpm, 时间为1-2min。 7.如权利要求1所述的油茶原生质体的制备和纯化方法, 其特征在于: 步骤B2和B3中, 所述的蔗糖溶液的质量-体积百分比浓度为18。 8.如权利要求1所述的油茶原生质体的制备和纯化方法, 其特征在于: 步骤B5中, 离心 的速率为500rpm, 时间为12min。 权利要求书 1/2 页 2 。

7、CN 105969718 A 2 9.如权利要求1所述的油茶原生质体的制备和纯化方法, 其特征在于: 步骤B6中, 所述 的蔗糖溶液的质量-体积百分比浓度为25。 权利要求书 2/2 页 3 CN 105969718 A 3 一种油茶原生质体的制备和纯化方法 技术领域 0001 本发明涉及植物原生质体技术领域, 尤其涉及一种油茶原生质体的制备和纯化方 法。 背景技术 0002 油茶属常绿小乔木。 因其种子可榨油(茶油)供食用, 故名。 茶油色清味香, 营养丰 富, 耐贮藏, 是优质食用油; 也可作为润滑油、 防锈油用于工业。 茶饼既是农药, 又是肥料, 可 提高农田蓄水能力和防治稻田害虫。 果。

8、皮是提制栲胶的原料。 0003 油茶喜温暖, 怕寒冷, 要求年平均气温1618, 花期平均气温为1213。 突然 的低温或晚霜会造成落花、 落果。 要求有较充足的阳光, 否则只长枝叶, 结果少, 含油率低。 要求水分充足, 年降水量一般在1000毫米以上, 但花期连续降雨, 影响授粉。 要求在坡度和 缓、 侵蚀作用弱的地方栽植, 对土壤要求不甚严格, 一般适宜土层深厚的酸性土, 而不适于 石块多和土质坚硬的地方。 0004 原生质体(protoplast):脱去细胞壁的细胞叫原生质体, 是一生物工程学的概念。 原生质体一词来源于原生质(protoplasm)。 原生质指组成细胞的有生命物质的总。

9、称, 是物 质的概念。 原生质体是组成细胞的一个形态结构单位。 在细胞学历史上, 细胞(cell)一词 是由Hooke提出的, 意为小室。 后来发现了原生质, 对细胞的认识与Hooke时期不同了, 1880年Hanstein提出原生质体一词。 由于细胞一词的出现较原生质体早, 故沿用至今。 0005 植物原生质体在科学研究中具有重要作用, 在研究细胞壁再生机理、 细胞对激素 的作用机理、 体细胞杂种的培育、 转入外源基因培育转基因植株等方面都有应用。 一般制备 原生质体的方法有机械法和酶法。 酶法由于操作简单, 获得的细胞数目多, 目前应用广泛, 但是酶等化学试剂会对细胞产生不良影响, 影响原。

10、生质体的下游实验。 机械法由于制备原 生质体的数量少没有受到重视。 机械法不受酶等试剂的影响, 制备的原生质体形态完整并 且有活性, 所需时间短, 费用低, 是一种很有发展前景的方法。 目前, 油茶原生质体的制备研 究报道很少, 用机械法制备油茶原生质体的研究还没有报道。 发明内容 0006 本发明提供了一种油茶原生质体的制备和纯化方法。 0007 本发明采用如下技术方案: 0008 本发明的油茶原生质体的制备和纯化方法的具体步骤如下: 0009 A制备方法: 0010 A1从室外切取油茶一年生枝条, 带回水培1-2天; 0011 A2取6片成熟叶, 用刀片切去叶片的边缘和叶片主脉, 并在叶片。

11、每隔0.5-1cm的位 置切上一些缝隙, 但不要切断叶片; 0012 A3将带有缝隙的叶块浸入蔗糖溶液中进行质壁分离0.5-1h, 期间用镊子将上浮叶 块压入蔗糖溶液中; 说明书 1/6 页 4 CN 105969718 A 4 0013 A4取出叶块, 用锋利的刀片与叶块成45 把叶块切成细长条, 越细越好; 0014 A5将细叶条转移到盛有3ml叶条洗涤液的容器中, 放置30s-1min; 6片叶可以分3-4 批来切条加入到洗涤液中, 以材料在溶液中不拥挤为限度; 0015 A6用镊子将每次洗涤过的叶条取出, 放入2ml13甘露醇CPW溶液中, 放置5- 15min; 3-4批细叶条的原生。

12、质体依次收集在同一管溶液中; 0016 A7用镊子去掉叶条, 得到油茶原生质体溶液。 0017 2原生质体纯化: 0018 B1在油茶原生质体溶液的底部加入蔗糖溶液, 原生质体溶液与蔗糖溶液的体积比 是1 1, 漂洗原生质体1-5min; 0019 B2转移上层原生质体溶液到离心管中, 进行离心, 去掉上清液; 0020 B3沉淀用等量蔗糖溶液悬浮, 再离心, 去掉上清液; 0021 B4沉淀用等量蔗糖溶液悬浮, 再离心, 留下上清液, 去掉沉淀; 0022 B5上清液经再次离心, 去掉上清液, 沉淀用少量的质量-体积百分比浓度是18蔗 糖溶液悬浮并转移到新离心管中; 0023 B6将原生质体。

13、悬浮液加在蔗糖溶液上漂洗1-5min,取出上层液即为纯化的原生质 体溶液。 0024 步骤A3和B1中, 蔗糖溶液的质量-体积百分比浓度为35。 0025 步骤A5中, 所述的叶条洗涤液的成分是含有0.03CaCl2、 0.1NaCl和0.075 MgCl2的35蔗糖溶液, 其中, 各种成分的浓度均为质量-体积百分浓度, 单位为g/ml。 0026 步骤A6中, 所述的13甘露醇CPW溶液的成分为: 10A0mg/L硝酸钾, 27.2mg/L碳酸 二氢钾, 1480.0mg/L二水氯化钙, 264.0mg/L七水硫酸镁, 0.16mg/L碘化钾, 0.025mg/L五水 硫酸铜, 13W/V甘。

14、露醇。 0027 步骤B2中, 离心的速率为1500rpm, 时间为8min。 0028 步骤B3中, 离心的速率为1000rpm, 时间为8min 0029 步骤B4中, 离心的速率为100rpm, 时间为1-2min。 0030 步骤B2和B3中, 所述的蔗糖溶液的质量-体积百分比浓度为18。 0031 步骤B5中, 离心的速率为500rpm, 时间为12min。 0032 步骤B6中, 所述的蔗糖溶液的质量-体积百分比浓度为25。 0033 本发明的积极效果如下: 0034 本发明的油茶原生质体的制备和纯化方法与酶法制备原生质体相比, 本发明制备 的原生质体不会受酶等化学试剂的伤害, 所。

15、需时间短, 费用低。 本发明的油茶原生质体的制 备和纯化方法能够为油茶原生质体的培养、 融合和基因转化等原生质体下游实验提供大量 材料。 附图说明 0035 图1是机械法制备的原生质体的显微镜图。 0036 原生质体, 杂质。 0037 取一年生的油茶枝条带入室内水培1-2天, 能够促使叶片细胞中淀粉转化成可溶 性糖, 增加细胞对逆境的抵抗力, 有利于叶片细胞在质量-体积百分比为35蔗糖溶液中进 说明书 2/6 页 5 CN 105969718 A 5 行质壁分离的条件下保持细胞的活性。 把经过质壁分离的成熟油茶叶片切条后放入洗涤液 中30s-1min, 能够除去细胞中大量的果胶、 多糖、 蛋。

16、白质和单宁等物质和叶片碎块; 同时洗 涤液中含有较高浓度的Na+能够减少细胞壁中果胶和多糖等物质与原生质体的相互作用, Ca2+和Mg2+能够保持原生质膜的稳定性并且能够使果胶等物质聚集, 使个得细叶条从洗涤 液转移到13甘露醇CPW溶液中进行质壁分离复员的时候, 从叶片的切口处顺利流出原生 质体干净得多了。 另外一方面, 质壁分离后的细叶条分批次地转移到少量的13甘露醇CPW 溶液(2ml)中通过质壁分离复员方法可以收集到6片油茶叶(1.2g左右)的原生质体, 这样可 以减少细叶条中果胶和多糖等物质的流出, 但不影响细胞的流出。 所以, 用这种方法制备的 原生质体溶液中细胞数量多并且形态清晰。

17、(图1), 杂质相对较少, 有利于原生质体的纯化。 0038 图2是本发明实施例3制备、 纯化的原生质体的显微镜图。 0039 原生质体,杂质 0040 用13甘露醇CPW溶液收集到的原生质体溶液(2ml), 体积较大并且还存在杂质 多。 在纯化过程中, 这种溶液经过3次降速离心和2次降低浓度的蔗糖溶液漂浮去掉了大量 的杂质, 获得了较纯的原生质体。 原生质体溶液的体积由纯化前的2ml降低到了200 L, 使得 在溶液中的原生质体的密度大大地提高了(图2), 密度为3.1106/ml, 杂质少了。 纯化后的 原生质体的形态完整, 细胞膜边缘干净。 用这种方法制备的原生质体的数量能够达到5.1 。

18、105个/gFW, 因此.用这种方法制备原生质体具有应用价值。 0041 图3是经苔盼蓝染色的原生质体的显微镜图。 0042 原生质体 0043 用苔盼蓝染色原生质体的的方法: 取含质量-体积百分数为18蔗糖的原生质体 溶液1滴, 滴在载玻片上。 用浓度为0.4的苔盼蓝溶液染色, 使染色的终浓度达到0.04。 染色3-5min。 时间不能过长, 否则活细胞也会被染色。 放在显微镜下观察, 染上蓝色的为死 细胞, 没有染上颜色的为活细胞。 图3显示, 原生质体没有变蓝色, 说明用这种方法制备的原 生质体是有活力的。 0044 图4是融合的原生质体的显微镜图。 0045 2个细胞正在融合的原生质体。

19、 0046 用PEG结合高Ca2+-高pH的诱导融合法来融合油茶叶片的原生质体。 步骤是: 用胶 头滴管取原生质体溶液, 滴2滴在一块干净的载玻片上静置8-10min, 使原生质体在载玻片 上形成一薄层。 将2滴PEG融合液滴在原生质体上, 静置10-15min, 使原生质体之间粘连在 一起。 每隔5min滴2滴高Ca2+-高pH溶液在原生质体上, 进行3次共6滴。 盖上盖玻片, 用吸 水纸吸去多余的溶液, 置于显微镜下观察细胞融合情况(图4)。 可以观察到2个细胞融合的 百分数是11, 说明用这种方法制备的原生质体是有活性的。 原生质体经过苔盼蓝染色和 细胞融合实验, 结果都表明用这种方法制。

20、备的原生质体是有活性的, 因此, 用这种机械法制 备的原生质体可以用于细胞培养、 融合和转基因等原生质体的下游实验。 具体实施方式 0047 下面的实施例是对本发明的进一步详细描述。 0048 实施例1 0049 本发明的油茶原生质体的制备和纯化方法的具体步骤如下: 说明书 3/6 页 6 CN 105969718 A 6 0050 1制备方法: 0051 A1从室外切取油茶一年生枝条, 带回水培1-2天; 0052 A2取6片成熟叶, 用刀片切去叶片的边缘和叶片主脉, 并在叶片每隔0.5cm的位置 切上一些缝隙, 但不要切断叶片; 0053 A3将带有缝隙的叶块浸入蔗糖溶液中进行质壁分离0.。

21、5h, 期间用镊子将上浮叶块 压入蔗糖溶液中; 0054 A4取出叶块, 用锋利的刀片与叶块成45 把叶块切成细长条, 越细越好; 0055 A5将细叶条转移到盛有叶条洗涤液的容器中, 放置30s左右; 6片叶可以分3-4批加 入到洗涤液中, 以材料在溶液中不拥挤为限度; 0056 A6用镊子将每次洗涤过的叶条取出, 放入13甘露醇CPW溶液中, 放置5min; 3-4批 细叶条的原生质体依次收集在同一管溶液中; 0057 A7用镊子去掉叶条, 得到油茶原生质体溶液; 0058 2原生质体纯化: 0059 B1在油茶原生质体溶液的底部加入蔗糖溶液, 原生质体溶液与蔗糖溶液的体积比 是1 1, 。

22、漂洗原生质体1min; 0060 B2转移上层原生质体溶液到离心管中, 进行离心, 去掉上清液; 0061 B3沉淀用等量蔗糖溶液悬浮, 再离心, 去掉上清液; 0062 B4沉淀用等量蔗糖溶液悬浮, 再离心, 留下上清液, 去掉沉淀; 0063 B5上清液经再次离心, 去掉上清液, 沉淀用少量的质量-体积百分比浓度为18蔗 糖溶液悬浮原生质体并转移到离心管中; 0064 B6将原生质体悬浮液加在蔗糖溶液上漂洗1-5min,取出上层液即为纯化的原生质 体溶液。 0065 步骤A3和B1中, 蔗糖溶液的质量-体积百分比浓度为35。 0066 步骤A5中, 所述的叶条洗涤液的成分是含有0.03Ca。

23、Cl2、 0.1NaCl和0.075 MgCl2的35蔗糖溶液, 其中, 各种成分的浓度均为质量-体积百分比浓度, 单位为g/ml。 0067 步骤A6中, 所述的13甘露醇CPW溶液的成分为: 10A0mg/L硝酸钾, 27.2mg/L碳酸 二氢钾, 1480.0mg/L二水氯化钙, 264.0mg/L七水硫酸镁, 0.16mg/L碘化钾, 0.025mg/L五水 硫酸铜, 13W/V甘露醇。 0068 步骤B2中, 离心的速率为1500rpm, 时间为8min。 0069 步骤B3中, 离心的速率为1000rpm, 时间为8min。 0070 步骤B4中, 离心的速率为100rpm, 时间。

24、为1-2min。 0071 步骤B2和B3中, 所述的蔗糖溶液的质量-体积百分比浓度为18。 0072 步骤B5中, 离心的速率为500rpm, 时间为12min。 0073 步骤B6中, 所述的蔗糖溶液的质量-体积百分比浓度为25。 0074 实施例2 0075 本发明的油茶原生质体的制备和纯化方法的具体步骤如下: 0076 1制备方法: 0077 A1从室外切取油茶一年生枝条, 带回水培1-2天; 0078 A2取6片叶, 用刀片切去叶片的边缘和叶片主脉, 并将叶片每隔1cm的位置切上一 说明书 4/6 页 7 CN 105969718 A 7 些缝隙, 但不要切断叶片; 0079 A3将。

25、带有缝隙的叶块浸入蔗糖溶液中进行质壁分离1h, 期间用镊子将上浮叶块压 入蔗糖溶液中; 0080 A4取出叶块, 用锋利的刀片与叶块成45o把叶块切成细长条; 0081 A5将细叶条转移到盛有叶条洗涤液的容器中, 放置1min; 6片叶可以分3-4批加入 到洗涤液中, 以材料在溶液中不拥挤为限度; 0082 A6用镊子将每次洗涤过的叶条取出, 放入13甘露醇CPW溶液中, 放置15min; 3-4 批细叶条的原生质体依次收集在同一管溶液中; 0083 A7用镊子去掉叶条, 得到油茶原生质体溶液; 0084 2原生质体纯化: 0085 B1在油茶原生质体溶液的底部加入蔗糖溶液, 原生质体溶液与蔗。

26、糖溶液的体积比 是1 1, 漂洗原生质体5min; 0086 B2转移上层原生质体溶液到离心管中, 进行离心, 去掉上清液; 0087 B3沉淀用等量蔗糖溶液悬浮, 再离心, 去掉上清液; 0088 B4沉淀用等量蔗糖溶液悬浮, 再离心, 留下上清液, 去掉沉淀; 0089 B5上清液经再次离心, 去掉上清液, 沉淀用少量的质量-体积百分比浓度是18的 蔗糖溶液悬浮原生质体并转移到离心管中; 0090 B6将原生质体悬浮液加在蔗糖溶液上漂洗5min,取出上层液即为纯化的原生质体 溶液。 0091 步骤A3和B1中, 蔗糖溶液的质量-体积百分比浓度为35。 0092 步骤A5中, 所述的叶条洗涤。

27、液的成分是含有0.03CaCl2、 0.1NaCl和0.075 MgCl2的35蔗糖溶液, 其中, 各种成分的浓度均为质量-体积百分比浓度, 单位为g/ml。 0093 步骤A6中, 所述的13甘露醇CPW溶液的成分为: 10A0mg/L硝酸钾, 27.2mg/L碳酸 二氢钾, 1480.0mg/L二水氯化钙, 264.0mg/L七水硫酸镁, 0.16mg/L碘化钾, 0.025mg/L五水 硫酸铜, 13W/V甘露醇。 0094 步骤B2中, 离心的速率为1500rpm, 时间为8min。 0095 步骤B3中, 离心的速率为1000rpm, 时间为8min。 0096 步骤B4中, 离心的。

28、速率为100rpm, 时间为1-2min。 0097 步骤B2和B3中, 所述的蔗糖溶液的质量-体积百分比浓度为18。 0098 步骤B5中, 离心的速率为500rpm, 时间为12min。 0099 步骤B6中, 所述的蔗糖溶液的质量-体积百分比浓度为25。 0100 实施例3 0101 本发明的油茶原生质体的制备和纯化方法的具体步骤如下: 0102 制备方法; 0103 A从室外切取油茶一年生枝条, 带回实验室水培1-2天, B取6片叶, 用刀片切去叶片 的边缘和叶片主脉, 并将叶片每隔0.5-1CM的位置切上一些缝隙, 但不要切断叶片。 0104 3.将带有缝隙的叶块浸入35蔗糖溶液中进。

29、行质壁分离0.5-1h左右, 期间用镊子 将上浮叶块压入蔗糖溶液中。 0105 4.取出叶块放在载玻片上, 用锋利的刀片与叶块成45 把叶块切成0.5mm宽的长 说明书 5/6 页 8 CN 105969718 A 8 条, 越细越好。 0106 5.将细叶条转移到盛有3ml叶条洗涤液的试管中, 放置30s-1min左右。 6片叶可以 分3-4批加入到洗涤液中, 以材料在溶液中不拥挤为限度。 0107 6.用镊子将每次洗涤过的叶条取出, 放入2ml的13甘露醇CPW溶液中, 放置10min 左右。 3-4批细叶条的原生质体依次收集在同一管溶液中; 0108 7.用镊子去掉叶条, 得到油茶原生质。

30、体溶液。 0109 原生质体纯化方法: 0110 A用移液枪在油茶原生质体溶液的试管底部放入2ml35蔗糖溶液, 漂洗原生质 体3min左右。 0111 B转移上层原生质体溶液到离心管中, 1500rpm离心8min, 去掉上清液。 0112 3.沉淀用2ml18蔗糖溶液悬浮, 1000rpm离心8min, 去掉上清液。 0113 4.沉淀用2ml18蔗糖溶液悬浮, 100rpm离心1-2min, 留下上清液, 去掉沉淀。 0114 5.上清液经500rpm离心12min, 去掉上清液, 沉淀用200 L质量-体积百分比浓度为 18蔗糖溶液悬浮原生质体并转移到A5ml的离心管中。 0115 6.将原生质体悬浮液加在质量-体积百分比浓度为25蔗糖溶液上漂洗3min左 右,取出上清液即为纯化的原生质体溶液。 0116 尽管已经示出和描述了本发明的实施例, 对于本领域的普通技术人员而言, 可以 理解在不脱离本发明的原理和精神的情况下可以对这些实施例进行多种变化、 修改、 替换 和变型, 本发明的范围由所附权利要求及其等同物限定。 说明书 6/6 页 9 CN 105969718 A 9 图1 图2 说明书附图 1/2 页 10 CN 105969718 A 10 图3 图4 说明书附图 2/2 页 11 CN 105969718 A 11 。

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