表达系统本申请是申请日为2007年2月1日的中国专利申请200780011276.8
“表达系统”的分案申请。
技术领域
本发明涉及适用于重组多肽的微生物表达的表达系统。
背景技术
从美国专利US6537779知道了基于T7的以完全回文操纵基因序列
为基础的蛋白质表达系统。基于T7的系统存在缺点，因为T7系统的操
作需要噬菌体聚合酶，它通常是通过将表达所需噬菌体聚合酶的λDE3
原噬菌体插入到大肠杆菌宿主株中产生溶原宿主株而提供的。也可通过
用特异性λ转导噬菌体进行侵染而将噬菌体聚合酶传递到细胞中，该特
异性λ转导噬菌体携带了噬菌体聚合酶(例如T7RNA聚合酶)的基因。
λDE3原噬菌体缺少了用于切除原噬菌体以形成裂解噬菌体颗粒所需的
遗传元件。然而，已经证明λDE3溶原宿主株释放了噬菌体颗粒从而引
起了发酵装置中不合需要的侵染。实际上，某些发酵装置操纵基因是不
允许使用λDE3菌株的。
不希望在诱导之前就表达异源蛋白质，因为一些异源蛋白质对宿主
细胞生长和质粒稳定性具有有害影响，这就降低了总产量。为避免这一
点，基于T7的表达系统通常在两种水平上控制异源蛋白质表达。首先，
驱动从T7启动子的表达需要诱导T7RNA聚合酶基因的表达以产生T7
RNA聚合酶。第二，T7启动子本身也需要被诱导。这就增加了操作基
于T7的表达系统的复杂性。
有着大量的具有不同控制和诱导模式的异源蛋白质表达系统，这使
得对感兴趣的蛋白质进行表达系统/发酵过程的选择和优化很大程度上
成为了完全根据经验的过程。这是费时间的以及不合需要的。因此，就
需要这样的系统，它们能够提供改善的表达控制和改善的蛋白质表达水
平，它们不使用噬菌体聚合酶和溶原宿主株。也需要这样的系统，它们
能够提供原核细胞以及真核细胞诸如哺乳动物和酵母细胞中的可诱导
异源表达。
发明内容
根据本发明，提供了基于完全回文操纵基因序列的蛋白质表达系
统，包括：
a)启动子；以及
b)完全回文操纵基因序列；
特征在于启动子不是T7。
本发明的表达系统中可采用的启动子通常是基于宿主RNA聚合酶
的启动子系统，优选基于大肠杆菌RNA聚合酶的启动子系统。可采用的
启动子的例子包括T7A1、T7A2、T7A3、λpL、λpR、lac、lacUV5、trp、
tac、trc、phoA和rrnB。
在根据本发明的表达系统中可采用的操纵基因序列包括lac、gal、
deo和gln。可采用一种或多种完全回文操纵基因序列。在许多优选的实
施方案中，采用了两种完全回文操纵基因序列，最有利的是一种操纵基
因序列位于启动子的下游，并且一种操纵基因序列位于启动子的上游。
当采用两种操纵基因系统时，操纵基因序列优选被间隔开，从而最大程
度控制启动子。在许多实施方案中，间隔85到150个碱基对，优选间隔
90到126个碱基对，最优选间隔91或92个碱基对。在某些实施方案中，
操纵基因序列与转录起始点重叠。
将考虑到的是，操纵基因系统通常会采用合适的阻抑物序列。阻抑
物序列产生阻抑蛋白，例如当使用lac操纵基因时的lacI基因序列。也可
使用其它lac阻抑物序列，例如lacIQ序列可用来增加lac阻抑蛋白的水平。
也可由宿主细胞基因组提供阻抑物序列或者通过使用另外的相容性质
粒来提供。
可将表达系统整合到宿主细胞基因组中，但是优选将其包含在染色
体外元件诸如质粒之中。备选地，可将表达系统掺入到噬菌体或病毒载
体中，使用这些载体将表达系统传递到宿主细胞系统中。可通过现有技
术中的已知方法装配质粒或表达载体。典型地，质粒也包括如下之一或
更多：选择标记，例如赋予抗生素抗性的序列，cer稳定性序列和表达盒。
如果需要所期望的蛋白质分泌，表达系统也可掺入信号序列。
表达的诱导可通过加入诱导物诸如异丙基-β-D-1-硫代半乳糖苷
(IPTG)，IPTG类似物诸如异丁基-C-吡喃半乳糖苷(IBCG)，乳糖或
者蜜二糖。可以使用其它诱导物，在其它地方更充分地描述了所述其它
诱导物(例如参见《操纵基因》(The Operon)，Miller和Renznikoff编
辑(1978))。诱导物可单独使用或者组合使用。合适质粒或表达载体
的构建对于普通技术的科学家来说将是显而易见的。
可采用本发明的表达系统在宿主细胞特别是微生物中表达蛋白。如
本文使用的，“蛋白质”一般是指具有超过大约10个氨基酸的肽或蛋白
质。宿主细胞可以是原核的或真核的。原核细胞的例子包括细菌细胞，
例如革兰氏阴性细菌细胞，包括大肠杆菌、鼠伤寒沙门氏菌、粘质沙雷
氏菌、铜绿假单胞菌以及革兰氏阳性细菌，包括枯草芽孢杆菌。真核细
胞的例子包括酵母，诸如巴斯德毕赤酵母、啤酒糖酵母、多形汉逊酵母、
乳克鲁维酵母、粟酒裂殖酵母。可采用的哺乳动物宿主细胞包括人类细
胞系，诸如人胚肾和PERC.6细胞；鼠细胞系，诸如NS0细胞；以及特别
是仓鼠细胞系，诸如幼仓鼠肾细胞和特别是中国仓鼠卵巢细胞。也可以
采用其它真核宿主细胞，诸如丝状真菌、植物、昆虫、两栖动物细胞或
卵巢物质。优选的宿主细胞是细菌，特别是肠细菌科，优选大肠杆菌，
特别是其B或K12株。
本发明的表达载体通常采用质粒形式，包括启动子和完全回文操纵
基因序列的质粒形成了本发明的另一方面，其中启动子不是T7。质粒可
以是自主复制质粒或者整合型质粒。
对于通过培养重组细胞生产蛋白质特别是重组蛋白质来说，采用本
发明的表达系统是有利的。对于蛋白质的表达来说，将考虑到的是将启
动子和操纵基因序列可操作地连接到编码待表达蛋白质的DNA上。
因此，本发明也提供了生产蛋白质的方法，其包括使表达系统表达，
该表达系统包括：
a)启动子；
b)完全回文操纵基因序列；以及
c)蛋白质的表达盒；
其特征在于启动子不是T7。
如果需要的话，也可以存在一种或多种启动子、操纵基因序列和表
达盒，它们可以是相同的或不同的。
通过现有技术中公知的用于所采用细胞的方法来使表达系统表达。
优选的表达方法包括在生长培养基中培养重组细胞，特别是通过发酵，
然后回收所表达的蛋白质。术语“生长培养基”是指用于生长重组细胞
的营养培养基。在许多实施方案中，采用营养液。用于特定重组细胞的
合适的生长培养基是现有技术中公知的。
附图说明
图1显示蛋白D1.3的基因序列。
图2显示实施例7的hTNFα蛋白积累结果。(*)＝基础表达，未入
诱导物(IPTG)；(**)＝％TCP，％细胞总蛋白质。
图3显示实施例9的菌株CLD038的蛋白质印迹分析。
箭头指示hTNFα带。
泳道6：CLD038：2小时温育(诱导前)
泳道5：CLD038：4小时温育(诱导前)
泳道4：CLD038：IPTG诱导后1小时
泳道3：CLD038：IPTG诱导后2小时
泳道2：CLD038：IPTG诱导后3小时
泳道1：CLD038：IPTG诱导后4小时
泳道7：分子量标准参照物
图4显示实施例11的菌株CLD030的hTNFα生产率分布图。
图5显示实施例15使用的D1.3-A5B7双特异性单链四价双抗体
(bsctDb)基因序列(SEQ ID NO 22)。
图6显示实施例16使用的谷胱甘肽-S-转移酶-3C蛋白酶融合基因序
列(SEQ ID NO 23)。
图7显示实施例16使用的人干扰素α2(IFNα2)基因序列(SEQ ID
NO 24)。
图8显示实施例16使用的人促红细胞生成素(EPO)基因序列(SEQ
ID NO 25)。
图9显示实施例17使用的L-2-卤代链烷酸脱卤素酶(hadL)基因序
列(SEQ ID NO 26)。
图10显示实施例17的L-2-卤代链烷酸脱卤素酶蛋白质的表达和累
积。
箭头指示HadL蛋白质的位置。
泳道1：分子量标准参照物
泳道2：瓶1-CLD075诱导前
泳道3：瓶2-CLC075诱导前
泳道4：瓶1-CLD075，6小时培养物，0.5mM IPTG诱导后3小时
泳道5：瓶2-CLD075，6小时培养物，未诱导
泳道6：瓶1-CLD075，23小时培养物，0.5mM IPTG诱导后20小
时
泳道7：瓶2-CLD075，23小时培养物，未诱导
泳道8：分子量标志物
图11显示实施例18的诱导后，L-2-卤代链烷酸脱卤素酶蛋白质的
表达/累积。
图12显示实施例21使用的HCMV启动子和双重的完全回文lac操
纵基因的DNA序列(SEQ ID NO 33)。
图13显示实施例21使用的IgG Fc序列(SEQ ID NO 34)。
图14显示实施例21的IgG Fc蛋白累积水平。对于诱导的和未诱导
的两者都是n＝4。提供的数据为带有代表1个标准差的误差棒的平均值。
图15显示实施例20使用的克隆序列1的序列(SEQ ID NO 35)。
图16显示实施例20使用的克隆序列2的序列(SEQ ID NO 36)。
图17显示实施例9的hTNFα的累积水平。
泳道1：CLD077诱导后20小时
泳道2：CLD077诱导后3小时
泳道3：CLD077诱导前
泳道4：分子量标志物
图18显示载体pAVE013的质粒图。
具体实施方式
通过下面的实施例但并不限制地说明本发明。
1.pAVE系列载体的产生
载体pAVE011、pAVE012和pAVE013
产生pAVE011的起始载体是pZT7#2.0，根据US 6537779的描述进行
制备。pZT7#2.0具有pAT153载体骨架、cer稳定性序列、tet A/R、感兴
趣基因上游的单一天然lac操纵基因序列以及上游T4转录终止子。使用合
成的寡核苷酸接头通过Nco l、EcoR I和Xba l限制酶位点将T7A3启动子
和双完全回文lac操纵基因克隆到该质粒中。
通过退火寡核苷酸1和2.1，制备接头12.1：
寡核苷酸1(SEQ ID NO 1)
5′CATGTGGGAATTGTGAGCGCTCACAATTCCAAGAACAATCCT
GCACG
寡核苷酸2.1(SEQ ID NO 2)
5′AATTCGTGCAGGATTGTTCTTGGAATTGTGAGCGCTCACAAT
TCCCA
然后将接头作为Nco l/EcoR I片段连接到质粒pZT7#2.0中，转化到克
隆宿主株XL-1Blue MR(Stratagene)中。通过使用Nco I限制酶切消化
初步筛选转化体。通过测序确认序列。将所得质粒命名为pAVE012。
然后通过退火寡核苷酸3和4，将T7A3启动子盒克隆到pAVE012
中：
寡核苷酸3(SEQ ID NO 3)
5′AATTCAAACAAAACGGTTGACAACATGAAGTAAACACGGTA
CGATGTACCGGAATTGTGAGCGCTCACAATTCCCCA
寡核苷酸4(SEQ ID NO 4)
5′CTGGTGGGGGGTTGTGGGCGCTCGCGGTTCCGGTGCGTCGTG
CCGT
GTTTGCTTCGTGTTGTCGGCCGTTTTGTTTG
将退火的寡核苷酸作为Xba l/EcoR I片段连接到质粒pAVE012中，
转化到克隆宿主株XL-1Blue MR(Stratagene)中。通过质粒DNA的限
制酶切消化进行初步筛选。然后通过测序确认序列。将所得质粒命名为
pAVE011。
将人TNFα基因作为Nde I/Xho I片段克隆到该质粒中以产生
pAVE013。PAVE013的质粒图谱示于图18中。这显示了操纵基因和启
动子以及构建中使用的限制酶位点的排列。两个操纵基因都是完全回文
lac操纵基因。RBS是核糖体识别位点。载体包括pAT153载体骨架、cer
稳定性序列、诱导型四环素抗性基因(tet A/R)以及上游T4转录终止
子。
载体pAVE038和pAVE041
产生pAVE038的起始载体是pZT7#2.0，根据US 6537779的描述进行
制备。使用合成的寡核苷酸接头通过EcoR I和Xba l限制酶位点将tac启动
子和单一天然lac操纵基因克隆到该质粒中。
通过退火寡核苷酸11和12，制备接头1112：
寡核苷酸11(SEQ ID NO 5)
5′A ATTTTCTGA A ATGAGCTGTTGACAATTAATCATCGGCTCGG
ATACTGTGTGGAATTGTGAGCGGATAACAATTCCCCA
寡核苷酸12(SEQ ID NO 6)
5′CTAGTGGGGAATTGTTATCCGCTCACAATTCCACACAGTATC
CGAGCC GATGATTAATTGTCAACAGCTCATTTCAGAA
然后将接头作为Xba l/EcoR I片段连接到质粒pZT7#2.0中，转化到克
隆宿主株XL-1Blue MR(Stratagene)中。通过使用Nco I限制酶切消化
初步筛选转化体。通过测序确认序列。将所得质粒命名为pAVE038。
将人TNFα基因作为Nde I/Xho I片段克隆到该质粒中以产生质粒
pAVE041。
载体pAVE037和pAVE040
产生pAVE037的起始载体是pZT7#2.0，根据US 6537779的描述进行
制备。使用合成的寡核苷酸接头通过EcoR I和Xba l限制酶位点将tac启动
子和单一完全回文lac操纵基因克隆到该质粒中。
通过退火寡核苷酸13和14，制备接头1314：
寡核苷酸13(SEQ ID NO 7)
5′AATTTTCTGAAATGAGCTGTTGACAATTAATCATCGGCTCGG
ATACTGT GTGGAATTGTGAGCGCTCACAATTCCCCA
寡核苷酸14(SEQ ID NO 8)
5′CTAGTGGGGAATTGTGAGCGCTCACAATTCCACACAGTATCC
GAGCCG ATGATTAATTGTCAACAGCTCATTTCAGAA
然后将接头作为Xba l/EcoR I片段连接到质粒pZT7#2.0中，转化到克
隆宿主株XL-1Blue MR(Stratagene)中。通过使用Nco I限制酶切消化
初步筛选转化体。通过测序确认序列。将所得质粒命名为pAVE037。
将人TNFα基因作为Nde I/Xho I片段克隆到该质粒中以产生
pAVE040。
载体pAVE028和pAVE030
产生pAVE028的起始载体是pAVE012。通过退火寡核苷酸5和6，
将T7A3启动子盒克隆到pAVE012中：
寡核苷酸5(SEQ ID N09)
5′AATTCGAAACAAAACGGTTGACAACATGAAGTAAACACGGT
ACGATGTACCGGAATTGTGAGCGCTCACAATTCCCCA
寡核苷酸6(SEQ ID NO 10)
5′CTGGTGGGGGGTTGTGGGCGCTCGCGGTTCCGGTGCGTCGTG
CCGT GTTTGCTTCGTGTTGTCGGCCGTTTTGTTTCG
将退火的寡核苷酸作为Xba l/EcoR I片段连接到质粒pAVE012中，转
化到克隆宿主株XL-1Blue MR(Stratagene)中。通过限制酶切消化质粒
DNA进行初步筛选。然后通过测序确认序列。将所得质粒命名为
pAVE028。
将人TNFα基因作为Nde I/Xho I片段克隆到该质粒中以产生
pAVE030。
载体pAVE007和pAVE031
产生pAVE007的起始载体是pZT7#2.0，根据US 6537779的描述进行
制备。使用合成的寡核苷酸接头通过EcoR I和Xba l限制酶位点将T7A3
启动子和单一完全回文lac操纵基因克隆到该质粒中。
含有T7A3启动子的接头由寡核苷酸3和4组成。
寡核苷酸3(SEQ ID NO 3)
5′AATTCAAACAAAACGGTTGACAACATGAAGTAAACACGGTA
CGATGTACCGGAATTGTGAGCGCTCACAATTCCCCA
寡核苷酸4(SEQ ID NO 4)
5′CTGGTGGGGGGTTGTGGGCGCTCGCGGTTCCGGTGCGTCGTG
CCGT
GTTTGCTTCGTGTTGTCGGCCGTTTTGTTTG
退火寡核苷酸3和4，然后将形成的接头作为Xba l/EcoR I片段连接到
质粒pZT7#2.0中，转化到克隆宿主株XL-1Blue MR(Stratagene)中。通
过限制酶切消化质粒DNA进行初步筛选。然后通过测序确认序列。将所
得质粒命名为pAVE007。
将人TNFα基因作为Nde I/Xho I片段克隆到该质粒中以产生
pAVE031。
载体pAVE029和pAVE027
产生pAVE029的起始载体是pZT7#2.0，根据US 6537779的充分描
述进行制备。使用合成的寡核苷酸接头通过EcoR I和Xba I限制酶位点
将λpL启动子和单一完全回文lac操纵基因克隆到该质粒中。
通过退火寡核苷酸7和8，制备接头78：
寡核苷酸7(SEQ ID NO 11)
5′AATTATCTCTGGCGGTGTTGACATAAATACCACTGGCGGTGA
TACTGAGCGGAATTGTGAGCGCTCACAATTCCCCA
寡核苷酸8(SEQ ID NO 12)
5′CTAGTGGGGAATTGTGAGCGCTCACAATTCCGCTCAGTATCA
CCGCCA GTGGTATTTATGTCAACACCGCCAGAGAT
然后将接头作为Xba l/EcoR I片段连接到质粒pZT7#2.0中，转化到克
隆宿主株XL-1Blue MR(Stratagene)中。通过使用Nco I限制酶切消化
初步筛选转化体。通过测序确认序列。将所得质粒命名为pAVE029。
将人TNFα基因作为Nde I/Xho I片段克隆到该质粒中以产生
pAVE027。
载体pAVE043和pAVE044
产生pAVE043的起始载体是pAVE012。通过退火寡核苷酸17和
18，将tac启动子盒克隆到pAVE012中：
寡核苷酸17(SEQ ID NO 37)
5′AATTTTCTGAAATGAGCTGTTGACAATTAATCATCGGCTCGT
ATAATGTG TGGAATTGTGAGCGCTCACAATTCCCCA
寡核苷酸18(SEQ ID NO 38)
5′CTAGTGGGGAATTGTGAGCGCTCACAATTCCACACATTATAC
GAGCCG ATGATTAATTGTCAACAGCTCATTTCAGAA
将退火的寡核苷酸作为Xba l/EcoR I片段连接到质粒pAVE012中，转
化到克隆宿主株XL-1Blue MR(Stratagene)中。通过限制酶切消化质粒
DNA进行初步筛选。然后通过测序确认序列。将所得质粒命名为
pAVE043。
将人TNFα基因作为Nde I/Xho I片段克隆到该质粒中以产生
pAVE044。
载体pAVE034和pAVE035
产生pAVE034的起始载体是pAVE012。通过退火寡核苷酸9和10，
将λpL启动子盒克隆到pAVE012中：
寡核苷酸9(SEQ ID NO 39)
5′AATTCATCTCTGGCGGTGTTGACATAAATACCACTGGCGGTG
ATACT GAGCGGAATTGTGAGCGCTCACAATTCCCCA
寡核苷酸10(SEQ ID NO 40)
5′CTAGTGGGGAATTGTGAGCGCTCACAATTCCGCTCAGTATCA
CCGCCAGTGGTATTTATGTCAACACCGCCAGAGATG
将退火的寡核苷酸作为Xba l/EcoR I片段连接到质粒pAVE012中，转
化到克隆宿主株XL-1Blue MR(Stratagene)中。通过限制酶切消化质粒
DNA进行初步筛选。然后通过测序确认序列。将所得质粒命名为
pAVE034。
将人TNFα基因作为Nde I/Xho I片段克隆到该质粒中以产生
pAVE035。
载体VE020和AVE021
产生pAVE020的起始载体是pAVE012。通过退火寡核苷酸7和8，
将λpL启动子盒克隆到pAVE012中：
寡核苷酸7(SEQ ID NO 11)
5′AATTATCTCTGGCGGTGTTGACATAAATACCACTGGCGGTGA
TACTGAGCGGAATTGTGAGCGCTCACAATTCCCCA
寡核苷酸8(SEQ ID NO 12)
5′CTAGTGGGGAATTGTGAGCGCTCACAATTCCGCTCAGTATCA
CCGCCA GTGGTATTTATGTCAACACCGCCAGAGAT
将退火的寡核苷酸作为Xba l/EcoR I片段连接到质粒pAVE012中，转
化到克隆宿主株XL-1Blue MR(Stratagene)中。通过限制酶切消化质粒
DNA进行初步筛选。然后通过测序确认序列。将所得质粒命名为
pAVE020。
将人TNFα基因作为Nde I/Xho I片段克隆到该质粒中以产生
pAVE021。
载体pAVE016和pAVE017
产生pAVE016的起始载体是pAVE012。通过退火寡核苷酸15和
16，将tac启动子盒克隆到pAVE012中：
寡核苷酸15(SEQ ID NO 13)
5′AATTCCTGAAATGAGCTGTTGACAATTAATCATCGGCTCGTA
TAATGTG TGGAATTGTGAGCGCTCACAATTCCCCA
寡核苷酸16(SEQ ID NO 14)
5′CTAGTGGGGAATTGTGAGCGCTCACAATTCCACACATTATAC
GAGCCG ATGATTAATTGTCAACAGCTCATTTCAGG
将退火的寡核苷酸作为Xba l/EcoR I片段连接到质粒pAVE012中，转
化到克隆宿主株XL-1Blue MR(Stratagene)中。通过限制酶切消化质粒
DNA进行初步筛选。然后通过测序确认序列。将所得质粒命名为
pAVE016。
将人TNFα基因作为Nde I/Xho I片段克隆到该质粒中以产生
pAVE017。
载体pAVE049
产生pAVE049的起始载体是pAVE017。不改变tac启动子盒。为
增加两个操纵基因之间91到124个碱基对的间隔，克隆进了EcoR I接
头。这是由寡核苷酸19和20组成的。
寡核苷酸19(SEQ ID NO 15)
5′AATTCACCGGTGTACAGTCATGTACAACCGGTG
寡核苷酸20(SEQ ID NO 16)
5′AATTCACCGGTTGTACATGACTGTACACCGGTG
通过限制酶切消化质粒DNA进行初步筛选。然后通过测序确认序
列。将所得质粒命名为pAVE049。
载体pAVE046
产生分泌载体pAVE046的起始载体是pAVE027。将A D1.3Fab表
达盒(图1，SEQ ID NO 17)作为Nde I-BamH I片段进行克隆。通过限
制酶切消化质粒DNA进行初步筛选。然后通过测序确认序列。将所得
质粒命名为pAVE046。
表1：pAVE载体汇总
2.重组菌株的产生
通过用下面表2中描述的质粒电穿孔，转化大肠杆菌W3110(获自
美国典型培养物保藏中心菌株ATCC27325)和BL21(获自EMD生物
科学公司(EMD Biosciences Inc)，圣地亚哥，美国)。纯化所得重组
菌株，保持在-80℃的甘油原液中。
表2：所构建的重组菌株
比较例1
用于产生带有T7A3启动子而不带任何操纵基因的质粒的起始载体
是pZT7#2.0。使用合成的寡核苷酸接头通过EcoR I和Xba I限制酶位点
将T7A3启动子克隆到该质粒中。
通过退火寡核苷酸21和22，制备接头2122：
寡核苷酸21(SEQ ID NO 18)
5′AATTCGAAACAAAACGGTTGACAACATGAAGTAAACACGGT
ACGATGTACCACATGAAACGACAGTGAGTCA
寡核苷酸22(SEQ ID NO 19)
5′CTAGTGACTCACTGTCGTTTCATGTGGTACCTCGTACCGTGTT
TACTTCATGTTGTCAACCGTTTTGTTTCG
然后将接头作为Xba l/EcoR I片段连接到质粒pZT7#2.0中，转化到
克隆宿主株XL-1Blue MR(Stratagene)中。通过限制酶切消化质粒DNA
进行初步筛选。然后通过测序确认序列。通过限制酶切消化和测序筛选
到了82个克隆。
用正确的T7A3启动子序列没有鉴定到克隆(所有序列中都含有突
变)。这表明含有这种强力组成型启动子的质粒的构建是存在问题的。
比较例2
用于产生带有受单一天然lac操纵基因序列控制的T7A3启动子的
质粒的起始载体是pZT7#2.0。使用合成的寡核苷酸接头通过EcoR I和
Xba I限制酶位点将T7A3启动子和天然lac操纵基因(LacO)序列克隆
到该质粒中。
通过退火寡核苷酸23和24，制备接头2324：
寡核苷酸23(SEQ ID NO 20)
5′AATTCGAAACAAAACGGTTGACAACATGAAGTAAACACGGT
ACGATGTACCGGAATTGTGAGCGGATAACAATTCCCCA
寡核苷酸24(SEQ ID NO 21)
5′CTAGTGGGGAATTGTTATCCGCTCACAATTCCGGTACATCGT
ACCGTGTTTACTTCATGTTGTCAACCGTTTTGTTTCG
然后将接头作为Xba l/EcoR I片段连接到质粒pZT7#2.0中，转化到
克隆宿主株XL-1Blue MR(Stratagene)中。通过限制酶切消化质粒DNA
进行初步筛选。然后通过测序确认序列。通过限制酶切消化和测序筛选
到了94个克隆。用正确的序列再一次没有鉴定到克隆。然而，发现了
一个克隆具有接近完整的序列。这个克隆在序列的大约位置-37处含有
额外的“G”。很难指定突变的确切位置，因为期望的序列在这个区域
含有-GG-。将人TNFα基因作为Nde I/Xho I片段克隆到带有接近完整序
列的质粒中。从克隆宿主株株XL-Blue MR(Stratagene)中筛选到了20
个克隆。有一个是没有突变(除了上述额外的“G”)的阳性克隆。将
该质粒转化到生产宿主(ATCC27325)，再次测序质粒。
这表明质粒在T7A3启动子和人TNFα序列两者中都含有严重突变，
表明T7A3启动子的使用即使在天然lac操纵基因序列的控制之下也导
致质粒不稳定。
实施例3
从-80℃冷冻机中取出CLD032小瓶，让它解冻。将10μl的解冻甘
油原液接种到补充四环素(10μg/ml)和葡萄糖(1g/L)的5ml LB培养
液(LB，5g/L酵母提取物(Oxoid)，10g/L胰化蛋白胨(Oxoid)和5g/L
氯化钠)中。在37℃的定轨摇床中温育16小时。然后使用500μl的该
培养物接种含有50ml的LB培养液(组成如上所述)的两个250ml锥形
瓶。将锥形瓶在定轨摇床中37℃、200rpm进行温育。监测生长直到
OD600＝0.5-0.7。这时用0.05mM终浓度的IPTG(异丙基-β-D-1-硫代吡喃
半乳糖苷)诱导一个锥形瓶，而第二个锥形瓶不诱导，留着监测基础表
达。在上述条件下继续温育，在此期间取样进行生长的测定、细菌细胞
中hTNFα累积的测定。使用光密度扫描取样细菌的全细胞溶胞产物的胶
体蓝染色的SDS-PAGE胶来确定hTNFα的累积水平。结果汇总在下面的
表3中。
表3
(*)：TCP＝细胞总蛋白质
一并考虑比较例1和2以及实施例3提供的数据，证明使用单一完
全回文操纵基因序列令人惊讶地实现了强力T7A3启动子的有效控制。
这是完全预料不到的，因为已知的是单一天然操纵基因的使用(比较例
2)不会提供足够的基础控制来允许建立稳定的重组生产菌株。用单一
完全回文控制系统在使用相当低浓度的诱导物进行诱导时就获得了高
的产物累积水平。尽管观察到了基础表达(没有诱导物时)，但是显然
仅仅是在显著延长温育(24小时)之后的。
实施例4
从-80℃冷冻机中取出CLD018小瓶，让它们解冻。将10μl的解冻
甘油原液接种到补充四环素(10μg/ml)和葡萄糖(1g/L)的5ml LB培
养液(LB，5g/L酵母提取物(Oxoid)，10g/L胰化蛋白胨(Oxoid)和
5g/L氯化钠)中。在37℃的定轨摇床中温育种子培养物16小时。然后
使用500μl的种子培养物接种含有50ml的LB培养液(组成如上所述)
的250ml锥形瓶。将锥形瓶在定轨摇床中37℃、200rpm进行温育。监
测生长直到OD600＝0.5-0.7。这时用0.05mM和1mM终浓度的IPTG(异
丙基-β-D-1-硫代吡喃半乳糖苷)诱导锥形瓶。也留下锥形瓶不诱导，在
上述条件下继续锥形瓶的温育，在此期间取样进行生长的测定、细菌细
胞中hTNFα累积的测定。使用光密度扫描取样细菌的全细胞溶胞产物的
胶体蓝染色的SDS-PAGE胶来确定hTNFα的累积水平。结果汇总在下面
的表4中。
表4
该数据证明，强力T7A3启动子的进一步控制能够使用间隔91bp
的两个完全回文操纵基因序列来实现。与使用单一完全回文操纵基因控
制阻抑所获得的相比，基础表达(没有诱导物时)已经显著降低了。与
US6537779的T7系统相比，使用双重完全回文序列所获得的基础表达
的控制是预料不到的，所述T7系统的基础表达控制需要两种不同的控
制元件。在本实施例中，基础表达的控制是在大肠杆菌RNA聚合酶的
高背景中实现的。
实施例5
从-80℃冷冻机中取出CLD026小瓶，让它们解冻。将10μl的解冻
甘油原液接种到补充四环素(10μg/ml)和葡萄糖(1g/L)的5ml LB培
养液(LB，5g/L酵母提取物(Oxoid)，10g/L胰化蛋白胨(Oxoid)和
5g/L氯化钠)中。在37℃的定轨摇床中温育16小时。然后使用500μl
的该培养物接种含有50ml的LB培养液(组成如上所述)的250ml锥形
瓶。将锥形瓶在定轨摇床中37℃、200rpm进行温育。监测生长直到
OD600＝0.5-0.7。这时用0.05mM和0.005mM终浓度的IPTG(异丙基
-β-D-1-硫代吡喃半乳糖苷)诱导锥形瓶。也留下锥形瓶不诱导，在上述
条件下继续温育，在此期间取样进行生长的测定、细菌细胞中hTNFα
累积的测定。使用光密度扫描取样细菌的全细胞溶胞产物的胶体蓝染色
的SDS-PAGE胶来确定hTNFα的累积水平。结果汇总在下面的表5中。
表5
结果证明，两个完全回文操纵基因序列之间1bp间隔的变化(从
91到92bp)没有不利影响所获得的基础表达和最终累积水平的表现。
出乎意料的是，降低IPTG浓度10倍(从0.05mM到0.005mM)没有显
著降低诱导的生产率。
实施例6
从-80℃冷冻机中取出CLD042和CLD043小瓶，让它们解冻。将
10μl的每瓶解冻甘油原液分别接种到补充四环素(10μg/ml)和葡萄糖
(1g/L)的每份2×5ml LB培养液(LB，5g/L酵母提取物(Oxoid)，
10g/L胰化蛋白胨(Oxoid)和5g/L氯化钠)中。在37℃的定轨摇床中
温育16小时。然后使用500μl的这些培养物分别接种含有50ml的LB
培养液(组成如上所述)的250ml锥形瓶。将锥形瓶在定轨摇床中37
℃、200rpm进行温育。监测生长直到OD600＝0.5-0.7。这时用0.5mM终
浓度的IPTG(异丙基-β-D-1-硫代吡喃半乳糖苷)诱导锥形瓶。也留下
含有每种菌株培养物的锥形瓶不诱导，在上述条件下继续温育，在此期
间取样进行生长的测定、细菌细胞中hTNFα累积的测定。使用光密度扫
描取样细菌的全细胞溶胞产物的胶体蓝染色的SDS-PAGE胶来确定
hTNFα的累积水平。在取样细菌的SDS-PAGE之后，通过蛋白质印迹(使
用抗hTNFα抗体)比较温育20小时后的CLD042和CLD043的未诱导
培养物中hTNFα的基础累积水平。结果汇总在下面的表6中。
表6
(*)＝蛋白质印迹上的hTNFα带的扫描。将CLD042的强度扫描数据对
CLD043的强度扫描数据进行标准化。
结果证明，单一的完全回文操纵基因序列能够用来降低基础表达
(没有诱导物时)四倍，而没有不利影响tac启动子系统的诱导的生产
率。
实施例7
从-80℃冷冻机中取出CLD019小瓶，让它解冻。将10μl的解冻甘
油原液接种到补充四环素(10μg/ml)和葡萄糖(1g/L)的5ml LB培养
液(LB，5g/L酵母提取物(Oxoid)，10g/L胰化蛋白胨(Oxoid)和5g/L
氯化钠)中。在37℃的定轨摇床中温育16小时。然后使用500μl的该
培养物接种含有50ml的LB培养液(组成如上所述)的250ml锥形瓶。
将锥形瓶在定轨摇床中37℃、200rpm进行温育。监测生长直到
OD600＝0.5-0.7。这时用0.5mM、0.1mM、0.05mM和0.005mM终浓度的
IPTG(异丙基-3-D-1-硫代吡喃半乳糖苷)诱导锥形瓶。也留下锥形瓶不
诱导，在上述条件下继续温育，在此期间取样进行生长的测定、细菌细
胞中hTNFα累积的测定。使用光密度扫描取样细菌的全细胞溶胞产物的
胶体蓝染色的SDS-PAGE胶来确定hTNFα的累积水平。结果示于图2
中。
图2显示的数据证明，tac启动子与双重完全回文操纵基因序列的组
合产生了这样一种系统，其中的表达速率可被用来诱导的IPTG的浓度直
接调节。可采用这样的系统来调节异源蛋白质的表达，例如最大化可溶
形式蛋白质的累积或者避免异源蛋白质分泌所可能具有的对重组细胞
生长和生产率的有害影响这一问题。
实施例8
从-80℃冷冻机中取出小瓶CLD030，让它解冻。将10μl的解冻甘油
原液接种到补充四环素(10μg/ml)和葡萄糖(1g/L)的5ml LB培养液
(LB，5g/L酵母提取物(Oxoid)，10g/L胰化蛋白胨(Oxoid)和5g/L
氯化钠)中。在37℃的定轨摇床中温育16小时。然后使用500μl的该
培养物接种含有50ml的LB培养液(组成如上所述)的250ml锥形瓶。
将锥形瓶在定轨摇床中37℃、200rpm进行温育。监测生长直到
OD600＝0.5-0.7。这时用0.005mM终浓度的IPTG(异丙基-β-D-1-硫代吡
喃半乳糖苷)诱导锥形瓶，同时留下另一个锥形瓶不诱导，在上述条件
下继续温育，在此期间取样进行生长的测定、细菌细胞中hTNFα累积的
测定。使用光密度扫描取样细菌的全细胞溶胞产物的胶体蓝染色的
SDS-PAGE胶来确定hTNFα的累积水平。结果汇总在下面的表7中。
表7
时间(小时)
hTNFα的累积水平(％TCP)
4
2
6
5
8
9
24
12
24(基础的，无IPTG)
未检出
表7所示数据清楚地显示，使用单一的完全回文操纵基因序列可令
人惊讶地获得非常强力的λpL启动子。使用单一的完全回文控制系统可
获得高的产物累积水平。
实施例9
从-80℃冷冻机中取出CLD021和CLD038小瓶，让它们解冻。将
10μl的每瓶解冻甘油原液分别接种到补充四环素(10μg/ml)和葡萄糖
(1g/L)的5ml LB培养液(LB，5g/L酵母提取物(Oxoid)，10g/L胰
化蛋白胨(Oxoid)和5g/L氯化钠)中。在37℃的定轨摇床中温育16
小时。然后使用500μl的该培养物接种含有50ml的LB培养液(组成如
上所述)的250ml锥形瓶。将锥形瓶在定轨摇床中37℃、200rpm进行
温育。监测生长直到OD600＝0.5-0.7。这时用1mM终浓度的IPTG(异丙
基-β-D-1-硫代吡喃半乳糖苷)诱导锥形瓶，同时留下第二个锥形瓶不诱
导，在上述条件下继续温育，在此期间取样进行生长的测定、细菌细胞
中hTNFα累积的测定。在取样细菌的全细胞溶胞产物的SDS-PAGE之
后，使用胶体蓝染色的SDS-PAGE胶和蛋白质印迹分析(使用抗hTNFα
抗体)确定hTNFα的累积。数据汇总在表8中。菌株CLD038的蛋白质
印迹分析示于图3中。
表8
这些结果证明，间隔91bp或92bp的带有λpL启动子的双重完全回
文操纵基因序列的组合产生了非常严重的阻抑。蛋白质印迹表明，未检
测到靶蛋白的基础表达。在诱导时获得了低水平的表达水平。这些结果
是完全预料不到的，因为已知的是λpL启动子是极其强力的启动子。这
样的系统可用于例如引导对宿主细胞有高毒性的蛋白质的表达。当受控
表达是有利的时候，它也可用于膜蛋白的表达和插入。
实施例10
从-80℃冷冻机中取出CLD028和CLD035小瓶，让它们解冻。将
10μl的每瓶解冻甘油原液分别接种到补充四环素(10μg/ml)和葡萄糖
(1g/L)的每份2×5ml LB培养液(LB，5g/L酵母提取物(Oxoid)，
10g/L胰化蛋白胨(Oxoid)和5g/L氯化钠)中。在37℃的定轨摇床中
温育16小时。然后使用500μl的这些培养物分别接种含有50ml的LB
培养液(组成如上所述)的250ml锥形瓶。将锥形瓶在定轨摇床中37
℃、200rpm进行温育。监测生长直到OD600＝0.5-0.7。这时用1mM终浓
度的IPTG(异丙基-β-D-1-硫代吡喃半乳糖苷)诱导锥形瓶，在上述条
件下继续温育，在此期间取样进行生长的测定、细菌细胞中hTNFα累积
的测定。使用光密度扫描取样细菌的全细胞溶胞产物的胶体蓝染色的
SDS-PAGE胶来确定hTNFα的累积水平。结果汇总在下面的表9中。
表9
这些数据结合前面实施例4和5所示数据一起来看，表明能够使用
大肠杆菌K-12和B菌株两者。
实施例11
通过将下面描述的每种菌株的200μl甘油原液加入到含有补充了
15μg/ml四环素的200mL LB培养液(LB，5g/L酵母提取物(Oxoid)，
10g/L胰化蛋白胨(Oxoid)和5g/L氯化钠)的2.0L带挡板的摇瓶中而
产生发酵接种物。在带有250rpm搅拌的摇床-培养箱中于37℃生长接种
物12小时。使用200ml摇瓶接种物来接种含有10L分批生长培养基的
15L工作体积的发酵罐。在下面描述的工作条件下进行发酵。将温度控
制在37℃，通过35％(w/v)氢氧化铵的自动添加将pH控制在6.8。
溶解氧张力(dOT)设定点是30％空气饱和度，通过发酵罐搅拌器
速度(从最小的250rpm直到最大的1500rpm)的自动调节来控制，氧
气自动补充到入口气流中。到发酵罐容器的气流始终是10L/min。发酵
罐中的压力保持在50和200毫巴之间。
以分批模式进行发酵，直到碳源(即甘油)耗尽，它发生在接种后
大约10小时，特征在于dOT的急剧升高。在碳源耗尽时通过以每小时每
升培养基11g甘油的进料速度加入甘油/氯化镁进料来起始补料分批发
酵。一旦发酵中的生物量水平达到OD600＝50-60，就通过加入IPTG到
0.5mM终浓度而进行诱导。在诱导后继续补料分批阶段12小时。在收获
时取样确定生物量水平(OD600)和hTNFα累积(％TCP)/hTNFα滴度(g/L)
(胶体蓝染色的SDS-PAGE胶)。
分批生长培养基的组成提供在表10中。
表10
成分
终浓度[g/L]、[mg/L]和[ml/L]净化水
(NH4)2SO4
14.0
甘油
35.0
酵母提取物(Becton Dickinson)
20.0
KH2PO4
2.0
K2HPO4
16.5
柠檬酸
7.5
MgSO4.7H2O
2.47
H3PO4
1.5ml/L
CaCl2.2H2O
0.294
消泡剂AF204
0.2ml/L
四环素
15mg/L
FeSO4.7H2O
114mg/L
ZnSO4.7H2O
29mg/L
MnSO4.H2O
17mg/L
Na2MoO4.2H2O
9mg/L
CuSO4.5H2O
4mg/L
H3.BO3
12mg/L
甘油/氯化镁进料的组成提供在表11中。
表11
结果汇总在表12中。菌株CLD030的hTNFα生产率分布图示于图4
中。
表12
数据清楚地证明了系统用于制备异源蛋白质的有用性。使用简单的
普通优化的发酵和诱导工艺获得了高的产物滴度。如图4中例举的生产
率分布图所证实的，可利用质粒pAVE027的控制特征来最大化异源蛋
白质的生产，特别是需要控制表达以最大化分泌的蛋白质。
实施例12
从-80℃冷冻机中取出CLD050小瓶，让它解冻。将10μl的解冻甘
油原液接种到补充四环素(10μg/ml)和葡萄糖(1g/L)的5ml LB培养
液(LB，5g/L酵母提取物(Oxoid)，10g/L胰化蛋白胨(Oxoid)和5g/L
氯化钠)中。在37℃的定轨摇床中温育16小时。然后使用500μl的该
培养物接种含有50ml的LB培养液(组成如上所述)的250ml锥形瓶。
将锥形瓶在定轨摇床中37℃、200rpm进行温育。监测生长直到
OD600＝0.5-0.7。这时用0.05mM终浓度的IPTG(异丙基-β-D-1-硫代吡喃
半乳糖苷)诱导锥形瓶，同时留下另一锥形瓶不诱导，在上述条件下继
续温育，在此期间取样进行生长的测定、细菌细胞中hTNFα累积的测定。
使用光密度扫描取样细菌的全细胞溶胞产物的胶体蓝染色的SDS-PAGE
胶来确定hTNFα的累积水平。结果汇总在下面的表13中。
表13
诱导后时间(小时)
hTNFα(％TCP)的累积水平
4
16
24(基础的，无IPTG)
未检出
令人惊讶的是，当间隔增加时，双重完全回文操纵基因序列是起作
用的。例如可以改变双重完全回文的间隔以实现对其它启动子的有效控
制。
实施例13
从-80℃冷冻机中取出CLD048小瓶，让它解冻。将10μl的解冻甘
油原液接种到补充四环素(10μg/ml)和葡萄糖(1g/L)的5ml LB培养
液(LB，5g/L酵母提取物(Oxoid)，10g/L胰化蛋白胨(Oxoid)和5g/L
氯化钠)中。在37℃的定轨摇床中温育16小时。然后使用500μl的该
培养物接种含有50ml的LB培养液(组成如上所述)的250ml锥形瓶。
将锥形瓶在定轨摇床中37℃、200rpm进行温育。监测生长直到
OD600＝0.5-0.7。这时用0.1mM终浓度的IPTG(异丙基-β-D-1-硫代吡喃
半乳糖苷)诱导锥形瓶，在上述条件下再继续温育2小时。然后收获细
胞和剩余的没有细胞的生长培养基。进一步进行所收获细胞的渗透压休
克细胞分级分离以分离含有蛋白质的细胞组分，它们是分布在可溶性大
肠杆菌周质组分中的。参考用纯化的活性D 1.3Fab所制备的标准曲线，
通过确定ELISA分析中D1.3Fab与溶菌酶(抗原)的结合来评估可溶
性周质提取物和残余生长培养基中生物活性D1.3Fab的累积。大肠杆菌
周质和残余生长培养基(因为物质从周质泄漏到了生长培养基中)中生
物活性D1.3Fab的累积示于表14中。将周质和残余生长培养基中的D 1.3
Fab的累积标准化为“每单位生物量每升培养物的μg活性物质(OD600)”。
表14
该系统所提供的控制使得能够高水平分泌异源蛋白质，特别是需要
复杂的二硫键形成的那些蛋白质的，有用性被大肠杆菌周质中高水平生
物活性D1.3Fab的分泌和累积清楚地例证。此外，如何才能使用补料分
批发酵(例如前面实施例11或下面的实施例14中所描述的)来高产率
地制备这样的蛋白质，这对于本领域技术人员来说将是明确的。
实施例14
使用CLD048重复实施例11所描述的发酵过程。一旦发酵物中的生
物量水平达到OD600＝大约50，就通过加入IPTG到0.15mM终浓度进行诱
导。在诱导后继续补料分批阶段35-45小时。然后收获细胞和剩余的不含
细胞的生长培养基。进一步进行所收获细胞的渗透压休克细胞分级分离
以分离含有蛋白质的细胞组分，它们是分布在可溶性大肠杆菌周质组分
中的。参考用纯化的活性D1.3Fab所制备的标准曲线，通过确定ELISA
分析中D1.3Fab与溶菌酶(抗原)的结合来评估可溶性周质提取物和残
余生长培养基中生物活性D1.3Fab的累积。将周质和残余生长培养基中
的D1.3Fab的累积标准化为“每升培养物的mg活性物质”。
大肠杆菌周质和残余生长培养基(因为物质从周质泄漏到了生长培
养基中)中生物活性D1.3Fab的累积示于表15中。
表15
使用表达系统证明生物活性D 1.3Fab的高水平分泌。
实施例15
设计了合成的双特异性单链四价双抗体(diabody)(bsctDb)，其
中将来自D 1.3(抗溶菌酶)和A5B7(抗-CEA(癌胚抗原))的轻链可
变区和重链可变区连接在单一的多肽链上。该分子的DNA序列示于图5
中(SEQ ID NO 22)。将它作为Nde I/Not I片段克隆到已经用Nde I和
Not I消化过的pAVE046中。通过限制酶切消化筛选重组质粒，通过测
序确认。将所得质粒命名为pAVE078。将pAVE078转化到大肠杆菌
W3110中以制备CLD073，将它纯化并保藏在-80℃的甘油原液中。
从-80℃冷冻机中取出CLD073小瓶，让它解冻。将10μl的解冻甘
油原液接种到补充四环素(10μg/ml)和葡萄糖(1g/L)的5ml LB培养
液(LB，5g/L酵母提取物(Oxoid)，10g/L胰化蛋白胨(Oxoid)和5g/L
氯化钠)中。在37℃的定轨摇床中温育16小时。然后使用500μl的该
培养物接种含有50ml的LB培养液(组成如上所述)的两个250ml锥形
瓶。将锥形瓶在定轨摇床中37℃、200rpm进行温育。监测生长直到
OD600＝0.5-0.7。这时用0.5mM或0.1mM终浓度的IPTG(异丙基-β-D-1-
硫代吡喃半乳糖苷)诱导锥形瓶，在上述条件下再继续温育20小时。
然后收获细胞和剩余的没有细胞的生长培养基。进一步进行所收获细胞
的渗透压休克细胞分级分离以分离含有蛋白质的细胞组分，它们是分布
在可溶性大肠杆菌周质组分中的。通过确定竞争性ELISA分析中抗-CEA
单克隆抗体与CEA(抗原)的结合抑制以及通过竞争性ELISA分析中
抗溶菌酶Fab抗体片段与溶菌酶(抗原)的结合来评估周质提取物和残
余生长培养基中生物活性D1.3-A5B7bsctDb的表达、分泌、折叠和累积。
获得的数据表明，在诱导结束时大多数的D1.3-A5B7bsctDb分布在
残余生长培养基中(从周质泄漏)。该数据(竞争性ELISA中bsctDb
的结合)示于表16中。获得的数据证明，来自0.5mM IPTG诱导的培养
物的残余生长培养基样品就完全抑制了竞争性ELISA分析中抗-CEA和
抗溶菌酶抗体两者的结合。来自0.1mM IPTG诱导的培养物的残余生长
培养基样品显示了降低的抑制水平，这表明该样品中生物活性
D1.3-A5B7bsctDb的累积水平更低。
表16
使用新表达系统就可以生产使用大肠杆菌很难生产的复杂的多链
异源蛋白质。通过证明使用新表达系统在大肠杆菌中能够生产生物活性
形式的双特异性单链四价双抗体，已经例证了这一点。这进一步例证了
表达系统的有用性。
实施例16
将谷胱甘肽-S-转移酶-3C蛋白酶融合物(GST-3C)作为Nde I/Xho I
片段克隆到用Nde I和Xho I消化过的pAVE011中。插入片段的序列示于
图6中(SEQ ID NO 23)。通过限制酶切消化筛选重组质粒，通过测序
确认。将所得质粒命名为pAVE052。将pAVE052转化到大肠杆菌BL21
中以制备CLD054，将它纯化并保存在-80℃的甘油原液中。
将人干扰素α2(IFNα2)基因作为Nde I/Xho I片段克隆到用Nde I和
Xho I消化过的pAVE011中。插入片段的DNA序列示于图7中(SEQ ID NO
24)。通过限制酶切消化筛选重组质粒，通过测序确认。将所得质粒命
名为pAVE058。将pAVE058转化到大肠杆菌W3110中以制备CLD059，
将它纯化并保存在-80℃的甘油原液中。
将已经进行适于大肠杆菌表达的密码子优化的人促红细胞生成素
(EPO)基因作为Nde I/Xho I片段克隆到用Nde I和Xho I消化过的
pAVE011中。插入序列的DNA序列示于图8中(SEQ ID NO 25)。通过
限制酶切消化筛选重组质粒，通过测序确认。将所得质粒命名为
pAVE061。将pAVE061转化到大肠杆菌W3110中以制备CLD060，将它
纯化并保存在-80℃的甘油原液中。
使用实施例11中描述的培养基和工艺条件进行使用CLD054、
CLD059和CLD060的补料分批发酵。如表19中所述将发酵保持在30℃或
37℃。以分批模式进行发酵，直到碳源(即甘油)耗尽。这时通过加入
含有甘油(714g/L)和硫酸镁(30g/L)的进料来起始补料分批发酵。一
旦发酵中的生物量水平达到OD600＝50-60，就通过加入IPTG进行诱导。
使用的IPTG浓度如表17中所述。在诱导后继续补料分批阶段12-15小时。
在发酵期间取样确定生物量水平(OD600)和蛋白质产物((GST-3C、
IFNα2和EPO)滴度(g/L)，使用取样细菌的全细胞溶胞产物的胶体蓝
染色的SDS-PAGE胶)。
表17
表17中提供的数据进一步证明了系统用于广范围的异源蛋白质生
产的有用性。使用简单的普通发酵工艺加上仅仅控制用于诱导的IPTG
浓度就获得了高的产物滴度。降低工艺过程开发的时间界限对于治疗上
有用的异源蛋白质来说是特别有利的。
实施例17
使用已经用PCR改造过的Nde I和Spe I位点克隆了来自恶臭假单
胞菌(Pseudomonas putida)的L-2-卤代链烷酸脱卤素酶(hadL)基因。
基因序列示于图9中(SEQ ID NO 26)。用Nde I和Spe I消化质粒
pAVE011，对带进行凝胶提取。用Nde I和Spe I消化hadL，对hadL基
因进行凝胶提取，连接到pAVE011中产生pAVE075。使用PCR从质粒
pCN60(ATCC 77101；Nieto C，et al.(1990)基因(Gene)87：145-149)
中拷贝了萨氏假单胞菌(Pseudomonas savastanoi)的复制起点。
使用的引物是：
F37A：序列：5′AGATCTACGCTTATGGGTGCCTTTCC(SEQ ID NO
27)，以及
B29a：序列：5′AGATCTAATACGCAAACCGCCTCTCC(SEQ ID NO
28)。
将PCR产物首先克隆到TOPO TA pCR2.1(Invitrogen)中，然后通
过Bgl II消化克隆到pAVE075中。通过电穿孔将所得质粒pAVE086转
化到恶臭假单胞菌NCIMB 12018中以制备CLD075，将它纯化并保存在
-80℃的甘油原液中。从-80℃冷冻机中取出CLD075小瓶，让它解冻。
将10μl的解冻甘油原液接种到补充四环素(10μg/ml)的5ml LB培养液
(LB，5g/L酵母提取物(Oxoid)，10g/L胰化蛋白胨(Oxoid)和5g/L
氯化钠)中。在37℃的定轨摇床中温育16小时。然后使用500μl的该
培养物接种含有50ml的LB培养液(组成如上所述)的两个250ml锥形
瓶。将锥形瓶在定轨摇床中30℃、200rpm进行温育。监测生长直到
OD600＝0.5-0.7。这时用0.5mM终浓度的IPTG诱导一个锥形瓶，而留下
第二个锥形瓶不诱导以检测基础表达。在上述条件下继续温育，在此期
间取样进行生长的测定和细菌细胞中HadL蛋白质累积的测定。使用光
密度扫描取样细菌的全细胞溶胞产物的胶体蓝染色的SDS-PAGE胶来
确定HadL的累积水平。
HadL蛋白质的表达和累积示于图10中。数据表明，T7A3：DPPS91
表达系统在另一种原核宿主系统中起作用。令人惊讶的是，表达系统在
恶臭假单胞菌中的生产效率与使用大肠杆菌作为宿主系统所观察到的
生产效率是相同的。甚至在没有诱导物的23小时温育之后也未检测到
基础表达。在使用IPTG诱导后获得了恶臭假单胞菌中的高水平蛋白质
表达和累积。
实施例18
使用实施例11中描述的普通大肠杆菌培养基和工艺条件进行使用
恶臭假单胞菌CLD075的补料分批发酵。将发酵保持在30℃和pH 7.0(用
25％氢氧化铵和10％磷酸控制)。以分批模式进行发酵，直到碳源(即
甘油)耗尽。这时通过加入含有甘油(714g/L)和硫酸镁(30g/L)的进
料来起始补料分批发酵。一旦发酵中的生物量水平达到OD600＝50，就通
过加入1mM IPTG(终浓度)进行诱导。在诱导后继续补料分批阶段
12-15小时。在发酵期间取样确定生物量水平(OD600)和HadL蛋白质
累积((％TCP)取样细菌的全细胞溶胞产物的胶体蓝染色的SDS-PAGE
胶)。诱导之后CLD075的生长和HadL蛋白质的表达/累积示于图11
中。
使用表达系统在恶臭假单胞菌中获得了高水平的蛋白质表达和累
积(＞40％TCP)，甚至通过仅仅使用设计来用于大肠杆菌的普通生长
培养基也是如此。
实施例19
将合成的Gal阻抑物基因(大肠杆菌)作为PstI片段克隆到载体
pZen042(如EP 0502637所述)的PstI位点中。鉴别具有顺时针方向和
反时针方向Gal阻抑物基因的克隆。选择具有反时针方向的克隆以产生
pAVE071。
在质粒pZT7#2.0中开始构建Gal启动子和操纵基因序列，所述质
粒根据US6537779所述进行制备。pZT7#2.0具有pAT153载体骨架、cer
稳定性序列、tet A/R、感兴趣基因上游的单一天然lac操纵基因序列以
及上游T4转录终止子。修饰天然Gal操纵基因序列以产生完全回文操
纵基因序列。使用合成的寡核苷酸接头通过EcoR I和Xba I限制酶位点
将它克隆到上述质粒中。通过退火寡核苷酸GalB1和GalB2来制备接头
GalB：
GalB 1(SEQ ID NO 29)
5′AATTCATACCATAAGCCTAATTCTACGAATTATCAGAGTTCT
GGTTACCGGTGTAAGCGCTTACACTGT
GalB2(SEQ ID NO 30)
5′CTAGACAGTGTAAGCGCTTACACCGGTAACCAGAACTCTGAT
AATTCGTAGAATTAGGCTTATGGTATG
然后将接头连接到质粒pZT7#2.0中，作为EcoR I/Xba I片段转化到克
隆宿主株XL-1Blue MR(Stratagene)中。使用AgeI通过限制酶切消化初
步筛选转化体。通过测序确认序列。将hTNFα基因作为NdeI/XhoI片段克
隆到该质粒中。
通过用XmaI和MscI消化并连接到用XmnI和XmaI消化过的
pAVE071中来克隆hTNFα基因和部分的Gal完全回文操纵基因序列。通
过限制酶切消化来筛选克隆中hTNFα基因的存在。
使用合成接头通过StuI和EcoRI位点将每个上游完全回文Gal操纵基
因和Gal启动子克隆到该质粒中。通过退火寡核苷酸GalA1和GalA2来制
备接头GalA：
GalA1(SEQ ID NO 31)：
5′CAATTGTGTAAGCGCTTACACAACTTTATTCCATGTCACACT
TTTCGCATCTTTGTTATGCTATGGTG
GalA2(SEQ ID NO 32)
5′AATTCACCATCGCATAACAAGGATGCGAAAAGTGTGACATG
GAATAAAGTTGTGTAAGCGCTTACACAATTG
用MfeI消化来检测接头的存在，通过测序确认。将该质粒转化到
大肠杆菌菌株W3110中以产生CLD085，将它纯化并保存在-80℃的甘
油原液中。
从-80℃冷冻机中取出CLD085小瓶，让它解冻。将10μl的解冻甘
油原液接种到补充四环素(10μg/ml)的5ml LB培养液(LB，5g/L酵母
提取物(Oxoid)，10g/L胰化蛋白胨(Oxoid)和5g/L氯化钠)中。在
37℃的定轨摇床中温育16小时。然后使用500μl的该培养物接种含有
50ml的LB培养液(组成如上所述)的250ml锥形瓶。将锥形瓶在定轨
摇床中37℃、200rpm进行温育。监测生长直到OD600＝0.5-0.7。这时用
10.0mM终浓度的半乳糖诱导锥形瓶。在上述条件下继续温育，在此期
间取样进行生长的测定和细菌细胞中hTNFα累积的测定。在取样细菌的
SDS-PAGE之后，使用蛋白质印迹分析(使用抗-hTNFα抗体)来确定
hTNFα的累积水平。数据提供在图17中。这证明使用完全回文的gal
操纵基因序列结合gal阻抑物基因会导致没有诱导物时的gal启动子的
非常严重的阻抑，同时令人惊讶的是，在加入半乳糖时，仍然保持了诱
导能力。
实施例20
如下构建非整合型酵母载体：
1)将序列1(啤酒糖酵母CYC1启动子的大肠杆菌lac I下游)作为Xho
I片段克隆到Xho I消化的pCR2.1(Invitrogen)中。克隆序列1示于图15
中(SEQ ID NO 35)。
2)将序列2(由啤酒糖酵母MF-α1基因启动子组成，在MF-α1启动子
区的任意一侧带有完全回文lac操纵基因序列，带有蛋白质-抑弹性蛋白
酶蛋白的基因序列，c-myc标记(抑弹性蛋白酶蛋白-cmyc)位于下游)
作为Hind III片段(通过PCR制备)克隆到Hind III消化的步骤1所构建的
质粒中以产生质粒2。克隆序列2示于图16中(SEQ ID NO 36)。
3)从YEp13(ATCC37115)克隆含有LEU2(选择标记基因)和酵母
2μ复制起点的Spe I片段到Spe I消化的质粒2中以产生pAVE091。
通过电穿孔将pAVE091质粒DNA转化到啤酒糖酵母XS95-6C
(ATCC 204688)中，在没有亮氨酸的酵母缺陷培养基上筛选阳性菌落
(Kaiser C，Michaelis S和Mitchel A，酵母遗传学方法，冷泉港实验手
册(Methods in Yeast Genetics，Cold Spring Harbor Laboratory Manual，
1994))。使用同样的培养基进行摇瓶生长研究以确定抑弹性蛋白酶蛋
白-cmyc蛋白质表达。将锥形瓶在定轨摇床中30℃、200rpm进行温育。
将克隆生长到约3的OD，用0.5mM IPTG(终浓度)诱导。在上述条
件下再继续温育16小时，在此期间取样测定生长和分泌到生长培养基
中的抑弹性蛋白酶蛋白-cmyc蛋白质。按照Wiedow O，et al，J Biol Chem.
(1990)265(25)：14791-5所述，使用弹性蛋白酶抑制酶试验来确定分
泌到残余生长培养基中的抑弹性蛋白酶蛋白-cmyc。IPTG诱导后4小时，
生长培养基中有30mg/L的活性抑弹性蛋白酶蛋白蛋白质。这证明本发
明的表达系统在酵母中是有效的。
实施例21
合成含有组成型人巨细胞病毒(hCMV)启动子的DNA片段，启动
子侧接双重的完全回文lac操纵基因序列。将它克隆到表达IgG Fc蛋白
质的表达载体中。将所得质粒命名为pAVE081，它源自pCMV-Script
(Stratagene)，含有hCMV启动子，启动子侧接Nde I/Nhe I片段上的
双重的完全回文lac操纵基因序列，载体的多克隆位点中带有IgG Fc
DNA序列。HCMV启动子和双重的完全回文lac操纵基因的DNA序列
示于图12中(SEQ ID NO 33)。IgG Fc蛋白质的DNA序列示于图13
中(SEQ ID NO 34)。如现有技术中所充分描述的那样进行了表达IgG Fc
蛋白质的pAVE081和表达lac阻抑物的pCMVlacI(Stratagene)的瞬时
共转染，以确定在IPTG诱导型hCMV启动子-双重的完全回文lac操纵
基因表达系统的控制之下能否表达IgG Fc蛋白质。
将2ml的每毫升1.5x105个活细胞的中国仓鼠卵巢(CHO细胞系
ECACC 85050302，适于在无血清培养基中悬浮生长)悬浮培养物加入
到6孔组织培养平板的每个孔中。然后将6孔组织培养平板在5％CO2
的37℃湿润培养箱中温育过夜(16小时)，然后制备转染混合物，每
孔含有2μg的pAVE081DNA与等量pCMVlacI(Stratagene)DNA、6μl
的转染试剂和94μl的生长培养基。将100μl的转染混合物加入到含有
CHO细胞的每个孔中。然后将6孔组织培养平板在5％CO2的37℃湿润
培养箱中温育。为确定表达/分泌进入生长培养基中的IgG Fc的水平，
用5mM IPTG(终浓度)诱导一组孔(第2天)，留下一组孔不诱导。
在第三天，对用IPTG诱导的一组孔和留下未诱导的那些孔进行取样
(IPTG诱导后和未诱导的)。如现有技术中所公知的那样通过ELISA
确定由CHO细胞所表达和分泌到生长培养基中的IgG Fc蛋白质。所获
得的数据示于图14中。
数据清楚地证明了表达系统的广泛有用性。表达系统可用于控制典
型地用在哺乳动物表达系统中的强力组成型启动子诸如hCMV启动子，
以便在哺乳动物细胞中以可控制的、可诱导的方式来表达蛋白质。