技术领域
本发明属于生物制药领域,更具体地,本发明涉及转铁蛋白(Tf)-蛙卵核糖核酸酶(Onconase)偶联物及其制备方法和用途。
背景技术
蛙卵核糖核酸酶(Onconase又称:P30 protein,Ranpirnase,简称Onc)是从豹蛙(Rana pipiens)卵母细胞和早期胚胎中分离的一种核酸酶,属于RNaseA超家族。研究表明,Onc通过胞吞作用进入细胞,在胞浆内选择性地降解tRNA,抑制蛋白合成进而抑制细胞增殖和引起细胞凋亡。体外实验表明,Onc对多种肿瘤细胞具有抗增殖和细胞毒性作用,如:人的前列腺癌细胞、胰腺癌细胞、白血病细胞等。小鼠模型的体内实验证明,Onc可以抑制肿瘤生长,延长小鼠存活时间,增强多种抗肿瘤药物的效果。
目前,Onc作为一种抗恶性间质细胞瘤的药物已经进入三期临床,可能是一种潜在的具有良好前景的抗肿瘤药物。但由于该蛋白为非人源性蛋白,因此在人体中使用时仍会产生一定的免疫反应和副反应(如肾损伤),同时Onc对于一些正常细胞也有一定的杀伤效果,要克服这些缺点就需要增强Onc对肿瘤细胞的特异性杀伤作用,提高Onc进入肿瘤细胞的效率。因此,仍需要提高Onc特异性进入肿瘤细胞的能力,以减少其副作用。
发明内容
本发明的目的在于提供一种转铁蛋白(Tf)-蛙卵核糖核酸酶(Onconase)偶联物。
本发明的另一目的在于提供所述的转铁蛋白-蛙卵核糖核酸酶偶联物的制备方法和用途。
在本发明的第一方面,提供一种分离的转铁蛋白(Tf)-蛙卵核糖核酸酶(Onconase)偶联物,所述的偶联物含有1个转铁蛋白和1-5个与所述转铁蛋白偶联的(优选的是2-4个;更优选2-3个)蛙卵核糖核酸酶,所述偶联物的分子量在89-137KD。
在另一优选例中,所述的转铁蛋白具有SEQ ID NO:2所示的氨基酸序列;或者所述的蛙卵核糖核酸酶具有SEQ ID NO:4所示的氨基酸序列。
在另一优选例中,所述的偶联物是用以下方法制得的:
(1)利用N-羟基琥珀酰亚胺3-(2-吡啶二硫代基)丙酸酯(SPDP)和2-Iminothiolane·HCl(也称为Traut试剂)将转铁蛋白和蛙卵核糖核酸酶相偶联;和
(2)分离获得所述的转铁蛋白-蛙卵核糖核酸酶偶联物。
在本发明的第二方面,提供一种制备所述的转铁蛋白-蛙卵核糖核酸酶偶联物的方法,所述方法包括:
(1)利用N-羟基琥珀酰亚胺3-(2-吡啶二硫代基)丙酸酯和2-Iminothiolane·HCl将转铁蛋白和蛙卵核糖核酸酶相偶联;和
(2)分离获得所述的转铁蛋白-蛙卵核糖核酸酶偶联物。
在另一优选例中,所述方法包括:
(a)将转铁蛋白与N-羟基琥珀酰亚胺3-(2-吡啶二硫代基)丙酸酯接触,获得经N-羟基琥珀酰亚胺3-(2-吡啶二硫代基)丙酸酯处理的转铁蛋白;
(b)将蛙卵核糖核酸酶与2-Iminothiolane·HCl接触,获得经2-Iminothiolane·HCl处理的蛙卵核糖核酸酶蛋白;
(c)将步骤(a)获得的经N-羟基琥珀酰亚胺3-(2-吡啶二硫代基)丙酸酯处理的转铁蛋白和步骤(b)获得的经2-Iminothiolane·HCl处理的蛙卵核糖核酸酶蛋白混合,从而使得转铁蛋白和蛙卵核糖核酸酶相偶联;和
(d)收集分子量为89-137kD的偶联物。
在另一优选例中,经离子交换去除游离的转铁蛋白和Onc,从而收集分子量为89-137kD的偶联物。
在另一优选例中,在步骤(a)中,转铁蛋白与N-羟基琥珀酰亚胺3-(2-吡啶二硫代基)丙酸酯的摩尔比是1∶(5-10)。
在另一优选例中,在步骤(b)中,蛙卵核糖核酸酶与2-Iminothiolane·HCl的摩尔比是1∶(5-10)。
在另一优选例中,在步骤(c)中,步骤(a)获得的经N-羟基琥珀酰亚胺3-(2-吡啶二硫代基)丙酸酯处理的转铁蛋白和步骤(b)获得的经2-Iminothiolane·HCl处理的蛙卵核糖核酸酶蛋白的摩尔比是1∶(1-4)。
在另一优选例中,步骤(a)获得的经N-羟基琥珀酰亚胺3-(2-吡啶二硫代基)丙酸酯处理的转铁蛋白和步骤(b)获得的经2-Iminothiolane·HCl处理的蛙卵核糖核酸酶蛋白的摩尔比约是1∶3。
在本发明的第三方面,提供所述的转铁蛋白-蛙卵核糖核酸酶偶联物的用途,用于制备抑制肿瘤的组合物。
在另一优选例中,所述的肿瘤是高表达转铁蛋白受体的肿瘤。
在本发明的第四方面,提供一种抑制肿瘤的组合物,所述的组合物含有:
(i)有效量的所述的转铁蛋白-蛙卵核糖核酸酶偶联物;和
(ii)药学上可接受的载体。
在本发明的第五方面,提供一种体外(优选非治疗性地)抑制肿瘤细胞生长的方法,所述的方法包括利用所述的转铁蛋白-蛙卵核糖核酸酶偶联物处理肿瘤细胞。
本发明的其它方面由于本文的公开内容,对本领域的技术人员而言是显而易见的。
附图说明
图115%SDS-PAGE凝胶电泳显示了本发明蛙卵核糖核酸酶表达纯化效果蛋白凝胶图。其中,
泳道1为诱导前菌体总蛋白;
泳道2为诱导2.5h后菌体总蛋白;
泳道3为诱导后菌体包涵体;
泳道4为复性并纯化后Onc(上样量2μg);
泳道5为蛋白分子量标准;
泳道6为RNase A纯品(上样量1.5μg)。
图2(a)15%SDS-PAGE凝胶电泳显示了转铁蛋白与蛙卵核糖核酸酶偶联效果蛋白凝胶图。其中,
泳道1为非还原的Onc纯品(上样量2μg);
泳道2为非还原的Tf纯品(上样量2μg);
泳道3为非还原的Onc-Tf(上样量4μg);
泳道4为还原的Onc纯品(上样量2μg);
泳道5为还原的Tf纯品(上样量2μg);
泳道6为还原的Onc-Tf(上样量4μg);
泳道7为蛋白分子量标准。
图2(b)10%SDS-PAGE凝胶电泳进一步显示了转铁蛋白与蛙卵核糖核酸酶偶联蛋白分子量分布。其中,
泳道1为非还原的Tf纯品(上样量2μg);
泳道2为非还原的Onc-Tf(上样量4μg);
泳道3为还原的Tf纯品(上样量2μg);
泳道4为蛋白分子量标准。
图3显示了MTT法检测采用SPDP和2-Iminothiolane·HCl作为偶联剂获得的Tf-Onc偶联物和Onc对小鼠骨髓瘤细胞SP2/0细胞毒性效果图。
图4显示了MTT法检测单单采用SPDP作为偶联剂获得的Tf-Onc偶联物和Onc对小鼠骨髓瘤细胞SP2/0细胞毒性效果图。
图5显示了MTT法检测采用SPDP和2-Iminothiolane·HCl作为偶联剂获得的Tf-Onc偶联物和Onc对人神经母细胞瘤SH-SY5Y细胞毒性效果图。
具体实施方式
针对目前现有技术中蛙卵核糖核酸酶对于肿瘤细胞的特异性不高,造成杀伤一些正常细胞的缺陷,本发明人经广泛的研究以及反复的选择和试验,首次制成了一种高度纯化的转铁蛋白-蛙卵核糖核酸酶偶联物。在该偶联物中,转铁蛋白可通过转铁蛋白受体介导的胞体转运作用进入到肿瘤细胞,将蛙卵核糖核酸酶带入肿瘤细胞,发挥杀伤肿瘤细胞的作用。本发明的偶联物中,每个转铁蛋白分子上偶联有1-5个蛙卵核糖核酸酶,因此分子大小适中,易于穿透肿瘤细胞的细胞膜而进入到细胞。在此基础上完成了本发明。
本发明的主旨在于利用转铁蛋白作为药物载体,将Onc输送到这些肿瘤细胞的表面,可以增强Onc的内吞,改善它的专一性,从而扩大Onc治疗肿瘤的范围,增强药效并减少其副作用。
本发明主要基于许多肿瘤细胞代谢旺盛,高表达转铁蛋白受体的特点(通常肿瘤细胞表达10,000至100,000个TfR1,而TfR1在正常细胞上低表达或者未检测到有表达,参见ZHONGMING QIAN等,Targeted drug delivery via thetransferrin receptor-mediated endocytosis pathway.Pharmacol Rev54:561-587,2002),将转铁蛋白和蛙卵核糖核酸酶相偶联,该偶联物兼具有两者的生物学功能,既可通过转铁蛋白将该偶联物特异性地结合到高表达转铁蛋白受体的肿瘤细胞上,通过胞吞作用进入细胞后,该偶联物利用蛙卵核糖核酸酶的细胞毒性作用,杀死细胞。所以该偶联物可以特异性地结合到肿瘤细胞上,大大提高蛙卵核糖核酸酶进入肿瘤细胞的效率和杀肿瘤细胞的特异性,增强对肿瘤细胞的杀伤效果、减少蛙卵核糖核酸酶的副作用。本发明的偶联物特别适合于各种高表达转铁蛋白受体类型的肿瘤的治疗,例如(但不限于)脑瘤、白血病等的治疗。
转铁蛋白
转铁蛋白(Transferrin,简称Tf)是一种分子量约为77kD,可与铁离子结合的糖蛋白。结合了铁离子的转铁蛋白可特异性地与其受体(TransferrinReceptor 1,简称TfR1)结合,介导铁离子的胞内转运。TfR1在肿瘤细胞上高表达,因而可转运更多的转铁蛋白进入到肿瘤细胞。
在本发明中,所用的转铁蛋白可以是天然存在的,比如其可被分离或纯化自动物。此外,所述的转铁蛋白也可以是人工制备的,比如可以根据常规的基因工程重组技术来生产重组转铁蛋白。
任何适合的转铁蛋白均可用于本发明。所述的转铁蛋白包括全长的转铁蛋白或其生物活性片段。优选的,所述的转铁蛋白的氨基酸序列可以与SEQ ID NO:2所示的序列基本上相同。
经过一个或多个氨基酸残基的取代、缺失或添加而形成的转铁蛋白的氨基酸序列也包括在本发明中。转铁蛋白或其生物活性片段包括一部分保守氨基酸的替代序列,所述经氨基酸替换的序列并不影响其活性或保留了其部分的活性。适当替换氨基酸是本领域的公知的技术,所述技术可以很容易地被实施并且确保不改变所得分子的生物活性。这些技术使本领域人员认识到,一般来说,在一种多肽的非必要区域改变单个氨基酸基本上不会改变生物活性。见Watson等Molecular Biology of The Gene,第四版,1987,The Benjamin/CummingsPub.Co.P224。
任何一种转铁蛋白的生物活性片段都可以应用到本发明中。在这里,转铁蛋白的生物活性片段的含义是指作为一种多肽,其仍然能保持全长的转铁蛋白的全部或部分功能。通常情况下,所述的生物活性片段至少保持50%的全长转铁蛋白的活性。在更优选的条件下,所述活性片段能够保持全长转铁蛋白的60%、70%、80%、90%、95%、99%、或100%的活性。
本发明也可采用经修饰或改良的转铁蛋白,比如,可采用为了促进其半衰期、有效性、代谢、和/或蛋白的效力而加以修饰或改良的转铁蛋白。所述经过修饰或改良的转铁蛋白或者基因可以是与天然存在的转铁蛋白或基因虽然具有一定的不同点,但也能抑制肿瘤细胞,且不会带来其它不良影响或毒性。也就是说,任何不影响转铁蛋白的生物活性或者说是基因的生物功能的变化形式都可用于本发明中。
所述的转铁蛋白可以是获自商业购买的途径,作为本发明的一个实例,所述的转铁蛋白购自CALBIOCHEM。
蛙卵核糖核酸酶
所述的蛙卵核糖核酸酶是一种对于抑制肿瘤细胞有用的酶,其可在胞浆内选择性地降解tRNA,抑制蛋白合成进而抑制细胞增殖和引起细胞凋亡。
在本发明中,所用的蛙卵核糖核酸酶可以是天然存在的,比如其可被分离或纯化自动物。此外,所述的蛙卵核糖核酸酶也可以是人工制备的,比如可以根据常规的基因工程重组技术来生产重组蛙卵核糖核酸酶。优选的,本发明可采用重组的蛙卵核糖核酸酶。
任何适合的蛙卵核糖核酸酶均可用于本发明。所述的蛙卵核糖核酸酶包括全长的蛙卵核糖核酸酶或其生物活性片段。优选的,所述的蛙卵核糖核酸酶的氨基酸序列可以与SEQ ID NO:4所示的序列基本上相同。
经过一个或多个氨基酸残基的取代、缺失或添加而形成的蛙卵核糖核酸酶的氨基酸序列也包括在本发明中。蛙卵核糖核酸酶或其生物活性片段包括一部分保守氨基酸的替代序列,所述经氨基酸替换的序列并不影响其活性或保留了其部分的活性。适当替换氨基酸是本领域的公知的技术,所述技术可以很容易地被实施并且确保不改变所得分子的生物活性。这些技术使本领域人员认识到,一般来说,在一种多肽的非必要区域改变单个氨基酸基本上不会改变生物活性。见Watson等Molecular Biology of The Gene,第四版,1987,TheBenjamin/Cummings Pub.Co.P224。
任何一种蛙卵核糖核酸酶的生物活性片段都可以应用到本发明中。在这里,蛙卵核糖核酸酶的生物活性片段的含义是指作为一种多肽,其仍然能保持全长的蛙卵核糖核酸酶的全部或部分功能。通常情况下,所述的生物活性片段至少保持50%的全长蛙卵核糖核酸酶的活性。在更优选的条件下,所述活性片段能够保持全长蛙卵核糖核酸酶的60%、70%、80%、90%、95%、99%、或100%的活性。
本发明也可采用经修饰或改良的蛙卵核糖核酸酶,比如,可采用为了延长其半衰期、改善其稳定性或增强其杀伤肿瘤细胞能力而加以修饰或改良的蛙卵核糖核酸酶。所述经过修饰或改良的蛙卵核糖核酸酶或者基因可以是与天然存在的蛙卵核糖核酸酶或基因虽然具有一定的不同点,但也能杀伤肿瘤细胞,且不会带来其它不良影响或毒性。也就是说,任何不影响蛙卵核糖核酸酶的生物活性或者说是基因的生物功能的变化形式都可用于本发明中。
作为本发明的一个实例,所述的蛙卵核糖核酸酶是重组表达的,所述的蛙卵核糖核酸酶的编码基因全长315bp,编码104个AA的一个多肽,该基因如SEQ ID NO:3所示,其编码的蛋白如SEQ ID NO:4所示。
所述的蛙卵核糖核酸酶可通过常规的基因工程方法生产,一般来说有以下步骤:
(1).用含有蛙卵核糖核酸酶编码基因的重组表达载体转化或转导合适的宿主细胞;
(2).在合适的培养基中培养的宿主细胞;
(3).从培养基或细胞中分离、纯化蛋白质。
偶联物
本发明提供了一种转铁蛋白-蛙卵核糖核酸酶偶联物,所述偶联物的分子量在89-137KD,并且,每个转铁蛋白分子上偶联有1-5个蛙卵核糖核酸酶。
本发明人在研究中发现,可穿过细胞膜进入到细胞的分子必需满足一定的大小,如果转铁蛋白上偶联的蛙卵核糖核酸酶分子过多,不仅导致分子结构过大,还会影响到转铁蛋白与肿瘤细胞膜上的转铁蛋白受体的结合,效果不理想;如果多个转铁蛋白偶联一个或多个蛙卵核糖核酸酶,则导致分子体积过大,难以穿透血管壁而进入到肿瘤组织内。因此,在制备偶联物的过程中,需要控制获得的偶联物含有一个转铁蛋白(约77KD)以及1或若干个(优选1-5个)蛙卵核糖核酸酶(约12KD),以使得偶联物能够顺利地进入到肿瘤细胞并发挥良好的杀伤肿瘤细胞的效果。
考虑到偶联物的大小以及杀伤肿瘤细胞的效力,优选的是每个转铁蛋白分子上偶联有2-4个蛙卵核糖核酸酶;更优选的是每个转铁蛋白分子上偶联有2-3个蛙卵核糖核酸酶。
本发明还提供了所述的转铁蛋白-蛙卵核糖核酸酶偶联物的用途,用于制备抑制肿瘤(肿瘤细胞)的组合物。优选的,所述的肿瘤是高表达转铁蛋白受体的肿瘤;肿瘤转铁蛋白受体表达水平越高,本发明的偶联物的效果越好。
偶联物的制备方法
本发明人在研究中发现,单采用SPDP作为偶联剂来制备转铁蛋白-蛙卵核糖核酸酶偶联物,获得的偶联物随机性大、结构不一,分子量大小差别较大,不利于纯化,且偶联物进入到肿瘤细胞的比例低。
本发明人进行了长期的研究和改进,找到了一种可制备符合要求的转铁蛋白-蛙卵核糖核酸酶偶联物的方法,所述方法包括:
(1)利用N-羟基琥珀酰亚胺3-(2-吡啶二硫代基)丙酸酯(SPDP)和2-Iminothiolane·HCl将转铁蛋白和蛙卵核糖核酸酶相偶联;和
(2)分离获得所述的转铁蛋白-蛙卵核糖核酸酶偶联物。
作为本发明的优选方式,所述方法包括:
(a)将转铁蛋白与N-羟基琥珀酰亚胺3-(2-吡啶二硫代基)丙酸酯(SPDP)接触,获得经N-羟基琥珀酰亚胺3-(2-吡啶二硫代基)丙酸酯处理的转铁蛋白;
(b)将蛙卵核糖核酸酶与2-Iminothiolane·HCl接触,获得经2-Iminothiolane·HCl处理的蛙卵核糖核酸酶蛋白;
(c)将步骤(a)获得的经N-羟基琥珀酰亚胺3-(2-吡啶二硫代基)丙酸酯处理的转铁蛋白和步骤(b)获得的经2-Iminothiolane·HCl处理的蛙卵核糖核酸酶蛋白混合,从而使得转铁蛋白和蛙卵核糖核酸酶相偶联;和
(d)收集分子量为89-137kD的偶联物。
将转铁蛋白用N-羟基琥珀酰亚胺3-(2-吡啶二硫代基)丙酸酯处理后与经过2-Iminothiolane处理的蛙卵核糖核酸酶蛋白进行偶联,其结果获得的大多偶联产物分子量大小在89-137KD,也即大多数的偶联物中含有1个转铁蛋白分子(约77KD)和1-5个蛙卵核糖核酸酶分子(1个蛙卵核糖核酸酶分子约12KD)。该偶联物具有良好的进入肿瘤细胞的能力以及良好的杀伤肿瘤细胞的能力。并且,所述的偶联物由于结构稳定且分子量较集中地处于一定范围内,还有利于后续的纯化。
作为本发明的优选方式,偶联剂处理时,转铁蛋白与偶联剂N-羟基琥珀酰亚胺3-(2-吡啶二硫代基)丙酸酯的摩尔比是1∶(5-10),蛙卵核糖核酸酶与偶联剂2-Iminothiolane·HCl的摩尔比是1∶(5-10),按照该比例进行处理可在最终获得更为理想的偶联产物。
作为本发明的优选方式,在步骤(c)中,步骤(a)获得的经N-羟基琥珀酰亚胺3-(2-吡啶二硫代基)丙酸酯处理的转铁蛋白和步骤(b)获得的经2-Iminothiolane处理的蛙卵核糖核酸酶蛋白的摩尔比是1∶(2-4);更优选的摩尔比约是1∶3。
作为本发明的优选方式,在采用SPDP处理转铁蛋白后,为了去除杂质并保留经处理的转铁蛋白,可采用常规的纯化方法进行纯化,所述的纯化方法包括但不限于:层析法、透析法。此外,在采用2-Iminothiolane·HCl处理蛙卵核糖核酸酶后、或在经偶联剂处理的转铁蛋白与经偶联剂处理的蛙卵核糖核酸酶混合并发生偶联反应后也可进行纯化以获得较纯的中间产物或产品。
作为本发明的优选方式,在步骤(d)中,采用强阳离子交换层析去除游离的转铁蛋白和Onc,从而收集分子量为89-137kD的偶联物。所述离子交换方法得率高、纯度高。
偶联产物的鉴定可采用本领域常用的技术,例如电泳,通过观察电泳条带的位置和大小来判断所获得的偶联物是否是所需要的。
药物组合物
本发明还提供一种抑制肿瘤的组合物,所述的组合物含有:(i)有效量(如0.00001-50uM)的本发明所述的转铁蛋白-蛙卵核糖核酸酶偶联物;和(ii)药学上可接受的载体。
如本文所用,“药学上或食品学上可接受的”的成分是适用于人和/或哺乳动物而无过度不良副反应(如毒性、刺激和变态反应)的,即具有合理的效益/风险比的物质。术语“药学上可接受的载体”指用于治疗剂给药的载体,包括各种赋形剂和稀释剂。该术语指这样一些药剂载体:它们本身并不是必要的活性成分,且施用后没有过分的毒性。合适的载体是本领域普通技术人员所熟知的。在Remington’s Pharmaceutical Sciences(Mack Pub.Co.,N.J.1991)中可找到关于药学上可接受的载体的充分说明。在组合物中药学上可接受的载体可含有液体,如水、盐水、甘油和山梨醇。另外,这些载体中还可能存在辅助性的物质,如润滑剂、助流剂、润湿剂或乳化剂、pH缓冲物质和稳定剂,如白蛋白等。
可将所述的组合物制成各种适合于哺乳动物给药的剂型,所述剂型包括但不限于:注射剂、胶囊剂、片剂、乳剂、栓剂。
本发明的组合物可直接用于杀伤肿瘤细胞。此外,还可同时与其它治疗剂或辅剂联合使用。
本发明的主要优点在于:
(1)本发明的偶联物中,转铁蛋白可通过转铁蛋白受体介导的胞饮作用将蛙卵核糖核酸酶带入肿瘤细胞,增强了蛙卵核糖核酸酶对于肿瘤细胞的杀伤能力和特异性。
(2)本发明的偶联物中,每个转铁蛋白分子上偶联有1-5个蛙卵核糖核酸酶,因此分子大小适中,易于穿透肿瘤细胞的细胞膜而进入到细胞。
(3)本发明的偶联物基本不混有未经偶联的游离转铁蛋白和蛙卵核糖核酸酶,保证了药物的作用完全由本发明的偶联物产生。
下面结合具体实施例,进一步阐述本发明。应理解,这些实施例仅用于说明本发明而不用于限制本发明的范围。下列实施例中未注明具体条件的实验方法,通常按照常规条件,例如Sambrook等人,分子克隆:实验室手册(New York:Cold Spring Harbor Laboratory Press,1989)中所述的条件,或按照制造厂商所建议的条件。
实施例1 Onc蛋白制备
1.表达Onc质粒的构建
根据SEQ ID NO:3所示的序列,全序列合成Onc蛋白的编码序列,设计两端引物如下:
5’引物为:CCCAGGACTGGCTGACTTTCCA(SEQ ID NO:5);
3’引物为:AAAGTCGACTCAGCAAGAACCAACACC(SEQ ID NO:6);
以前述合成的基因序列为模板,以SEQ ID NO:5和SEQ ID NO:6为引物,进行PCR扩增,扩增产物经SalI酶切后克隆到pET22b(+)载体(Novagen)的MscI和SalI位点间,得到可表达Onc的表达质粒。
2.Onc蛋白表达
将前述构建的表达质粒转化大肠杆菌BL21(DE3),隔夜挑单克隆于50ml LB培养基中,于37℃培养过夜。次日按1∶20转接1L TB培养基,于37℃培养至OD600=2.0,加IPTG浓度至0.5mM诱导3.5小时,4℃、6000rpm离心10分钟,收集菌体,菌体用于下一步的包涵体收集和纯化。
3.包涵体洗涤
将收集到的菌体悬浮在缓冲液SSB_A(20mM Tris-HCl,10mM EDTA,pH8.0)中,用超声波破碎仪破碎菌体;4℃,12000rpm离心10分钟,收集包涵体;WIBB1(20mM Tris-HCl,pH 8.0,10mM EDTA,2%Triton X-100和2M尿素,pH 8.0)溶液悬浮包涵体,振荡洗涤,4℃,12000rpm离心10分钟,收集包涵体,重复该步骤三次;WIBB2(20mM Tris-HCl,10mM EDTA,pH 8.0)溶液悬浮包涵体,振荡洗涤(可用低功率超声波助洗),4℃、12000rpm离心10分钟,收集包涵体;重复该步骤2-3次。
4.包涵体溶解和复性
将1L菌液得到的包涵体溶解于6ml DIBB(20mM Tris-HCl,7M盐酸胍,10mM DTT,10mM EDTA,pH 8.0)溶液中,充氮气室温放置5h;4℃、12000rpm×15min,离心收集上清,将蛋白定量至浓度为20mg/ml;将1ml包涵体溶液迅速稀释到50ml DB(20mM醋酸)溶液中,4℃,12000rpm×30min离心弃沉淀;用DB透析除去变性剂;向溶液中加入20×RB(100mM Tris-AcOH,100mM NaCl,3.0mM还原型谷胱甘肽,0.6mM氧化型谷胱甘肽,pH 8.0),并调节pH=8.0,4℃,12000rpm×30min离心除去沉淀;在复性缓冲液RB溶液中4℃复性36~48小时,4℃,12000转20min除去复性过程产生的蛋白沉淀;上清透析去盐后,蛋白溶液存于4℃备用。
5.阳离子交换柱层析纯化
将复性好的蛋白溶液定量后上强阳离子交换柱。
(1)层析柱为SP Sepharose(2×2cm,Pharmacia),流动相为LB(10mM磷酸缓冲液(pH6.0))和WB(1M NaCl,10mM磷酸缓冲液(pH6.0)),流速1ml/min。
洗脱方法:100%WB洗脱30个柱体积并分步收集,考马斯亮兰G250检测含有蛋白的样品。收集含有蛋白的样品并用透析液10mM磷酸缓冲液(pH6.0)去盐后,备用。
(2)将去盐后的样品溶液定量过强阳离子交换柱。层析柱为预装柱MonoS(HR5/5,1ml,pharmacia),流动相为LB(10mM磷酸缓冲液(pH6.0))和WB(1MNaCl,10mM磷酸缓冲液(pH6.0)),流速1ml/min。
洗脱方法:0-100%WB洗脱20个柱体积并分步收集,收集相当于20%左右处的蛋白峰。
对制备Onc蛋白过程中各阶段的产物(包括诱导前菌体总蛋白(泳道1)、诱导2.5小时后菌体总蛋白(泳道2)、诱导后菌体包涵体(泳道3)、复性并纯化后Onc(泳道4)等)进行常规的15%SDS-PAGE电泳分析,结果如图1所示。
实施例2 转铁蛋白Tf和核糖核酸酶Onc偶联物制备
A.采用SPDP和2-Iminothiolane进行偶联
1.Tf(购自CALBIOCHEM,批号为Cat:616397,粉末状,其氨基酸序列如SEQ ID NO:2)溶于PBS(pH7.4)使之终浓度为20mg/ml,每ml加入50μl(相当于按照摩尔比约Tf的10倍量)50mM SPDP,快速混匀,反应30min后,用脱盐柱HiTrap Desalting(5×5ml,Pharmacia)分离,流动相为PBS(pH7.4),分步收集,10%SDS-PAGE检测结果,留出蛋品样品备用。
2.将经前述制备和纯化的Onc蛋白溶于20mM磷酸缓冲液(pH6.0)使之终浓度为1mg/ml,加入16.67μl 50mM 2-Iminothiolane·HCl(Promega,相当于按照摩尔比约为0nc的10倍量),快速混匀,反应1小时后,透析去除小分子。
3.Onc和Tf按照摩尔数比3∶1将两者混合,4℃过夜。
4.过夜后的样品上分子筛柱Superdex75 10/300GL(Pharmacia),流动相为20mM NaHPO4,pH6.0,分离去除小分子蛋白,留大分子蛋白混合物备用。
5.大分子蛋白混合物上离子交换柱Mono S(HR5/5,1ml,Pharmacia)。Mono S用10mM磷酸缓冲液(pH6.0)平衡,用0-1M NaCl梯度洗脱,流速1ml/min,分离去除未反应的Tf,同时洗脱偶联物,并浓缩偶联产物。
6.还原与未还原处理样品进行15%SDS-PAGE和10%SDS-PAGE鉴定:以等体积比例将样品分别和还原试剂(0.1M Tris-HCL(pH6.8);20%甘油;4%SDS;0.005%(W/V)溴酚蓝;10%2-巯基乙醇)及非还原试剂(0.1M Tris-HCL(pH6.8);20%甘油;4%SDS;0.005%(W/V)溴酚蓝)混合制成蛋白电泳样品进行电泳鉴定。
检测结果见图2,图2(a)是15%SDS-PAGE凝胶电泳,泳道1为非还原的Onc纯品;泳道2为非还原的Tf纯品;泳道3为非还原的Onc-Tf;泳道4为还原的Onc纯品;泳道5为还原的Tf纯品;泳道6为还原的Onc-Tf;泳道7为蛋白分子量标准。图2(b)是10%SDS-PAGE凝胶电泳进一步显示转铁蛋白与蛙卵核糖核酸酶偶联蛋白分子量分布。
B.单采用SPDP进行偶联
本实施例中,单单采用SPDP偶联Tf和Onc蛋白。
如前述方法,将Tf和Onc蛋白分别稀释配制成浓度为20mg/ml和1mg/ml的蛋白溶液,并调pH至7.4备用。
1、每个样品1ml与分别与10倍分子过量SPDP反应,快速混匀,获得Onc-PDP,室温放置30min后透析除去小分子。
2、加终浓度为2mM DTT还原Onc-PDP,室温放置1h;用pH6.0 PBS透析除去DTT。
3、BCA测定蛋白,按摩尔数比3∶1将Onc与Tf混合,4℃过夜。
对前述偶联产物进行检测,检测结果表明,该种偶联方法得到高聚物(即多个(多于2个)Tf分子之间,或者多个(多于2个)Tf分子与多个(多于1个)Onc之间偶联的情况)比例较大。
实施例3Onc-Tf和Onc对骨髓瘤细胞SP2/0的细胞毒性作用比较
A.采用实施例2中A项所制备的偶联物
骨髓瘤SP2/0细胞(购自ATCC)培养于含10%小牛血清,青霉素(100单位/ml),链霉素(100μg/ml)RPMI 1640(GIBICO)培养基中。96孔板培养,每孔加90μl培养液(5×104细胞/ml),CO2(5%)培养箱中培养12小时后,除去培养液,并用预冷的PBS洗涤一次后,加入90μl无血清培养液(青霉素(100单位/ml),链霉素(100μg/ml)RPMI 1640)。按设定的浓度梯度加蛋白样品(实施例2中A项所制备的Onc-Tf偶联物)10μl,对照组加PBS,培养2小时后,补加等体积20%小牛血清。随后培养70小时后,常规的MTT法检测细胞存活率。
结果如图3所示,可见Onc-Tf对骨髓瘤细胞的毒性作用显著强于Onc,比Onc高2000倍。
B.采用实施例2中B项所制备的偶联物
骨髓瘤SP2/0细胞培养于含10%小牛血清,青霉素(100单位/ml),链霉素(100μg/ml)RPMI 1640(GIBICO)培养基中。96孔板培养,每孔加90μl培养液(5×104cells/ml),CO2(5%)培养箱中培养12h后,除去培养液,并用预冷的PBS洗涤一次后,加入90μl无血清培养液(青霉素(100单位/ml),链霉素(100μg/ml)RPMI 1640)。按设定的浓度梯度加蛋白样品(实施例1中制备的Onc纯品和实施例2中B项所制备的Onc-Tf偶联物)10μl,对照组加PBS,培养2小时后,补加等体积20%小牛血清。随后培养70h后,常规的MTT法检测细胞存活率。
结果如图4所示,表明用B项所述方法制备的Onc-Tf偶联物对骨髓瘤细胞的毒性作用仅比Onc高10倍左右。
实施例4Onc-Tf和Onc对神经母细胞瘤SH-SY5Y的细胞毒性作用比较
神经母细胞瘤SH-SY5Y(ATCC)培养于含10%胎牛血清,青霉素(100单位/ml),链霉素(100μg/ml)DMEM(GIBICO)培养基中。96孔板培养,每孔加90μl培养液(5×104细胞/ml),CO2(5%)培养箱中培养12h后,除去培养液,并用预冷的PBS洗涤一次后,加入90μl无血清培养液(青霉素(100单位/ml),链霉素(100μg/ml)DMEM)。按设定的浓度梯度加蛋白样品(实施例1中制备的Onc纯品和实施例2中A项所制备的Onc-Tf偶联物)10μl,对照组加PBS,培养2小时后,补加等体积20%胎牛血清。随后培养70h后,MTT法检测细胞存活率。
结果如图5所示,可见Onc-Tf对神经母细胞瘤的毒性作用显著强于Onc,至少比Onc高100倍。
实施例5组合物
将实施例2中A项获得的Onc-Tf偶联物1ml配制于100ml的常规生理盐水中,获得含有Onc-Tf偶联物的组合物。
在本发明提及的所有文献都在本申请中引用作为参考,就如同每一篇文献被单独引用作为参考那样。此外应理解,在阅读了本发明的上述讲授内容之后,本领域技术人员可以对本发明作各种改动或修改,这些等价形式同样落于本申请所附权利要求书所限定的范围。
序列表