对功能分子进行SUP18/SUPF标记的方法.pdf

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摘要
申请专利号:

CN201110152843.X

申请日:

2011.06.08

公开号:

CN102351941A

公开日:

2012.02.15

当前法律状态:

授权

有效性:

有权

法律详情:

授权|||实质审查的生效IPC(主分类):C07K 1/13申请日:20110608|||公开

IPC分类号:

C07K1/13; C07K7/64; C07K7/06; C07D249/04; C07D401/12; C07D249/06

主分类号:

C07K1/13

申请人:

中国科学院上海应用物理研究所

发明人:

张岚; 施玲丽; 李剑波; 王成; 周伟

地址:

201800 上海市嘉定区嘉罗公路2019号

优先权:

专利代理机构:

上海智信专利代理有限公司 31002

代理人:

薛琦;朱水平

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内容摘要

本发明公开了一种对功能分子进行18F标记的方法,其为下述两种方法中的任意一种:方法一:溶剂中,在Cu(I)的催化下,将化合物B和化合物C进行叠氮与端位炔基的1,3-偶极环加成反应,即可;方法二:溶剂中,在Cu(I)的催化下,将化合物F和化合物G进行叠氮与端位炔基的1,3-偶极环加成反应,即可;其中,R’为各种适合做PET显像探针的功能分子,R”为烷烃基。本发明的标记方法中,反应体系稳定、条件温和、操作简单,该方法具有通用性,可适用于结构类似的系列化合物标记。除生物试剂外,本标记方法所用其他原料成本低廉,前体化合物B或F结构稳定,适于大量制备和生产,并且该方法可用于PET显像探针的合成。

权利要求书

1: 对功能分子进行 18F 标记的方法, 其为下述两种方法中的任意一种 : 方法一 : 溶剂中, 在 Cu(I) 的催化下, 将化合物 B 和化合物 C 进行叠氮与端位炔基的 1, 3- 偶极环加成反应, 即可制得化合物 D ; 方法二 : 溶剂中, 在 Cu(I) 的催化下, 将化合物 F 和化合物 G 进行叠氮与端位炔基的 1, 3- 偶极环加成反应, 即可制得化合物 H ; 其中, R’ 为 C1 ~ C12 的直链烷基或支链烷基、 C5 ~ C7 环烷基、 C6 ~ C10 芳基、 C6 ~ C10 芳 基 -C1 ~ C4 烷基或者 C1 ~ C4 烷基 -C6 ~ C10 芳基 -C1 ~ C4 烷基, R” 为本领域适合做 PET 显 像探针的多肽类、 苯磺酰胺类或其他能被叠氮或端炔基团修饰的功能分子取代基。
2: 如权利要求 1 所述的方法, 其特征在于 : R’ 中, 所述的 C1 ~ C12 的直链烷基或支链烷 基为如下任一基团 : n = 0 ~ 8。
3: 如权利要求 1 所述的方法, 其特征在于 : R’ 中, 所述的 C6 ~ C10 芳基 -C1 ~ C4 烷基为 如下基团 : 所述的 C1 ~ C4 烷基 -C6 ~ C10 芳基 -C1 ~ C4 烷基为如下任一基团 : 2 其中 n1 = 1 ~ 4, n2 = 0 ~ 4 ; 所述的 C5 ~ C7 环烷基为如下基团 : 其中 n = 1 ~ 3。
4: 如权利要求 1 所述的方法, 其特征在于 : R” 中, 所述的适合做 PET 显像探针的功能分 子取代基为多肽类功能分子取代基 RGD 肽、 Leu-Ala-Arg-Leu-Leu-Thr 肽、 或者如下任一基 团; 其中, 所述的 RGD 肽为如下结构 : 所述的 Leu-Ala-Arg-Leu-Leu-Thr 肽为如下结构 : 3
5: 如权利要求 1 所述的方法, 其特征在于 : 所述的化合物 B 的沸点低于 200℃。
6: 如权利要求 1 ~ 5 任一项所述的方法, 其特征在于 : 方法一中, 所述的 1, 3- 偶极环 加成反应包含下列步骤 : 溶剂中, pH 为 3 ~ 12, 在 Cu(I) 的催化下, 将化合物 B 和 C 进行叠 氮与端位炔基的 1, 3- 偶极环加成反应, 即可 ; 方法二中, 所述的 1, 3- 偶极环加成反应包含下列步骤 : 溶剂中, pH 为 3 ~ 12, 在 Cu(I) 的催化下, 将化合物 F 和 G 进行叠氮与端位炔基的 1, 3- 偶极环加成反应, 即可。
7: 如权利要求 6 所述的方法, 其特征在于 : 方法一或二中 : 所述的 pH 为 6 ~ 8 ; 所述的溶剂为水、 叔丁醇、 乙腈和四氢呋喃中的一种或多种 ; 当 R” 为多肽类化合物分子取代基时, 以水为溶剂 ; 化合物 B 或 F 与溶剂的摩尔体积比为 -14 -10 或者化合物 B 或 F 在溶剂中的放射性活度 (5.85×10 mol ~ 5.85×10 mol)/(0.2-1mL), 为 1mCi ~ 2Ci ; 当反应溶剂中含水时, 其他有机溶剂的体积不超过水的体积 ; 所述的化合物 C 或 G 在反应液中的浓度为 0.2 ~ 20mmol/L ; 所述的 Cu(I) 的量为化合物 C 或 G 的摩尔量 的 1 倍~ 20 倍 ; 所述的 Cu(I) 在反应液中的浓度为 5mmol/L ~ 100mmol ; 所述的 1, 3- 偶极 环加成反应的温度为 10 ~ 100℃ ; 所述的 1, 3- 偶极环加成反应的时间为 1 ~ 80 分钟。
8: 如权利要求 7 所述的方法, 其特征在于 : 所述的 Cu(I) 的量为化合物 C 或 G 的摩尔量 的 8 倍~ 15 倍 ; 所述的化合物 C 或 G 在反应液中的浓度为 3.8 ~ 7mmol/L ; 所述的 1, 3- 偶 极环加成反应的温度为 30 ~ 65℃ ; 所述的 1, 3- 偶极环加成反应的时间为 10 ~ 20 分钟。
9: 如权利要求 6 所述的方法, 其特征在于 : 所述的 Cu(I) 通过下述任一形式的 Cu(I) 来参与反应 : ①将二价铜的强酸盐和抗坏血酸或其强碱盐进行还原反应, 制得 Cu(I) ; ②碘化亚铜或溴化亚铜和弱碱性铜配体的溶液 ; ③将 Cu(0) 氧化, 制得 Cu(I)。
10: 如权利要求 19 所述的方法, 其特征在于 : ②中, 所述的弱碱性铜配体为氨水、 三乙胺或二异丙基乙胺 ; 所述的碘化亚铜或溴化亚 铜和弱碱性铜配体的摩尔比为 1 ∶ 5 ~ 1 ∶ 1000。
11: 如权利要求 9 所述的方法, 其特征在于 : ②中, 所述的碘化亚铜或溴化亚铜和弱碱 性铜配体的摩尔比为 1 ∶ 100 ~ 1 ∶ 300。
12: 如权利要求 9 所述的方法, 其特征在于 : ①中, 所述的二价铜的强酸盐为硫酸铜、 硝酸铜和氯化铜中的一种或多种 ; 所述的抗坏 血酸的强碱盐为抗坏血酸钠、 抗坏血酸钾和抗坏血酸钙中的一种或多种 ; 所述的二价铜的 强酸盐和抗坏血酸或其强碱盐的摩尔比为 1 ∶ 1.1 ~ 1 ∶ 3 ; ③中, 所述的氧化通过空气中的氧气进行氧化, 或者通过加入氧化剂进行氧化。 4
13: 如权利要求 12 所述的方法, 其特征在于 : ①中, 所述的二价铜的强酸盐为硫酸铜、 硝酸铜和氯化铜中的一种或多种 ; 所述的抗坏 血酸的强碱盐为抗坏血酸钠、 抗坏血酸钾和抗坏血酸钙中的一种或多种, ; 所述的二价铜的 强酸盐和抗坏血酸或其强碱盐的摩尔比为 1 ∶ 1.5 ~ 1 ∶ 1.8 ; ③中, 所述的氧化剂为硫酸铜。
14: 如权利要求 1 ~ 5 任一项所述的方法, 其特征在于 : 所述的化合物 B 由下列方法制 18 得: 将化合物 A 和 F 进行亲核取代反应, 即可 ; 所述的化合物 F 由下列方法制得 : 将化合物 E 和 18F- 进行亲核取代反应, 即可 ; 其中, R 为亲核取代反应中常用的离去基团, R’ 的定义同权利要求 1 ~ 5 任一项所述。
15: 如权利要求 14 所述的方法, 其特征在于 : 所述的 R 为 -OTs、 -OMs 或 -OTf。
16: 如权利要求 14 所述的方法, 其特征在于 : 所述的亲核取代反应包含下列步骤 : 有机 18 溶剂中, 惰性气体保护下, 将含有 K222、 K2CO3 和 F 的混合物与化合物 A 或 E 进行亲核取代 反应, 即可 ; 其中, 所述的有机溶剂为无水乙腈、 无水二甲基甲酰胺和无水二甲亚砜中的一种或多 18 F 的活度为 10μCi ~ 2Ci ; 化合物 A 种; 所述的 K222 和 K2CO3 的摩尔比为 1 ∶ 3 ~ 7 ∶ 1 ; 或 E 在反应液中的浓度为 0.01 ~ 1mol/L, 其溶液体积用量为 200 ~ 500μL ; K222 和化合物 A 或 E 的质量比为 1 ∶ 1 ~ 7 ∶ 1 ; 所述的惰性气体为氮气和 / 或氩气 ; 所述的亲核取代反 应的温度为 80-150℃ ; 所述的亲核取代反应的时间为 2-15min。
17: 如权利要求 16 所述的方法, 其特征在于 : 所述的含有 K222、 K2CO3 和 18F- 的混合物通 过下述方法制得 : 用 K222 溶液淋洗富集 18F- 的 QMA 柱, 蒸干溶剂, 即可。
18: 如权利要求 17 所述的方法, 其特征在于 : 所述的 K222 溶液通过下述方法制得 : 将 K222, K2CO3, 乙腈和水配成溶液, 即可, 其中, 各成分含量范围如下 : 每 1mL 乙腈中, 有 30 ~ 150μL 水, 1 ~ 7mg K2CO3, 5 ~ 30mg K222。
19: 如权利要求 14 所述的方法, 其特征在于 : 在亲核取代反应完成后, 用下述提纯方法 提纯 : 当化合物 B 或 F 的沸点低于 200℃时, 向反应液中加入乙腈, 以氮气作为载气, 采用蒸 馏方法分离杂质, 收集化合物 B 或 F 的乙腈冷凝溶液 ; 所述的蒸馏温度为 85 ~ 150℃, 蒸馏 时间为 5 ~ 30 分钟。

说明书


对功能分子进行 18F 标记的方法

    【技术领域】
     本发明具体的涉及对功能分子进行 18F 标记的方法。背景技术
     当前, 作为一种分子影像技术的代表, 正电子发射断层显像 (Positronemission tomography, PET) 能够定量和高分辨地提供检测数据, 已广泛应用于肿瘤的诊断、 机理研 究和临床治疗 (Simon M.Ametamey, Michael Honer, Pius August Schuiger.″ Molecular Imaging with PET ″, Chem.Rev.2008, 108, 1501-1516.PET 分 子 影 像, Paul J.Cassidy, George K.Radda, Molecular imagingperspectives, J.R.Soc.Interface, 2005, 2(3) : 133-144. 分子影像展望 )。
     而在大量的正电子发射性核素中, 氟 -18[18F] 原子半径小, 半衰期为 109.8min, 最大正电子能量 0.64MeV, 平均射程 0.22mm, 具有优良的核性质和化学性质, 是 PET 探针的 优 选 核 素 (Okarvi, S.M.(2001). ″ Recent progress influorine-18labelled peptide radiopharmaceuticals. ″ Eur J Nucl Med 28(7) : 929-38.18F 标记多肽放射性药物进 展 )。 现在临床的 PET 影像探针主要有 : 有机小分子类、 多肽类、 抗体类、 基因片段类、 寡 18 核苷酸类, 其中多肽类以其优良的性质和药理学特性, 成为显像药物中的优选。随着 F 标 记多肽进行肿瘤受体显像成为当今分子核医学研究的主要领域之一, 如何利用 18F 进行多 肽的标记也成为一个重要的研究课题。 总体看来, 多肽的 18F 标记主要有直接标记和间接标 记两种标记方式, 并以间接标记方式为主。 利用多肽中存在的羧基、 羟基、 氨基等活性基团, 18 18 使用双功能配基连接放射性核素 F 和多肽分子, 形成 peptide-linker- F 的典型结构, 是 18 最常用的多步标记方法。( 施玲丽 .(2008). 核技术 .(10). 多肽的 F 标记方法 )
     发明内容
     本发明所要解决的技术问题是为了提供了一种与现有技术完全不同的对功能分 18 子进行 F 标记的方法。本发明的标记方法中, 反应体系稳定、 条件温和、 操作简单, 该方法 具有通用性, 可适用于结构类似的系列化合物标记。 除生物试剂外, 本标记方法所用其他原 料成本低廉, 前体化合物 B 或 F 结构稳定, 适于大量制备和生产, 并且该方法可用于 PET 显 像探针的合成。
     本发明人针对 18F 及某些类型的化合物而发明了一种全新的 18F 标记方法。 该方法 18 能避免目前常用的 F 标记探针在合成中的一些缺点 : 如反应产率不高、 标记过程不具有通 用性等。
     因此, 本发明涉及对功能分子进行 18F 标记的方法, 其为下述两种方法中的任意一 种:
     方法一 : 溶剂中, 在 Cu(I) 的催化下, 将化合物 B 和化合物 C 进行叠氮与端位炔基 的 1, 3- 偶极环加成反应, 即可制得化合物 D ;
     方法二 : 溶剂中, 在 Cu(I) 的催化下, 将化合物 F 和化合物 G 进行叠氮与端位炔基 的 1, 3- 偶极环加成反应, 即可制得化合物 H ;其中, R’ 为 C1 ~ C12 的直链烷基或支链烷基、 C5 ~ C7 环烷基、 C6 ~ C10 芳基、 C6 ~ C10 芳基 -C1 ~ C4 烷基, 或者 C1 ~ C4 烷基 -C6 ~ C10 芳基 -C1 ~ C4 烷基, R” 为本领域适合做 PET 显像探针的多肽类、 苯磺酰胺类或其他能被叠氮或端炔基团修饰的功能分子取代基。
     R’ 中, 所述的 C1 ~ C12 的直链烷基或支链烷基较佳的为如下任一基团 :
     n = 0 ~ 8, 优选 2 或 3 ; 所述的芳基 -C1 ~ C4 烷基较佳的为如下基团 :
     所述的 C1 ~ C4 烷基 -C6 ~ C10 芳基 -C1 ~ C4 烷基较佳的为如下任一基团 :
     其中 n1 = 1 ~ 4, n2 = 0 ~ 4 ; 所述的环烷基较佳的为如下基团 :
     其中 n = 1 ~ 3 ;R” 中, 所述的适合做 PET 显像探针的功能分子取代基较佳的为如下任一基团、 或 者多肽类功能分子取代基 ( 如 RGD 肽、 或 Leu-Ala-Arg-Leu-Leu-Thr 肽, 结构如下所示 ) ; 等;
     所述的 RGD 肽为如下结构 :
     所述的 Leu-Ala-Arg-Leu-Leu-Thr 肽为如下结构 :较佳的, 上述化合物 B 的沸点低于 200℃。
     方法一和方法二中, 所述的 1, 3- 偶极环加成反应的方法和条件可为有机合成领 域此类反应中所用的方法和条件, 所述的 Cu(I) 为一价铜, 一般以一价铜的盐的形式参与 反应。
     本发明人经过大量实验, 特别优选出下述方法和条件 :
     方法一中, 所述的 1, 3- 偶极环加成反应包含下列步骤 : 溶剂中, pH 为 3 ~ 12, 在 Cu(I) 的催化下, 将化合物 B 和 C 进行叠氮与端位炔基的 1, 3- 偶极环加成反应, 即可。
     方法二中, 所述的 1, 3- 偶极环加成反应包含下列步骤 : 溶剂中, pH 为 3 ~ 12, 在 Cu(I) 的催化下, 将化合物 F 和 G 进行叠氮与端位炔基的 1, 3- 偶极环加成反应, 即可。
     方法一或二中, 所述的 pH 较佳的为 6 ~ 8。所述的溶剂较佳的为水、 叔丁醇、 乙腈 和四氢呋喃中的一种或多种, 当 R” 为多肽类化合物分子取代基时, 优选水为溶剂, 化合物 B 或 F 与溶剂的摩尔体积比较佳的为 (5.85×10-14mol ~ 5.85×10-10mol)/(0.2 ~ 1mL) ; 或 者化合物 B 或 F 在溶剂中的放射性活度较佳的为 1mCi ~ 2Ci。当反应溶剂中含水时, 其他 有机溶剂的体积较佳的不超过水的体积。所述的化合物 C 或 G 在反应液中的浓度较佳的为 0.2 ~ 20mmol/L, 更佳的为 3.8 ~ 7mmol/L。所述的 Cu(I) 的量较佳的为化合物 C 或 G 的 摩尔量的 1 倍~ 20 倍, 更佳的为 8 倍~ 15 倍。所述的 Cu(I) 在反应液中的浓度较佳的为 5mmol/L ~ 100mmol。
     所述的 1, 3- 偶极环加成反应的温度可根据参与反应的化合物 C 或 G 的稳定性, 以 及采用的反应溶剂体系的沸点, 适当调节温度上限, 较佳的为 10 ~ 100℃, 更佳的为 30 ~ 65℃。
     所述的 1, 3- 偶极环加成反应可以在很短的时间内完成, 如 1 ~ 80 分钟, 更佳的为 10 ~ 20 分钟。
     其中, 所述的 pH 值可通过本领域常规方法进行调节, 如加入所需 pH 范围的磷酸盐 缓冲液。
     所述的 Cu(I) 可为有机领域中此类反应的 Cu(I) 的常见形式, 本发明特别优选下 述任一形式的 Cu(I) 来参与反应 :
     ①将二价铜的强酸盐和抗坏血酸或其强碱盐进行还原反应, 制得 Cu(I) ;
     ②碘化亚铜或溴化亚铜和弱碱性铜配体的溶液 ;
     ③将 Cu(O)( 如铜丝、 铜粉或纳米铜颗粒等 ) 氧化, 制得 Cu(I)。
     上述②中的 Cu(I) 效果更佳。
     ①中, 所述的二价铜的强酸盐可为硫酸铜、 硝酸铜和氯化铜中的一种或多种, 优选 硫酸铜。所述的抗坏血酸的强碱盐可为抗坏血酸钠、 抗坏血酸钾和抗坏血酸钙等中的一种
     或多种, 因为抗坏血酸钠比抗坏血酸易溶于水, 比其他抗坏血酸盐常见且成本较低, 优选抗 坏血酸钠。所述的二价铜的强酸盐和抗坏血酸或其强碱盐的摩尔比较佳的为 1 ∶ 1.1 ~ 1 ∶ 3, 更佳的为 1 ∶ 1.5 ~ 1 ∶ 1.8。
     ②中, 所述的弱碱性铜配体为能与 Cu(I) 形成配合离子的配体, 较佳的为氨水、 三乙胺或二异丙基乙胺 ; 所述的碘化亚铜或溴化亚铜和弱碱性铜配体的摩尔比较佳的为 1 ∶ 5 ~ 1 ∶ 1000, 更佳的为 1 ∶ 100 ~ 1 ∶ 300。所述的溶液中的溶剂较佳的为水或常规 惰性有机溶剂。碘化亚铜或溴化亚铜在溶液中的浓度较佳的为 0.05mol/L ~ 1.5mol/L, 更 佳的为 0.4mol/L ~ 1.2mol/L。
     ③中, 所述的氧化可为通过空气中的氧气进行氧化, 或者通过加入氧化剂 ( 如硫 酸铜 ) 进行氧化。
     在上述 1, 3- 偶极环加成反应结束后, 可按照本领域常规的后处理及提纯方法 对产物进行提纯, 如用放射性 HPLC 分离纯化, 在用放射性 HPLC 分离纯化之前, 也可先用 Sep-Pak C18 柱对产物进行纯化。
     本发明中, 所述的化合物 B 可由下列方法制得 : 将化合物 A 和 18F- 进行亲核取代反 应, 即可 ;
     所述的化合物 F 可由下列方法制得 : 将化合物 E 和 18F- 进行亲核取代反应, 即可 ;其中, R1 为亲核取代反应中常用的离去基团, 如 -OTs、 -OMs 或 -OTf, R’ 的定义同 前所述。
     其中, 所述的亲核取代反应的方法和条件可为本领域此类 18F 标记反应的常规方 法和条件, 本发明特别优选下述方法和条件 : 有机溶剂中, 惰性气体保护下, 将含有 K222、 18 K2CO3 和 F 的混合物与化合物 A 或 E 进行亲核取代反应, 即可。
     其中, 所述的有机溶剂较佳的为无水乙腈、 无水二甲基甲酰胺和无水二甲亚砜中 的一种或多种, 优选乙腈。所述的 K222 和 K2CO3 的摩尔比较佳的为 1 ∶ 3 ~ 7 ∶ 1, 更佳的为 18 1.3 ∶ 1 ~ 3.3 ∶ 1。 F 的活度较佳的为 10μCi ~ 2Ci, 更佳的为 5mCi ~ 700mCi。化合 物 A 或 E 在反应液中的浓度较佳的为 0.01 ~ 1mol/L, 更佳的为 0.05 ~ 0.2mol/L。K222 和 化合物 A 或 E 的质量比较佳的为 1 ∶ 1 ~ 7 ∶ 1, 更佳的为 2 ∶ 1-5 ∶ 1。所述的惰性气体 较佳的为氮气和 / 或氩气。所述的亲核取代反应的温度较佳的为 80 ~ 150℃。所述的亲核 取代反应的时间较佳的为 2 ~ 15min。
     所述的含有 K222、 K2CO3 和 18F- 的混合物可通过下述方法制得 : 用 K222( 即 Kryptofix 18 222) 溶液淋洗富集 F 的 QMA 柱, 蒸干溶剂, 即可。
     其中, K222 溶液可通过下述方法制得 : 将 K222, K2CO3, 乙腈和水配成溶液, 即可。其 中, 各成分含量范围如下 : 每 1mL 乙腈中, 有 30 ~ 150μL 水, 1 ~ 7mg K2CO3, 5 ~ 30mg K222。 配置的方法可以为向 1mL 乙腈中加入 30 ~ 150μL 水, 1 ~ 7mg K2CO3, 5 ~ 30mg K222, 即可。 最常用的一种配比为 : 每 960μL 乙腈中, 有 14.4mg K222, 3mgK2CO3, 40μL 水, 各成分配成溶 液即可。
     上述亲核取代反应完成后, 可用本领域常规的后处理和提纯方法进行提纯。本发 明优选下述提纯方法和条件 : 当化合物 B 或 F 的沸点低于 200℃时, 向反应液中加入乙腈, 以氮气作为载气, 采用蒸馏方法分离杂质, 收集化合物 B 或 F 的乙腈冷凝溶液。所述的蒸馏 温度较佳的为 85 ~ 150℃, 蒸馏时间较佳的为 5 ~ 30 分钟。
     在符合本领域常识的基础上, 上述各优选条件, 可任意组合, 即得本发明各较佳实 例。
     本发明所用试剂和原料均市售可得。
     本发明的积极进步效果在于 : 1、 本发明的方法中, 两步反应的产率都很高, 且反应时间非常短。 18
     2、 本发明的 F 标记前体, 即化合物 B 和 F 结构稳定, 分离提纯方法简单。 18
     3、 本发明可以快速高效的实现 F 标记带有端炔基团的有机小分子、 多肽、 其他生 物大分子、 功能性材料或纳米微粒类化合物, 方法具有通用性。
     4、 本发明可以通过调整化合物 C 或 G 的结构, 根据需求制备 PET 显像探针, 并用于 PET 显像。
     5、 本发明中所用到的碘化亚铜、 硫酸铜、 抗坏血酸钠、 弱碱配体、 铜等均为商品化 试剂, 原料廉价易得。
     附图说明
     图 1 为实施例 2 的例二中以硫酸铜 / 抗坏血酸钠为催化体系的反应体系的 HPLC 谱图 (UV, 220nm)。
     图 2 为实施例 2 的例二中以碘化亚铜 / 氨水为催化体系的反应体系的 HPLC 谱图 (UV, 220nm)。
     图 3 为实施例 2 的例二中以硫酸铜 / 抗坏血酸钠为催化体系的反应过程中的放射 性检测 HPLC 谱图 ( 反应 5min)。
     图 4 为实施例 2 的例二中以碘化亚铜 / 氨水为催化体系的反应过程中的放射性检 测 HPLC 谱图 ( 反应 5min)。
     图 5 为实施例 2 的例二中以硫酸铜 / 抗坏血酸钠为催化体系反应结束后的放射性 检测 HPLC 谱图 ( 反应 15min)。
     图 6 为实施例 2 的例二中以碘化亚铜 / 氨水为催化体系反应结束后的放射性检测 HPLC 谱图 ( 反应 15min)。 具体实施方式下面通过实施例的方式进一步说明本发明, 但并不因此将本发明限制在所述的实 施例范围之中。 下列实施例中未注明具体条件的实验方法, 按照常规方法和条件, 或按照商 品说明书选择。
     p-[18F]FSTC、 [18F]F-cRGDfK 和 [18F]F-Clodinafop 等的合成 :
     实施例 12- 叠氮 -1-[18F] 氟乙烷的放射性合成
     18 20mCi18F- 被季铵型阴离子柱 QMA( 美国 Waters 公司产品, F 由上海市复旦大学 附属肿瘤医院和科兴药业有限公司提供 ) 捕获后, 取 1.2mLK222( 即 Kryptofix 222) 溶液 (17.3mgK222, 3.6mgK2CO3, 1152μL 乙腈, 48μL 水配成的溶液 ) 将 18F 冲洗到反应瓶中, 反应 瓶浸入 95℃的油浴, 氮气吹干, 然后再加入 500μL 无水乙腈吹干, 重复无水乙腈吹干两次 ; 然后将 5mg 2- 叠氮乙基对甲苯磺酸酯溶解于 400μL 无水乙腈溶液, 氮气保护下迅速加入 反应瓶, 95℃下密闭反应 5min, 停止反应, 冰水浴冷却。标记率可达 97%以上。
     向反应液中补加乙腈 200μL, 氮气辅助载流, 进行蒸馏, 并收集冷凝液, 蒸馏 10-20min, 蒸馏效率可达到 79.5%。
     含 2- 叠氮 -1-[18F] 氟乙烷的乙腈冷凝收集液 ( 约 600μL) 可用于下步标记反应 中。
     该步骤的放化产率可达 70%以上。
     实施例 2 采用含有叠氮基团的 18F 化合物来实现带有端炔基团的功能分子的标记
     【例一】 、 通过 1, 3- 偶极环加成反应实现有机小分子化合物的 18F 标记
     本例选择化合物 4- 氨基苯磺酰胺作为有机小分子模型。该结构的小分子能靶向 肿瘤乏氧时表达异常的碳酸酐酶 9(CAIX), 因此 p-[18F]FSTC(1-(2-[18F] 氟乙 )-N-(4- 磺酰 胺基苯基 )-1H-1, 2, 3- 三氮唑 -4- 酰胺 ) 有潜力成为肿瘤乏氧的 PET 显像探针。
     氮气保护下, 向 100μL0.10mol/L pH6.0 磷酸盐 (PBS) 缓冲液中, 依次加入 50μL 0.45mol/L 硫酸铜溶液和 100μL1.50mol/L 抗坏血酸钠溶液, 4- 丙炔酰胺基苯磺酰胺 (5mg, 22.5μmol) 的 150μL DMF 和 100μLt-BuOH 溶液, 以及上一步制得的 2- 叠氮 -1-[18F] 氟 乙烷的乙腈溶液 300μL( 也可使用未蒸馏前的溶液体系 )。在 35 ℃振荡反应 15min, 加 水 10mL 稀释, 用 Sep-Pak C18 柱纯化得到粗产物, 再用半制备高效液相系统纯化目标产 物 ( 美国 Dionex 公司 P680summit HPLC 分析系统, 半制备柱为 LoChrosorb C18 : 10μm,
     300mm×7.8mm。流动相为水 (A) 和乙醇 (B), 梯度分离条件为 : 0-5-10-40-45min, 5%→ 5% → 20%→ 20%→ 5% B。流速 1.5mL/min, 经过 UV(254nm) 检测和放射性检测。)
     放射性 HPLC 分析显示, 该实验的标记率> 98 %, p-[18F]FSTC 的保留时间 tR = 13.4min, 放射化学纯度> 98%, 收率> 96% ( 衰败校正后 )。
     【例二】 、 通过 1, 3- 偶极环加成反应实现多肽的 18F 标记 :
     本例选用 cRGDfK 作为多肽模型。研究表明其原型多肽 cRGDfK 对肿瘤新生血管有 一定的靶向性, 因此 [18F]FcRGDfK 也是一种有潜力的 PET 显像探针。
     通过多肽的 18F 标记, 验证 1, 3- 偶极环加成标记方法通用性和有效性。
     并通过两种催化剂的使用, 证明催化剂体系的多样性。
     硫酸铜 / 抗坏血酸钠催化体系 : 将 2mg 丙炔酸修饰的 cRGDfK 溶于 200μLpH6.0 磷酸缓冲液和 200uL 叔丁醇的混合溶液, 先后加入 50μL0.4M 硫酸铜和 100μL1.2M 抗 坏血酸钠溶液, 再加入蒸馏冷凝得到的 2- 叠氮 -1-[18F] 氟乙烷乙腈溶液 200μL, 50 ℃反 应 5min, 用放射性 HPLC( 美国 Agilent 1100HPLC 系统, 半制备柱为 Waters C18column : 7.3mm×300mm。流动相为添加了 0.1 %三氟乙酸的水 (A) 和乙腈 (B), 梯度分离条件为 : 0-20min, 5%→ 50% B。流速为 2.0mL/min。经过 UV(220nm) 检测和放射性检测 ) 检测, 见 图 3, 所关注的放射性产物出峰时间为 t1 = 11.2min(90.1% ), t2 = 14.8min(9.9% )。 反应 15min 后, 标记率接近 100%。产物用放射性 HPLC 分离纯化 ( 美国 Agilent1100HPLC 系统, 半制备柱为 Waters C18column : 7.3mm×300mm。流动相为添加了 0.1%三氟乙酸的水 (A) 和乙腈 (B), 梯度分离条件为 : 0-20min, 5%→ 50% B。流速为 2.0mL/min。经过 UV(220nm) 检测和放射性检测 )。
     放射性 HPLC 分析 ( 美国 Agilent 1100HPLC 系统, 半制备柱为 WatersC18column : 7.3mm×300mm。流动相为添加了 0.1 %三氟乙酸的水 (A) 和乙腈 (B), 梯度分离条件为 : 0-20min, 5%→ 50% B。流速为 2.0mL/min。经过 UV(220nm) 检测和放射性检测 )( 见图 5) 显示, 该实验的标记率> 98%, [18F]cRGDfK 的保留时间 tR = 14.8min, 放射化学纯度> 97%
     (98.1% ), 收率> 95% ( 衰败校正后 )。
     对上述的反应体系进行 HPLC 检测, HPLC 条件为 : 0-20min, 5 %→ 50 % B(A : 含 0.1%三氟乙酸的水 ; B: 含 0.1%三氟乙酸的和乙腈 ; 流速为 2.0mL/min。结果见图 1。由图 1 可看到, 在 7.5min-17.5min 时间范围内有吸收值很高宽度很大的峰, 会影响所关注的放 射性产物 (t1 = 11.2min, t2 = 14.8min) 的分离。
     碘化亚铜 / 氨水催化体系 : 将 2mg 丙炔酸修饰的 cRGDfK 溶于 200μLpH6.0 磷酸 缓冲液中, 加入 40μL0.5M 碘化亚铜氨水溶液, 再加入蒸馏冷凝得到的 2- 叠氮 -1-[18F] 氟 乙烷乙腈溶液 200uL, 50℃反应 5min, 用放射性 HPLC( 美国 Agilent 1100HPLC 系统, 半制备柱为 Waters C18column : 7.3mm×300mm。流动相为添加了 0.1%三氟乙酸的水 (A) 和乙腈 (B), 梯度分离条件为 : 0-20min, 5%→ 50% B。流速为 2.0mL/min。经过 UV(220nm) 检测和 放射性检测 ) 检测, 见图 4, 所关注的放射性产物出峰时间为 t1 = 11.2min(68.4% ), t2 = 18 14.8min(31.6% )。反应 15min 后, 冷却后用放射性 HPLC 分离纯化产物 [ F]cRGDfK( 分离 条件同前 )。
     放射性 HPLC 分析 ( 美国 Agilent 1100HPLC 系统, 半制备柱为 WatersC18column : 7.3mm×300mm。流动相为添加了 0.1 %三氟乙酸的水 (A) 和乙腈 (B), 梯度分离条件为 : 0-20min, 5%→ 50% B。流速为 2.0mL/min。经过 UV(220nm) 检测和放射性检测 )( 见图 6) 18 显示, [ F]cRGDfK 的出峰时间为 tR = 14.8min(92.2% ), 该实验的标记率> 92%。
     对上述的反应体系进行 HPLC 检测, HPLC 条件为 : 0-20min, 5 %→ 50 % B(A : 含 0.1%三氟乙酸的水 ; B: 含 0.1%三氟乙酸的和乙腈 ; 流速为 2.0mL/min。结果见图 2。由图 2 可看到, 未有干扰宽峰的存在。该优势能提高反应过程监测的清晰度, 还能保证在进行放 射性分离时, 将不会引入过多的杂质 ( 即其他有紫外吸收峰的物质 ), 提高产物的比活度。
     【例三】 、 通过 1, 3- 偶极环加成反应实现任意含有末端炔基化合物的 18F 标记 :
     本实例选择化合物炔草酯 ((R)-2-[4-(5- 氯 -3- 氟 -2- 吡啶氧基 ) 苯氧基 ] 丙酸 炔丙基酯, Clodinafop-propargyl) 作为含有末端炔基化合物的模型。
     氮 气 保 护 下, 向 100μL0.10mol/L pH6.0 磷 酸 盐 (PBS) 缓 冲 液 中, 依次加 入 50μL0.45mol/L 硫 酸 铜 溶 液 和 100μL1.50mol/L 抗 坏 血 酸 钠 溶 液, 炔 草 酯 (5mg, 14.3μmol) 的 150μLDMF 和 100μL t-BuOH 溶液, 以及上一步制得的 2- 叠氮 -1-[18F] 氟 乙烷的乙腈溶液 300μL( 也可使用未蒸馏前的溶液体系 )。在 35℃振荡反应 15min, 加水 10mL 稀释, 用 Sep-Pak C18 柱 ( 美国 Waters 公司 ) 纯化得到粗产物, 再用半制备高效液相 18 系统纯化目标产物 [ F]F-Clodinafop( 美国 Agilent 1100HPLC 系统, 采用半制备柱进行分 析, 柱型为 Waters C18column : 7.3mm×300mm。流动相为添加了 0.1%三氟乙酸的水 (A) 和 乙腈 (B), 梯度分离条件为 : 0-20min, 5%→ 90% B。流速为 2.0mL/min。经过 UV(220nm) 检 测和放射性检测 )。
     放射性 HPLC 分析 ( 美国 Agilent 1100HPLC 系统, 采用半制备柱进行分析, 柱型为 Waters C18column : 7.3mm×300mm。流动相为添加了 0.1%三氟乙酸的水 (A) 和乙腈 (B), 梯度分离条件为 : 0-20min, 5%→ 90% B。流速为 2.0mL/min。经过 UV(220nm) 检测和放射 性检测 ) 显示, 该实验的标记率> 96%, [18F]F-Clodinafop 的保留时间 tR = 17.9min, 放射 化学纯度> 99%, 收率> 95% ( 衰败校正后 )。
     实施例 3 采用含有端炔基团的 18F 化合物来实现带有叠氮基团的功能分子的标记
     【例一】 、 通过 1, 3- 偶极环加成反应实现叠氮修饰的多肽的 18F 标记 :
     本实例选择叠氮修饰的 Leu-Ala-Arg-Leu-Leu-Thr 肽作为含有叠氮修饰多肽的 模型。Leu-Ala-Arg-Leu-Leu-Thr 肽是能特征结合表皮生长因子 EGFR 的新型肽配体, 可用 于肿瘤靶向。
     将 2mg 叠氮修饰的 Leu-Ala-Arg-Leu-Leu-Thr 肽 (8.4μmol) 溶于 200μLpH6.0 磷 酸缓冲液和 200uL 叔丁醇的混合溶液, 先后加入 50μL0.4M 硫酸铜和 100μL 1.2M 抗坏血 18 酸钠溶液, 再加入蒸馏冷凝得到的 5-[ F] 氟戊炔的乙腈溶液 200μL, 50℃反应 25min。 产物 用 HPLC 检测 ( 美国 Agilent 1100HPLC 系统, 分析柱为 Zorbax C18column(4.6mm×250mm)。 流 动 相 为 添 加 了 0.1 % 三 氟 乙 酸 的 水 (A) 和 乙 腈 (B), 梯度分离条件为 : 0-20min, 5% → 90% B。流速为 1.0mL/min。经过 UV(220nm) 检测和放射性检测。)
     放射性 HPLC 分析显示, 该实验的标记率> 93%, 18
     [ F]F-Leu-Ala-Arg-Leu-Leu-Thr 的保留时间 tR = 13.1min。
     【例二】 、 通过 1, 3- 偶极环加成反应实现带有叠氮基团的小分子化合物的 18F 标记 :
     本实例选择对氯苄基叠氮作为含有叠氮基团的小分子化合物模型。
     将 10mg 对氯苄基叠氮 (59.3μmol) 溶于 50μL 乙腈溶液, 先后加入 50μL0.4M 18 硫酸铜和 100μL1.2M 抗坏血酸钠溶液, 再加入蒸馏冷凝得到的 5-[ F] 氟戊炔的乙腈溶液 200μL, 50℃反应 15min。 产物用 HPLC 检测 ( 美国 Agilent 1100HPLC 系统, 分析柱为 Zorbax C18column(4.6mm×250mm)。 流动相为添加了 0.1%三氟乙酸的水 (A) 和乙腈 (B), 梯度分离 条件为 : 0-20min, 5%→ 90% B。流速为 1.0mL/min。经过 UV(220nm) 检测和放射性检测。)
     放射性 HPLC 分析显示, 该实验的标记率> 63%, [18F]F- 对氯苄基氟的保留时间 tR
     = 15.7。
     实施例 45-[18F] 氟戊炔的放射性合成
     18 20mCi18F- 被季铵型阴离子柱 QMA( 美国 Waters 公司产品, F 由上海市复旦大学 附属肿瘤医院和科兴药业有限公司提供 ) 捕获后, 取 1.2mLK222( 即 Kryptofix 222) 溶液 (17.3mgK222, 3.6mgK2CO3, 1152μL 乙腈, 48μL 水配成的溶液 ) 将 18F 冲洗到反应瓶中, 反应 瓶浸入 95℃的油浴, 氮气吹干, 然后再加入 500μL 无水乙腈吹干, 重复无水乙腈吹干两次 ; 然后将 5mg 5- 对甲苯磺酰戊炔溶解于 400μL 无水乙腈溶液, 氮气保护下迅速加入反应瓶, 95℃下密闭反应 5min, 停止反应, 冰水浴冷却。标记率可达 96%以上。
     向反应液中补加乙腈 200μL, 氮气辅助载流, 用图 1 所示的自制蒸馏装置 ( 按照常 规蒸馏知识搭建 ) 蒸馏, 并收集冷凝液, 蒸馏 10-20min, 蒸馏效率可达到 79.5%。 18
     含 5-[ F] 氟戊炔的乙腈冷凝收集液 ( 约 600μL) 可用于下步标记反应中。
     该步骤的放化产率可达 70%以上。
     上述实施例中涉及的三种 18F 标记化合物 2- 叠氮 -1-[18F] 氟乙烷、 p-[18F]FSTC 和 [18F]cRGDfK 的结构是通过与其对应的参比化合物 2- 叠氮 -1-[19F] 氟乙烷 p-[19F]FSTC 和 [19F]cRGDfK 进行对比得以确定。具体确认方法为 : 将 18F 标记化合物与其参比化合物混合 后同时进行 HPLC 检测, 通过对 HPLC 的紫外峰出峰时间和放射性峰出峰时间进行对比 ( 由 于放射性检测器连接在紫外检测器之后, 其信号存在固定的时间差 ), 出峰时间差值固定, 1 则认为它们结构是一致的。三种参比化合物为实验室合成, 结构经由 HNMR、 IR、 MS 等检测。
     使用的参比化合物结构如下 :
     12- 叠氮 -1-[18F] 氟乙烷2 2 H NMR(300MHz, CDCl3)δ : 4.685 ~ 4.498(dt, 2H, CH2-F, JFH = 47Hz, JHH =3 2 4.5Hz) ; 3.579 ~ 3.456(dt, 2H, CH2-CH2-F, JFH = 27Hz, JHH = 4.5Hz).Analytical HPLC, t = 11.1min, and t(DMF) = 5.4min.
     H NMR(400MHz ,CDCl 3 ) δ : 2.450(3H ,CH 3 -) ; 3.470-3.496(2H ,NCH 2 ) ; 4.148-4.175(2H, SCH2) ; 7.357-7.829(4H).IR(KBr)υ : 5556667128139151013 1095 1176 -1 1299 1364 1458 1579 2112 2925 2962cm .Analytical HPLC, t = 13.2min.1
     ESI-MS(M+H = 745.2)。HPLC(t = 14.6min).
     HNMR(300MHz , CDCl 3) δ : 1.594 ~ 1.618(3H , CH 3-CH) ; 4.592-4.661 , (5H , CH-O, -CH2-CH2-) ; 5.296-5.326(2H, -CH2-O-) ; 6.844-7.855(7H).Analytical HPLC, t = 17.7min.1

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1、10申请公布号CN102351941A43申请公布日20120215CN102351941ACN102351941A21申请号201110152843X22申请日20110608C07K1/13200601C07K7/64200601C07K7/06200601C07D249/04200601C07D401/12200601C07D249/0620060171申请人中国科学院上海应用物理研究所地址201800上海市嘉定区嘉罗公路2019号72发明人张岚施玲丽李剑波王成周伟74专利代理机构上海智信专利代理有限公司31002代理人薛琦朱水平54发明名称对功能分子进行18F标记的方法57摘要本发明公。

2、开了一种对功能分子进行18F标记的方法,其为下述两种方法中的任意一种方法一溶剂中,在CUI的催化下,将化合物B和化合物C进行叠氮与端位炔基的1,3偶极环加成反应,即可;方法二溶剂中,在CUI的催化下,将化合物F和化合物G进行叠氮与端位炔基的1,3偶极环加成反应,即可;其中,R为各种适合做PET显像探针的功能分子,R”为烷烃基。本发明的标记方法中,反应体系稳定、条件温和、操作简单,该方法具有通用性,可适用于结构类似的系列化合物标记。除生物试剂外,本标记方法所用其他原料成本低廉,前体化合物B或F结构稳定,适于大量制备和生产,并且该方法可用于PET显像探针的合成。51INTCL19中华人民共和国国家。

3、知识产权局12发明专利申请权利要求书4页说明书12页附图6页CN102351948A1/4页21对功能分子进行18F标记的方法,其为下述两种方法中的任意一种方法一溶剂中,在CUI的催化下,将化合物B和化合物C进行叠氮与端位炔基的1,3偶极环加成反应,即可制得化合物D;方法二溶剂中,在CUI的催化下,将化合物F和化合物G进行叠氮与端位炔基的1,3偶极环加成反应,即可制得化合物H;其中,R为C1C12的直链烷基或支链烷基、C5C7环烷基、C6C10芳基、C6C10芳基C1C4烷基或者C1C4烷基C6C10芳基C1C4烷基,R”为本领域适合做PET显像探针的多肽类、苯磺酰胺类或其他能被叠氮或端炔基团。

4、修饰的功能分子取代基。2如权利要求1所述的方法,其特征在于R中,所述的C1C12的直链烷基或支链烷基为如下任一基团N08。3如权利要求1所述的方法,其特征在于R中,所述的C6C10芳基C1C4烷基为如下基团所述的C1C4烷基C6C10芳基C1C4烷基为如下任一基团权利要求书CN102351941ACN102351948A2/4页3其中N114,N204;所述的C5C7环烷基为如下基团其中N13。4如权利要求1所述的方法,其特征在于R”中,所述的适合做PET显像探针的功能分子取代基为多肽类功能分子取代基RGD肽、LEUALAARGLEULEUTHR肽、或者如下任一基团;其中,所述的RGD肽为如下。

5、结构所述的LEUALAARGLEULEUTHR肽为如下结构权利要求书CN102351941ACN102351948A3/4页45如权利要求1所述的方法,其特征在于所述的化合物B的沸点低于200。6如权利要求15任一项所述的方法,其特征在于方法一中,所述的1,3偶极环加成反应包含下列步骤溶剂中,PH为312,在CUI的催化下,将化合物B和C进行叠氮与端位炔基的1,3偶极环加成反应,即可;方法二中,所述的1,3偶极环加成反应包含下列步骤溶剂中,PH为312,在CUI的催化下,将化合物F和G进行叠氮与端位炔基的1,3偶极环加成反应,即可。7如权利要求6所述的方法,其特征在于方法一或二中所述的PH为6。

6、8;所述的溶剂为水、叔丁醇、乙腈和四氢呋喃中的一种或多种;当R”为多肽类化合物分子取代基时,以水为溶剂;化合物B或F与溶剂的摩尔体积比为5851014MOL5851010MOL/021ML,或者化合物B或F在溶剂中的放射性活度为1MCI2CI;当反应溶剂中含水时,其他有机溶剂的体积不超过水的体积;所述的化合物C或G在反应液中的浓度为0220MMOL/L;所述的CUI的量为化合物C或G的摩尔量的1倍20倍;所述的CUI在反应液中的浓度为5MMOL/L100MMOL;所述的1,3偶极环加成反应的温度为10100;所述的1,3偶极环加成反应的时间为180分钟。8如权利要求7所述的方法,其特征在于所述。

7、的CUI的量为化合物C或G的摩尔量的8倍15倍;所述的化合物C或G在反应液中的浓度为387MMOL/L;所述的1,3偶极环加成反应的温度为3065;所述的1,3偶极环加成反应的时间为1020分钟。9如权利要求6所述的方法,其特征在于所述的CUI通过下述任一形式的CUI来参与反应将二价铜的强酸盐和抗坏血酸或其强碱盐进行还原反应,制得CUI;碘化亚铜或溴化亚铜和弱碱性铜配体的溶液;将CU0氧化,制得CUI。10如权利要求19所述的方法,其特征在于中,所述的弱碱性铜配体为氨水、三乙胺或二异丙基乙胺;所述的碘化亚铜或溴化亚铜和弱碱性铜配体的摩尔比为1511000。11如权利要求9所述的方法,其特征在于。

8、中,所述的碘化亚铜或溴化亚铜和弱碱性铜配体的摩尔比为11001300。12如权利要求9所述的方法,其特征在于中,所述的二价铜的强酸盐为硫酸铜、硝酸铜和氯化铜中的一种或多种;所述的抗坏血酸的强碱盐为抗坏血酸钠、抗坏血酸钾和抗坏血酸钙中的一种或多种;所述的二价铜的强酸盐和抗坏血酸或其强碱盐的摩尔比为11113;中,所述的氧化通过空气中的氧气进行氧化,或者通过加入氧化剂进行氧化。权利要求书CN102351941ACN102351948A4/4页513如权利要求12所述的方法,其特征在于中,所述的二价铜的强酸盐为硫酸铜、硝酸铜和氯化铜中的一种或多种;所述的抗坏血酸的强碱盐为抗坏血酸钠、抗坏血酸钾和抗坏。

9、血酸钙中的一种或多种,;所述的二价铜的强酸盐和抗坏血酸或其强碱盐的摩尔比为115118;中,所述的氧化剂为硫酸铜。14如权利要求15任一项所述的方法,其特征在于所述的化合物B由下列方法制得将化合物A和18F进行亲核取代反应,即可;所述的化合物F由下列方法制得将化合物E和18F进行亲核取代反应,即可;其中,R为亲核取代反应中常用的离去基团,R的定义同权利要求15任一项所述。15如权利要求14所述的方法,其特征在于所述的R为OTS、OMS或OTF。16如权利要求14所述的方法,其特征在于所述的亲核取代反应包含下列步骤有机溶剂中,惰性气体保护下,将含有K222、K2CO3和18F的混合物与化合物A或。

10、E进行亲核取代反应,即可;其中,所述的有机溶剂为无水乙腈、无水二甲基甲酰胺和无水二甲亚砜中的一种或多种;所述的K222和K2CO3的摩尔比为1371;18F的活度为10CI2CI;化合物A或E在反应液中的浓度为0011MOL/L,其溶液体积用量为200500L;K222和化合物A或E的质量比为1171;所述的惰性气体为氮气和/或氩气;所述的亲核取代反应的温度为80150;所述的亲核取代反应的时间为215MIN。17如权利要求16所述的方法,其特征在于所述的含有K222、K2CO3和18F的混合物通过下述方法制得用K222溶液淋洗富集18F的QMA柱,蒸干溶剂,即可。18如权利要求17所述的方法。

11、,其特征在于所述的K222溶液通过下述方法制得将K222,K2CO3,乙腈和水配成溶液,即可,其中,各成分含量范围如下每1ML乙腈中,有30150L水,17MGK2CO3,530MGK222。19如权利要求14所述的方法,其特征在于在亲核取代反应完成后,用下述提纯方法提纯当化合物B或F的沸点低于200时,向反应液中加入乙腈,以氮气作为载气,采用蒸馏方法分离杂质,收集化合物B或F的乙腈冷凝溶液;所述的蒸馏温度为85150,蒸馏时间为530分钟。权利要求书CN102351941ACN102351948A1/12页6对功能分子进行18F标记的方法技术领域0001本发明具体的涉及对功能分子进行18F标。

12、记的方法。背景技术0002当前,作为一种分子影像技术的代表,正电子发射断层显像POSITRONEMISSIONTOMOGRAPHY,PET能够定量和高分辨地提供检测数据,已广泛应用于肿瘤的诊断、机理研究和临床治疗SIMONMAMETAMEY,MICHAELHONER,PIUSAUGUSTSCHUIGERMOLECULARIMAGINGWITHPET,CHEMREV2008,108,15011516PET分子影像,PAULJCASSIDY,GEORGEKRADDA,MOLECULARIMAGINGPERSPECTIVES,JRSOCINTERFACE,2005,23133144分子影像展望。00。

13、03而在大量的正电子发射性核素中,氟1818F原子半径小,半衰期为1098MIN,最大正电子能量064MEV,平均射程022MM,具有优良的核性质和化学性质,是PET探针的优选核素OKARVI,SM2001RECENTPROGRESSINFLUORINE18LABELLEDPEPTIDERADIOPHARMACEUTICALSEURJNUCLMED2879293818F标记多肽放射性药物进展。0004现在临床的PET影像探针主要有有机小分子类、多肽类、抗体类、基因片段类、寡核苷酸类,其中多肽类以其优良的性质和药理学特性,成为显像药物中的优选。随着18F标记多肽进行肿瘤受体显像成为当今分子核医学。

14、研究的主要领域之一,如何利用18F进行多肽的标记也成为一个重要的研究课题。总体看来,多肽的18F标记主要有直接标记和间接标记两种标记方式,并以间接标记方式为主。利用多肽中存在的羧基、羟基、氨基等活性基团,使用双功能配基连接放射性核素18F和多肽分子,形成PEPTIDELINKER18F的典型结构,是最常用的多步标记方法。施玲丽2008核技术10多肽的18F标记方法发明内容0005本发明所要解决的技术问题是为了提供了一种与现有技术完全不同的对功能分子进行18F标记的方法。本发明的标记方法中,反应体系稳定、条件温和、操作简单,该方法具有通用性,可适用于结构类似的系列化合物标记。除生物试剂外,本标记。

15、方法所用其他原料成本低廉,前体化合物B或F结构稳定,适于大量制备和生产,并且该方法可用于PET显像探针的合成。0006本发明人针对18F及某些类型的化合物而发明了一种全新的18F标记方法。该方法能避免目前常用的18F标记探针在合成中的一些缺点如反应产率不高、标记过程不具有通用性等。0007因此,本发明涉及对功能分子进行18F标记的方法,其为下述两种方法中的任意一种0008方法一溶剂中,在CUI的催化下,将化合物B和化合物C进行叠氮与端位炔基的1,3偶极环加成反应,即可制得化合物D;说明书CN102351941ACN102351948A2/12页700090010方法二溶剂中,在CUI的催化下,。

16、将化合物F和化合物G进行叠氮与端位炔基的1,3偶极环加成反应,即可制得化合物H;00110012其中,R为C1C12的直链烷基或支链烷基、C5C7环烷基、C6C10芳基、C6C10芳基C1C4烷基,或者C1C4烷基C6C10芳基C1C4烷基,R”为本领域适合做PET显像探针的多肽类、苯磺酰胺类或其他能被叠氮或端炔基团修饰的功能分子取代基。0013R中,所述的C1C12的直链烷基或支链烷基较佳的为如下任一基团00140015N08,优选2或3;0016所述的芳基C1C4烷基较佳的为如下基团00170018所述的C1C4烷基C6C10芳基C1C4烷基较佳的为如下任一基团0019说明书CN10235。

17、1941ACN102351948A3/12页80020其中N114,N204;0021所述的环烷基较佳的为如下基团00220023其中N13;0024R”中,所述的适合做PET显像探针的功能分子取代基较佳的为如下任一基团、或者多肽类功能分子取代基如RGD肽、或LEUALAARGLEULEUTHR肽,结构如下所示;等;00250026所述的RGD肽为如下结构00270028所述的LEUALAARGLEULEUTHR肽为如下结构0029说明书CN102351941ACN102351948A4/12页90030较佳的,上述化合物B的沸点低于200。0031方法一和方法二中,所述的1,3偶极环加成反应。

18、的方法和条件可为有机合成领域此类反应中所用的方法和条件,所述的CUI为一价铜,一般以一价铜的盐的形式参与反应。0032本发明人经过大量实验,特别优选出下述方法和条件0033方法一中,所述的1,3偶极环加成反应包含下列步骤溶剂中,PH为312,在CUI的催化下,将化合物B和C进行叠氮与端位炔基的1,3偶极环加成反应,即可。0034方法二中,所述的1,3偶极环加成反应包含下列步骤溶剂中,PH为312,在CUI的催化下,将化合物F和G进行叠氮与端位炔基的1,3偶极环加成反应,即可。0035方法一或二中,所述的PH较佳的为68。所述的溶剂较佳的为水、叔丁醇、乙腈和四氢呋喃中的一种或多种,当R”为多肽类。

19、化合物分子取代基时,优选水为溶剂,化合物B或F与溶剂的摩尔体积比较佳的为5851014MOL5851010MOL/021ML;或者化合物B或F在溶剂中的放射性活度较佳的为1MCI2CI。当反应溶剂中含水时,其他有机溶剂的体积较佳的不超过水的体积。所述的化合物C或G在反应液中的浓度较佳的为0220MMOL/L,更佳的为387MMOL/L。所述的CUI的量较佳的为化合物C或G的摩尔量的1倍20倍,更佳的为8倍15倍。所述的CUI在反应液中的浓度较佳的为5MMOL/L100MMOL。0036所述的1,3偶极环加成反应的温度可根据参与反应的化合物C或G的稳定性,以及采用的反应溶剂体系的沸点,适当调节温。

20、度上限,较佳的为10100,更佳的为3065。0037所述的1,3偶极环加成反应可以在很短的时间内完成,如180分钟,更佳的为1020分钟。0038其中,所述的PH值可通过本领域常规方法进行调节,如加入所需PH范围的磷酸盐缓冲液。0039所述的CUI可为有机领域中此类反应的CUI的常见形式,本发明特别优选下述任一形式的CUI来参与反应0040将二价铜的强酸盐和抗坏血酸或其强碱盐进行还原反应,制得CUI;0041碘化亚铜或溴化亚铜和弱碱性铜配体的溶液;0042将CUO如铜丝、铜粉或纳米铜颗粒等氧化,制得CUI。0043上述中的CUI效果更佳。0044中,所述的二价铜的强酸盐可为硫酸铜、硝酸铜和氯。

21、化铜中的一种或多种,优选硫酸铜。所述的抗坏血酸的强碱盐可为抗坏血酸钠、抗坏血酸钾和抗坏血酸钙等中的一种说明书CN102351941ACN102351948A5/12页10或多种,因为抗坏血酸钠比抗坏血酸易溶于水,比其他抗坏血酸盐常见且成本较低,优选抗坏血酸钠。所述的二价铜的强酸盐和抗坏血酸或其强碱盐的摩尔比较佳的为11113,更佳的为115118。0045中,所述的弱碱性铜配体为能与CUI形成配合离子的配体,较佳的为氨水、三乙胺或二异丙基乙胺;所述的碘化亚铜或溴化亚铜和弱碱性铜配体的摩尔比较佳的为1511000,更佳的为11001300。所述的溶液中的溶剂较佳的为水或常规惰性有机溶剂。碘化亚铜。

22、或溴化亚铜在溶液中的浓度较佳的为005MOL/L15MOL/L,更佳的为04MOL/L12MOL/L。0046中,所述的氧化可为通过空气中的氧气进行氧化,或者通过加入氧化剂如硫酸铜进行氧化。0047在上述1,3偶极环加成反应结束后,可按照本领域常规的后处理及提纯方法对产物进行提纯,如用放射性HPLC分离纯化,在用放射性HPLC分离纯化之前,也可先用SEPPAKC18柱对产物进行纯化。0048本发明中,所述的化合物B可由下列方法制得将化合物A和18F进行亲核取代反应,即可;00490050所述的化合物F可由下列方法制得将化合物E和18F进行亲核取代反应,即可;00510052其中,R1为亲核取代。

23、反应中常用的离去基团,如OTS、OMS或OTF,R的定义同前所述。0053其中,所述的亲核取代反应的方法和条件可为本领域此类18F标记反应的常规方法和条件,本发明特别优选下述方法和条件有机溶剂中,惰性气体保护下,将含有K222、K2CO3和18F的混合物与化合物A或E进行亲核取代反应,即可。0054其中,所述的有机溶剂较佳的为无水乙腈、无水二甲基甲酰胺和无水二甲亚砜中的一种或多种,优选乙腈。所述的K222和K2CO3的摩尔比较佳的为1371,更佳的为131331。18F的活度较佳的为10CI2CI,更佳的为5MCI700MCI。化合物A或E在反应液中的浓度较佳的为0011MOL/L,更佳的为0。

24、0502MOL/L。K222和化合物A或E的质量比较佳的为1171,更佳的为2151。所述的惰性气体较佳的为氮气和/或氩气。所述的亲核取代反应的温度较佳的为80150。所述的亲核取代反应的时间较佳的为215MIN。说明书CN102351941ACN102351948A6/12页110055所述的含有K222、K2CO3和18F的混合物可通过下述方法制得用K222即KRYPTOFIX222溶液淋洗富集18F的QMA柱,蒸干溶剂,即可。0056其中,K222溶液可通过下述方法制得将K222,K2CO3,乙腈和水配成溶液,即可。其中,各成分含量范围如下每1ML乙腈中,有30150L水,17MGK2C。

25、O3,530MGK222。配置的方法可以为向1ML乙腈中加入30150L水,17MGK2CO3,530MGK222,即可。最常用的一种配比为每960L乙腈中,有144MGK222,3MGK2CO3,40L水,各成分配成溶液即可。0057上述亲核取代反应完成后,可用本领域常规的后处理和提纯方法进行提纯。本发明优选下述提纯方法和条件当化合物B或F的沸点低于200时,向反应液中加入乙腈,以氮气作为载气,采用蒸馏方法分离杂质,收集化合物B或F的乙腈冷凝溶液。所述的蒸馏温度较佳的为85150,蒸馏时间较佳的为530分钟。0058在符合本领域常识的基础上,上述各优选条件,可任意组合,即得本发明各较佳实例。。

26、0059本发明所用试剂和原料均市售可得。0060本发明的积极进步效果在于00611、本发明的方法中,两步反应的产率都很高,且反应时间非常短。00622、本发明的18F标记前体,即化合物B和F结构稳定,分离提纯方法简单。00633、本发明可以快速高效的实现18F标记带有端炔基团的有机小分子、多肽、其他生物大分子、功能性材料或纳米微粒类化合物,方法具有通用性。00644、本发明可以通过调整化合物C或G的结构,根据需求制备PET显像探针,并用于PET显像。00655、本发明中所用到的碘化亚铜、硫酸铜、抗坏血酸钠、弱碱配体、铜等均为商品化试剂,原料廉价易得。附图说明0066图1为实施例2的例二中以硫酸。

27、铜/抗坏血酸钠为催化体系的反应体系的HPLC谱图UV,220NM。0067图2为实施例2的例二中以碘化亚铜/氨水为催化体系的反应体系的HPLC谱图UV,220NM。0068图3为实施例2的例二中以硫酸铜/抗坏血酸钠为催化体系的反应过程中的放射性检测HPLC谱图反应5MIN。0069图4为实施例2的例二中以碘化亚铜/氨水为催化体系的反应过程中的放射性检测HPLC谱图反应5MIN。0070图5为实施例2的例二中以硫酸铜/抗坏血酸钠为催化体系反应结束后的放射性检测HPLC谱图反应15MIN。0071图6为实施例2的例二中以碘化亚铜/氨水为催化体系反应结束后的放射性检测HPLC谱图反应15MIN。具体。

28、实施方式说明书CN102351941ACN102351948A7/12页120072下面通过实施例的方式进一步说明本发明,但并不因此将本发明限制在所述的实施例范围之中。下列实施例中未注明具体条件的实验方法,按照常规方法和条件,或按照商品说明书选择。0073P18FFSTC、18FFCRGDFK和18FFCLODINAFOP等的合成0074实施例12叠氮118F氟乙烷的放射性合成0075007620MCI18F被季铵型阴离子柱QMA美国WATERS公司产品,18F由上海市复旦大学附属肿瘤医院和科兴药业有限公司提供捕获后,取12MLK222即KRYPTOFIX222溶液173MGK222,36MG。

29、K2CO3,1152L乙腈,48L水配成的溶液将18F冲洗到反应瓶中,反应瓶浸入95的油浴,氮气吹干,然后再加入500L无水乙腈吹干,重复无水乙腈吹干两次;然后将5MG2叠氮乙基对甲苯磺酸酯溶解于400L无水乙腈溶液,氮气保护下迅速加入反应瓶,95下密闭反应5MIN,停止反应,冰水浴冷却。标记率可达97以上。0077向反应液中补加乙腈200L,氮气辅助载流,进行蒸馏,并收集冷凝液,蒸馏1020MIN,蒸馏效率可达到795。0078含2叠氮118F氟乙烷的乙腈冷凝收集液约600L可用于下步标记反应中。0079该步骤的放化产率可达70以上。0080实施例2采用含有叠氮基团的18F化合物来实现带有端。

30、炔基团的功能分子的标记00810082【例一】、通过1,3偶极环加成反应实现有机小分子化合物的18F标记0083本例选择化合物4氨基苯磺酰胺作为有机小分子模型。该结构的小分子能靶向肿瘤乏氧时表达异常的碳酸酐酶9CAIX,因此P18FFSTC1218F氟乙N4磺酰胺基苯基1H1,2,3三氮唑4酰胺有潜力成为肿瘤乏氧的PET显像探针。00840085氮气保护下,向100L010MOL/LPH60磷酸盐PBS缓冲液中,依次加入50L045MOL/L硫酸铜溶液和100L150MOL/L抗坏血酸钠溶液,4丙炔酰胺基苯磺酰胺5MG,225MOL的150LDMF和100LTBUOH溶液,以及上一步制得的2叠。

31、氮118F氟乙烷的乙腈溶液300L也可使用未蒸馏前的溶液体系。在35振荡反应15MIN,加水10ML稀释,用SEPPAKC18柱纯化得到粗产物,再用半制备高效液相系统纯化目标产物美国DIONEX公司P680SUMMITHPLC分析系统,半制备柱为LOCHROSORBC1810M,说明书CN102351941ACN102351948A8/12页13300MM78MM。流动相为水A和乙醇B,梯度分离条件为05104045MIN,5520205B。流速15ML/MIN,经过UV254NM检测和放射性检测。0086放射性HPLC分析显示,该实验的标记率98,P18FFSTC的保留时间TR134MIN,。

32、放射化学纯度98,收率96衰败校正后。0087【例二】、通过1,3偶极环加成反应实现多肽的18F标记0088本例选用CRGDFK作为多肽模型。研究表明其原型多肽CRGDFK对肿瘤新生血管有一定的靶向性,因此18FFCRGDFK也是一种有潜力的PET显像探针。0089通过多肽的18F标记,验证1,3偶极环加成标记方法通用性和有效性。0090并通过两种催化剂的使用,证明催化剂体系的多样性。00910092硫酸铜/抗坏血酸钠催化体系将2MG丙炔酸修饰的CRGDFK溶于200LPH60磷酸缓冲液和200UL叔丁醇的混合溶液,先后加入50L04M硫酸铜和100L12M抗坏血酸钠溶液,再加入蒸馏冷凝得到的。

33、2叠氮118F氟乙烷乙腈溶液200L,50反应5MIN,用放射性HPLC美国AGILENT1100HPLC系统,半制备柱为WATERSC18COLUMN73MM300MM。流动相为添加了01三氟乙酸的水A和乙腈B,梯度分离条件为020MIN,550B。流速为20ML/MIN。经过UV220NM检测和放射性检测检测,见图3,所关注的放射性产物出峰时间为T1112MIN901,T2148MIN99。反应15MIN后,标记率接近100。产物用放射性HPLC分离纯化美国AGILENT1100HPLC系统,半制备柱为WATERSC18COLUMN73MM300MM。流动相为添加了01三氟乙酸的水A和乙腈。

34、B,梯度分离条件为020MIN,550B。流速为20ML/MIN。经过UV220NM检测和放射性检测。0093放射性HPLC分析美国AGILENT1100HPLC系统,半制备柱为WATERSC18COLUMN73MM300MM。流动相为添加了01三氟乙酸的水A和乙腈B,梯度分离条件为020MIN,550B。流速为20ML/MIN。经过UV220NM检测和放射性检测见图5显示,该实验的标记率98,18FCRGDFK的保留时间TR148MIN,放射化学纯度97981,收率95衰败校正后。0094对上述的反应体系进行HPLC检测,HPLC条件为020MIN,550BA含01三氟乙酸的水;B含01三氟。

35、乙酸的和乙腈;流速为20ML/MIN。结果见图1。由图1可看到,在75MIN175MIN时间范围内有吸收值很高宽度很大的峰,会影响所关注的放射性产物T1112MIN,T2148MIN的分离。0095碘化亚铜/氨水催化体系将2MG丙炔酸修饰的CRGDFK溶于200LPH60磷酸缓冲液中,加入40L05M碘化亚铜氨水溶液,再加入蒸馏冷凝得到的2叠氮118F氟乙烷乙腈溶液200UL,50反应5MIN,用放射性HPLC美国AGILENT1100HPLC系统,半制备说明书CN102351941ACN102351948A9/12页14柱为WATERSC18COLUMN73MM300MM。流动相为添加了01。

36、三氟乙酸的水A和乙腈B,梯度分离条件为020MIN,550B。流速为20ML/MIN。经过UV220NM检测和放射性检测检测,见图4,所关注的放射性产物出峰时间为T1112MIN684,T2148MIN316。反应15MIN后,冷却后用放射性HPLC分离纯化产物18FCRGDFK分离条件同前。0096放射性HPLC分析美国AGILENT1100HPLC系统,半制备柱为WATERSC18COLUMN73MM300MM。流动相为添加了01三氟乙酸的水A和乙腈B,梯度分离条件为020MIN,550B。流速为20ML/MIN。经过UV220NM检测和放射性检测见图6显示,18FCRGDFK的出峰时间为。

37、TR148MIN922,该实验的标记率92。0097对上述的反应体系进行HPLC检测,HPLC条件为020MIN,550BA含01三氟乙酸的水;B含01三氟乙酸的和乙腈;流速为20ML/MIN。结果见图2。由图2可看到,未有干扰宽峰的存在。该优势能提高反应过程监测的清晰度,还能保证在进行放射性分离时,将不会引入过多的杂质即其他有紫外吸收峰的物质,提高产物的比活度。0098【例三】、通过1,3偶极环加成反应实现任意含有末端炔基化合物的18F标记0099本实例选择化合物炔草酯R245氯3氟2吡啶氧基苯氧基丙酸炔丙基酯,CLODINAFOPPROPARGYL作为含有末端炔基化合物的模型。010001。

38、01氮气保护下,向100L010MOL/LPH60磷酸盐PBS缓冲液中,依次加入50L045MOL/L硫酸铜溶液和100L150MOL/L抗坏血酸钠溶液,炔草酯5MG,143MOL的150LDMF和100LTBUOH溶液,以及上一步制得的2叠氮118F氟乙烷的乙腈溶液300L也可使用未蒸馏前的溶液体系。在35振荡反应15MIN,加水10ML稀释,用SEPPAKC18柱美国WATERS公司纯化得到粗产物,再用半制备高效液相系统纯化目标产物18FFCLODINAFOP美国AGILENT1100HPLC系统,采用半制备柱进行分析,柱型为WATERSC18COLUMN73MM300MM。流动相为添加了。

39、01三氟乙酸的水A和乙腈B,梯度分离条件为020MIN,590B。流速为20ML/MIN。经过UV220NM检测和放射性检测。0102放射性HPLC分析美国AGILENT1100HPLC系统,采用半制备柱进行分析,柱型为WATERSC18COLUMN73MM300MM。流动相为添加了01三氟乙酸的水A和乙腈B,梯度分离条件为020MIN,590B。流速为20ML/MIN。经过UV220NM检测和放射性检测显示,该实验的标记率96,18FFCLODINAFOP的保留时间TR179MIN,放射化学纯度99,收率95衰败校正后。0103实施例3采用含有端炔基团的18F化合物来实现带有叠氮基团的功能分。

40、子的标记0104说明书CN102351941ACN102351948A10/12页150105【例一】、通过1,3偶极环加成反应实现叠氮修饰的多肽的18F标记0106本实例选择叠氮修饰的LEUALAARGLEULEUTHR肽作为含有叠氮修饰多肽的模型。LEUALAARGLEULEUTHR肽是能特征结合表皮生长因子EGFR的新型肽配体,可用于肿瘤靶向。01070108将2MG叠氮修饰的LEUALAARGLEULEUTHR肽84MOL溶于200LPH60磷酸缓冲液和200UL叔丁醇的混合溶液,先后加入50L04M硫酸铜和100L12M抗坏血酸钠溶液,再加入蒸馏冷凝得到的518F氟戊炔的乙腈溶液20。

41、0L,50反应25MIN。产物用HPLC检测美国AGILENT1100HPLC系统,分析柱为ZORBAXC18COLUMN46MM250MM。流动相为添加了01三氟乙酸的水A和乙腈B,梯度分离条件为020MIN,590B。流速为10ML/MIN。经过UV220NM检测和放射性检测。0109放射性HPLC分析显示,该实验的标记率93,011018FFLEUALAARGLEULEUTHR的保留时间TR131MIN。0111【例二】、通过1,3偶极环加成反应实现带有叠氮基团的小分子化合物的18F标记0112本实例选择对氯苄基叠氮作为含有叠氮基团的小分子化合物模型。0113说明书CN102351941。

42、ACN102351948A11/12页160114将10MG对氯苄基叠氮593MOL溶于50L乙腈溶液,先后加入50L04M硫酸铜和100L12M抗坏血酸钠溶液,再加入蒸馏冷凝得到的518F氟戊炔的乙腈溶液200L,50反应15MIN。产物用HPLC检测美国AGILENT1100HPLC系统,分析柱为ZORBAXC18COLUMN46MM250MM。流动相为添加了01三氟乙酸的水A和乙腈B,梯度分离条件为020MIN,590B。流速为10ML/MIN。经过UV220NM检测和放射性检测。0115放射性HPLC分析显示,该实验的标记率63,18FF对氯苄基氟的保留时间TR157。0116实施例4。

43、518F氟戊炔的放射性合成0117011820MCI18F被季铵型阴离子柱QMA美国WATERS公司产品,18F由上海市复旦大学附属肿瘤医院和科兴药业有限公司提供捕获后,取12MLK222即KRYPTOFIX222溶液173MGK222,36MGK2CO3,1152L乙腈,48L水配成的溶液将18F冲洗到反应瓶中,反应瓶浸入95的油浴,氮气吹干,然后再加入500L无水乙腈吹干,重复无水乙腈吹干两次;然后将5MG5对甲苯磺酰戊炔溶解于400L无水乙腈溶液,氮气保护下迅速加入反应瓶,95下密闭反应5MIN,停止反应,冰水浴冷却。标记率可达96以上。0119向反应液中补加乙腈200L,氮气辅助载流,。

44、用图1所示的自制蒸馏装置按照常规蒸馏知识搭建蒸馏,并收集冷凝液,蒸馏1020MIN,蒸馏效率可达到795。0120含518F氟戊炔的乙腈冷凝收集液约600L可用于下步标记反应中。0121该步骤的放化产率可达70以上。0122上述实施例中涉及的三种18F标记化合物2叠氮118F氟乙烷、P18FFSTC和18FCRGDFK的结构是通过与其对应的参比化合物2叠氮119F氟乙烷P19FFSTC和19FCRGDFK进行对比得以确定。具体确认方法为将18F标记化合物与其参比化合物混合后同时进行HPLC检测,通过对HPLC的紫外峰出峰时间和放射性峰出峰时间进行对比由于放射性检测器连接在紫外检测器之后,其信号。

45、存在固定的时间差,出峰时间差值固定,则认为它们结构是一致的。三种参比化合物为实验室合成,结构经由1HNMR、IR、MS等检测。0123使用的参比化合物结构如下01242叠氮118F氟乙烷01251HNMR300MHZ,CDCL346854498DT,2H,CH2F,2JFH47HZ,2JHH说明书CN102351941ACN102351948A12/12页1745HZ;35793456DT,2H,CH2CH2F,3JFH27HZ,2JHH45HZANALYTICALHPLC,T111MIN,ANDTDMF54MIN012601271HNMR400MHZ,CDCL324503H,CH3;3470。

46、34962H,NCH2;414841752H,SCH2;735778294HIRKBR5556667128139151013109511761299136414581579211229252962CM1ANALYTICALHPLC,T132MIN01280129ESIMSMH7452。HPLCT146MIN013001311HNMR300MHZ,CDCL3159416183H,CH3CH;45924661,5H,CHO,CH2CH2;529653262H,CH2O;684478557HANALYTICALHPLC,T177MIN说明书CN102351941ACN102351948A1/6页18图1说明书附图CN102351941ACN102351948A2/6页19图2说明书附图CN102351941ACN102351948A3/6页20图3说明书附图CN102351941ACN102351948A4/6页21图4说明书附图CN102351941ACN102351948A5/6页22图5说明书附图CN102351941ACN102351948A6/6页23图6说明书附图CN102351941A。

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