君白菊组织培养快速繁殖方法.pdf

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摘要
申请专利号:

CN201110173915.9

申请日:

2011.06.27

公开号:

CN102845302A

公开日:

2013.01.02

当前法律状态:

撤回

有效性:

无权

法律详情:

发明专利申请公布后的视为撤回IPC(主分类):A01H 4/00申请公布日:20130102|||公开

IPC分类号:

A01H4/00

主分类号:

A01H4/00

申请人:

北京林业大学

发明人:

贾忠奎; 怀慧明; 马履一; 张东升

地址:

100083 北京市海淀区清华东路35号

优先权:

专利代理机构:

代理人:

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内容摘要

本发明提供一种君白菊的组织培养与快速繁殖方法。选取君白菊植株的带芽茎段为外植体,消毒灭菌后接种培养。经过丛生芽诱导或诱导丛生芽的叶片产生愈伤组织,再进行愈伤组织的增殖和不定芽分化,最后再将其进行诱导生根的培养,建立了君白菊的无性繁殖体系。本发明首次建立了君白菊的组织培养快速繁殖体系,为君白菊进一步经济、生态等综合价值的开发和利用提供了技术保障。

权利要求书

权利要求书一种君白菊组织培养快速繁殖的方法,其特征在于包括以下步骤:将带芽茎段消毒灭菌后接种进行丛生芽诱导增殖,再将丛生芽生成的无菌叶片切成0.5cm×0.5cm的小块进行愈伤组织诱导和不定芽诱导,将上述两种方法获得的不定芽进行生根诱导。根据权利要求1所述的组织培养快速繁殖方法,其特征在于,所述的带芽茎段消毒灭菌方法包括:用75%酒精浸润带芽茎段外植体30S后无菌水冲洗4次,再用3%‑5%NaClO溶液浸润带芽茎段外植体并振荡消毒液5min后无菌水冲洗4次。根据权利要求1所述的组织培养快速繁殖方法,其特征在于,所述的带芽茎段丛生芽诱导培养基为:MS+3.0mg.L‑16‑BA+0.5mg.L‑1NAA。根据权利要求1所述的组织培养快速繁殖方法,其特征在于,所述无菌叶片的愈伤组织诱导培养基为MS+5.0mg.L‑16‑BA+1.0mg.L‑1NAA;不定芽诱导分化培养基为:MS+3.0mg.L‑16‑BA+0.5mg.L‑1NAA。根据权利要求1所述的组织培养快速繁殖方法,其特征在于,所述的不定芽生根培养基为:1/2MS+1.0mg.L‑1IBA。根据权利要求1所述的组织培养快速繁殖方法,其特征在于,培养基均添加7g.L‑1琼脂,25g.L‑1蔗糖,PH为5.8‑6.0,高压灭菌121℃20min,培养条件为室温25±2℃,空气相对湿度60%左右,光照强度为2000‑3000lx,光周期为光培养16h和暗培养8h。

说明书

说明书君白菊组织培养快速繁殖方法
1.技术领域:本发明是涉及一种组织培养的技术方法,更具体的说涉及一种君白菊的组织培养快速繁殖方法。
2.技术背景:君白菊是北京林业大学经过十几年的潜心研究而培育出的优质菊花品种。它的花序直径多为1.5~4cm,呈现扁球形或球形,外围为多层白色或黄色舌状花,中央为管状花。君白菊气清香,味甘、微苦,花性辛、甘、苦,微寒,具有疏散风热,平肝明目,清咽润喉,护肝正气等医学功效和药用价值。此外,君白菊还是一种优质的饮用茶品种,它是唯一不须使用任何农药的高品质饮用菊花,含有人体保健最需要的17种氨基酸和8种矿物质,无论在营养、口感还是在保健方面都超过了传统茶菊,它的胎菊中维生素E含量高出普通饮用菊花数倍,拥有很好的抗衰老功效。因此,它也被誉为菊之秀,花之魁,绿之宝,作为重要的花卉经济品种,君白菊在食用、药用、保健等方面的开发还具有着很大的潜力。
3.发明内容:本发明的目的是提供一种君白菊组织培养快速繁殖的方法,发明人在开展君白菊组织培养的研究中,从君白菊组织培养的基本过程,包括丛生芽诱导、叶片愈伤组织诱导、不定芽分化、不定芽生根等阶段,筛选出最佳培养基,使君白菊实现了有效繁殖,从而达到本发明的目的。
本发明提出的君白菊组织培养快速繁殖方法包括下述培养阶段:
a)带芽茎段的选择与消毒灭菌:选择室内盆栽君白菊植株作为待选外植体材料,每天浇水一次,每月用2‰的NaClO消毒液对植株进行消毒一次。选取健壮无病虫害的茎,剪取顶端以下3‑4个幼嫩的带腋芽的茎段作为外植体材料。首先对带芽茎段材料进行初步灭菌,用75%酒精浸润材料30S后,迅速用无菌水冲洗4次,然后再用3%‑5%NaClO溶液消毒5min(优选4%),灭菌时不停的振荡消毒液使其与材料充分接触,消毒结束后用无菌水冲洗4次,待接种。
b)丛生芽诱导阶段:将消毒后的带芽茎段接种于诱导培养基上,正常培养15‑20天后,可产生不定芽。所述诱导培养基为以MS培养基为基本培养基,附加6‑BA 3.0mg.L‑1,NAA0.5mg.L‑1;另添加琼脂7g.L‑1,蔗糖25g.L‑1。
c)叶片的愈伤组织诱导阶段:将b)中带芽茎段丛生芽诱导中形成的无菌叶片切成0.5cm×0.5cm左右的小块,作为叶片不定芽再生诱导的外植体,接种到愈伤组织诱导培养基中。正常培养15‑20天后产生大量愈伤组织。所述诱导培养基为:以MS培养基作为基本培养基,附加6‑BA 5.0mg.L‑1,NAA 1.0mg.L‑1,另添加琼脂7g.L‑1,蔗糖25g.L‑1。
d)不定芽诱导分化阶段:将c)中诱导出的良好的愈伤组织切成1.5cm×1.5cm的小块接种于分化培养基中,正常培养15‑20天后在愈伤组织中有不定芽产生。上述分化培养基为:以MS培养基作为基本培养基,添加6‑BA 3.0mg.L‑1,NAA0.5mg.L‑1,另添加琼脂7g.L‑1,蔗糖25g.L‑1。
e)生根培养阶段:将丛生芽诱导和愈伤组织分化形成的不定芽切割成约1.5‑2.0cm的带腋芽小茎段接种于生根培养基中,25‑30天后生成不定根。上述生根培养基为:以1/2MS为基本培养基附加1.0mg.L‑1IBA。
上述步骤中正常培养的条件为:室温25±2℃,空气相对湿度60%左右,光照强度为2000‑3000lx,光周期为光培养16h、暗培养8h。
4.附图说明:
附图1空白对照生长
附图2丛生芽诱导
附图3不定芽分化
附图4不定芽诱导生根
5.具体实施方式:
以下实施例用于说明本发明,但不用来限制本发明的范围。
实施例1
选取室内盆栽君白菊植株的带芽茎段为外植体,用75%酒精对其进行灭菌15‑30S(优选30S),无菌水冲洗4次后对材料进行初步消毒,再用3%‑5%NaClO溶液消毒5min(优选5%),无菌水冲洗4次后进行全面消毒处理。经此方法灭菌后,外植体污染率低于5%。成活率均高于90%以上。
将灭菌后的带芽茎段接种于附加不同生长调节剂的MS培养基中,每瓶接种2‑3个,置于室温25±2℃,空气相对湿度60%,光照强度2000‑3000lx,光培养/16h、暗培养/8h条件下进行培养。1‑2天后,腋芽迅速膨大萌发成幼嫩小叶片,95%以上的外植体完成启动生长,经过30天培养后,统计结果(表1)显示,MS+3.0mg.L‑16‑BA+0.5mg.L‑1NAA中丛生芽诱导效果最好,增殖系数可达5.5。
表1不同生长调节剂对带芽茎段丛生芽诱导的影响

实施例2
以丛生芽诱导中形成的无菌叶片作为外植体,切成0.5cm×0.5cm左右的小块,接种到附加不同生长调节剂的诱导培养基中培养,培养条件为室温25±2℃,空气相对湿度60%,光照强度2000‑3000lx,光培养/16h、暗培养/8h。15天后,在叶片与培养基接触的地方开始有少量的愈伤组织生长,靠近叶柄的地方愈伤组织生长量较大。15‑30天时,愈伤组织生长迅速,呈现黄绿色或淡绿色的颗粒状突起,愈伤组织紧实,生长情况较好。统计结果(表2)显示,MS+5.0mg.L‑16‑BA+1.0mg.L‑1NAA培养基中愈伤组织诱导率最高,达到100%,愈伤量较多。
表2不同生长调节剂的MS培养基对愈伤组织诱导的影响

将诱导的浅绿色,紧实,生长良好的愈伤组织接种于附加不同生长调节剂的MS分化培养基中,20天后,部分愈伤组织开始进行不定芽分化,统计结果(表3)表明,MS+3.0mg.L‑16‑BA+0.5mg.L‑1NAA培养基不定芽诱导率可达28.6%,分化系数最高的培养基为MS+2.0mg.L‑1 6‑BA+0.2mg.L‑1NAA,分化系数为2.3。
表3不同生长调节剂对不定芽分化的影响

实施例3
将丛生芽和愈伤组织诱导的不定芽切割成约1.5‑2.0cm的带腋芽小茎段接种于添加了不同生长素调节剂的1/2MS生根培养基中,每瓶接种1个不定芽,置于室温25±2℃,空气相对湿度60%,光照强度2000‑3000lx,光培养/16h、暗培养/8h条件下培养。40天后统计其生根率,结果(表4)如下,添加了细胞生长素的培养基可以有效提高君白菊的生根率,改善根的质量,其中,IBA和NAA均可以使君白菊的生根率达到80%以上,在生根质量方面,添加IBA激素的处理根较粗壮,根质量高,而添加了NAA激素的根生长孱弱,长势差。综合分析,以1/2MS为基本培养基,附加1.0mg.L‑1IBA为君白菊不定芽生根的最佳培养基,生根率可达86.2%,生根条数为31条。
表4不同生长调节剂的1/2MS培养基对生根的影响


以上所述仅是本发明的优选方式,应当指出,对于本技术领域的普通工人来说,在不脱离本技术发明的原理前提下,还可以做出若干适当的改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明保护范围内。

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1、(10)申请公布号 CN 102845302 A (43)申请公布日 2013.01.02 C N 1 0 2 8 4 5 3 0 2 A *CN102845302A* (21)申请号 201110173915.9 (22)申请日 2011.06.27 A01H 4/00(2006.01) (71)申请人北京林业大学 地址 100083 北京市海淀区清华东路35号 (72)发明人贾忠奎 怀慧明 马履一 张东升 (54) 发明名称 君白菊组织培养快速繁殖方法 (57) 摘要 本发明提供一种君白菊的组织培养与快速繁 殖方法。选取君白菊植株的带芽茎段为外植体,消 毒灭菌后接种培养。经过丛生芽诱导或诱。

2、导丛生 芽的叶片产生愈伤组织,再进行愈伤组织的增殖 和不定芽分化,最后再将其进行诱导生根的培养, 建立了君白菊的无性繁殖体系。本发明首次建立 了君白菊的组织培养快速繁殖体系,为君白菊进 一步经济、生态等综合价值的开发和利用提供了 技术保障。 (51)Int.Cl. 权利要求书1页 说明书4页 附图2页 (19)中华人民共和国国家知识产权局 (12)发明专利申请 权利要求书 1 页 说明书 4 页 附图 2 页 1/1页 2 1.一种君白菊组织培养快速繁殖的方法,其特征在于包括以下步骤:将带芽茎段消毒 灭菌后接种进行丛生芽诱导增殖,再将丛生芽生成的无菌叶片切成0.5cm0.5cm的小块 进行愈伤。

3、组织诱导和不定芽诱导,将上述两种方法获得的不定芽进行生根诱导。 2.根据权利要求1所述的组织培养快速繁殖方法,其特征在于,所述的带芽茎段消毒 灭菌方法包括:用75酒精浸润带芽茎段外植体30S后无菌水冲洗4次,再用3-5 NaClO溶液浸润带芽茎段外植体并振荡消毒液5min后无菌水冲洗4次。 3.根据权利要求1所述的组织培养快速繁殖方法,其特征在于,所述的带芽茎段丛生 芽诱导培养基为:MS+3.0mg.L -1 6-BA+0.5mg.L -1 NAA。 4.根据权利要求1所述的组织培养快速繁殖方法,其特征在于,所述无菌叶片的愈伤 组织诱导培养基为MS+5.0mg.L -1 6-BA+1.0mg.。

4、L -1 NAA;不定芽诱导分化培养基为:MS+3.0mg. L -1 6-BA+0.5mg.L -1 NAA。 5.根据权利要求1所述的组织培养快速繁殖方法,其特征在于,所述的不定芽生根培 养基为:1/2MS+1.0mg.L -1 IBA。 6.根据权利要求1所述的组织培养快速繁殖方法,其特征在于,培养基均添加7g.L -1 琼 脂,25g.L -1 蔗糖,PH为5.8-6.0,高压灭菌12120min,培养条件为室温252,空气相对 湿度60左右,光照强度为2000-3000lx,光周期为光培养16h和暗培养8h。 权 利 要 求 书CN 102845302 A 1/4页 3 君白菊组织培。

5、养快速繁殖方法 0001 1.技术领域:本发明是涉及一种组织培养的技术方法,更具体的说涉及一种君白 菊的组织培养快速繁殖方法。 0002 2.技术背景:君白菊是北京林业大学经过十几年的潜心研究而培育出的优质菊 花品种。它的花序直径多为1.54cm,呈现扁球形或球形,外围为多层白色或黄色舌状花, 中央为管状花。君白菊气清香,味甘、微苦,花性辛、甘、苦,微寒,具有疏散风热,平肝明目, 清咽润喉,护肝正气等医学功效和药用价值。此外,君白菊还是一种优质的饮用茶品种,它 是唯一不须使用任何农药的高品质饮用菊花,含有人体保健最需要的17种氨基酸和8种矿 物质,无论在营养、口感还是在保健方面都超过了传统茶菊。

6、,它的胎菊中维生素E含量高出 普通饮用菊花数倍,拥有很好的抗衰老功效。因此,它也被誉为菊之秀,花之魁,绿之宝,作 为重要的花卉经济品种,君白菊在食用、药用、保健等方面的开发还具有着很大的潜力。 0003 3.发明内容:本发明的目的是提供一种君白菊组织培养快速繁殖的方法,发明人 在开展君白菊组织培养的研究中,从君白菊组织培养的基本过程,包括丛生芽诱导、叶片愈 伤组织诱导、不定芽分化、不定芽生根等阶段,筛选出最佳培养基,使君白菊实现了有效繁 殖,从而达到本发明的目的。 0004 本发明提出的君白菊组织培养快速繁殖方法包括下述培养阶段: 0005 a)带芽茎段的选择与消毒灭菌:选择室内盆栽君白菊植株。

7、作为待选外植体材料, 每天浇水一次,每月用2的NaClO消毒液对植株进行消毒一次。选取健壮无病虫害的茎, 剪取顶端以下3-4个幼嫩的带腋芽的茎段作为外植体材料。首先对带芽茎段材料进行初步 灭菌,用75酒精浸润材料30S后,迅速用无菌水冲洗4次,然后再用3-5NaClO溶液 消毒5min(优选4),灭菌时不停的振荡消毒液使其与材料充分接触,消毒结束后用无菌 水冲洗4次,待接种。 0006 b)丛生芽诱导阶段:将消毒后的带芽茎段接种于诱导培养基上,正常培养15-20 天后,可产生不定芽。所述诱导培养基为以MS培养基为基本培养基,附加6-BA 3.0mg.L -1 , NAA0.5mg.L -1 ;。

8、另添加琼脂7g.L -1 ,蔗糖25g.L -1 。 0007 c)叶片的愈伤组织诱导阶段:将b)中带芽茎段丛生芽诱导中形成的无菌叶片切 成0.5cm0.5cm左右的小块,作为叶片不定芽再生诱导的外植体,接种到愈伤组织诱导培 养基中。正常培养15-20天后产生大量愈伤组织。所述诱导培养基为:以MS培养基作为基 本培养基,附加6-BA 5.0mg.L -1 ,NAA 1.0mg.L -1 ,另添加琼脂7g.L -1 ,蔗糖25g.L -1 。 0008 d)不定芽诱导分化阶段:将c)中诱导出的良好的愈伤组织切成1.5cm1.5cm 的小块接种于分化培养基中,正常培养15-20天后在愈伤组织中有不。

9、定芽产生。上述分化 培养基为:以MS培养基作为基本培养基,添加6-BA 3.0mg.L -1 ,NAA0.5mg.L -1 ,另添加琼脂 7g.L -1 ,蔗糖25g.L -1 。 0009 e)生根培养阶段:将丛生芽诱导和愈伤组织分化形成的不定芽切割成约 1.5-2.0cm的带腋芽小茎段接种于生根培养基中,25-30天后生成不定根。上述生根培养基 为:以1/2MS为基本培养基附加1.0mg.L -1 IBA。 0010 上述步骤中正常培养的条件为:室温252,空气相对湿度60左右,光照强度 说 明 书CN 102845302 A 2/4页 4 为2000-3000lx,光周期为光培养16h、。

10、暗培养8h。 4. 附图说明 : 0011 附图1空白对照生长 0012 附图2丛生芽诱导 0013 附图3不定芽分化 0014 附图4不定芽诱导生根 5. 具体实施方式 : 0015 以下实施例用于说明本发明,但不用来限制本发明的范围。 0016 实施例1 0017 选取室内盆栽君白菊植株的带芽茎段为外植体,用75酒精对其进行灭菌 15-30S(优选30S),无菌水冲洗4次后对材料进行初步消毒,再用3-5NaClO溶液消毒 5min(优选5),无菌水冲洗4次后进行全面消毒处理。经此方法灭菌后,外植体污染率低 于5。成活率均高于90以上。 0018 将灭菌后的带芽茎段接种于附加不同生长调节剂的。

11、MS培养基中,每瓶接种2-3 个,置于室温252,空气相对湿度60,光照强度2000-3000lx,光培养/16h、暗培养/8h 条件下进行培养。1-2天后,腋芽迅速膨大萌发成幼嫩小叶片,95以上的外植体完成启动 生长,经过30天培养后,统计结果(表1)显示,MS+3.0mg.L -1 6-BA+0.5mg.L -1 NAA中丛生芽 诱导效果最好,增殖系数可达5.5。 0019 表1不同生长调节剂对带芽茎段丛生芽诱导的影响 0020 0021 实施例2 0022 以丛生芽诱导中形成的无菌叶片作为外植体,切成0.5cm0.5cm左右的小块,接 种到附加不同生长调节剂的诱导培养基中培养,培养条件为。

12、室温252,空气相对湿度 60,光照强度2000-3000lx,光培养/16h、暗培养/8h。15天后,在叶片与培养基接触的地 方开始有少量的愈伤组织生长,靠近叶柄的地方愈伤组织生长量较大。15-30天时,愈伤组 织生长迅速,呈现黄绿色或淡绿色的颗粒状突起,愈伤组织紧实,生长情况较好。统计结果 (表2)显示,MS+5.0mg.L -1 6-BA+1.0mg.L -1 NAA培养基中愈伤组织诱导率最高,达到100, 愈伤量较多。 0023 表2不同生长调节剂的MS培养基对愈伤组织诱导的影响 说 明 书CN 102845302 A 3/4页 5 0024 0025 将诱导的浅绿色,紧实,生长良好的。

13、愈伤组织接种于附加不同生长调节剂的 MS分化培养基中,20天后,部分愈伤组织开始进行不定芽分化,统计结果(表3)表明, MS+3.0mg.L -1 6-BA+0.5mg.L -1 NAA培养基不定芽诱导率可达28.6,分化系数最高的培养基 为MS+2.0mg.L -1 6-BA+0.2mg.L -1 NAA,分化系数为2.3。 0026 表3不同生长调节剂对不定芽分化的影响 0027 0028 实施例3 0029 将丛生芽和愈伤组织诱导的不定芽切割成约1.5-2.0cm的带腋芽小茎段接种于 添加了不同生长素调节剂的1/2MS生根培养基中,每瓶接种1个不定芽,置于室温252, 空气相对湿度60,。

14、光照强度2000-3000lx,光培养/16h、暗培养/8h条件下培养。40天后 统计其生根率,结果(表4)如下,添加了细胞生长素的培养基可以有效提高君白菊的生根 率,改善根的质量,其中,IBA和NAA均可以使君白菊的生根率达到80以上,在生根质量方 面,添加IBA激素的处理根较粗壮,根质量高,而添加了NAA激素的根生长孱弱,长势差。综 合分析,以1/2MS为基本培养基,附加1.0mg.L -1 IBA为君白菊不定芽生根的最佳培养基,生 根率可达86.2,生根条数为31条。 0030 表4不同生长调节剂的1/2MS培养基对生根的影响 0031 0032 说 明 书CN 102845302 A 4/4页 6 0033 以上所述仅是本发明的优选方式,应当指出,对于本技术领域的普通工人来说,在 不脱离本技术发明的原理前提下,还可以做出若干适当的改进和润饰,这些改进和润饰也 应视为本发明保护范围内。 说 明 书CN 102845302 A 1/2页 7 图1 图2 说 明 书 附 图CN 102845302 A 2/2页 8 图3 图4 说 明 书 附 图CN 102845302 A 。

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