荧光纳米探针及其制备方法和用于食品中多种危害因子同步检测的方法技术领域
本发明涉及食品检测领域，特别是一种荧光纳米探针，该荧光纳米探针的制备方
法，以及用于食品中多种危害因子同步检测的方法。
背景技术
食品中危害因子检测一直是食品安全领域中的重要课题，但目前能够灵敏、稳定
可靠、快速简便、低成本地监控乳品中常见的危害因子的方法，实现对乳品中高频危害因子
实现一步“全检测”的技术仍然缺乏。
如乳品中常见的“高频危害因子”如三聚氰胺，黄曲霉毒素M1，Beta-内酰胺类抗生
素等的检测技术主要有基于色谱-质谱等理化检测、基于抗原抗体反应原理的免疫分析检
测和基于微生物相关技术原理的检测。对乳品中抗生素的检测最初发展起来的是基于抗生
素与微生物间相互作用而建立的微生物生长抑制法、微生物受体法和酶促比色法。乳品中
理化检测方法是利用抗生素分子中的基团具有的特殊反应或性质来测定其含量，如高效液
相色谱法、气相色谱法、质谱法、联用技术等等，能进行定性、定量和药物鉴定，敏感性较高，
但色谱法分析过程繁琐复杂，样品前处理步骤较为复杂，工作量大，仪器昂贵，要求有熟练
地技术人员及较长的分析周期，这也一定程度上限制了色谱法的应用。目前，用于检测抗生
素残留的免疫分析方法主要有两类：一类是以抗原抗体识别为核心反应，代表方法是酶联
免疫吸附法(ELISA)，另一类是以受体配体识别为核心反应。但影响因素较多，易出现假阳
性结果且灵敏度低。不管哪种方法，其检测对象都是一种(类)物质，要实现一次性对高频危
害因子实现同步高通量的测定，目前的检测方法还不能实现。
以稀土荧光化合物作为荧光标记物的时间分辨荧光生化分析技术已经取得了显
著的进步，在医学临床诊断、食品安全领域以及生命科学等领域发挥着越来越重要的作用。
现有技术中，基于稀土荧光生物标记物超长荧光寿命的时间分辨荧光生化分析技术可有效
消除各种各样来自于样品及仪器的背景信号对荧光测定的干扰，使得测定灵敏度显著增
加。
但是现有的稀土荧光探针具有光信号较弱、检测集成度低的问题，并且现有的稀
土荧光探针及其配套的检测装置和平台无法实现多种危害因子同步检测的目的。
发明内容
本发明的主要目的是提供一种光信号强、有助于高通量检测食品中危险因子的荧
光纳米探针，同时，本发明还提供了该荧光纳米探针的制备方法，以及采用该荧光纳米探针
来实现食品中多种危害因子同步检测的方法，该方法能够实现多种危害因子同步检测的目
的。
在阐述本发明的具体方案之前，对本发明中的各化合物简称予以说明：
TEOS(正硅酸乙酯)、BHHCT(三联苯衍生物螯合物)、BPTA(四氮-[2,6-双(3'-氨基
甲基-1'-吡啶)-4-苯基吡啶])、APTMS(3-氨丙基三甲氧基硅烷)、NHS(N-羟基琥珀酰亚胺)、
BBCAP(2,9-双[N,N-双(羧甲基)氨甲基]-1,10-(菲咯啉))、PTTA(联三吡啶多羧酸衍生物)、
BCPDA(4,7-双氯磺酰基苯基-1,10-菲啰啉-2,9-二羧酸)EDC(1-(3-二甲氨基丙基)-3-乙基
碳二亚胺盐酸盐)、TritonX-100(聚乙二醇辛基苯基醚)、Tris(三羟甲基氨基甲烷)、BSA(牛
血清白蛋白)、PDMS(聚二甲基硅氧烷)。
本发明提供的技术方案为：一种荧光纳米探针，包括内部载有Eu3+和/或Tb3+的稀
土螯合物的TEOS纳米内核，所述的TEOS纳米内核表面修饰有多层表面键合有Eu3+和/或Tb3+
稀土螯合物的TEOS壳层。
优选地，荧光纳米探针的最外层还设有一层TEOS壳层，该TEOS壳层表面并不键合
有Eu3+和/或Tb3+稀土螯合物，其主要用于键合抗体或者抗原模拟物。
在上述的荧光纳米探针中，所述的TEOS纳米内核的表面也键合有Eu3+和/或Tb3+稀
土螯合物。
需要说明的是：在本方案中，“和/或”所指代的意思为可以选择之一或两种均可选
择。比如，Eu3+和/或Tb3+的稀土螯合物是指该稀土螯合物中所螯合的稀土离子可以为Eu3+也
可以为Tb3+，也可以为两者的混合物。
在本方案中，若选择螯合有Eu3+和Tb3+的离子时，其配比是根据实际需要来进行选
择的，螯合物中所键合的Eu3+和Tb3+的摩尔比例可以为0:5、1:4、2:3、1:1、3:2、4:1、5:0。
Tb纳米、Eu纳米还是混合包裹的Eu/Tb纳米都具有一致的激发和发射光谱。调整Eu
与Tb二者浓度的混合比例能够制备多色荧光纳米，其所制备出的多色荧光纳米探针的激发
波长是保持一致的，如图5中A、B所示，BBCAP-Eu，BBCAP-Tb的激发波长为280nm。随着掺入Tb
与Eu摩尔比例的不同，形成的多色荧光纳米探针在峰型上展示了一些变化，如图5中C所示。
但这种混合包裹的荧光纳米探针，随着在外层的“layer-by-layer”(一层又一层)包裹，其
特征光谱峰也没有发生变化，这对于后续的标记实验是重要的，这样可以保证不同类型的
荧光纳米探针混合进行多种危害因子的同步检测，并有望实现可视化检测。
在上述的荧光纳米探针中，所述的稀土螯合物所用的螯合剂为BBCAP或BHHCT或
PTTA。
在上述的荧光纳米探针中，所述的表面键合有Eu3+和/或Tb3+稀土螯合物的TEOS壳
层为3-5层。
本发明还提供上述的荧光纳米探针的制备方法，具体来说，包括以下步骤：
步骤1：在反相微乳液中合成内部载有Eu3+和/或Tb3+稀土螯合物的TEOS纳米内核；
步骤2：在TEOS纳米内核的表面键合Eu3+和/或Tb3+稀土螯合物；
步骤3：在键合有Eu3+和/或Tb3+稀土螯合物的TEOS纳米内核表面修饰一层TEOS壳
层；
步骤4：在步骤3得到的具有TEOS壳层的粒子表面键合Eu3+和/或Tb3+稀土螯合物；
步骤5：重复步骤3和步骤4，2～4次；
步骤6：在步骤5得到的粒子表面修饰一层TEOS壳层。
在上述的荧光纳米探针的制备方法中，所述的步骤2具体为：将步骤1所得到的
TEOS纳米内核置于无水乙醇中并加入APTMS反应，得到表面键合有氨基的TEOS纳米内核，并
将其置于无水乙醇中；
然后加入螯合剂，使螯合剂和氨基反应，将反应产物经过Tris.HCl溶液处理后置
于无水乙醇中；
最后加入EuCl3和/或TbCl3，反应一段时间后得到表面键合Eu3+和/或Tb3+稀土螯合
物的TEOS纳米内核；
其中，TEOS纳米内核、APTMS、螯合剂、EuCl3和/或TbCl3的重量比为10～100:1～5:
0.5～5:0.5～5。
在上述的荧光纳米探针的制备方法中，所述的步骤2具体为：将步骤1所得到的
TEOS纳米内核置于无水乙醇中并加入APTMS反应，得到表面键合有氨基的TEOS纳米内核，并
将其置于无水乙醇中；
然后加入螯合剂，使螯合剂和氨基反应，将反应产物经过Tris.HCl溶液处理后置
于无水乙醇中；
最后加入EuCl3和/或TbCl3，反应一段时间后得到表面键合Eu3+和/或Tb3+稀土螯
合物的TEOS纳米内核；
其中，TEOS纳米内核、APTMS、螯合剂、EuCl3和/或TbCl3的重量比为10～100:1～5:
0.5～5:0.5～5。
本发明还提供一种用于食品中多种危害因子同步检测的方法，具体来说，所述的
方法通过具有多条检测通道的微流控芯片和多种如上述的荧光纳米探针实施；每一种危害
因子均对应有相应的检测通道和相应的荧光纳米探针；
所述的方法具体为：将待检物溶液加入到多条检测通道后，用缓冲液冲洗后加入
含多种荧光纳米探针的溶液，最后用缓冲液冲洗后检测检测通道内的荧光信号；
其中，对于采用夹心法检测的危害因子，该危害因子对应的检测通道内和用于检
测该危害因子的荧光纳米探针的表面均固定有该危害因子的捕获抗体；
对于采用竞争法检测的危害因子，该危害因子对应的检测通道内固定有该危害因
子的捕获抗体，且用于检测该危害因子的荧光纳米探针的表面偶联有该危害因子的模拟
物。
另外，本发明还提供了另一种用于食品中多种危害因子同步检测的方法，所述的
方法通过具有多条检测通道的微流控芯片和多种如上述的荧光纳米探针实施；每一种危害
因子均对应有相应的检测通道和相应的荧光纳米探针；
所述的方法具体为：首先将含多种荧光纳米探针的溶液与待检物溶液混合后，将
混合溶液加入到多条检测通道中，然后用缓冲液冲洗后检测检测通道内的荧光信号；
其中，对于采用夹心法检测的危害因子，该危害因子对应的检测通道内和用于检
测该危害因子的荧光纳米探针的表面均固定有该危害因子的捕获抗体；
对于采用竞争法检测的危害因子，该危害因子对应的检测通道内固定有该危害因
子的模拟物，且用于检测该危害因子的荧光纳米探针的表面固定有该危害因子的捕获抗
体。
所述的模拟物为危害因子与BSA或卵清蛋白反应得到，如BSA-三聚氰胺、BSA-氯霉
素等。
在此需要说明的是，采用夹心法进行测试的危害因子一般为大分子危害因子如细
菌、病毒等微生物，该大分子危害因子具有多个结合位点，也称为完全抗原；对于采用竞争
法进行测试的危害因子一般为小分子危害因子如三聚氰胺、抗生素、激素等，其仅具有一个
结合位点，也称为半抗原。
在上述的用于食品中多种危害因子同步检测的方法中，所述的微流控芯片上还设
有控制通道，所述的控制通道内未修饰任何生物分子。
在上述的用于食品中多种危害因子同步检测的方法中，所述的微流控芯片包括
PDMS本体，所述的PDMS本体的中央设有进样口，所述的检测通道和控制通道分别与进样口
相连，所述的进样通道的末端和控制通道的末端均设有出口，所述的进样通道和控制通道
内均设有多个柱状的凸起；所述的微流控芯片设置在一可旋转的转盘上，通过旋转转盘使
待测样品、缓冲溶液、荧光纳米探针进入检测通道中。
在上述的用于食品中多种危害因子同步检测的方法中，所述的凸起的横截面为正
六边形，所述的PDMS本体为圆盘形。
本发明的有益效果如下：
1、本发明的荧光纳米探针采用核壳结构，其中核层和壳层均为TEOS骨架，核层为
TEOS纳米内核，其不同于传统的通过物理包埋或共价交联包裹的荧光纳米探针，而是通过
一种由“核”到“壳”全合成的荧光纳米探针，核壳结构的优点在于：所制备的这种层层包裹
的荧光纳米探针具有更强的荧光信号，相比较以前文献报道的稀土类荧光纳米对信号有着
明显增强，其光谱特性与以前文献报道一致，二氧化硅包裹的荧光纳米不会改变其荧光特
性。
2、本发明的荧光纳米探针在TEOS纳米内核表面设置多层表面键合有Eu3+和/或Tb3
+稀土螯合物的TEOS壳层并结合TEOS纳米内核内载有的Eu3+和/或Tb3+稀土螯合物，能够提供
更为灵敏、稳定的荧光响应和更强的荧光信号。其原因在于，由于硅壳层有一定的厚度，使
得层与层之间有一定的距离，从而保证TEOS纳米内的Eu3+和/或Tb3+离子不会产生荧光自猝
灭效应，保证了荧光强度会随着层数的增多而增强。这样带来最直接的好处就在于危害因
子检出限相比于传统技术得到了显著的提高，检测灵敏度增加，检测结果更加准确和具有
针对性。
3、本发明的用于食品中多种危害因子同步检测的方法采用荧光纳米探针和微流
控芯片结合，具有高通量优点，可以同时检测多种危险因子，具体来说，这里的危害因子不
仅包括微生物等大分子，还包括激素、抗生素等小分子物质，响应速度快、荧光强度大，可以
作为食品中多种危害因子检测的有效方法。
附图说明
图1是本发明的实施例1的荧光纳米探针制备示意图；
图2是本发明的实施例1的修饰有氨基的荧光纳米探针的放大的示意图；
图3是本发明的实施例3和4的微流控芯片的结构示意图；
图4是本发明的实施例3和4的微流控芯片的A-A剖视图。
图5是本发明的实施例5的荧光检测光谱。
各标号具体为：1、TEOS纳米内核，2、修饰有氨基的TEOS纳米内核，3、修饰有稀土螯
合物的TEOS纳米内核，4、修饰有氨基的荧光纳米探针，5、稀土螯合物，6、TEOS壳层，8、PDMS
本体，81、进样口，82、进样通道，83、控制通道，84、出口，85、凸起。
具体实施方式
下面结合具体实施方式，对本发明的技术方案作进一步的详细说明，但不构成对
本发明的任何限制。
实施例1
本实施例给出了荧光纳米探针的制备方法。
具体为：1.螯合物前驱体的制备
溶液A：2.0mgBBCAP或BHHCT或PTTA溶解于20μL0.05M的碳酸盐缓冲液(pH9.5)
中。溶液B：6.4mgEDC和2.0mgNHS溶解于80μL无水乙醇。A，B混合搅拌20min，加入1.5μL
APTMS，避光搅拌反应2h。然后，加入200μL0.01M的EuCl3和TbCl3的混合物，避光搅拌反应
2h，获得有大量氨基且螯合不同比例Eu3+和Tb3+的螯合物，作为合成具有不同发射波长荧光
探针的前驱体。
2.荧光纳米探针的制备
A)荧光纳米探针的TEOS纳米内核的合成：取100μL上述前驱体和300μL超纯水加入
到10mL由非离子表面活性剂TritonX-100形成的反相胶束体系中进行凝胶化反应。反相胶
束体系按照TritonX-100，正己醇，环己烷三者体积比1：1：3混合，快速搅拌均匀制备反相胶
束。在上述体系中加入100μLTEOS，加快搅拌速度，促使TEOS进入反相胶束中的“纳米水
池”，然后加入60μLNH4OH引发水解反应。室温反应24h，使水解和缩合反应进行充分，将收
集的产物分散在等体积的丙酮中，在冰水浴中超声震荡5min，高速离心沉淀，将沉淀分散在
乙醇相中进行充分洗涤，保存在无水乙醇中备用。其如图1中的标号1。
B)荧光纳米探针TEOS壳层的制备：①如图1中的标号2所示，取lmL浓度约为30mg/
mL悬浮于无水乙醇中的荧光纳米探针TEOS纳米内核，加入3μLAPTMS，室温搅拌2小时，随后
加热到69℃，并持续加热保持5min，最后用无水乙醇洗涤3遍，并悬浮于lmL无水乙醇中；②
如图1中的标号3所示，取上述表面修饰有氨基的TEOS纳米内核lmL，浓度约为30mg/mL，加
入0.8mgBHHCT，室温搅拌2h，无水乙醇洗涤2遍后，以lmLTris.HCl(0.05mol/L，pH7.8)悬
浮，最后以无水乙醇洗涤3遍，并悬浮于lmL无水乙醇中，然后加入0.8mgEuCl3，避光搅拌
反应2h，获得螯合新一层Eu3+的纳米探针；③TEOS壳层的制备：取上述键合有稀土螯合物的
荧光纳米lmL，浓度约为30mg/mL，加入20μLTEOS，室温，避光搅拌2h，随后加热到69℃，并持
续加热保持5min，最后用无水乙醇洗涤l遍，并悬浮于lmL无水乙醇中。重复步骤①-③2-4
次。最后重复①步骤在其表面修饰氨基，备用，其如图1中的标号4所示。图2为修饰有氨基的
荧光纳米探针的示意图，其中5为稀土螯合物，6为最外层的TEOS壳层，其中在图2中最外层
的TEOS壳层6和TEOS纳米内核之间仅画出了稀土螯合物5，图中未示出的是，在最外层的
TEOS壳层6和TEOS纳米内核之间具有多层TEOS壳层，通过稀土螯合物5可以看出稀土螯合物
5为多层分布的，在多层的稀土螯合物5之间即为TEOS壳层。
3.荧光纳米探针与抗体偶联
取抗体500μL，对0.01mol/LpH5.2醋酸钠缓冲液，4℃透析6h；然后加入NaIO4，终
浓度为0.01mol/L，对抗体进行氧化，20分钟后，再次对0.01mol/LpH5.2醋酸钠缓冲液透
析,然后加入表面带有氨基的荧光纳米探针500μL，混匀，4℃过夜；加入NaBH3CN，终浓度为
0.005mol/L，4℃反应2h；再加入等体积的封闭液(0.05mol/LTris.HCl，pH＝7.8，含2wt％
BSA、4wt％蔗糖)，4℃封闭12小时或过夜；最后用0.05mol/LTris-HCl,pH＝7.8)洗涤标记好
的荧光纳米探针3遍，然后用500μL0.05mol/LTris.HCl(pH＝7.8，含0.9wt％NaCl、
0.2wt％BSA、0.1wt％NaN3)悬浮，得到荧光纳米探针，备用。
在本实施例中以及实施例2和3中均未明确指出Eu3+和Tb3+的摩尔比例，其在实施
例5中的图5的解释中已经明确说明了Eu3+和Tb3+比例对特征峰的影响，本领域技术人员可
以根据图5的图谱自行设计Eu3+和Tb3+的比例。在本实施例中单位M代表mol/L，wt％代表质
量百分数。
实施例2
本实施例给出了荧光纳米探针的制备方法。
具体为：1.螯合物前驱体的制备
溶液A：10mgBBCAP或BHHCT或PTTA溶解于20μL0.05M的碳酸盐缓冲液(pH9.5)
中。溶液B：6.4mgEDC和2.0mgNHS溶解于80μL无水乙醇。A，B混合搅拌20min，加入1.5μL
APTMS，避光搅拌反应2h。然后，加入200μL0.01M的EuCl3和TbCl3的混合物，避光搅拌反应
2h，获得有大量氨基且螯合不同比例Eu3+和Tb3+的螯合物，作为合成具有不同发射波长荧光
探针的前驱体。
2.荧光纳米探针的制备
A)荧光纳米探针的TEOS纳米内核的合成：取100μL上述前驱体和300μL超纯水加入
到10mL由非离子表面活性剂TritonX-100形成的反相胶束体系中进行凝胶化反应。反相胶
束体系按照TritonX-100，正己醇，环己烷三者体积比1：1：3混合，快速搅拌均匀制备反相胶
束。在上述体系中加入100μLTEOS，加快搅拌速度，促使TEOS进入反相胶束中的“纳米水
池”，然后加入100μLNH4OH引发水解反应。室温反应24h，使水解和缩合反应进行充分，将收
集的产物分散在等体积的丙酮中，在冰水浴中超声震荡5min，高速离心沉淀，将沉淀分散在
乙醇相中进行充分洗涤，保存在无水乙醇中备用。其示意图如图1中的标号1。
B)荧光纳米探针TEOS壳层的制备：①如图1中的标号2所示，取lmL浓度约为
100mg/mL悬浮于无水乙醇中的荧光纳米探针TEOS纳米内核，加入5μLAPTMS，室温搅拌2小
时，随后加热到69℃，并持续加热保持5min，最后用无水乙醇洗涤3遍，并悬浮于lmL无水乙
醇中；②如图1中的标号3所示，取上述表面修饰有氨基的TEOS纳米内核lmL，浓度约为
100mg/mL，加入5.0mgBHHCT，室温搅拌2h，无水乙醇洗涤2遍后，以lmLTris.HCl(0.05mol/
L，pH7.8)悬浮，最后以无水乙醇洗涤3遍，并悬浮于lmL无水乙醇中，然后加入5.0mg
EuCl3，避光搅拌反应2h，获得螯合新一层Eu3+的纳米探针；③TEOS壳层的制备：取上述键合
有稀土螯合物的荧光纳米lmL，浓度约为100mg/mL，加入100μLTEOS，室温，避光搅拌2h，随
后加热到69℃，并持续加热保持5min，最后用无水乙醇洗涤l遍，并悬浮于lmL无水乙醇中。
重复步骤①-③2-4次。最后重复①步骤在其表面修饰氨基，备用，其如图1中的标号4所示。
图2为修饰有氨基的荧光纳米探针的放大的示意图。
3.荧光纳米探针与抗体偶联
取抗体500μL，对0.01mol/LpH5.2醋酸钠缓冲液，4℃透析6h；然后加入NaIO4，终
浓度为0.01mol/L，对抗体进行氧化，20分钟后，再次对0.01mol/LpH5.2醋酸钠缓冲液透
析,然后加入表面带有氨基的荧光纳米探针500μL，混匀，4℃过夜；加入NaBH3CN，终浓度为
0.005mol/L，4℃反应2h；再加入等体积的封闭液(0.05mol/LTris.HCl，pH＝7.8，含2wt％
BSA、4wt％蔗糖)，4℃封闭12小时或过夜；最后用0.05mol/LTris-HCl,pH＝7.8)洗涤标记好
的荧光纳米探针3遍，然后用500μL0.05mol/LTris.HCl(pH＝7.8，含0.9wt％NaCl、
0.2wt％BSA、0.1wt％NaN3)悬浮，得到荧光纳米探针，备用。
实施例3
A)荧光纳米探针的TEOS纳米内核的合成：取100μL上述实施例1或实施例2所述的
前驱体和300μL超纯水加入到10mL由非离子表面活性剂TritonX-100形成的反相胶束体系
中进行凝胶化反应。反相胶束体系按照TritonX-100，正己醇，环己烷三者体积比1：1：3混
合，快速搅拌均匀制备反相胶束。在上述体系中加入100μLTEOS，加快搅拌速度，促使TEOS
进入反相胶束中的“纳米水池”，然后加入50μLNH4OH引发水解反应。室温反应24h，使水解
和缩合反应进行充分，将收集的产物分散在等体积的丙酮中，在冰水浴中超声震荡5min，高
速离心沉淀，将沉淀分散在乙醇相中进行充分洗涤，保存在无水乙醇中备用。其示意图如图
1中的标号1。
B)荧光纳米探针TEOS壳层的制备：①如图1中的标号2所示，取lmL浓度约为10mg/
mL悬浮于无水乙醇中的荧光纳米探针TEOS纳米内核，加入1μLAPTMS，室温搅拌2小时，随后
加热到69℃，并持续加热保持5min，最后用无水乙醇洗涤3遍，并悬浮于lmL无水乙醇中；②
如图1中的标号3所示，取上述表面修饰有氨基的TEOS纳米内核lmL，浓度约为10mg/mL，加
入0.5mgBHHCT，室温搅拌2h，无水乙醇洗涤2遍后，以lmLTris.HCl(0.05mol/L，pH7.8)悬
浮，最后以无水乙醇洗涤3遍，并悬浮于lmL无水乙醇中，然后加入0.5mgEuCl3，避光搅拌
反应2h，获得螯合新一层Eu3+的纳米探针；③TEOS壳层的制备：取上述键合有稀土螯合物的
荧光纳米lmL，浓度约为10mg/mL，加入100μLTEOS，室温，避光搅拌2h，随后加热到69℃，并
持续加热保持5min，最后用无水乙醇洗涤l遍，并悬浮于lmL无水乙醇中。重复步骤①-③2-
4次。最后重复①步骤在其表面修饰氨基，备用，其如图1中的标号4所示。图2为修饰有氨基
的荧光纳米探针的放大的示意图。
3.荧光纳米探针与抗体偶联
取抗体500μL，对0.01mol/LpH5.2醋酸钠缓冲液，4℃透析6h；然后加入NaIO4，终
浓度为0.01mol/L，对抗体进行氧化，20分钟后，再次对0.01mol/LpH5.2醋酸钠缓冲液透
析,然后加入表面带有氨基的荧光纳米探针500μL，混匀，4℃过夜；加入NaBH3CN，终浓度为
0.005mol/L，4℃反应2h；再加入等体积的封闭液(0.05mol/LTris.HCl，pH＝7.8，含2wt％
BSA、4wt％蔗糖)，4℃封闭12小时或过夜；最后用0.05mol/LTris-HCl,pH＝7.8)洗涤标记好
的荧光纳米探针3遍，然后用500μL0.05mol/LTris.HCl(pH＝7.8，含0.9wt％NaCl、
0.2wt％BSA、0.1wt％NaN3)悬浮，得到荧光纳米探针，备用。
实施例4
微流控芯片的制备：本微流控芯片的结构为包括PDMS本体8，所述的PDMS本体8的
中央设有进样口81，所述的PDMS本体8内设有6条与进样口81连接的进样通道82和1条与进
样口81连接的控制通道83，所述的进样通道82的末端和控制通道83的末端均设有出口84，
所述的进样通道82和控制通道83内均设有多个柱状的凸起85。
凸起85的剖面形状为正六边形，当然在实际应用过程中，凸起85的剖面形状还可
以为椭圆形或者其他形状。
凸起85的顶部与进样通道82或控制通道83的顶部连接。
芯片主体采用PDMS-PDMS结构，以模塑法制作，具体步骤如下：
a)硅模具制作：模具的制作包括绘制版图、制作掩模和光刻三个标准步骤。
b)PDMS基片的制作：将Sylgard184硅橡胶弹性体和Sylgard184固化剂以质量比
10：1的比例混合，搅拌均匀，在真空干燥箱中脱气，倾倒在硅模具表面，在真空干燥箱中以
80℃烘烤15分钟，取出，冷却，剥离。得到具有7条微通道的PDMS基片。
c)键合封装：将含有微通道的PDMS打孔，确定微流控进口和出口；然后将此PDMS基
片和另一片平整的PDMS切成芯片单元。以氧气等离子体方法键合。芯片制作完毕。
d)表面修饰及功能化：表面等离子体处理后，把两块PDMS键合，然后立刻开始表面
处理程序。从进样通道82和控制通道83的出口84加样，中间的进样口81施加真空将试剂抽
过去。
抗体的固定程序如下：氧等离子处理PDMS进样通道82、控制通道83和平整的PDMS
膜5-10分钟(18秒，50瓦，0.2毫巴，标况下250mL/min)，然后键合成整芯片；以4.0mL/min的
速度从进样口81通入5.0wt％的3-氨基丙基三乙氧基硅烷溶液(95wt％乙醇—5wt％双蒸水
混合溶液)10分钟。停止流动，孕育15分钟，依次用乙醇冲洗15分钟和通空气吹洗，然后在80
℃烘30分钟。随后，注入戊二醛溶液(1.0wt％的水溶液，Ph＝9.2)10分钟后静止，在碱性条
件下培育15分钟，使表面氨基与交联剂戊二醛反应。用0.1M碳酸钠缓冲液(pH＝9.2)冲洗通
道，然后注入抗体溶液(0.2mg/mL抗体分散于pH9.2的0.1M碳酸钠缓冲液，含0.05％Tween-
20)10分钟。孕育20min后，使用0.5MTris缓冲液(pH9.0)-0.05wt％Tween混合液封闭未反
应的戊二醛。为了减少非特异性蛋白质的吸附，通入1.0wt％的牛血清白蛋白溶液(10mM
PBS，pH7.4)，培育20分钟，然后用10mMPBS冲洗干净。
实施例5
牛奶中危害因子的检测
以牛奶中肠出血性大肠杆菌O157:H7、沙门氏菌、单增李斯特菌三种致病菌的同步
检测为例。
具体步骤如下：步骤1：从实施例4所制备的微流控芯片的进样口81加入待测样品，
使样品进入微流控芯片的检测通道52中；在微流控芯片中设有6条检测通道52和一条控制
通道83。检测通道52和控制通道83结构相同，均设有多个截面为六边形的凸起。控制通道83
不做任何修饰，即不固定任何抗体，在本实施例中为设置的阴性对照，因为按照设计在控制
通道83中没有任何抗体存在，则无法捕获待测物，也无法形成夹心结构而产生荧光信号；这
一阴性对照设置的目的是排除通道表面的非特异性吸附造成的干扰；
其中的两条检测通道52设置为肠出血性大肠杆菌O157:H7的检测通道，通道内固
定肠出血性大肠杆菌O157:H7的单克隆抗体；
另外的两条检测通道52设置为沙门氏菌的检测通道，通道内固定沙门氏菌的单克
隆抗体；
剩余的两条检测通道52设置为单增李斯特菌的检测通道，通道内固定单增李斯特
菌的单克隆抗体；
步骤2：将缓冲液从进样口81加入检测通道52中，冲洗数次；
步骤3：从进样口中加入荧光纳米探针溶液，荧光纳米探针如实施例1中公开，使荧
光纳米探针进入检测通道中；荧光纳米探针溶液中含有三种特定的荧光纳米探针，其中一
种荧光纳米探针的表面所修饰的肠出血性大肠杆菌O157:H7的单克隆抗体；另外一种荧光
纳米探针的表面所修饰沙门氏菌的单克隆抗体；剩余的一种荧光纳米探针的表面所修饰单
增李斯特菌的单克隆抗体。
步骤4：将缓冲液从进样口81加入检测通道中，冲洗数次；
步骤5：用荧光显微镜或时间分辨荧光仪检测检测通道52中的荧光信号。
其具体的检测原理为：若牛奶中有肠出血性大肠杆菌O157:H7，则在肠出血性大肠
杆菌O157:H7的检测通道内的抗体会与牛奶中的肠出血性大肠杆菌O157:H7特异性结合，固
定住抗原肠出血性大肠杆菌O157:H7，然后荧光纳米探针溶液中修饰有肠出血性大肠杆菌
O157:H7的单克隆抗体的荧光纳米探针与抗原肠出血性大肠杆菌O157:H7特异性结合，这样
经过荧光显微镜或时间分辨荧光仪检测得到该检测通道52内的荧光强度，即可得知样品中
是否存在肠出血性大肠杆菌O157:H7以及肠出血性大肠杆菌O157:H7的浓度是多少。该检测
原理也可以形象的称为“三明治”或“夹心法”检测法。荧光强度越大则说明肠出血性大肠杆
菌O157:H7的浓度越大。
沙门氏菌的检测通道和单增李斯特菌的检测通道的检测原理同上，在此不做过多
重复。
在本实施例中，如有必要，还可以预先设计不同种类的荧光纳米探针的Eu3+和Tb3+
的摩尔比例，不同比例的Eu3+和Tb3+的混合在特征峰并未发生变化，仅在于峰型上展示一些
变化，这得益于外层的“layer-by-layer”包裹。
具体如图5所示，在本实施例的荧光纳米探针中，无论是Tb纳米、Eu纳米还是混合
包裹的Eu/Tb纳米都具有一致的激发和发射光谱。调整Eu与Tb二者浓度的混合比例能够制
备多色荧光纳米，其所制备出的多色荧光纳米探针的激发波长是保持一致的，如图谱A、B所
示，BBCAP-Eu，BBCAP-Tb的激发波长为280nm。随着掺入Tb与Eu摩尔比例的不同，形成的多色
荧光纳米探针在峰型上展示了一些变化，如图谱C所示。具体来说，图5中，横坐标为波长，纵
坐标为强度。图谱A中，左侧虚线是BBCAP–Tb的激发光谱，右侧虚线是BBCAP–Tb的发射光谱，
左侧实线是掺杂Tb的二氧化硅荧光纳米探针的激发光谱，右侧实线是掺杂Tb的二氧化硅荧
光纳米探针的发射光谱；图谱B中，左侧虚线是BBCAP–Eu的激发光谱，右侧虚线是BBCAP–Eu
的发射光谱，左侧实线是掺杂Eu的二氧化硅荧光纳米探针的激发光谱，右侧实线是掺杂Eu
的二氧化硅荧光纳米探针的发射光谱；图谱C中a、b、c为掺杂不同摩尔比例Eu和Tb的二氧化
硅荧光纳米探针的发射光谱，其中a为(Eu:Tb＝1:3)，b(Eu:Tb＝1:1)，c(Eu:Tb＝3:1)，但这
种混合包裹的荧光纳米探针，随着在外层的“layer-by-layer”包裹，其特征光谱峰也没有
发生变化，并且由于硅壳层有一定的厚度，使得层与层之间有一定的距离，从而保证TEOS纳
米内的Eu3+和/或Tb3+离子不会产生荧光自猝灭效应，保证了荧光强度会随着层数的增多而
增强。这样带来最直接的好处就在于危害因子检出限相比于传统技术得到了显著的提高，
检测灵敏度增加，检测结果更加准确和具有针对性，这对于后续的标记实验是重要的，这样
可以保证不同类型的荧光纳米探针混合进行多种危害因子的同步检测，并有望实现可视化
检测。
在实际应用过程中，牛奶中还可能存在其他的危害因子，这类危害因子分子量较
小，如三聚氰胺、黄曲霉毒素、Beta-内酰胺类抗生素等，其仅具有一个位点，也称为半抗原，
由于这类危害因子的结构和特性的限制，不能采用“夹心法”法进行检测，而必须采用“竞争
法”进行检测。
当待检物不仅有细菌、病毒类大分子危害因子，还有细菌的代谢产物、次生代谢产
物、抗生素等其他小分子危害因子时，检测方法大致分为两种。
方法一，本方法是预先将待检测的溶液加入到检测通道内，然后再将含有多种荧
光纳米探针的容易加入到检测通道内进行检测。
在这种情况下，对于细菌、病毒类大分子危害因子，采用“夹心法”进行检测，该检
测通道内和用于检测该危害因子的荧光纳米探针的表面均固定有该危害因子的捕获抗体；
具体举例来说明：若待检物中需要检测肠出血性大肠杆菌O157:H7，则微流控芯片中某一条
或两条检测通道内固定肠出血性大肠杆菌O157:H7的单克隆抗体，并且荧光纳米探针溶液
中有表面偶联肠出血性大肠杆菌O157:H7的单克隆抗体的荧光纳米探针，形成抗体-抗原-
抗体的三明治结构，通过检测荧光信号即可得到待检物中的肠出血性大肠杆菌O157:H7的
含量。
对于如细菌的代谢产物、次生代谢产物、抗生素等小分子危害因子，采用“竞争法”
进行检测，该检测通道内固定有该危害因子的捕获抗体，且用于检测该危害因子的荧光纳
米探针的表面固定有该危害因子的模拟物；具体举例来说明：若待检物中需要检测三聚氰
胺，则微流控芯片中某一条或两条检测通道内固定三聚氰胺的单克隆抗体，并且荧光纳米
探针溶液中有表面偶联BSA-三聚氰胺的荧光纳米探针，在测试过程中，三聚氰胺先被检测
通道内的三聚氰胺的单克隆抗体捕获，此时，检测通道内的三聚氰胺的单克隆抗体还有部
分处于未捕获三聚氰胺的状态，此时加入荧光纳米探针溶液，未捕获三聚氰胺的单克隆抗
体继续与表面偶联BSA-三聚氰胺的荧光纳米探针结合，通过检测荧光信号即可得到待检物
中的三聚氰胺的含量。
方法二、本方法是预先将多种荧光纳米探针加入到待检测的溶液中混合，然后在
微流控芯片的检测通道内进行检测。
在这种情况下，对应检测的细菌、病毒类大分子危害因子，采用“夹心法”进行检
测，该检测通道内和用于检测该危害因子的荧光纳米探针的表面均固定有该危害因子的捕
获抗体，具体如方法一中大分子危害因子的检测方法。在此不再重复论述。
对于如细菌的代谢产物、次生代谢产物、抗生素等小分子危害因子，采用“竞争法”
进行检测，该检测通道内固定有该危害因子的模拟物，且用于检测该危害因子的荧光纳米
探针的表面固定有该危害因子的捕获抗体；具体举例来说明：若待检物中需要检测三聚氰
胺，则微流控芯片中某一条或两条检测通道内固定BSA-三聚氰胺，并且荧光纳米探针溶液
中有表面偶联三聚氰胺单克隆抗体的荧光纳米探针，在测试过程中，三聚氰胺先被荧光纳
米探针溶液的具有三聚氰胺单克隆抗体的荧光纳米探针捕获，此时，还有部分三聚氰胺单
克隆抗体的荧光纳米探针处于未捕获三聚氰胺的状态，此时将混合溶液加入到检测通道
中，未捕获三聚氰胺的荧光纳米探针继续与检测通道内的BSA-三聚氰胺结合，通过检测荧
光信号即可得到待检物中的三聚氰胺的含量。
在荧光检测过程中，采用“竞争法”进行检测的检测通道会显示荧光。如果荧光越
强烈，代表样品中如细菌的代谢产物、次生代谢产物、抗生素或其他小分子物质类危害因子
越少，甚至于无该类危害因子。
采用“夹心法”法进行检测的检测通道会显示荧光。如果荧光越强烈，代表样品中
细菌、病毒类危害因子越多。
“夹心法”检测法和“竞争法”检测法在荧光数据上是截然相反的体现，“夹心法”检
测法所检出的荧光强度越大，则代表对应的危害因子的浓度越高，“竞争法”检测法所检出
的荧光强度越小，则代表对应的危害因子的浓度越高。
通过上述的操作，可以实现同一样品中多种危害因子同时进行检测，检出限低，检
测精度高，操作简单。
以上所述的仅为本发明的较佳实施例，凡在本发明的精神和原则范围内所作的任
何修改、等同替换和改进等，均应包含在本发明的保护范围之内。