五节芒快速繁殖方法.pdf

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摘要
申请专利号:

CN201210080583.4

申请日:

20120323

公开号:

CN102577983B

公开日:

20131106

当前法律状态:

有效性:

有效

法律详情:

IPC分类号:

A01H4/00

主分类号:

A01H4/00

申请人:

湖南农业大学

发明人:

陈智勇,易自力,覃静萍,蒋建雄,艾辛

地址:

410128 湖南省长沙市芙蓉区农大路1号

优先权:

CN201210080583A

专利代理机构:

长沙市融智专利事务所

代理人:

袁靖

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内容摘要

本发明公开了五节芒快速繁殖方法,以五节芒的幼穗为外植体,选用五节芒处于颖花原基形成期的幼穗,灭菌,切成穗段,接种在愈伤组织诱导培养基:MS+2.0-6.0mg/L?2,4-D+0-0.2mg/L?6-BA,250-300lux光照下,24±2℃培养,7天左右产生愈伤组织;愈伤组织接种在分化培养基MS+1.0-4.0mg/L?6-BA,2000lux光照下,温度24±2℃培养,直至形成丛生芽,增殖系数为4以上;以MS+1.0mg/L?IAA+0.1mg/L?IBA+1.0mg/L?CCC诱导芽和根,生根率达95%以上,只需35天左右形成完整植株。

权利要求书

1.五节芒快速繁殖方法,其特征在于,该方法包括如下步骤:1)外植体的选择与灭菌:选用五节芒的幼穗,将幼穗外包裹的多层叶或叶鞘去除,仅保留幼穗外的旗叶,用无菌水清洗3~4次后,在无菌操作台上用70%酒精处理15-30秒,再用0.1%的升汞消毒18~20分钟,用无菌水冲洗6~7次备用;2)胚性愈伤组织的诱导:将灭菌处理后带旗叶的幼穗,在超净台剥去旗叶,将幼穗切成穗段,接种在MS+2.0-6.0mg/L2,4-D+0-0.2mg/L6-BA的愈伤组织诱导培养基;在250-300lux光照下培养,保持温度24±2℃,诱导产生愈伤组织;3)丛生芽诱导及增殖:愈伤组织接种在MS+1.0-4.0mg/L6-BA的分化培养基;在2000lux光照下培养,保持温度24±2℃,直至形成丛生芽;4)生根培养:以MS+1.0mg/L IAA+0.1mg/L IBA+1.0mg/L CCC诱导芽和根;步骤1)中所述外植体的选择取幼穗时叶枕距为0-2cm;步骤1)中所述的外植体选用五节芒处于颖花原基形成期的幼穗;步骤2)中将幼穗切成0.3-0.5cm长度的穗段;步骤2)中接种瓶内每瓶接种2-5个穗段;步骤3)中愈伤组织生长至直径0.5-0.8cm,挑选淡黄色并致密的愈伤组织,接种在分化培养基。

说明书

技术领域

本发明属于植物细胞工程领域,涉及植物组织工程技术,具体地说是一种五节芒的组织 快繁方法。

背景技术

五节芒(Miscanthus floridulus)属于禾本科(Poaceae)芒属(Miscanthus Andersson) (陈守良,1997),是一种高光效的C4植物,具有生物质产量高、抗逆性强、纤维素含量高、 燃烧充分等特点,被认为是一种开发潜力巨大的生物质能源植物,在我国主要分布在热带和 亚热带地区(萧运峰,1995)。目前,五节芒在组织培养有少量报道,胡恒康等(植物生理学 通讯,2009)利用种子为外植体,萌发的小苗切去胚根诱导出丛生芽。刁英等在一种芒属植 物五节芒体胚组培快速繁殖方法中,以幼穗为外植体,诱导胚性愈伤组织,幼穗取材长度及 消毒方法与本发明不同,并且本发明诱导愈伤组织过程中使用的培养基等均未见报道。

发明内容

本发明的目的是提供一种五节芒的快速繁殖方法。

五节芒快速繁殖方法,包括如下步骤:

1)外植体的选择与灭菌:选用五节芒的幼穗,将幼穗外包裹的多层叶或叶鞘去除,仅保 留幼穗外的旗叶,用无菌水清洗3~4次后,在无菌操作台上用70%酒精处理15-30秒,再用0.1% 的升汞消毒18~20分钟,用无菌水冲洗6~7次备用;

2)胚性愈伤组织的诱导:将灭菌处理后带旗叶的幼穗,在超净台剥去旗叶,将幼穗切成 穗段,接种在MS+2.0-6.0mg/L 2,4-D+0-0.2mg/L 6-BA的愈伤组织诱导培养基;在250-300lux 光照下培养,保持温度24±2℃,诱导产生愈伤组织;(6-8天左右产生愈伤组织);

3)丛生芽诱导及增殖:愈伤组织接种在MS+1.0-4.0mg/L 6-BA的分化培养基;在2000lux 光照下培养,保持温度24±2℃,直至形成丛生芽;增殖系数为4以上;

4)生根培养:以MS+1.0mg/L IAA+0.1mg/L IBA+1.0mg/L CCC诱导芽和根。生根率 达95%以上。

步骤1)中所述外植体的选择取幼穗时叶枕距为0-2cm。

步骤1)中所述的外植体选用五节芒处于颖花原基形成期的幼穗。

步骤2)中将幼穗切成0.3-0.5cm长度的穗段。

步骤2)中接种瓶(5.6×6.9×9.1cm(口径×胸径×高))内每瓶接种2-5个穗段。

步骤3)中愈伤组织生长至直径0.5-0.8cm,挑选淡黄色并致密的愈伤组织,接种在分化 培养基。

本发明提出的五节芒的组织培养方法,采用幼穗外植体,保证了遗传稳定性;避免幼穗 直接与酒精和升汞接触,以免幼穗褐化,降低出愈率;同时,本发明方法仅需35天左右形成 完整植株,3~5个月内可获得大量完整植株。

附图说明

图1为五节芒幼穗诱导愈伤组织的图片;

图2为五节芒胚性愈伤组织分化的图片;

图3为五节芒增殖培养的图片;

图4为五节芒生根培养的图片。

具体实施方式

以下结合实施例进一步说明本发明,而不是限制本发明。

实施例1

取材:五节芒(M.floridulus)02117采自湖南郴州,保存于湖南农业大学芒属植物资 源圃内。

1、外植体的选择与灭菌:选用五节芒优良单株,切取叶枕距为0的处于颖花原基形成期 的幼穗。首先将幼穗外部叶清除干净,仅留旗叶,用无菌水清洗3次后,在无菌操作台上用70% 酒精处理15秒左右,再用0.1%的升汞消毒18分钟,用无菌水冲洗6次备用;

2、胚性愈伤组织的诱导:将灭菌处理后带旗叶的幼穗,在超净台上去除旗叶,将幼穗切 成0.3cm左右的穗段,接种在愈伤组织诱导培养基:MS+2,4-D2.0mg/L+6-BA0.1mg/L。接种 瓶内每瓶接种5个穗段,在培养室下300lux光照,保持温度24±2℃,培养7天左右诱导出愈伤 组织;

3、丛生芽诱导及增殖:愈伤组织生长至直径为0.5cm左右,挑选淡黄色并较为致密的愈 伤组织,接种在MS+6-BA2.0mg/L的分化培养基。在2000lux光照下培养,保持温度24+2℃, 直至形成丛生芽,增殖系数为4.6以上;在生根培养基:MS+1.0mg/L IAA+0.1mg/L IBA+1.0mg/L CCC诱导芽和根,生根率达95%以上,只需35天左右形成完整植株;

4、试管苗的移栽:选取根系生长良好的试管苗,放入清水中把根部的琼脂清洗干净,移 栽到天然泥土中,注意保水保湿,移栽1个月后,移栽成活率达到90%以上。

实施例2

取材:五节芒(M.floridulus)04405采自安徽马鞍山,保存于湖南农业大学芒属植物 资源圃内。

1、外植体的选择与灭菌:选用五节芒优良单株,切取叶枕距为1.5cm的幼穗。首先将幼 穗外部叶清除干净,仅留旗叶,用无菌水清洗4次后,在无菌操作台上用70%酒精处理20秒左 右,再用0.1%的升汞消毒20分钟,用无菌水冲洗6次备用;

2、胚性愈伤组织的诱导:将灭菌处理后带旗叶的幼穗,在超净台上去除旗叶,将幼穗切 成0.4cm左右的穗段,接种在愈伤组织诱导培养基:MS+2,4-D4.0mg/L+6-BA0.2mg/L。接种 瓶内每瓶接种4个穗段,在培养室下250lux光照,保持温度24±2℃,培养7天左右诱导出愈伤 组织;

3、丛生芽诱导及增殖:愈伤组织生长至直径为0.7cm左右,挑选淡黄色并较为致密的愈 伤组织,接种在MS+6-BA4.0mg/L的分化培养基。在2000lux光照下培养,保持温度24+2℃, 直至形成丛生芽,增殖系数为4.8以上;在生根培养基:MS+1.0mg/L IAA+0.1mg/L IBA+1.0mg/L CCC诱导芽和根,生根率达95%以上,只需35天左右形成完整植株;

4、试管苗的移栽:选取根系生长良好的试管苗,放入清水中把根部的琼脂清洗干净,移 栽到天然泥土中,注意保水保湿,移栽1个月后,移栽成活率达到90%以上。

实施例3

取材:五节芒(M.floridulus)02155采自湖南常德,保存于湖南农业大学芒属植物资 源圃内。

1、外植体的选择与灭菌:选用五节芒优良单株,切取叶枕距为2cm的处于颖花原基形成 期的幼穗。首先将幼穗外部叶清除干净,仅留旗叶,用无菌水清洗4次后,在无菌操作台上用 70%酒精处理30秒左右,再用0.1%的升汞消毒20分钟,用无菌水冲洗7次备用;

2、胚性愈伤组织的诱导:将灭菌处理后带旗叶的幼穗,在超净台上去除旗叶,将幼穗切 成0.5cm左右的穗段,接种在愈伤组织诱导培养基:MS+2,4-D6.0mg/L+6-BA0mg/L。接种瓶 内每瓶接种3个穗段,在培养室下250lux光照,保持温度24±2℃,培养7天左右诱导出愈伤组 织;

3、丛生芽诱导及增殖:愈伤组织生长至直径为0.8cm左右,挑选淡黄色并较为致密的愈 伤组织,接种在MS+6-BA4.0mg/L的分化培养基。在2000lux光照下培养,保持温度24±2℃, 直至形成丛生芽,增殖系数为4.2以上;在生根培养基:MS+1.0mg/L IAA+0.1mg/L IBA+1.0mg/L CCC诱导芽和根,生根率达95%以上,只需35天左右形成完整植株;

4、试管苗的移栽:选取根系生长良好的试管苗,放入清水中把根部的琼脂清洗干净,移 栽到天然泥土中,注意保水保湿,移栽1个月后,移栽成活率达到90%以上。

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资源描述

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1、(10)授权公告号 CN 102577983 B (45)授权公告日 2013.11.06 CN 102577983 B *CN102577983B* (21)申请号 201210080583.4 (22)申请日 2012.03.23 A01H 4/00(2006.01) (73)专利权人 湖南农业大学 地址 410128 湖南省长沙市芙蓉区农大路 1 号 (72)发明人 陈智勇 易自力 覃静萍 蒋建雄 艾辛 (74)专利代理机构 长沙市融智专利事务所 43114 代理人 袁靖 CN 101889552 A,2010.11.24,说明书第2页 第 0011-0012 段 , 第 3 页第 00。

2、38- 说明书 第 4 页第 0041 段 . CN 102090338 A,2011.06.15,说明书第3页 实施例 1. US 20080282424 A1,2008.11.13, 全文 . WO 2011019984 A2,2011.02.17, 全文 . (54) 发明名称 五节芒快速繁殖方法 (57) 摘要 本发明公开了五节芒快速繁殖方法, 以五节 芒的幼穗为外植体, 选用五节芒处于颖花原基形 成期的幼穗, 灭菌, 切成穗段, 接种在愈伤组织 诱 导 培 养 基 : MS+2.0-6.0mg/L 2, 4-D+0-0.2mg/ L 6-BA, 250-300lux 光照下, 242。

3、培养, 7 天 左右产生愈伤组织 ; 愈伤组织接种在分化培养 基 MS+1.0-4.0mg/L 6-BA, 2000lux 光照下, 温度 242培养, 直至形成丛生芽, 增殖系数为 4 以 上 ;以 MS+1.0mg/L IAA+0.1mg/L IBA+1.0mg/L CCC诱导芽和根, 生根率达95以上, 只需35天左 右形成完整植株。 (51)Int.Cl. (56)对比文件 审查员 王涛 权利要求书 1 页 说明书 3 页 附图 1 页 (19)中华人民共和国国家知识产权局 (12)发明专利 权利要求书1页 说明书3页 附图1页 (10)授权公告号 CN 102577983 B CN 。

4、102577983 B *CN102577983B* 1/1 页 2 1. 五节芒快速繁殖方法, 其特征在于, 该方法包括如下步骤 : 1) 外植体的选择与灭菌 : 选用五节芒的幼穗, 将幼穗外包裹的多层叶或叶鞘去除, 仅保 留幼穗外的旗叶, 用无菌水清洗 3 4 次后, 在无菌操作台上用 70% 酒精处理 15-30 秒, 再 用 0.1% 的升汞消毒 18 20 分钟, 用无菌水冲洗 6 7 次备用 ; 2)胚性愈伤组织的诱导 : 将灭菌处理后带旗叶的幼穗, 在超净台剥去旗叶, 将幼穗 切成穗段, 接种在 MS+2.0-6.0mg/L2,4-D+0-0.2mg/L6-BA 的愈伤组织诱导培。

5、养基 ; 在 250-300lux 光照下培养, 保持温度 242, 诱导产生愈伤组织 ; 3)丛生芽诱导及增殖 : 愈伤组织接种在 MS+1.0-4.0mg/L6-BA 的分化培养基 ; 在 2000lux 光照下培养, 保持温度 242, 直至形成丛生芽 ; 4) 生根培养 : 以 MS+1.0mg/L IAA+0.1mg/L IBA+1.0mg/L CCC 诱导芽和根 ; 步骤 1) 中所述外植体的选择取幼穗时叶枕距为 0-2cm ; 步骤 1) 中所述的外植体选用五节芒处于颖花原基形成期的幼穗 ; 步骤 2) 中将幼穗切成 0.3-0.5cm 长度的穗段 ; 步骤 2) 中接种瓶内每瓶。

6、接种 2-5 个穗段 ; 步骤 3) 中愈伤组织生长至直径 0.5-0.8cm, 挑选淡黄色并致密的愈伤组织, 接种在分 化培养基。 权 利 要 求 书 CN 102577983 B 2 1/3 页 3 五节芒快速繁殖方法 技术领域 0001 本发明属于植物细胞工程领域, 涉及植物组织工程技术, 具体地说是一种五节芒 的组织快繁方法。 背景技术 0002 五 节 芒 (Miscanthus floridulus) 属 于 禾 本 科 (Poaceae) 芒 属 (Miscanthus Andersson)( 陈守良, 1997), 是一种高光效的 C4 植物, 具有生物质产量高、 抗逆性强、 。

7、纤维 素含量高、 燃烧充分等特点, 被认为是一种开发潜力巨大的生物质能源植物, 在我国主要分 布在热带和亚热带地区 ( 萧运峰, 1995)。目前, 五节芒在组织培养有少量报道, 胡恒康等 ( 植物生理学通讯, 2009) 利用种子为外植体, 萌发的小苗切去胚根诱导出丛生芽。刁英等 在一种芒属植物五节芒体胚组培快速繁殖方法中, 以幼穗为外植体, 诱导胚性愈伤组织, 幼 穗取材长度及消毒方法与本发明不同, 并且本发明诱导愈伤组织过程中使用的培养基等均 未见报道。 发明内容 0003 本发明的目的是提供一种五节芒的快速繁殖方法。 0004 五节芒快速繁殖方法, 包括如下步骤 : 0005 1) 外。

8、植体的选择与灭菌 : 选用五节芒的幼穗, 将幼穗外包裹的多层叶或叶鞘去 除, 仅保留幼穗外的旗叶, 用无菌水清洗 3 4 次后, 在无菌操作台上用 70酒精处理 15-30 秒, 再用 0.1的升汞消毒 18 20 分钟, 用无菌水冲洗 6 7 次备用 ; 0006 2) 胚性愈伤组织的诱导 : 将灭菌处理后带旗叶的幼穗, 在超净台剥去旗叶, 将幼 穗切成穗段, 接种在 MS+2.0-6.0mg/L 2, 4-D+0-0.2mg/L 6-BA 的愈伤组织诱导培养基 ; 在 250-300lux 光照下培养, 保持温度 242, 诱导产生愈伤组织 ; (6-8 天左右产生愈伤组 织 ) ; 00。

9、07 3) 丛生芽诱导及增殖 : 愈伤组织接种在 MS+1.0-4.0mg/L 6-BA 的分化培养基 ; 在 2000lux 光照下培养, 保持温度 242, 直至形成丛生芽 ; 增殖系数为 4 以上 ; 0008 4) 生根培养 : 以 MS+1.0mg/L IAA+0.1mg/L IBA+1.0mg/L CCC 诱导芽和根。生根 率达 95以上。 0009 步骤 1) 中所述外植体的选择取幼穗时叶枕距为 0-2cm。 0010 步骤 1) 中所述的外植体选用五节芒处于颖花原基形成期的幼穗。 0011 步骤 2) 中将幼穗切成 0.3-0.5cm 长度的穗段。 0012 步骤 2) 中接种。

10、瓶 (5.66.99.1cm( 口径 胸径 高 ) 内每瓶接种 2-5 个穗 段。 0013 步骤 3) 中愈伤组织生长至直径 0.5-0.8cm, 挑选淡黄色并致密的愈伤组织, 接种 在分化培养基。 0014 本发明提出的五节芒的组织培养方法, 采用幼穗外植体, 保证了遗传稳定性 ; 避免 说 明 书 CN 102577983 B 3 2/3 页 4 幼穗直接与酒精和升汞接触, 以免幼穗褐化, 降低出愈率 ; 同时, 本发明方法仅需 35 天左右 形成完整植株, 3 5 个月内可获得大量完整植株。 附图说明 0015 图 1 为五节芒幼穗诱导愈伤组织的图片 ; 0016 图 2 为五节芒胚性。

11、愈伤组织分化的图片 ; 0017 图 3 为五节芒增殖培养的图片 ; 0018 图 4 为五节芒生根培养的图片。 具体实施方式 0019 以下结合实施例进一步说明本发明, 而不是限制本发明。 0020 实施例 1 0021 取材 : 五节芒 (M.floridulus)02117 采自湖南郴州, 保存于湖南农业大学芒属植 物资源圃内。 0022 1、 外植体的选择与灭菌 : 选用五节芒优良单株, 切取叶枕距为 0 的处于颖花原基 形成期的幼穗。首先将幼穗外部叶清除干净, 仅留旗叶, 用无菌水清洗 3 次后, 在无菌操作 台上用 70酒精处理 15 秒左右, 再用 0.1的升汞消毒 18 分钟,。

12、 用无菌水冲洗 6 次备用 ; 0023 2、 胚性愈伤组织的诱导 : 将灭菌处理后带旗叶的幼穗, 在超净台上去除旗叶, 将幼 穗切成 0.3cm 左右的穗段, 接种在愈伤组织诱导培养基 : MS+2, 4-D2.0mg/L+6-BA0.1mg/L。 接种瓶内每瓶接种 5 个穗段, 在培养室下 300lux 光照, 保持温度 242, 培养 7 天左右诱 导出愈伤组织 ; 0024 3、 丛生芽诱导及增殖 : 愈伤组织生长至直径为 0.5cm 左右, 挑选淡黄色并较为致 密的愈伤组织, 接种在 MS+6-BA2.0mg/L 的分化培养基。在 2000lux 光照下培养, 保持温度 24+2, 。

13、直至形成丛生芽, 增殖系数为 4.6 以上 ; 在生根培养基 : MS+1.0mg/L IAA+0.1mg/ LIBA+1.0mg/L CCC 诱导芽和根, 生根率达 95以上, 只需 35 天左右形成完整植株 ; 0025 4、 试管苗的移栽 : 选取根系生长良好的试管苗, 放入清水中把根部的琼脂清洗干 净, 移栽到天然泥土中, 注意保水保湿, 移栽 1 个月后, 移栽成活率达到 90以上。 0026 实施例 2 0027 取材 : 五节芒 (M.floridulus)04405 采自安徽马鞍山, 保存于湖南农业大学芒属 植物资源圃内。 0028 1、 外植体的选择与灭菌 : 选用五节芒优良。

14、单株, 切取叶枕距为1.5cm的幼穗。 首先 将幼穗外部叶清除干净, 仅留旗叶, 用无菌水清洗 4 次后, 在无菌操作台上用 70酒精处理 20 秒左右, 再用 0.1的升汞消毒 20 分钟, 用无菌水冲洗 6 次备用 ; 0029 2、 胚性愈伤组织的诱导 : 将灭菌处理后带旗叶的幼穗, 在超净台上去除旗叶, 将幼 穗切成 0.4cm 左右的穗段, 接种在愈伤组织诱导培养基 : MS+2, 4-D4.0mg/L+6-BA0.2mg/L。 接种瓶内每瓶接种 4 个穗段, 在培养室下 250lux 光照, 保持温度 242, 培养 7 天左右诱 导出愈伤组织 ; 0030 3、 丛生芽诱导及增殖。

15、 : 愈伤组织生长至直径为 0.7cm 左右, 挑选淡黄色并较为致 密的愈伤组织, 接种在 MS+6-BA4.0mg/L 的分化培养基。在 2000lux 光照下培养, 保持温度 说 明 书 CN 102577983 B 4 3/3 页 5 24+2, 直至形成丛生芽, 增殖系数为 4.8 以上 ; 在生根培养基 : MS+1.0mg/L IAA+0.1mg/ LIBA+1.0mg/L CCC 诱导芽和根, 生根率达 95以上, 只需 35 天左右形成完整植株 ; 0031 4、 试管苗的移栽 : 选取根系生长良好的试管苗, 放入清水中把根部的琼脂清洗干 净, 移栽到天然泥土中, 注意保水保湿。

16、, 移栽 1 个月后, 移栽成活率达到 90以上。 0032 实施例 3 0033 取材 : 五节芒 (M.floridulus)02155 采自湖南常德, 保存于湖南农业大学芒属植 物资源圃内。 0034 1、 外植体的选择与灭菌 : 选用五节芒优良单株, 切取叶枕距为 2cm 的处于颖花原 基形成期的幼穗。首先将幼穗外部叶清除干净, 仅留旗叶, 用无菌水清洗 4 次后, 在无菌操 作台上用 70酒精处理 30 秒左右, 再用 0.1的升汞消毒 20 分钟, 用无菌水冲洗 7 次备 用 ; 0035 2、 胚性愈伤组织的诱导 : 将灭菌处理后带旗叶的幼穗, 在超净台上去除旗叶, 将幼 穗切成。

17、 0.5cm 左右的穗段, 接种在愈伤组织诱导培养基 : MS+2, 4-D6.0mg/L+6-BA0mg/L。接 种瓶内每瓶接种 3 个穗段, 在培养室下 250lux 光照, 保持温度 242, 培养 7 天左右诱导 出愈伤组织 ; 0036 3、 丛生芽诱导及增殖 : 愈伤组织生长至直径为 0.8cm 左右, 挑选淡黄色并较为致 密的愈伤组织, 接种在 MS+6-BA4.0mg/L 的分化培养基。在 2000lux 光照下培养, 保持温度 242, 直至形成丛生芽, 增殖系数为 4.2 以上 ; 在生根培养基 : MS+1.0mg/L IAA+0.1mg/ LIBA+1.0mg/L CCC 诱导芽和根, 生根率达 95以上, 只需 35 天左右形成完整植株 ; 0037 4、 试管苗的移栽 : 选取根系生长良好的试管苗, 放入清水中把根部的琼脂清洗干 净, 移栽到天然泥土中, 注意保水保湿, 移栽 1 个月后, 移栽成活率达到 90以上。 说 明 书 CN 102577983 B 5 1/1 页 6 图 1 图 2 图 3 图 4 说 明 书 附 图 CN 102577983 B 6 。

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