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1、10申请公布号CN104127425A43申请公布日20141105CN104127425A21申请号201410314697X22申请日20140703A61K31/7034200601A61K36/8988200601A61P19/10200601A61P19/0820060171申请人中国人民解放军第四军医大学地址710032陕西省西安市长乐西路169号72发明人孟国林黄强高博杨柳罗卓荆74专利代理机构西安通大专利代理有限责任公司61200代理人蔡和平54发明名称天麻素防治骨质疏松的应用57摘要本发明公开了天麻素防治骨质疏松的应用，天麻素对成骨细胞前体细胞无毒性作用，不影响细胞增殖；对过。
2、氧化氢造成的MC3T3E1的凋亡具有保护作用；并且在其分化过程中改善H2O2诱导的氧化应激状态；对H2O2造成的MC3T3E1成骨分化抑制具有保护作用；可以抑制骨吸收因子的表达，从而通过改善成骨细胞凋亡和分化抑制及间接抑制破骨细胞活化来对骨质疏松起保护作用。在去势小鼠骨松模型中，天麻素可以改善血清中的氧化应激状态，改善股骨远端和腰椎的松质骨骨微结构，提高股骨远端的骨生成速率，表明天麻素能够通过抑制氧化应激而改善骨微结构，发挥防治骨质疏松的作用。51INTCL权利要求书1页说明书6页附图7页19中华人民共和国国家知识产权局12发明专利申请权利要求书1页说明书6页附图7页10申请公布号CN1041。
3、27425ACN104127425A1/1页21天麻素在制备用于防治骨质疏松的药物中的应用。2含天麻素的植物提取物在制备用于防治骨质疏松的药物中的应用。3天麻素在制备用于改善成骨细胞前体细胞氧化应激状态的药物中的应用。4天麻素在制备用于抗成骨细胞前体细胞凋亡的药物中的应用。5天麻素在制备用于抗成骨细胞前体细胞分化抑制的药物中的应用。6如权利要求5所述的应用，其特征在于，天麻素在制备用于提高成骨细胞前体细胞中ALP活性的药物中的应用。7如权利要求5所述的应用，其特征在于，天麻素在制备用于提高成骨细胞前体细胞中促成骨分化基因ALP、COLLA1、OCN及OPN表达水平的药物中的应用。8如权利要求5。
4、所述的应用，其特征在于，天麻素在制备用于提高成骨细胞前体细胞中抑制RANKL和IL6水平的药物中的应用。9如权利要求18中任意一项所述的应用，其特征在于，天麻素的给药量至少为1MG/KG。权利要求书CN104127425A1/6页3天麻素防治骨质疏松的应用技术领域0001本发明属于骨质疏松的防治技术领域，涉及天麻素防治骨质疏松的应用。背景技术0002骨质疏松症OSTEOPOROSIS，OP是退行性、全身性、代谢性骨骼疾病，是由多种病因导致的骨组织骨量丢失、结构改变和生物力学性能减退，容易发生骨折，严重威胁中老年人的身心健康。0003氧化应激OXIDATIVESTRESS是机体内高活性物质如RO。
5、SREACTIVEOXYGENSPECIES产生过多，超出了机体的清除能力，导致氧化和抗氧化失衡的一种状态。生理范围内的ROS在调节人体正常的功能如细胞凋亡、基因表达、信号转导等方面起着重要的作用。然而，高浓度的ROS可以导致核酸、蛋白质、脂质产生氧化反应，损害细胞的结构和功能，引起疾病的发生。0004近年来，研究发现氧化应激在骨质疏松发生发展中起重要作用。过量氧自由基ROS的产生可以抑制骨髓基质干细胞MSCS成骨分化，造成MSCS和成骨细胞OB凋亡，促进破骨细胞OC活化和功能增强，导致骨吸收和骨形成失衡，引起骨微结构改变和骨量降低。0005天麻是一种具有高度生物活性的药用植物，广泛应用于传统。
6、中药中。天麻素GASTRODIN是其主要活性成分，天麻的大部分功效是通过天麻素发挥的。天麻素具有多项生理功能松弛肌肉、抗凋亡、神经保护和抗氧化等。发明内容0006本发明的目的在于提供天麻素防治骨质疏松的应用。0007为达到上述目的，本发明采用了以下技术方案0008天麻素在制备用于防治骨质疏松的药物中的应用。0009含天麻素的植物提取物在制备用于防治骨质疏松的药物中的应用。0010天麻素在制备用于改善成骨细胞前体细胞氧化应激状态的药物中的应用。0011天麻素在制备用于抗成骨细胞前体细胞凋亡的药物中的应用。0012天麻素在制备用于抗成骨细胞前体细胞分化抑制的药物中的应用。0013天麻素在制备用于提。
7、高成骨细胞前体细胞中ALP活性的药物中的应用。0014天麻素在制备用于提高成骨细胞前体细胞中促成骨分化基因ALP、COLLA1、OCN及OPN表达水平的药物中的应用。0015天麻素在制备用于提高成骨细胞前体细胞中抑制RANKL和IL6水平的药物中的应用。0016天麻素的给药量至少为1MG/KG。0017与现有技术相比，本发明具有以下有益的技术效果0018天麻素对成骨细胞前体细胞MC3T3E1无毒性作用；对MC3T3E1的凋亡具有保说明书CN104127425A2/6页4护作用；并且可以改善氧化应激状态；对MC3T3E1成骨分化抑制具有保护作用；可以抑制骨吸收因子的表达。在去势小鼠模型中，天麻素。
8、可以改善血清中的氧化应激状态，改善股骨远端和腰椎的松质骨骨微结构，提高股骨远端的骨生成速率。0019MC3T3E1细胞是研究成骨细胞生长、分化的较常用的细胞模型，鉴于天麻素对MC3T3E1的作用，其对成骨细胞具有保护作用，促进骨形成，并通过抑制骨吸收因子来抑制破骨细胞的活化，降低骨吸收，最终起到防治骨质疏松的作用。卵巢切除小鼠模型为常用的绝经后骨松模型，通过连续腹腔注射给与不同剂量天麻素，明显改善了血清氧化应激状态，对松质骨骨微结构有保护作用，表明其能够发挥预防及治疗绝经后骨松的作用。0020天麻素为纯天然物质，用药较安全，毒副作用小。0021因此，天麻素可应用于骨质疏松的防治，尤其是应用在防。
9、治骨质疏松药物的制备中。附图说明0022图11为不同浓度天麻素对细胞增殖作用的影响。0023图12为天麻素对H2O2造成的细胞凋亡的保护作用。0024图2为天麻素改善细胞氧化应激ROS水平的检测结果。0025图31为天麻素在H2O2作用后，对细胞碱性磷酸酶ALP活性的作用。0026图32为天麻素在H2O2作用后，对细胞基质钙盐沉积的作用。0027图33为天麻素对4种细胞成骨分化基因表达水平的影响。0028图4A和图4B为天麻素在H2O2作用后对两种骨吸收因子RANKL和IL6表达的影响。0029图51A和图51B为天麻素改善小鼠血清中氧化应激指标MDA和GSH水平的检测结果。0030图52为天。
10、麻素改善OVX小鼠股骨远端和第四腰椎松质骨骨微结构的MICROCT结果。0031图53为天麻素提高OVX小鼠股骨远端的骨生成速率的检测结果。具体实施方式0032下面结合附图和实施例对本发明做详细说明，所述是对本发明的解释而不是限定。0033MC3T3E1为成骨细胞前体细胞系，可以向成骨细胞进行分化，是研究成骨细胞生长、分化的较常用的细胞模型，过氧化氢H2O2处理也是较常用的体外氧化应激模型，出于观察天麻素对成骨细胞凋亡和分化的影响，及其抗氧化损伤的作用，所以选择MC3T3E1作为细胞模型，H2O2处理为体外氧化应激模型。卵巢切除去势小鼠模型作为动物模型，是常用的模拟妇女绝经后骨松模型。0034。
11、1、天麻素对氧化应激导致MC3T3E1凋亡的保护作用003511单纯天麻素对细胞的毒性作用0036将MC3T3E1细胞以2103个/ML接种到96孔板上，待细胞长满后，弃掉培养基培养基成分为MEM培养液10胎牛血清1双抗青链霉素，加含浓度0空白说明书CN104127425A3/6页5对照组、01、1、10M天麻素的无血清培养基至孔板中，分别培养24H、48H和72H，观察天麻素对细胞增殖作用的影响。在观察点，利用MTT法对细胞活性进行检测。0037结果如图11所示，横坐标为不同浓度的天麻素作用时间，纵坐标为细胞活力值，以各组的吸光度OD值同空白对照组的OD值进行比较的百分数来表述。由图可见，不。
12、同浓度的天麻素在观察时间内，对细胞的增殖并无明显影响。003812天麻素对氧化应激导致MC3T3E1凋亡的保护作用0039分组情况空白对照组；单纯H2O2处理组；01M天麻素H2O2；1M天麻素H2O2；10M天麻素H2O2。0040将MC3T3E1细胞以2103个/ML接种到96孔板上，待细胞长满后，弃掉培养基，加含浓度0、01、1、10M天麻素的无血清培养基至孔板中，培养24H，加入H2O2300M，再培养24H，利用MTT法进行细胞活性检测。0041结果如图12所示，横坐标为各组的作用方式，纵坐标为细胞活力值，以各组的吸光度OD值同空白对照组的OD值进行比较的百分数来表述。由图可见，单纯。
13、H2O2作用后，细胞活性降低，经不同浓度天麻素作用后细胞活性增加，同单纯H2O2处理组相比，具有统计学差异。图中的号表示同空白对照组相比，P005，P001；图中的号表示同单纯H2O2处理组相比，P005,P001。这表明用天麻素处理后能够保护氧化应激导致MC3T3E1的凋亡。0042综上所述，经天麻素对MC3T3E1细胞作用，即不同浓度天麻素对细胞进行预处理，然后施加H2O2干预，通过MTT细胞活性检测，结果表明单纯H2O2作用可以导致细胞活性降低，造成细胞凋亡，而01、1、10M天麻素预处理，对这种损伤具有保护作用。因此，天麻素对H2O2诱导的氧化应激导致的细胞凋亡具有保护作用。00432。
14、、天麻素抗氧化作用检测0044MC3T3E1细胞铺满后，在天麻素和/或H2O2作用下，处理方法同上12中，进行氧化应激相关检测。0045根据ROS检测试剂盒，利用荧光探针DCFHDA对细胞内的活性氧进行检测。细胞爬片，01、1、10M天麻素预处理24H，300MH2O2作用24H，然后进行原位装载探针，加入10MDCFHDA，孵育20MIN，用MEM培养液洗3次，去除未结合的探针，利用荧光酶标仪进行检测。0046结果如图2所示，横坐标为各组的作用方式，纵坐标为ROS生成，以各组的吸光度OD值同空白对照组的OD值进行比较的百分数来表述。由图可见，单纯H2O2处理后，细胞内的ROS水平升高很明显，。
15、而01、1、10M天麻素预处理后，细胞内的ROS水平降低。图中的号表示同空白对照组相比，P005，P001；图中的号表示同单纯H2O2处理组相比，P005,P001。因此，天麻素可以改善细胞氧化应激ROS水平。00473、天麻素对氧化应激造成MC3T3E1成骨分化抑制的保护作用0048天麻素对氧化应激造成MC3T3E1成骨分化抑制的保护作用实验分组同上12中，将细胞铺于6孔板上，铺满后，加入地塞米松01UM，10MM甘油磷酸钠以及50UG/ML抗坏血酸进行成骨诱导培养。在6和14天，给予01、1、10M天麻素预处理24H，然后加入300MH2O2处理24H。004931根据碱性磷酸酶定量试剂盒。
16、上海杰美进行ALP定量，收集细胞，裂解后，提说明书CN104127425A4/6页6取蛋白。测定蛋白浓度，然后根据试剂盒的说明，进行ALP定量检测。0050结果如图31所示，横坐标为各组的作用方式，纵坐标为ALP活力值，以各组的吸光度OD值同空白对照组的OD值进行比较的百分数来表述。单纯H2O2作用后，细胞ALP活性表达同空白对照组相比显著下降，天麻素作用后，ALP活性表达升高，同单纯H2O2作用组相比具有统计学差异，并呈剂量依赖性。图中的号表示同空白对照组相比，P005，P001；图中的号表示同单纯H2O2处理组相比，P005,P001。ALP为成骨细胞分化中期的关键表达蛋白，为检测成骨细胞。
17、分化的特异性指标，氧化应激导致ALP活性降低，对成骨分化为抑制作用，但经天麻素作用后，ALP表达增加，改善了氧化应激对细胞成骨分化的抑制作用。005132钙化结节染色用PBS冲洗培养细胞，多聚甲醛固定后，1茜素红染色30MIN，用水冲洗5次，倒置显微镜下观察钙结节沉积。0052分组情况空白对照组；单纯H2O2处理组；01M天麻素H2O2；1M天麻素H2O2；10M天麻素H2O2。0053结果如图32所示，单纯H2O2作用后钙化结节形成较少，但是天麻素预处理后，结节面积有增加。钙结节形成为成骨分化的矿化阶段，氧化应激可以抑制成骨细胞分化，而天麻素可以通过改善氧化应激来改善成骨分化。005433成。
18、骨基因的RTPCR检测实验分组同上12中，将细胞铺于6孔板上，铺满后，加入01UM地塞米松，10MM甘油磷酸钠以及50UG/ML抗坏血酸进行成骨诱导培养。6天后，给予01、1、10M天麻素预处理24H，然后加入300MH2O2处理24H。用TRIZOL裂解细胞，提取细胞内的MRNA，根据实时定量RTPCR的程序，对目的基因ALP、COLLA1、OCN及OPN进行定量检测。0055结果如图33所示，横坐标为各组的作用方式，纵坐标为MRNA的相对表达水平，以各组相对于空白对照组的百分率来表述。由图可见，H2O2作用后，细胞成骨分化基因ALP、COLLA1、OCN及OPN表达水平下降，天麻素作用后，。
19、可以显著促进成骨基因表达。图中的号表示同空白对照组相比，P005，P001；图中的号表示同单纯H2O2处理组相比，P005,P001。ALP、COLLA1、OCN及OPN基因分别为成骨细胞分化中期和后期的关键基因，决定着细胞的分化水平。H2O2抑制成骨分化基因的表达，而天麻素作用后，成骨分化基因表达有上调，说明天麻素可以改善H2O2导致的成骨细胞分化抑制。00564、天麻素对骨吸收因子的表达影响0057天麻素对氧化应激刺激骨吸收因子增加的抑制作用分组同上12中，将细胞铺于6孔板上，铺满后，进行成骨诱导培养，6天后，给予天麻素处理，然后加入H2O2，裂解细胞，提取蛋白，测定蛋白浓度，根据酶联免疫。
20、吸附实验ELISA法检测RANKL和IL6的表达情况。0058结果如图4所示其中图4A为RANKL的检测结果，图4B为IL6的检测结果，横坐标为各组的作用方式，纵坐标为骨吸收因子的相对表达量，以各组相对于空白对照组的百分率来表述。由图可见，H2O2作用后，细胞表达的RANKL和IL6水平增加，天麻素预处理可以抑制骨吸收因子的表达。图中的号表示同空白对照组相比，P005，P001；图中的号表示同单纯H2O2处理组相比，P005,P001。RANKL和IL6为成骨细胞分泌的细胞因子，可以活化破骨细胞，进而引起骨吸收增强，导致骨量降低，因此，天麻素说明书CN104127425A5/6页7可以通过抑制。
21、RANKL和IL6的表达，来抑制破骨细胞的活化，进而减少骨量的丢失。0059综合以上表明天麻素对成骨细胞前体细胞MC3T3E1无毒性作用，不影响细胞增殖；对H2O2造成的成骨细胞前体细胞MC3T3E1的凋亡具有保护作用；并且在其分化过程中改善H2O2诱导的氧化应激状态；对H2O2造成的MC3T3E1成骨分化抑制具有保护作用；可以抑制骨吸收因子的表达，从而通过改善成骨细胞凋亡和分化抑制间接抑制破骨细胞活化来对骨质疏松起保护作用。00605动物骨松模型的建立006140只8周大BALB/C雌性小鼠，体重为2022G。本实验中四组小鼠的初始体重无统计学差异。在切除卵巢前，先将它们置于实验室条件下1周。
22、即通气良好的20恒温环境中，每12小时光照与黑暗交替，水粮足量，自由取用。适应1周后，用戊巴比妥钠50MG/KG体重进行麻醉，小鼠被切除卵巢去势，N30或者假手术N10。卵巢切除是通过背侧入路切除双侧卵巢。假手术意味着手术找到双侧卵巢，但不切除，直接缝合关闭切口。小鼠被随机分为四组不处理组假手术组，SHAM；不处理组单纯卵巢切除组,OVX；低剂量天麻素给药组卵巢切除后每日通过腹腔注射给予1MG/KG体重的天麻素溶液,OVXGASTRODIN1；高剂量天麻素给药组卵巢切除后每日通过腹腔注射给予10MG/KG体重的天麻素溶液,OVXGASTRODIN10。天麻素溶解于去离子水中，通过腹腔注射对不处。
23、理组小鼠注射同体积去离子水。手术后1周开始给药，连续给药12周时间。给药完成后，麻醉下通过心脏采血获得血液标本，并进行离心。提取每只小鼠的左侧股骨和第四腰椎，清除粘连的肌肉组织，妥善固定。006251使用脂质过氧化物MDA检测试剂盒检测各组血液样本。在脂质过氧化过程中硫代巴比妥酸与MDA结合生成显色复合物，其最大吸收峰在532NM，利用酶标仪在此处读数。同样，使用GSH检测试剂盒检测各组血液样本。GSH的检测是根据GSH与二硫代二硝基苯甲酸DTNB反应形成一个产物，此产物通过酶标仪在412NM处读数检测。0063结果如图51A和图51B所示，横坐标为各组的作用方式，纵坐标分别为MDA活力和GS。
24、H活力，以各组的吸光度OD值同假手术组的OD值进行比较的百分数来表述。由图可见，单纯H2O2处理后，血清中的MDA水平明显升高，GSH水平明显降低；而给予高、低剂量天麻素处理后，血清中的MDA水平降低，GSH水平升高。图中的号表示同假手术组相比，P005，P001；图中的号表示同单纯卵巢切除组相比，P005,P001。因此，天麻素可以改善血清中的氧化应激状态。006452显微CT检测骨微结构第四腰椎和股骨远端的骨微结构通过探索轨迹SP预临床标本显微CT进行检测。分辨率为8MM，管电压为50KV，管电流为01MA。通过一个桌面显微CT处理软件进行重建和3D定量分析。所有标本的扫描环境和分析方法相。
25、同。股骨扫描区域限定为远端干垢端，并且向近端的初级松质近末端区域延伸20MM。在排除了颅骨及尾终板区后，椎体的松质骨区域被包含在每一个显微CT选区中。在这些待扫描的区域中，松质骨与皮质骨的分界为内皮质骨面。选定的感兴趣区的3D参数用于数据分析，包括骨矿物质密度、连接密度、结构模型指数、骨小梁数量、骨小梁厚度、骨小梁分离度和相对骨体积分数。进行扫描分析的操作者对标本的处理过程单盲。0065结果如图52所示，分组A假手术组；B单纯卵巢切除组；C卵巢切除天麻素1MG/KG；D卵巢切除天麻素10MG/KG。相对于假手术组，卵巢切除导致了小鼠松质骨说明书CN104127425A6/6页8骨微结构的损害，。
26、表现为骨矿物质密度、连接密度、骨小梁数量、骨小梁厚度及相对骨体积分数的下降。同时，卵巢切除后结构模型指数和骨小梁分离度明显提高。结果具有统计学差异。然而，高、低剂量天麻素给药明显逆转了卵巢切除引起的骨微结构参数的变化趋势，起到保持第四腰椎及股骨远端小梁骨骨量的作用。因此，天麻素能够对绝经后骨质疏松发挥预防及治疗作用。006653荧光素双标记法检测骨生成速率BONEFORMATIONRATE在小鼠处死前的第12天和第2天分别肌肉注射四环素20MG/KG和钙黄绿素5MG/KG来进行荧光素标记。处死小鼠后取左侧股骨，依次进行固定、脱水、包埋和切片10M。在放大200倍条件下，测定四环素标线与钙黄绿素。
27、标线间的距离。得到平均距离后，再除以天数，即可确定骨生成速率。0067结果如图53所示，所有组中，新生骨被标记上了四环素和钙黄绿素荧光。相对于假手术组，单纯卵巢切除组的骨生成速率明显降低。然而，高、低剂量天麻素处理后，骨生成速率明显升高。综上，天麻素能够通过提高骨生成速率而起到保护松质骨骨微结构的作用。0068因此，天麻素可应用于骨质疏松的防治，尤其是在防治骨质疏松药物的制备中应用。0069而天麻素是天麻中主要活性成分之一，那么含有天麻素的天麻提取物也具有相应的应用。说明书CN104127425A1/7页9图11图12说明书附图CN104127425A2/7页10图2图31说明书附图CN104127425A103/7页11图32图33说明书附图CN104127425A114/7页12图4A图4B说明书附图CN104127425A125/7页13图51A图51B说明书附图CN104127425A136/7页14图52说明书附图CN104127425A147/7页15图53说明书附图CN104127425A15。