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保护经处理种子的种子安全 
    本发明涉及一种克服用杀昆虫剂、杀螨剂或杀线虫剂处理种子对种子萌芽和幼苗活力的不利影响的方法。本发明方法能显著促进经杀昆虫剂、杀螨剂或杀线虫剂处理的种子的萌芽并显著提高所述种子的活力。 

    本发明描述了一种至少包括以下步骤的方法： 

    1)水合种子， 

    2)之后干燥种子， 

    3)之后用杀昆虫、杀螨或杀线虫化合物处理种子。 

    背景技术

    杀昆虫剂、杀螨剂和杀线虫剂广泛用于防止或至少降低有害生物对作物的损害。这些化学品可在播种前，和/或在幼苗发芽之前和/或之后施用于土壤。杀昆虫剂、杀螨剂和杀线虫剂也可作为种子处理剂(seed treatment)加入到种子中。包括杀昆虫、杀线虫和杀螨有效成分的种子处理剂可只包括这些类型化合物中的一种化合物，但也可包括相同类型化合物中两种或更多种化合物的混合物。另外，所述杀昆虫、杀线虫和杀螨有效成分或其混合物能与至少一种其他杀昆虫剂、杀螨剂或杀线虫剂混合使用。一种或多种杀菌化合物也能与上述杀昆虫剂、杀螨剂或杀线虫剂(的混合物)混合。在本文中，提及的杀虫种子处理也涉及包括杀线虫或杀螨有效成分的种子处理，并包括所述化合物混合物的种子处理。 

    种子处理的使用具有不断增长的市场(Halmer，P.2004.Methodsto improve seed performance in the field.In：Handbook of seedphysiology.Applications to agriculture.Eds：Benech‑Arnold，R.L.and Sánchez，R.A.)，因为使用种子处理在很多方面优于使用喷雾施用或颗粒施用(例如，Altmann，R.2003.Pflanzenschutz‑Nachrichten Bayer 56(1)，第102‑110页；Hewett，P.D.和Griffiths，D.C.1986.Biology of seed treatment.In：Seed treatment.Ed：Jeffs，K.A.)。种子处理从播种起保护种子。在早期生长阶段的良好全面保护，使得植物健康茁壮，更能忍受胁迫条件。另外，所需产品 的总量比在喷雾施用或颗粒施用中要少。通过种子处理保护作物对农民而言也包括许多优点。由于对其他杀昆虫剂施用的需求更小，农民无需计算和制备桶混料。两个方面均得以节约时间。喷洒作物保护化学品的时机对天气的依赖性非常大，但这个问题对于经处理的种子来说并不是问题。 

    农用化学品公司开发了特别适合作为种子处理施用的制剂。这些制剂能以膜包衣的形式加到种子中。特征在于，膜包衣是均匀、无尘、可透水的膜，均匀地覆盖所有单个种子的表面(Halmer，P.2000.Commercial seed treatment technology.In：Seed technology andits biological basis.Eds：Black，M.和Bewley，J.D.)。除了所述制剂以外，包衣混合物通常还包括其他成分如水、胶粘剂(通常为聚合物)、填充材料、颜料和某些添加剂以改善包衣的特定性质。多种包衣可结合到单个种子上。在本文中，“种子处理”是指在种子上施用膜包衣，所述膜包衣含有至少一种杀昆虫、杀螨或杀线虫有效成分的制剂；还包括可能的在颗粒物(pellet)之内或之上使用包衣，所述包衣包括将杀昆虫、杀线虫或杀螨种子处理制剂直接加入颗粒物混合物中。 

    种子粒化是一种主要意在改变原种子的天然形状和大小的技术，这种技术可与膜包衣结合(Halmer，P.2000.Commercial seedtreatment technology.In：Seed technology and its biologicalbasis.Eds：Black，M.和Bewley，J.D.)。粒化能产生可用现代播种机容易播种的圆形或近似圆形(rounded)的形状。粒化混合物含有至少一种胶粘剂和填充材料。后者可为，例如，粘土、云母、白垩或纤维素。另外，可包括某些添加剂以改进颗粒物的特定性质。包含至少一种杀昆虫、杀螨或杀线虫化合物的种子处理制剂可直接加入粒化混合物中。另外，多种与膜包衣的结合是可行的：膜包衣可加在颗粒的外部、加在粒化材料的两层之间、和在粒化材料加入之前直接加在种子上。单个颗粒中也可加入一层以上的膜包衣。一种特殊类型的粒化为结壳(encrusting)。这种技术使用较少填充材料，结果产生“微型颗粒”。 

    存在多种施用膜包衣的技术和机器，其中许多也能用于或被调整以用于种子粒化。种子处理机器的制造商有，例如，Gustafson Equipment、Satec和SUET。技术和机器根据向种子施用种子处理混合物的方法和混合步骤而变化(Jeffs，K.A.和Tuppen，R.J.1986.Applications of pesticides to seeds.Part 1：Requirements forefficient treatment of seeds.In：Seed treatment.Ed：Jeffs，K.A.)。例如，可通过旋转式圆盘喷雾器或撒布刷来添加所述混合物。所述种子和所述混合物可通过圆桶中或旋转槽中的螺旋钻来混合。如果膜包衣混合物的添加量少，能够通过种子本身吸收而只引起种子水分含量略微(通常为低于1％)增加，就不需要另外的干燥步骤。这个原理被称为自干燥(Black等人，2006.The encyclopedia of seeds.Science，technology and uses)。否则，可加入一种干燥粉末(如滑石)，或者需要另外的干燥步骤。这个步骤可整合至进行膜包衣的设备中，如在整合有流体床干燥器的SUET旋转种子处理器中。也可装配一些SATEC间歇包衣机使其与干燥空气相连。 

    使用作物保护化学品的缺陷是它们会不利地影响作物植物本身，这在化学品作为种子处理剂添加时对于种子也成立(Halmer，P.2000.Commercial seed treatment technology.In：Seed technology andits biological basis.Eds：Black，M.和Bewley，J.D.；Halmer，P.2004.Methods to improve seed performance in the field.In：Handbook of seed physiology.Applications to agriculture.Eds：Benech‑Arnold，R.L.和Sánchez，R.A.)。种子安全因此受到影响。所述含至少一种杀昆虫、杀螨或杀线虫有效成分的种子处理会引起经处理的种子的萌芽较慢且较不整齐。基本上，萌芽(germination)被定义为胚根伸出种皮或果皮的时刻。如果种子被播种至完全覆盖种子的基质中，则萌芽被定义为幼苗自基质中露出(即出苗(emer genee))的时刻。因此，较慢萌芽会导致幼苗较慢出苗。全文中，除非另有规定，如上文所述种子萌芽的定义可置于幼苗出苗之后，并与幼苗出苗可互换使用。种子处理也能影响最大萌芽率和幼苗活力。有活力的幼苗是能发育成能生成正常产量的植物的健康幼苗。种子处理会导致活力下降，甚至更高数量的异常幼苗或死亡种子。种子处理对萌芽和活力的不利影响可通过在实验室中的人工气候室、温室或萌芽室的受控条件下，以及田间的实验来评价。 

    如果出现种子处理对种子安全的不利影响，这通常也是可以接受 的，因为种子处理的益处超过损失，但在现代农业系统中它们终究是不利的。萌芽延期会增加种子被致病生物或土壤中的有害物侵袭的风险(和持续时间)(Jonitz，A和Leist，N.2003.Pflanzenschutz‑Nachrichten Bayer，56(1)，第173‑207页)。较慢和较不整齐的萌芽也可影响之后的喷雾处理。例如，很多除草剂在幼苗的特定发育阶段最有效。主要是，萌芽延期也缩短了作物的生长期，这会导致产率下降。最后，如果幼苗活力受到影响，能导致可销售植物数量减少，这也会导致产率损失。 

    本发明包括一种促进经种子处理所包括的至少一种杀昆虫、杀螨或杀线虫有效成分处理的农业、蔬菜或花卉种子的种子萌芽并显著提高所述种子的幼苗活力的方法。 

    【具体实施方式】

    本发明也可用以提高杀昆虫剂、杀螨剂和杀线虫剂的活性。 

    种子处理包括至少一种杀昆虫、杀线虫或杀螨有效成分，因此可影响种子萌芽和幼苗活力。令人惊讶地，我们发现水合种子之后干燥、然后施用所述种子处理剂能减少甚至消除这些种子处理对萌芽和活力的不利影响。经水合并在用所述化学种子处理剂包衣之前被干燥的种子，得益于水合和干燥处理，以及化学种子处理剂的保护。与多重处理可对种子造成损害的一般印象相比，两种处理的结合甚至在种子品质上表现出协同效应。种子处理的不利影响在水合和干燥情况下比在无水合和干燥情况下更小或没有。 

    本发明适用于下面概述的作物的种子。所列的这些作物也包括所述物种的杂交植物以及所述物种的遗传修饰植物。 

    本发明可成功用于任何可应用常规引发方法的种子。 

    特别地，本发明适用于以下属农作物的种子：花生属(Arachis)、燕麦属(Avena)、芸苔属(Brassica)、红花属(Carthamus)、野大豆属(Glycine)、棉花属(Gossypium)、向日葵属(Helianthus)、大麦属(Hordeum)、毒麦属(Lolium)、苜蓿属(Medicago)、水稻属(Oryza)、早熟禾属(Poa)、黑麦属(Secale)、高粱属(Sorghum)、三叶草属(Trifolium)、小麦属(Triticum)和玉蜀黍属(Zea)。也包括黑小麦属(Triticale)。特别优选的农作物属为：芸苔属、棉 花属、向日葵属、水稻属和玉蜀黍属。最优选的农作物属为：芸苔属、棉花属和玉蜀黍属。 

    此外，本发明可特别用于甜菜属。已证实，对于甜菜(Betavulgaris)，商品名为“Advantage”的特定引发方法可与吡虫啉(imidacloprid)或七氟菊酯(tefluthrin)处理相容(BritishSugarBeet Review，Draycott，A.P.2006.The advantage of Advantageon sugarbeet.In：British Sugar Beet Review，74(1)，第13‑17页)。 

    甜菜属也是利用本发明处理的最优选属。 

    对于蔬菜作物，本发明特别适用于下述作物的种子：葱属(Allium)、芹菜属(Apium)、芦笋属(Asparagus)、芸苔属(Brassica)、辣椒属(Capsicum)、鹰嘴豆属(Cicer)、菊苣属(Cichorium)、西瓜属(Citrillus)、黄瓜属(Cucumis)、南瓜属(Cucurbita)、洋蓟属(Cynara)、胡萝卜属(Daucus)、莴苣属(Lactuca)、兵豆属(Lens)、菜豆属(Phaseolus)、豌豆属(Pisum)、萝卜属(Raphanus)、茄属(Solanum)(包括番茄，也常作Lycopersicon esculentum)、菠菜属(Spinacia)、颉草属(Valerianella)和蚕豆属(Vicia)。对于蔬菜作物，特别优选的属是：葱属、芸苔属、辣椒属、西瓜属、黄瓜属、南瓜属、胡萝卜属、莴苣属和茄属。最优选的蔬菜作物的属是：葱属、辣椒属、黄瓜属、胡萝卜属、莴苣属和茄属。进一步最优选的蔬菜作物的属是：葱属、芸苔属、胡萝卜属、莴苣属和茄属。 

    特别地，本发明适用于以下属花卉作物的种子：金鱼草属(Antirrhinum)、秋海棠属(Begonia)、菊花属(Chrysanthemum)、仙客来属(Cyclamen)、石竹属(Dianthus)、杂色菊属(Gazania)、大丁草属(Gerbera)、凤仙花属(Impatiens)、番薯属(Ipomoea)、花葵属(Lavatera)、半边莲属(Lobelia)、天竺葵属(Pelargonium)、矮牵牛花属(Petunia)、草夹竹桃属(Phlox)、报春花属(Primula)、琴柱草属(Salvia)、万寿菊属(Tageta)、马鞭草属(Verbena)、长春花属(Vinca)、堇菜属(Viola)和百日草属(Zinnia)。特别优选的花卉作物是：仙客来属、石竹属、凤仙花属、天竺葵属、矮牵牛花属、报春花属、万寿菊属、马鞭草属和堇菜属。最优选的花卉作物是：石竹属、凤仙花属、天竺葵属、矮牵牛花属、万寿菊属和马鞭 草属。 

    “水合”种子包括能使种子吸水的所有技术；从在短时间内浸入大量的水中，到在几周中可控地加入一定量的水。种子水合技术也因此包括那些引发概念中通常包括的技术。种子引发被定义为种子吸收水以引发早期萌芽但不足以伸出胚根、接着干燥(McDonald，M.B.2000.Seed priming.In：Seed technology and its biological basis.Eds：Black，M.和Bewl ey，J.D.)。“水”在本文中可以是所有种类的水，包括自来水、雨水和蒸馏水。水蒸气形式的水也包括在内。影响水合步骤结果的重要因素是持续时间、温度和引发介质的基质势或渗透势。另外，光照或黑暗和氧化的量也影响水合方法的结果。 

    在水合阶段，水被种子吸收，从而引起酶系统被刺激以及其他细胞组分的产生(McDonald，M.B.2000.Seed priming.In：Seedtechnology and its biological basis.Eds：Black，M.和Bewley，J.D.)。种子以这种方式完成萌芽第一个阶段的一部分，使得再润湿时萌芽更快。另外，水合处理使萌芽更整齐，因为所有种子处于同一发育阶段。在引发过程中——以及由此通常在水合过程中——加入促进物质可进一步提高种子品质，所述促进物质如杀菌剂、生物学防治生物体和植物生长调节剂。杀菌剂可在引发过程加入，以防止真菌在有利条件下于引发介质中过度生长。 

    目前已知多种用于种子引发的技术，即水引发(包括滚筒引发(drum priming))、渗透引发和固体基质引发(McDonald，M.B.2000.Seed priming.In：Seed technology and its biological basis.Eds：Black，M.和Bewley，J.D.；Black等人，2006.The encyclopediaof seeds.Science，technology and uses)。引发有时也被称为种子调湿。 

    ·水引发包括那些其中使得种子在低温下或短时间内、大部分在充足水供应下吸收水的技术。这些技术有时也被称作浸泡或浸种。短时间或低温确保了不会发生萌芽。水引发过程在5‑50℃温度下，持续时间为0.5到60小时。优选在10到30℃的温度下持续时间为1到24小时。或者，优选持续时间为1到48小时。特别优选在15到25℃之间的温度下水引发的持续时间为4到16小时。或者，特别优选水引发在15到20 ℃之间的温度下，持续时间为4到32小时。 

    水引发也包括那些包括连续的或分阶段的加入限定量水的技术。这个概念的先进形式是滚筒引发。将种子保存在旋转的鼓形容器中，其中向种子慢慢加入限定量的水(或水蒸气)。所述限定量的水控制引发的程度。通常，在5到30℃的温度下，滚筒引发过程持续时间为1到21天。优选在10到30℃的温度下，持续时间为5到17天。特别优选在15‑25℃的温度下，持续时间为7到14天。 

    ·对于渗透引发，种子暴露于渗透性溶液中。例如，可以在吸墨纸上、或在容器或(充气)柱中进行。常用聚乙二醇(PEG)作为渗压剂。其他类型的渗压剂为无机盐，如KH₂PO₄、KH(PO₄)₂、K₃PO₄、KCL、KNO₃和Ca(NO₃)₂(有时这些技术被称为盐引发或卤素引发)，或甘露醇。渗压剂由于其低水势而控制种子的吸水。通常，在5到30℃的温度下，渗透势为‑0.4到‑3.6MPa时，渗透引发过程的持续时间为1到21天。优选，在10‑30℃的温度下，渗透势为‑0.5到‑2.6MPa下，渗透引发过程的持续时间为3到15天。或者，优选的暴露持续时间为2到15天。特别优选地，在15到25℃的温度下，渗透势为‑1到‑2MPa下，渗透引发的持续时间为7到14天。或者，特别优选在15到20℃的温度下，渗透势为‑0.5到‑2.0MPa下，渗透引发的持续时间为0.5到14天。 

    ·对于固体基质引发(SMP)，种子与水及固体载体混合。固体载体的实例为蛭石和硅藻土硅石产品。水被种子吸收并被吸收在固体颗粒的表面上，以这种方式控制种子吸收水。除了使用颗粒状载体之外，也可使用其中特别是湿毛巾、麻布袋、湿沙、消毒混合肥料或压滤泥浆来实施SMP。通常，在5到30℃的温度下，渗透势为‑0.4到‑3.6MPa时，SMP过程的持续时间为1到21天。优选，在10‑30℃的温度下，渗透势为‑0.5到‑2.6MPa时，SMP的持续时间为3到15天。特别优选，在从15到25℃的温度下，渗透势为‑1到‑2MPa时，SMP的持续时间为7到14天。或者，特别优选在15到20℃的温度下，渗透势为‑1到‑2MPa时，SMP的持续时间为8小时到7天。 

    尽管SMP方案的渗透势可被测量并示出，但更常用的是给出种子∶载体材料∶水的比例。可使用多种比例，这取决于例如种子大小、载体材料和种子的目标吸收水分。如果种子的量(体积或重量)为1，载体材料的量的范围可以为，例如0.25到3。水量的范围可以为，例如0.50到8。种子∶载体∶水的常用比例为1∶2∶2.5。或者，对于SMP特别优选的范围是持续时间在8小时到7天之间，温度为15到20℃，且种子∶载体∶水的比例为1∶2∶2.5。 

    本发明包括的其他技术有回湿和硬化(hardening)。这些技术并不是严格包括在引发定义内，但是包括在水合和干燥种子的概念中。回湿是一种将种子置于潮湿空气中的技术。所用的空气湿度通常较高，典型为95到100％。该技术特别适合于极易受吸胀损害的大种子物种。硬化是一种对种子进行连续的水合和干燥循环(通常2到3次)的技术，也可使萌芽提前。 

    种子水合后，需要一个干燥步骤来成功且实用地对种子施用种子处理剂。另外，没有干燥步骤的话，化学种子处理剂可能会渗入种子，这对种子和幼苗仍是有害的。优选地，种子被干燥至水分含量基于鲜重计为3到15％。通常，这是收获并干燥后所达到的水分含量。这样在大多数情况下，种子被干燥回来(再干燥)至其水合之前的水分含量。有多种本领域中已知的方法能用于干燥，如在静止空气中、加压空气中、在流化床中通过离心过滤或通过晒干而干燥(Black等人，2006.The encyclopedia of seeds.Science，technology and uses)。很多因素影响种子干燥过程，如周围空气湿度和温度、种子的水分含量、所涉及的植物种类，以及，如果适用的话，空气流量。包含热风干燥的技术常用于商业种子干燥。通常，空气温度为20‑50℃且相对空气湿度为20‑60％时会取得良好的结果。持续时间非常依赖于方法，范围从几个小时到几天。种子也可通过人造干燥剂(例如硅胶或氯化钙)来干燥。 

    除了所述明显优势，水合和干燥种子也有一些缺陷。显然，使用这种技术由于需要专用设备和合格人员而提高种子额外的成本。相似地，所述技术包括需要额外时间的步骤。另外，已知经引发的种子的贮存期限会变短(McDonald，M.B.2000.Seed priming.In：Seedtechnology and its biological basis.Eds：Black，M.和Bewley， J.D.)。这就给储存和物流带来困难。部分由于这些原因，水合和干燥种子仍未在高容量作物(如玉米或油菜)中普遍应用，但正应用于甜菜。目前，这种技术更广泛地应用于高价值的蔬菜作物如韭和胡萝卜，以及一些观赏植物和草坪草类(Black等人，2006.The encyclopediaof seeds.Science，technology and uses)。 

    因此水合和干燥种子不是所有作物的标准化方法。然而，需要用杀虫剂处理作物，而且种子处理杀虫剂也越来越多地使用。本发明提供了在种子处理剂中包括杀昆虫剂、杀线虫剂和杀螨剂而不降低种子品质和出苗率的可能。水合和干燥与化学种子处理结合保证了迅速生长(通常是早期生长)，这是开发一种产率潜能充分发挥的品种的先决条件。另外，本发明增加了种子处理杀虫剂用于多种作物中的可能性。这是有利的，因为如上文所述使用种子处理比使用喷雾施用或颗粒施用具有很多优势。得益于本发明，可用化学种子处理进行处理的物种和品种的数量增加了。之前，一些品种因为对化学种子处理剂太敏感而不能被处理。此外，本发明提供了开发待用作种子处理剂的包括至少一种杀昆虫、杀线虫或杀螨化合物的化学品的可能性。之前由于对种子具有不利影响而不能用作种子处理的某些有效成分现在能可包括在内。 

    本发明方法可用于以下组的杀昆虫剂、杀螨剂和杀线虫剂： 

    (1)组乙酰胆碱‑受体‑激动剂/‑拮抗剂(例如氯烟碱(chloronicotinyl)类/新烟碱类)； 

    (2)组乙酰胆碱酯酶(AChE)抑制剂(例如氨基甲酸酯类和有机磷酸酯类)； 

    (3)组钠通道调节剂/电位门控性钠通道阻断剂(如拟除虫菊酯类和噁二嗪类)； 

    (4)组乙酰胆碱‑受体调节剂(例如多杀霉素(spinosyn)类)； 

    (5)组GABA‑门控性氯离子通道拮抗剂(例如环戊二烯类、有机氯类和苯基吡唑(fiprole)类)； 

    (6)组氯离子通道‑活化剂(例如mectine)； 

    (7)组保幼激素模拟物； 

    (8)组蜕皮激素‑激动剂/‑干扰剂(例如二酰基肼类)； 

    (9)组几丁质生物合成抑制剂(例如苯甲酰脲类)； 

    (10)组氧化磷酸化抑制剂，ATP‑干扰剂(例如有机锡类)； 

    (11)组通过打断质子梯度而起作用的氧化磷酸化的解偶联剂(例如吡咯类和二硝基酚类)； 

    (12)组位点‑I电子转移抑制剂(例如METI类)； 

    (13)组位点‑II电子转移抑制剂； 

    (14)组位点‑III电子转移抑制剂； 

    (15)组昆虫肠道膜微生物干扰剂； 

    (16)组脂肪酸合成抑制剂(例如特窗酸和特特拉姆酸(tetramicacid))； 

    (17)组甲酰胺类； 

    (18)组章鱼胺能激动剂； 

    (19)组镁刺激ATP酶抑制剂； 

    (20)组兰诺定(ryanodine)受体活化剂； 

    (21)组沙蚕毒素类似物； 

    (22)组生物制剂类、激素类或信息素类； 

    (23)组具有未知或未确定作用机理的有效成分(例如薰蒸剂、选择性的昆虫拒食剂和螨生长抑制剂)。 

    (1)到(23)组的有效成分是市售可得的或列于《农药手册》(ThePesticide Manual，13th edition，Editor：CDS Tomlin，British CropProtection Council，ISBN 1 901396 13 4)的。那些既不是市售可得的也没有在《农药手册》中列出的有效成分通过其I UPAC或CAS标识确定，或由它们的分子式来确定。 

    (1)组的乙酰胆碱‑受体‑激动剂/‑拮抗剂尤其包含如下有效成分： 

    (1.1)氯烟碱类/新烟碱类(例如啶虫脒(acetamiprid)、噻虫胺(clothianidin)、呋虫胺(dinotefuran)、吡虫啉(imidacloprid)、烯啶虫胺(nitenpyram)、硝虫噻嗪(nithiazine)、噻虫啉(thiacloprid)、噻虫嗪(thiamethoxam)、氯噻啉(imidaclotiz)：((2E)‑1‑[(2‑氯‑1，3‑噻唑‑5‑基)甲基]‑N‑硝基咪唑烷‑2‑亚胺)、AKD 1022：(2E)‑1‑[(2‑氯‑1，3‑噻唑‑5‑基)甲基]‑3，5‑二甲基‑N‑硝基‑1，3，5‑三嗪‑2‑亚胺)； 

    (1.2)烟碱(nicotine)、杀虫磺(bensultap)、杀螟丹(cartap)。 

    优选的(1)组有效成分是： 

    (1.1.1)噻虫胺 

    (1.1.2)吡虫啉 

    (1.1.3)噻虫啉 

    (1.1.4)噻虫嗪 

    (1.1.5)啶虫脒 

    (1.1.6)呋虫胺 

    (1.1.7)烯啶虫胺 

    (1.1.8)氯噻啉 

    (1.1.9)AKD 1022 

    特别优选的(1)组有效成分是： 

    (1.1.1)噻虫胺 

    (1.1.2)吡虫啉 

    (1.1.3)噻虫啉 

    (1.1.4)噻虫嗪 

    (1.1.5)啶虫脒 

    (2)组的乙酰胆碱酯酶(AChE)抑制剂特别包含以下有效成分： 

    (2.1)氨基甲酸酯类(例如棉铃威(alanycarb)、涕灭威(aldicarb)、涕灭砜威(aldoxycarb)、除害威(allyxycarb)、灭害威(aminocarb)、噁虫威(bendiocarb)、丙硫克百威(benfuracarb)、合杀威(bufencarb)、畜虫威(butacarb)、丁酮威(butocarboxim)、丁酮砜威(butoxycarboxim)、甲萘威(carbaryl)、克百威(carbofuran)、丁硫克百威(carbosulfan)、除线威(cloethocarb)、敌蝇威(dimetilan)、乙硫苯威(ethiofencarb)、丁苯威(fenobucarb)、苯硫威(fenothiocarb)、伐虫脒(formetanate)、呋线威(furathiocarb)、异丙威(isoprocarb)、威百亩(metam‑sodium)、甲硫威(methiocarb)、灭多威(methomyl)、速灭威(metolcarb)、杀线威(oxamyl)、乙丙磷威(phosphocarb)、抗蚜威(pirimicarb)、猛杀威(promecarb)、残杀威(propoxur)、硫双威(thiodicarb)、久效威(thiofanox)、唑蚜威(triazamate)、混杀威(trimethacarb)、 XMC、灭杀威(xylylcarb))； 

    (2.2)有机磷酸酯类(例如乙酰甲胺磷(acephate)、甲基吡恶磷(azamethiphos)、保棉磷(azinphos‑methyl)、益棉磷(azinphos‑ethyl)、乙基溴硫磷(bromophos‑ethyl)、溴苯烯磷(bromfenvinfos(‑methyl))、特嘧硫磷(butathiofos)、硫线磷(cadusafos)、三硫磷(carbophenothion)、氯氧磷(chlorethoxyfos)、毒虫畏(chlorfenvinphos)、氯甲硫磷(chlormephos)、甲基毒死蜱(chlorpyrifos‑methyl)、毒死蜱(chlorpyrifos‑ethyl)、蝇毒磷(coumaphos)、苯腈磷(cyanofenphos)、杀螟腈(cyanophos)、毒虫畏(chlorfenvinphos)、甲基内吸磷(demeton‑S‑methyl)、砜吸磷(demeton‑S‑methylsulphon)、氯亚胺硫磷(dialifos)、二嗪农(diazinon)、除线磷(dichlofenthion)、敌敌畏(dichlorvos/DDVP)、百治磷(dicrotophos)、乐果(dimethoate)、甲基毒虫畏(dimethylvinphos)、蔬果磷(dioxabenzofos)、乙拌磷(disulfoton)、苯硫磷(EPN)、乙硫磷(ethion)、灭线磷(ethoprophos)、乙嘧硫磷(etrimfos)、伐灭磷(famphur)、苯线磷(fenamiphos)、杀螟硫磷(fenitrothion)、丰索磷(fensulfothion)、倍硫磷(fenthion)、吡氟硫磷(flupyrazofos)、地虫硫磷(fonofos)、安硫磷(formothion)、丁苯硫磷(fosmethilan)、噻唑磷(fosthiazate)、庚烯磷(heptenophos)、碘硫磷(iodofenphos)、异稻瘟净(iprobenfos)、氯唑磷(isazofos)、异柳磷(isofenphos)、O‑水杨酸异丙酯、噁唑啉(isoxathion)、马拉硫磷(malathion)、灭蚜磷(mecarbam)、虫螨畏(methacrifos)、甲胺磷(methamidophos)、杀扑磷(methidathion)、速灭磷(mevinphos)、久效磷(monocrotophos)、二溴磷(naled)、氧化乐果(omethoate)、亚砜磷(oxydemeton‑methyl)、甲基对硫磷(parathion‑methyl)、对硫磷(parathion‑ethyl)、稻丰散(phenthoate)、甲拌磷(phorate)、伏杀硫磷(phosalone)、亚胺硫磷(phosmet)、磷胺(phosphamidon)、乙丙磷威(phosphocarb)、腈肟磷(phoxim)、甲基嘧啶磷(pirimiphos‑methyl)、嘧啶磷(pirimiphos‑ethyl)、丙溴磷(profenofos)、丙虫磷(propaphos)、胺丙畏(propetamphos)、丙硫磷(prothiofos)、发硫磷(prothoate)、吡唑硫磷(pyraclofos)、哒嗪硫磷(pyridaphenthion)、哒硫磷 (pyridathion)、喹硫磷(quinalphos)、硫线磷(sebufos)、治螟磷(sulfotep)、硫丙磷(sulprofos)、丁基嘧啶磷(tebupirimfos)、双硫磷(temephos)、特丁硫磷(terbufos)、杀虫畏(tetrachlorvinphos)、甲基乙拌磷(thiometon)、三唑磷(triazophos)、敌百虫(triclorfon)、蚜灭磷(vamidothion))。 

    本发明方法优选的乙酰胆碱酯酶(AChE)抑制剂是以下(2)组有效成分： 

    (2.1.1)甲硫威 

    (2.1.2)硫双威 

    (2.1.3)涕灭威 

    (2.1.4)杀线威 

    (2.2.1)灭线磷 

    (2.2.2)苯线磷 

    (2.2.3)丁基嘧啶磷 

    (2.2.4)硫线磷 

    (2.2.5)噻唑磷 

    (2.2.6)甲基毒死蜱、毒死蜱 

    本发明方法特别优选的乙酰胆碱酯酶(AChE)抑制剂是以下(2)组有效成分： 

    (2.1.1)甲硫威 

    (2.1.2)硫双威 

    (2.1.3)涕灭威 

    (2.2.1)灭线磷 

    (2.2.2)苯线磷 

    (3)组的钠通道调节剂/电位门控性钠通道阻断剂包含如下有效成分： 

    (3.1)拟除虫菊酯类(例如氟丙菊酯(acrinathrin)、烯丙菊酯(d‑顺‑反，d‑反)(allethrin(d‑cis‑trans，d‑trans))、高效氟氯氰菊酯(beta‑cyfluthrin)、联苯菊酯(bifenthrin)、生物烯丙菊酯(bioallethrin)、生物烯丙菊酯‑S‑环戊基异构体、bioethanomethrin、生物氯菊酯(biopermethrin)、生物苄呋菊酯(bioresmethrin)、二氯炔戊菊酯(chlovaporthrin)、顺‑氯氰菊酯 (cis‑cypermethrin)、顺‑苄呋菊酯(cis‑resmethrin)、顺‑氯菊酯(cis‑permethrin)、功夫菊酯(clocythrin)、乙氰菊酯(cycloprothrin)、氟氯氰菊酯(cyfluthrin)、氯氟氰菊酯(cyhalothrin)、氯氰菊酯(α‑、β‑、θ‑、ζ‑)(cypermethrin(alpha‑，beta‑，theta‑，zeta‑))、苯醚氰菊酯(cyphenothrin)、DDT、溴氰菊酯(deltamethrin)、右旋烯炔菊酯(1R异构体)(empenthrin(1Risomer))、S‑氰戊菊酯(esfenvalerate)、醚菊酯(etofenprox)、五氟苯菊酯(fenfluthrin)、甲氰菊酯(fenpropathrin)、吡氯氰菊酯(fenpyrithrin)、氰戊菊酯(fenvalerate)、溴氟菊酯(flubrocythrinate)、氟氰戊菊酯(flucythrinate)、三氟醚菊酯(flufenprox)、氟氯苯菊酯(flumethrin)、氟胺氰菊酯(fluvalinate)、苄螨醚(fubfenprox)、γ‑氯氟氰菊酯(gamma‑cyhalothrin)、咪炔菊酯(imiprothrin)、噻嗯菊酯(kadethrin)、高效氯氟氰菊酯(lambda‑cyhalothrin)、甲氧苄氟菊酯(metofluthrin)、氯菊酯(顺‑、反‑)、苯醚菊酯(1R‑反式异构体)(phenothrin(1R‑transisomer)、右旋炔丙菊酯(prallethrin)、丙氟菊酯(profluthrin)、protrifenbute、反灭虫菊(pyresmethrin)、灭虫菊(resmethrin)、RU‑15525、氟硅菊酯(silafluofen)、氟胺氰菊酯(tau‑fluvalinate)、七氟菊酯、环戊烯丙菊酯(terallethrin)、胺菊酯(1R异构体)(tetramethrin(1R isomer))、四溴菊酯(tralomethrin)、四氟苯菊酯(transfluthrin)、溴氟菊酯(ZXI 8901)、除虫菊素(pyrethr ins，pyrethrum))； 

    (3.2)噁二嗪类(例如茚虫威(indoxacarb))。 

    本发明方法优选的钠通道调节剂/电位门控性钠通道阻断剂是以下(3)组有效成分： 

    (3.1.1)高效氟氯氰菊酯 

    (3.1.2)氟氯氰菊酯 

    (3.1.3)溴氰菊酯 

    (3.1.4)七氟菊酯 

    (3.1.5)联苯菊酯 

    (3.2.1)茚虫威 

    本发明方法特别的钠通道调节剂/电位门控性钠通道阻断剂是以下(3)组有效成分： 

    (3.1.1)高效氟氯氰菊酯 

    (3.1.2)氟氯氰菊酯 

    (3.1.3)溴氰菊酯 

    (3.1.4)七氟菊酯 

    (3.2.1)茚虫威 

    (4)组的乙酰胆碱受体调节剂包含如下有效成分： 

    (4.1)多杀霉素类(例如多杀菌素(spinosad))。 

    优选地，用以下优选的(4)组乙酰胆碱受体调节剂有效成分施用本发明方法： 

    (4.1.1)多杀菌素 

    (4.1.2)spinetoram也被称为XDE‑175，其为从WO 97/00265 A1，US 6001981和Pest Manag.Sci.57，177‑185，2001中已知的化合物，其具有式(I)： 

    

    (5)组的GABA‑门控性氯离子离子通道拮抗剂包含如下有效成分： 

    (5.1)环戊二烯类(例如毒杀芬(camphechlor)、氯丹(chlordane)、林丹(gamma‑HCH)、六六六(HCH)、七氯(heptachlor)、林丹(lindane)、甲氧滴滴涕(methoxychlor))； 

    (5.2)苯基吡唑类(例如乙酞虫腈(acetoprole)、乙虫腈(ethiprole)、氟虫腈(fipronil)、氟吡唑虫(vaniliprole))。 

    优选地，使用如下(5)组GABA‑门控性氯离子通道拮抗剂有效成分实施本发明方法： 

    (5.2.1)氟虫腈 

    (5.2.2)乙虫腈 

    (6)组的氯离子通道活化剂包含如下有效成分： 

    (6.1)mectin类(例如阿维菌素(abamectin，avermectin)、埃玛菌素(emamectin)、甲氨基阿维菌素苯甲酸盐(emamectin‑benzoate)、齐墩螨素(ivermectin)、弥拜菌素(milbemectin)、米尔倍霉素(milbemycin)) 

    优选地，用下面优选的(6)组有效成分使用本发明方法： 

    (6.1.1)甲氨基阿维菌素苯甲酸盐 

    (6.1.2)阿维菌素(avermectin) 

    (7)组的保幼激素模拟物包含如下有效成分： 

    (7.1)苯虫醚(diofenolan)、保幼醚(epofenonane)、苯氧威(fenoxycarb)、烯虫乙酯(hydroprene)、烯虫炔酯(kinoprene)、烯虫酯(methoprene)、吡丙醚(pyriproxifen)、烯虫硫酯(triprene)。 

    优选地，用下面优选的(7)组有效成分使用本发明方法： 

    (7.1.1)吡丙醚 

    (8)组的蜕皮激素激动剂/干扰剂包含如下有效成分： 

    (8.1)二酰基肼类(例如环虫酰肼(chromafenozide)、氯虫酰肼(halofenozide)、甲氧虫酰肼(methoxyfenozide)、虫酰肼(tebufenozide))。 

    优选地，用下面优选的(8)组有效成分使用本发明方法： 

    (8.1.1)甲氧虫酰肼 

    (9)组的几丁质生物合成抑制剂包含如下有效成分： 

    (9.1)苯甲酰脲类(例如，双三氟虫脲(bistrifluron)、定虫隆(chlofluazuron)、除虫脲(diflubenzuron)、啶蜱脲(fluazuron)、氟环脲(flucycloxuron)、氟虫脲(flufenoxuron)、氟铃脲(hexaflumuron)、虱螨脲(lufenuron)、氟酰脲(novaluron)、多氟脲(noviflumuron)、氟幼脲(penfluron)、氟苯脲(teflubenzuron)、杀铃脲(triflumuron))； 

    (9.2)噻嗪酮(buprofezin)； 

    (9.3)灭蝇胺(cyromazine)。 

    优选地，用下面优选的(9)组有效成分使用本发明方法： 

    (9.1.1)杀铃脲 

    (9.1.2)氟虫脲 

    (10)组的氧化磷酸化抑制剂，ATP‑干扰剂(例如有机锡类)包含如下有效成分： 

    (10.1)丁醚脲(diafenthiuron)； 

    (10.2)有机锡类(例如三唑锡(azocyclotin)、三环锡(cyhexatin)、苯丁锡(fenbutatin‑oxide))。 

    (11)组的通过打断质子梯度而起作用的氧化磷酸化的解偶联剂包含如下有效成分： 

    (11.1)吡咯类(例如虫螨腈(chlorfenapyr))； 

    (11.2)二硝基酚类(例如乐杀螨(binapacyrl)、消螨通(dinobuton)、敌螨普(dinocap)、二硝甲酚(DNOC))。 

    (12)组的位点‑I电子转移抑制剂包含如下有效成分： 

    (12.1)METI类(例如喹螨醚(fenazaquin)、唑螨酯(fenpyroximate)、嘧螨醚(pyrimidifen)、哒螨灵(pyridaben)、吡螨胺(tebufenpyrad)、唑虫酰胺(tolfenpyrad))； 

    (12.2)伏蚁腙(hydtamethylnone)； 

    (12.3)三氯杀螨醇(dicofol)。 

    优选地，用下面优选的(12)组有效成分使用本发明方法： 

    (12.1.1)吡螨胺 

    (12.2.1)伏蚁腙 

    (13)组的位点‑II电子转移抑制剂包含下面有效成分： 

    (13.1)鱼藤酮(rotenone) 

    (14)组的位点‑III电子转移抑制剂包含下面有效成分： 

    (14.1)灭螨醌(acequinocyl)、嘧螨酯(fluacrypyrim) 

    (15)组的昆虫肠道膜微生物干扰剂包含下面有效成分： 

    (15.1)苏云金杆菌(Bacillus thuringiensis)菌株 

    (16)组的脂肪酸合成抑制剂包含下面有效成分： 

    (16.1)特窗酸类(例如，螺螨酯(spirodiclofen)、螺甲螨酯(spiromesifen))； 

    (16.2)特特拉姆酸类，例如，顺‑3‑(2，5‑二甲基苯基)‑8‑甲氧基‑2‑氧‑1‑氮杂螺[4.5]癸‑3‑烯‑4‑基碳酸酯(螺虫乙酯(spirotetramat)，CAS注册号：203313‑25‑1)。 

    优选地，用下面优选的(16)组有效成分使用本发明方法： 

    (16.1.1)螺螨酯 

    (16.1.2)螺甲螨酯 

    (16.2.1)螺虫乙酯 

    (17)组的甲酰胺类包含： 

    (17.1)氟啶虫酰胺(flonicamid) 

    (18)组的章鱼胺能激动剂包含： 

    (18.1)双甲脒(amitraz) 

    (19)组的镁刺激ATP酶抑制剂包括 

    (19.1)炔螨特(propargite) 

    (20)组的兰诺定受体激动剂包含如下有效成分： 

    (20.1)N²‑[1，1‑二甲基‑2‑(甲基磺酰基)乙基]‑3‑碘‑N¹‑[2‑甲基‑4‑[1，2，2，2‑四氟‑1‑(三氟甲基)乙基]苯基]‑1，2‑苯二酰胺(氟虫酰胺(flubendiamide)，CAS注册号：272451‑65‑7) 

    (20.2)式(II)的氯虫酰胺(rynaxypyr) 

    

    (20.3)式(III)的cyazypyr 

    (21)组的沙蚕毒素类似物包含如下有效成分： 

    (21.1)杀虫环草酸盐(thiocyclam hydrogen oxalate)、杀虫双(thiosultap‑sodium) 

    (22)组的生物制剂类、激素类或信息素类包含下面有效成分： 

    (22.1)印楝素(azadirachtin)、芽孢杆菌属种(Bacillus spec.)、白僵菌属种(Beauveria spec.)、十二碳二烯醇(codlemone)、绿僵菌属种(Metarrhizium spec.)、拟青霉属种(Paecilomyces spec.)、敌贝特(Thuringiensin)、轮枝菌属种(Verticillium spec.) 

    (23)组的具有未知或未确定作用机理的有效成分包含如下有效成分： 

    (23.1)熏蒸剂类(例如，磷化铝、溴甲烷、硫酰氟)； 

    (23.2)昆虫取食的选择性抑制剂类(例如，冰晶石、氟啶虫酰胺(flonicamid)、吡蚜酮(pymetrozine))； 

    (23.3)螨生长抑制剂类(例如，四螨嗪(clofentezine)、乙螨唑(etoxazole)、噻螨酮(hexythiazox)) 

    (23.4)amidoflumet、benclothiaz、苯螨特(benzoximate)、联苯肼酯(bifenazate)、溴螨酯(bromopropylate)、噻嗪酮(buprofezin)、灭螨猛(chinomethionat)、杀虫脒(chlordimeform)、乙酯杀螨醇(chlorobenzilate)、氯化苦(chloropicrin)、clothiazoben、cycloprene、cyflumetofen、环虫腈(dicyclanil)、fenoxacrim、氟硝二苯胺(fentrifanil)、噻唑螨(flubenzimine)、flufenerim、氟 螨嗪(flutenzin)、诱虫十六酯(gossyplute)、伏蚁腙(hydramethylnone)、japonilure、恶虫酮(metoxadiazone)、石油、增效醚(piperonyl butoxide)、油酸钾、pyrafluprole、啶虫丙醚(pyridalyl)、pyriprole、氟虫胺(sulfluramid)、三氯杀螨砜(tetradifon)、杀螨硫醚(tetrasul)、苯螨噻(triarathene)、增效炔醚(verbutin)、3‑甲基‑苯基‑丙基氨基甲酸酯(速灭威(tsumacide)z)、3‑(5‑氯‑3‑吡啶基)‑7‑(2，2，2‑三氟乙基)‑7‑氮杂双环[3.2.1]辛‑3‑腈(CAS注册号175972‑70‑3)和相应的3‑内型‑异构体(CAS注册号175974‑60‑5)(见WO 96/37494、WO 97/25923)。 

    极特别优选的有效成分是： 

    (1.1.1)噻虫胺 

    (1.1.2)吡虫啉 

    (1.1.3)噻虫啉 

    (1.1.4)噻虫嗪 

    (1.1.5)啶虫脒 

    (2.1.1)甲硫威 

    (2.1.2)硫双威 

    (3.1.1)高效氟氯氰菊酯 

    (3.1.2)氟氯氰菊酯 

    (3.1.3)溴氰菊酯 

    (3.1.4)七氟菊酯 

    (3.2.1)茚虫威 

    (4.1.1)多杀菌素 

    (4.1.2)spinetoram 

    (5.2.1)氟虫腈 

    (5.2.2)乙虫腈 

    (6.1.1)甲氨基阿维菌素苯甲酸盐 

    (6.1.2)阿维菌素 

    (16.1.1)螺螨酯 

    (16.1.2)螺甲螨酯 

    (16.2.1)螺虫乙酯 

    (20.1)氟虫酰胺 

    (20.2)氯虫酰胺 

    (20.3)cyazypyr 

    最特别优选的有效成分是： 

    (1.1.1)噻虫胺 

    (1.1.2)吡虫啉 

    (1.1.4)噻虫嗪 

    (2.1.1)甲硫威 

    (2.1.2)硫双威 

    (3.1.1)高效氟氯氰菊酯 

    (3.1.4)七氟菊酯 

    (4.1.1)多杀菌素 

    (4.1.2)spinetoram 

    (5.2.1)氟虫腈 

    (5.2.2)乙虫腈 

    (6.1.1)甲氨基阿维菌素苯甲酸盐 

    (6.1.2)阿维菌素 

    (16.2.1)螺虫乙酯 

    (20.2)氯虫酰胺 

    (20.3)cyazypyr 

    本发明优选的、特别优选的或最优选的特征可以任意方式结合以产生解决本发明技术问题的实施方案。 

    关于经处理种子的萌芽和活力，种子处理的不利作用以及水合和干燥种子的有利作用可用多种实验来评价。所述实验通常包括4种处理：对照处理；仅进行包括至少一种杀昆虫、杀线虫或杀螨有效成分的种子处理；仅水合和干燥处理；和包括在进行所述种子处理前水合和干燥的种子的处理(“结合处理”)。通常，对照种子被定义为未处理过的种子，其经过清洗和分类，但未经过如前所述的任何类型的水合和干燥处理。如果化学种子处理剂只包括一种或者由两种或更多种杀昆虫、杀螨或杀线虫化合物形成的结合物，则可向所有处理剂中加入杀菌剂(例如福美双(thiram))作为杀菌种子处理剂。种子处 理的不利作用被定义为“仅”经化学处理的种子的萌芽和/或活力与对照种子的萌芽和/或活力相比的有所减少。水合和干燥对经处理种子的萌芽和活力的有利作用被定义为在水合和干燥条件下种子处理的不利影响减少或消失。 

    上面介绍的实验可以在受控的条件(其中特别为在实验室的人工气候室、温室或萌芽室)下进行，以及田间进行。在受控的条件下，可进行如在ISTA(国际种子检查协会，International Seed TestingAssociation)手册中描述的萌芽试验以及在本领域中公知的活力试验(ISTA，2005.International rules for seed testing；AOSA，1973.Seed vigor testing handbook.Contribution no.32 to the handbookon seed testing.Association of Official Seed Analysts(AOSA))。通常，萌芽试验包括在滤纸或吸墨纸之上或之间进行的试验，以及在沙子、混合肥料或土壤之上/之中进行的试验。水分、温度和光照制度对萌芽是最适的(见例如ISTA，2005.International rules for seedtesting)。通常，萌芽试验中的幼苗在所有基本结构可见时进行评价。然后，对依照例如I STA指南所述“正常”萌芽的所有幼苗计数。也记录下异常的、多胚芽的或死亡种子的数量。通常，这种类型的评价在萌芽过程中进行至少两次；在所有基本结构可见时为第一次，和最终计数。最终计数的时间取决于植物物种和环境条件。通常，在播种后5到60天进行最终计数。或者，作为上面解释的幼苗评价的替换方式，在所有处理中，萌芽从任意处理中任一幼苗突出种皮或果皮的时刻起进行评价。随后，根据萌芽速度，可每隔一天、每天一次甚至一天多次进行计数。这样就能评价萌芽的全过程。 

    进行活力试验是为了评价种子活力。这是一个描述与在广泛的田间条件下快速、整齐萌芽和正常幼苗发育潜力相关的那些种子特性的概念。这种试验的结果比最适条件下的标准萌芽试验能更好预测田间种子品质(ISTA，2005.International rules for seed testing；AOSA，1973.Seed vigor testing handbook.Contribution no.32 to thehandbook on seed testing.Association of Official Seed Analysts(AOSA))。具体的活力试验是胁迫试验，其中在吸胀之前或在萌芽期间对种子胁迫。在胁迫试验中基质可从沙子或人造基质如椰衣纤维，到真正的可耕土壤。除此以外，或另外，气候条件比通常被认为是最 适条件下的气候条件要更高或更低。众所周知的活力胁迫试验的实例是常对玉蜀黍种子进行的低温试验。在该试验中将种子播种在可耕土壤中并在10℃的温度(低温阶段)下保持7天。其后将种子在25℃下再保持7天，然后评价最大萌芽率和幼苗质量(Jonitz，A和Leist，N.2003.Pflantzenschutz‑Nachrichten Bayer，56(1)，第173‑207页)。同样为活力试验，对萌芽进行的计数可在两个特定时刻、但也可在期间的多个时刻进行，以构造全萌芽过程的视图。对于用基质覆盖的种子，所有处理中出苗的计数可从所涉及的任意处理中基质上任何出苗的幼苗可见的时刻开始。其后，根据出苗的进程可频繁地计数出苗。在最终计数时，幼苗被分成显示幼苗能否进一步发育成令人满意植株的等级。在本文中，这些等级被称为活力等级。幼苗被定级为正常、轻度受损或异常。还没有萌芽或出苗的种子被定级为死亡种子。 

    除了受控条件下的实验，也可在田间进行试验。由于，在大多数情况下，田间条件不是最佳的，与特定物种在受控条件下的第一次计数相比，出苗的计数较晚，或从较晚的阶段开始。除对幼苗进行的活力评价以外，产率可在作物生长期的末期测定。 

    本发明杀昆虫剂、杀螨剂和杀线虫剂可根据其特定物理和/或化学性质转化成常规制剂，如溶液剂、乳剂、悬浮剂、粉剂、粉尘剂、泡沫剂、膏剂、可溶性粉剂、颗粒剂、气雾剂、悬浮乳液浓缩剂、经活性化合物浸渍的天然和合成物质、聚合物与种子包衣组合物中的微胶囊剂，以及ULV冷却与加温弥雾(fogging)制剂。 

    这些制剂用已知方式制备，例如通过将活性化合物或活性化合物结合物与填充剂混合，所述填充剂为液态溶剂、加压液化气、和/或固体载体；任选使用表面活性剂，所述表面活性剂为乳化剂和/或分散剂，和/或发泡剂。 

    如果所用填充剂为水，还可使用例如有机溶剂作为助溶剂。适合的液体溶剂主要有：芳香族化合物，例如二甲苯、甲苯或烷基萘；氯化芳香族化合物或氯化脂族烃，例如氯苯、氯乙烯或二氯甲烷；脂族烃，例如环己烷或石蜡，如石油馏分、矿物油和植物油；醇类，例如丁醇或乙二醇及它们的醚及酯；酮，例如丙酮、甲乙酮、甲基异丁基酮或环己酮；强极性溶剂，例如二甲基甲酰胺或二甲亚砜；或水。 

    液化气体填充剂或载体的含义应理解为在标准温度及大气压下为 气态的液体，例如气溶胶喷雾剂，如丁烷、丙烷、氮气及二氧化碳。 

    适合的固体载体例如有：铵盐和粉碎的天然矿物，例如高岭土、粘土、滑石、白垩、石英、凹凸棒石、蒙脱石或硅藻土；以及粉碎的合成矿物，例如细分散二氧化硅、氧化铝及硅酸盐。适用于颗粒剂的固体载体有：例如粉碎并分级的天然岩石，如方解石、浮石、大理石、海泡石及白云石；或合成的无机及有机粉颗粒，以及有机物如锯木屑、椰壳、玉米穗轴及烟草茎的颗粒。 

    适合的乳化剂和/或发泡剂的实例有：例如非离子及阴离子乳化剂，如聚氧乙烯脂肪酸酯、聚氧乙烯脂肪醇醚(例如烷基芳基聚乙二醇醚)、烷基磺酸盐、烷基硫酸盐、芳基磺酸盐，或蛋白质水解产物。适合的分散剂有：例如木素亚硫酸盐废液及甲基纤维素。 

    制剂中可使用增粘剂，例如羧甲基纤维素；粉末、颗粒或胶乳状的天然及合成聚合物，如阿拉伯树胶、聚乙烯醇及聚乙酸乙烯酯；或天然磷脂如脑磷脂和卵磷脂，及合成磷脂。其它可用的添加剂为矿物油和植物油。 

    可使用着色剂，例如无机颜料，如氧化铁、氧化钛及普鲁士蓝；以及有机染料，如茜素染料、偶氮染料及金属酞菁染料；以及微量营养物，如铁盐、锰盐、硼盐、铜盐、钴盐、钼盐及锌盐。 

    从市售制剂制备的使用形式的活性化合物含量可以在很宽的范围内变化。为防治动物有害物(animal pest)如昆虫和螨虫，使用形式的活性化合物的浓度可以为活性化合物的0.0000001到95重量％，优选为0.0001到25重量％。以适合使用形式的方式施用。 

     实施例

    本部分的实施例显示了在用含有至少一种杀昆虫、杀线虫或杀螨化合物的种子处理剂进行种子包衣之前水合和干燥种子的有利作用，所述化合物在非水合条件下对萌芽和活力有不利作用。通常该实验包括四种处理，一起表现出本发明权利要求中所述的效果：对照种子；仅用种子处理剂包衣种子；仅水合和干燥种子；在用特定的种子处理剂包衣种子之前水合和干燥种子。表中包括萌芽和活力或相关变量的数据。除了特定变量的平均数据，表中还包括与非水合条件相关的两种处理和与水合条件相关的两种处理之间的变量平均值的绝对差值 (表头中用“d”表示，例如“dEmg”)。这些差值说明了在非水合和水合条件下种子处理的作用的方向和大小。在两种条件下种子处理的不利作用用负号(‑)示出，而在水合条件中在特定变量下不利作用的消失用正号(+)示出。所述实施例显示出，与在无水合和干燥的条件下相比，在水合和干燥的条件下，在特定变量下种子处理的不利作用较小或不存在。 

     实施例1

    在人工气候室中研究了先进行水合和干燥、然后使用种子处理杀昆虫剂Gaucho(含有效成分吡虫啉)进行膜包衣对番茄(Lycopersiconesculentulm，Tristar品种)种子出苗的影响。在通气的聚乙二醇(PEG6000)溶液中，在渗透势为‑1.0MPa和温度20℃下以渗透引发的方式水合种子7天。水合之后，将种子干燥恢复至水合之前的水分含量。以每千克种子100或200g产品的浓度加入Gaucho WS 70。通过聚合物(聚乙酸乙烯酯)将种子处理制剂包衣在种子上。将种子播种在托盘中的由盆栽土和河砂(比例为1∶3)形成的混合物中。重复进行三次试验，每次重复播种50粒种子。将托盘在20小时光照和4小时黑暗的光照制度、23℃下连续保存。表中的数据显示了播种4天后(DAS)幼苗出苗的平均百分比。 

    

    表中使用的缩写： 

    Emg＝出苗 

    dEmg＝特定条件下特定变量的差值(见实施例引言部分) 

     实施例2

    本表示出了先进行水合和干燥、然后使用种子处理杀昆虫剂Cruiser(含有效成分噻虫嗪)进行膜包衣对莴苣(Lactuca sativa)种子(Smile品种(绿橡叶莴苣))出苗的作用的数据。在通气的聚乙二醇(PEG 6000)溶液中，在渗透势‑1.5MPa和温度15℃下以渗透引发的方式水合种子1天。水合之后，将种子干燥恢复至水合之前的水分含量。通过基于粘土的粒化混合物将所有种子粒化。最终颗粒大小在3到3.5mm之间。以每100,000个颗粒物115g产品的浓度加入Cruiser 70WS。通过聚合物将种子处理制剂包衣在该颗粒物上。将种子播种在填满椰衣纤维的托盘中，并用蛭石no.2覆盖。重复进行三次试验，每次重复播种100粒种子。首先，将托盘置于平均温度2℃的低温阶段7天。接着，将托盘置于交替温度15和10℃下，分别对应6小时光照和18小时黑暗。本表包括的数据显示了从7天的低温阶段后起3天时的幼苗出苗的平均百分比。 

    

    表中使用的缩写： 

    Emg＝出苗 

    dEmg＝特定条件下特定变量的差值(见实施例引言部分) 

     实施例3

    在人工气候室中研究了先进行水合和干燥、然后使用种子处理杀昆虫剂Gaucho(含有效成分吡虫啉)进行膜包衣对白甘蓝(Brassicaoleracea convar.capitata var.alba)种子出苗的作用。用一个品种：Lennox进行该实验。所有的种子在使用之前用热水处理，这可通 过商购实现。通过用种子∶蛭石(no.3)∶自来水比例为1∶2∶2.5的混合物的固体基质引发的方式水合种子。将该混合物保持在旋转容器内。包括两种曝光(exposure)时间：8和24小时的曝光。在引发过程中维持温度在15℃。水合之后，将种子干燥恢复至它们起初的水分含量。以每100,000粒种子115或230g产品的浓度加入Gaucho WS70。通过聚合物将种子处理制剂包衣在种子上。将种子播种在填满椰衣纤维的托盘中。重复进行三次试验，每次重复播种50粒种子。将该托盘在12小时光照和12小时黑暗的光照制度下，分别在20℃和15℃下保存。本表显示了播种5天后幼苗出苗的平均百分比。 

    

    表中使用的缩写： 

    U＝单位：100,000粒种子 

    SMP＝固体基质引发 

    Emg＝出苗 

    dEmg＝特定条件下特定变量的差值(见实施例引言部分) 

     实施例4

    先水合并干燥、然后使用种子处理杀虫剂Mundial(含有效成分氟虫腈)进行膜包衣对洋葱(Allium cepa；Safari品种)种子的出苗表现出有利作用。用聚乙二醇(PEG 6000)在‑2.0MPa和15℃下渗透引发种子7天。之后，将种子干燥恢复至它们起初的水分含量。以每100,000粒种子20ml产品加入Mundial(FS制剂；500g/L)。所有种子也都用杀菌剂处理。在包衣混合物中加入如下杀菌剂混合物：每千克种子2.3g福美双+0.86g多菌灵(carbendazim)。通过聚合物将种子处理制剂添加在种子上。将种子播种在填满椰衣纤维的托盘中。重复进行三次试验，每次重复播种100粒种子。在30℃下将托盘连续保存在18小时光照和6小时黑暗中。表中的数据显示了播种5天后幼苗出苗的平均百分比。 

    

    表中使用的缩写： 

    Emg＝出苗 

    dEmg＝特定条件下特定变量的差值(见实施例引言部分) 

     实施例5

    先水合并干燥、然后用种子处理杀虫剂Poncho‑beta(含有效成分噻虫胺和高效氟氯氰菊酯)进行膜包衣对胡萝卜(Daucus carota)种子萌芽表现出有利作用。在通气的聚乙二醇(PEG 6000)溶液中，在‑1.0和‑2.0MPa之间且15‑20℃下渗透引发该种子7‑21天。接着，将种子干燥恢复至水合之前的水分含量。Poncho‑beta(FS制剂)以三种浓度(每100,000粒种子)加入：7g噻虫胺+0.9g高效氟氯氰菊酯；14g噻虫胺+1.8g高效氟氯氰菊酯和28g噻虫胺+3.6g高效氟氯氰菊酯。所有种子也用杀菌剂处理。向包衣混合物中加入如下杀菌剂混合物(每kg种子)：1.2g福美双+4g异菌脲(iprodione)+0.33g 精甲霜灵。通过市售的聚合物将种子处理制剂添加在种子上。在用自来水润湿的吸墨纸上进行萌芽试验。重复进行三次试验，每次重复播种100粒种子。萌芽用托盘在8小时光照和16小时黑暗中分别在30和20℃下保存在萌芽室中。播种7天后评价种子。计数所有正常萌芽的种子(至少根据萌芽试验的I STA指南)。本表显示了Laguna和Elegance品种正常萌芽种子的平均百分比。 

    

    

    表中使用的缩写： 

    U＝单位：100,000粒种子 

    G_n＝正常萌芽 

    dG_n＝特定条件下特定变量的差值(见实施例引言部分) 

     实施例6

    先水合并干燥、然后用种子处理杀虫剂Poncho‑beta(含有效成分噻虫胺和高效氟氯氰菊酯的混合物)进行膜包衣，这对田间胡萝卜(Daucus carota)种子(Laguna和Elegance品种)的出苗也表现出有利的作用。水合和包衣方法与标题5的实施例所描述的相同。只是每100,000粒种子使用7g噻虫胺和0.9g高效氟氯氰菊酯混合物的处理是在田间进行。重复进行三次试验，每次重复在户外的沙质田间土壤中播种200粒种子。播种10天后计数早期出苗。 

    

    表中使用的缩写： 

    Emg＝出苗 

    dEmg＝特定条件下特定变量的差值(见实施例引言部分) 

     实施例7

    研究了先进行水合和干燥、然后使用种子处理杀虫剂Gaucho(含有效成分吡虫啉)进行膜包衣对韭葱(Allium ampeloprasum var.porrum；有时也分类为韭葱(Allium porrum))种子品质的作用。本表包括了Parton品种的数据。在温度15℃下通过水引发方式水合种子。研究了两种曝光时间：8和32小时的曝光。不断地向用于水引发的自来水通气。水合之后，使种子干燥恢复至水合之前的水分含量。Gaucho WS70以每100,000粒种子32或64g产品的浓度加入。通过聚合物将种子处理制剂包衣在种子上。将种子播种在填满椰衣纤维的托盘中。重复进行三次试验，每次重复播种100粒种子。托盘在12小时光照和12小时黑暗的光照制度下、分别在20和15℃下保存在人工气候室中。 

     表7a

    本表示出了在9DAS(播种后天数)时出苗的平均百分比和在18DAS时最大萌芽率的平均百分比数据。 

    

    续表7a： 

    

    表中使用的缩写： 

    U＝单位：100,000粒种子 

    Emg＝出苗 

    Gmax＝最大萌芽率 

    dEmg/dGmax＝特定条件下特定变量的差值(见实施例引言部分) 

     表7b

    本表示出了在18DAS时可销售植株平均数量的数据。所述可销售植物数株包括被认定为活力等级A和B的所有植株。等级A包括所有正常的幼苗，等级B包括轻度受损和/或小的幼苗。 

    

    

    表中使用的缩写： 

    U＝单位：100,000粒种子 

    d可销售植株＝特定条件下特定变量的差值(见实施例引言部分) 

     实施例8

    本实施例示出了先进行水合和干燥、然后使用杀虫化合物噻虫胺和高效氟氯氰菊酯的混合物、以及噻虫胺和多杀菌素的混合物包衣对胡萝卜(Daucus carota；Starca品种)种子品质的有利影响。在通气的聚乙二醇(PEG 6000)溶液中，在‑1.0和‑2.0MPa之间和15‑20℃下将种子渗透引发7‑21天。接着，将种子干燥恢复至水合之前的水分含量。将噻虫胺以每100,000粒种子7g的浓度加入两种混合物中。高效氟氯氰菊酯或多杀菌素分别以每100,000粒种子0.9或3.5g的浓度加入混合物中。通过聚合物将种子处理制剂包衣在种子上。所有种子也用杀菌剂处理。向包衣混合物中加入如下杀菌剂混合物(每kg种子)：1.2g福美双+4g异菌脲+0.33g精甲霜灵。将种子播种在填满椰衣纤维的托盘中。重复进行三次试验，每次重复播种100粒种子。托盘在12小时光照和12小时黑暗的光照制度下、分别在20和15℃下保存在人工气候室中。 

     表8a

    该表显示了在播种7天后(DAS)出苗的平均百分比的数据。 

    

    表中使用的缩写： 

    U＝单位：100,000粒种子 

    Emg＝出苗 

    dEmg＝特定条件下特定变量的差值(见实施例引言部分) 

     表8b

    该表显示了在14DAS时A活力等级幼苗的平均百分比的数据。该等级包括大小和子叶正常且未受损害的所有幼苗。 

    

    表中使用的缩写： 

    U＝单位：100,000粒种子 

    VitA＝活力等级A 

    dVitA＝特定条件下特定变量的差值(见实施例引言部分) 

     实施例9

    在人工气候室中，研究先进行水合和干燥、然后使用种子处理杀虫剂Gaucho(含有效成分吡虫啉)进行膜包衣对韭葱(Alliumampeloprasum var.porru`有时也分类为韭葱(Allium porrum))种子品质的影响。用两个品种进行实验：Ashton和Shelton。种子在温度为15和22℃之间滚筒引发7到14天，最终达到为干重的70‑100％的水分含量。接着，将种子干燥恢复至它们起初的水分含量。所有种子都用杀菌剂福美双处理(每kg种子1.5g福美双)。以每kg种子140g产品的浓度加入Gaucho WS70。种子处理制剂通过聚合物包衣在种子上。将种子播种在填满椰衣纤维的托盘中。重复进行三次试验，每次重复播种50粒种子。托盘在12小时光照和12小时黑暗的光照制度下分别保存在20和15℃下。 

    本实验包括以下三种处理：对照；Gaucho膜包衣；先水合和干燥，然后进行Gaucho膜包衣。这里不包括“仅水合和干燥”处理；但本实验结果中的出苗和活力A的最大值均能达到100％。如果本实验被理解为采用了该最大出苗率或活力A最大值，则本实施例也表现出了本专利权利要求。 

     表9a

    该表显示了在DAS8或9时所用不同韭葱品种的出苗平均百分比数据。 

    

    

    表中使用的缩写： 

    DAS＝播种后天数 

    Emg＝出苗 

    dEmg＝特定条件下特定变量的差值(见实施例引言部分) 

     表9b

    本表显示了活力等级A(VitA)的幼苗平均百分比的数据。该等级包括大小和子叶正常、且未受损害的所有幼苗。在17或20DAS时，针对不同品种进行活力评价。 

    对于在滚筒引发条件下种子处理的不利影响的解释，应指出两个品种被引发的对照的所有幼苗被归类为活力A(这样V it A为100％)是极不可能的。因此，对两个品种在滚筒引发条件下的不利影响预计将比本表中示出的最大值小。 

    

    表中使用的缩写： 

    DAS＝播种后天数 

    VitA＝活力等级A 

    dVitA＝特定条件下特定变量的差值(见实施例引言部分) 

     实施例10

    在温室中研究了先进行水合和干燥、然后使用种子处理杀虫剂Elado(含有效成分噻虫胺和高效氟氯氰菊酯)进行膜包衣对油菜(Brassica napus；Talent品种)种子品质的影响。种子在通气的聚乙二醇(PEG 6000)溶液中、于‑1.0MPa和15℃下渗透引发20小时。接着，将种子干燥恢复至它们起初的水分含量。Elado FS 480以每kg种子10g噻虫胺和2g高效氟氯氰菊酯的浓度加入。所有种子也都用杀菌剂福美双和烯酰吗啉(分别为每kg种子4和5g)处理。将种子播种在填满从田间取得的沙质壤土的托盘中。重复进行三次试验，每次重复播种50粒种子。托盘在20℃下以12小时光照和12小时黑暗的光照制度连续保存在温室中。本表显示了在播种3天后平均出苗百分比数据。 

    

    表中使用的缩写： 

    Emg＝出苗 

    dEmg＝特定条件下特定变量的差值(见实施例引言部分) 

     实施例11

    在人工气候室中研究了先进行水合和干燥、然后使用种子处理杀昆剂Prosper(含杀虫有效成分噻虫胺以及杀菌剂福美双、萎锈灵(carboxin)和甲霜灵(metalaxyl))进行膜包衣对油菜(Brassicanapus；Talent品种)种子品质的影响。种子在通气的聚乙二醇(PEG6000)溶液中在‑1.0MPa和15℃下渗透引发20小时。接着，将种子干燥恢复至它们起初的水分含量。Prosper FS 300以每100kg种子150g噻虫胺、150g福美双、70g萎锈灵和5g甲霜灵的浓度加入。未引发和引发的对照的种子均不用任何杀菌剂处理。以这种方式，对在无水合和干燥条件下杀虫剂和杀菌剂的混合物的影响进行评价。将种子播种 在填满盆栽土的托盘中。重复进行三次试验，每次重复播种50粒种子。托盘在12小时光照和12小时黑暗的光照制度下分别在20和15℃下保存在温室中。本表显示了在播种4天后出苗的平均百分比数据。 

    

    表中使用的缩写： 

    Emg＝出苗 

    dEmg＝特定条件下特定变量的差值(见实施例引言部分) 

     实施例12

    在温室中研究了先进行水合和干燥、然后使用种子处理杀虫剂Cruiser(含有效成分噻虫嗪)进行膜包衣对玉蜀黍(Zea Mays；Agromax品种)种子品质的影响。种子在通气的聚乙二醇(PEG 6000)溶液中于‑0.6MPa和15℃下渗透引发48小时。接着，将种子干燥恢复至它们起初的水分含量。Cruiser FS350以每种粒1.25mg有效成分的浓度加入。所有种子以每种粒0.62mg有效成分的杀菌剂福美双处理。将种子播种在填满从田间取得的沙质壤土的托盘中。重复进行三次试验，每次重复播种25粒种子。托盘在20℃下以12小时光照和12小时黑暗的光照制度连续保存在温室中。本表显示了在播种3天后出苗平均百分比数据。 

    

    表中使用的缩写： 

    Emg＝出苗 

    dEmg＝特定条件下特定变量的差值(见实施例引言部分)