检测BRAF基因突变的试剂盒及其检测方法.pdf

本发明公开了检测BRAF基因突变的试剂盒及其检测方法，试剂盒含有针对BRAF基因突变位点的LNA锁核酸修饰的特异探针，该特异探针能够与野生型DNA结合，能检出含0.01％BRAF基因突变DNA的样本、最低检出限为2-5拷贝，本发明的检测方法对BRAF基因突变检测具有特异性强、灵敏度高、受污染小、操作简单快速、安全性等优点，特别适合从血浆，尿液，唾液等含有突变含量低的体液中检测基因突变，适合对结直肠癌进行早期筛查和诊断，为个体化用药提供指导。

权利要求书
1.  检测BRAF基因突变的试剂盒，其特征在于：所述试剂盒含有针对BRAF基因V600E突 变位点的LNA锁核酸修饰的特异探针。

2.  根据权利要求1所述检测BRAF基因突变的试剂盒，其特征在于：所述LNA锁核酸修饰 的特异探针的核苷酸序列为CAG+TGA+AA+TC+TC+GA+TGGAG-PO4，其中“+”后的T， A或G表示锁核酸修饰的碱基。

3.  根据权利要求1所述检测BRAF基因突变的试剂盒，其特征在于：所述试剂盒中还包含检 测BRAF基因突变的引物，所述引物的核苷酸序列如SEQ ID NO.1和SEQ ID NO.2所示。

4.  根据权利要求1所述检测BRAF基因突变的试剂盒，其特征在于：所述试剂盒中还包括 PCR缓冲液、dNTPs、Eva Green和二氯化镁。

5.  根据权利要求4所述检测BRAF基因突变的试剂盒，其特征在于：所述试剂盒中各组分的 终浓度如下：1×PCR buffer、2.5mM MgCl2、dNTP 250μM、引物250nM、探针500nM、1×EVE  GREEN、DNA聚合酶1U和DNA模板2～20ng。

6.  权利要求1～5任一项所述检测BRAF基因突变的试剂盒在非疾病诊断中检测BRAF基因 突变的方法，其特征在于，包括如下步骤：
a.设计检测BRAF基因突变的引物和针对BRAF基因突变位点的LNA锁核酸修饰的特异 探针；
b.从待测样品中提取模板DNA，然后利用步骤a得到的引物和特异探针进行荧光定量PCR 扩增反应；
c.根据扩增曲线判读Ct值，再根据熔解曲线判读Tm值；然后根据Ct值及Tm值判断待 测样品中BRAF基因突变情况，若溶解曲线最高峰的Tm在84～87范围内，并且Ct<45，表 明扩增区段发生突变。

7.  根据权利要求6所述的方法，其特征在于：所述LNA锁核酸修饰的特异探针的核苷酸序 列为CAG+TGA+AA+TC+TC+GA+TGGAG-PO4，其中“+”后的T，A或G表示锁核酸修饰 的碱基。

8.  根据权利要求6所述的方法，其特征在于：所述检测BRAF基因突变的引物如SEQ ID NO. 1和SEQ ID NO.2所示。

9.  根据权利要求6所述检测BRAF基因突变的方法，其特征在于：所述荧光定量PCR扩增 反应的条件如下：92～97℃预变性5～15分钟；92～97℃变性10～20s，50～65℃退火10～30s， 70～75℃延伸10～35s，进行35～55个循环；然后92～97℃预变性0.2～5分钟，20～55℃退火0.2～5 分钟，60～97℃溶解，每秒钟升温0.06℃～0.02℃，每摄氏度采集荧光10～30次，最后40℃保 存95℃预变性5min。

说明书检测BRAF基因突变的试剂盒及其检测方法
技术领域
本发明属于生物技术领域，具体涉及检测BRAF基因突变的试剂盒，还涉及利用该试剂 盒在非疾病诊断中检测BRAF基因突变的方法。
背景技术
BRAF基因是Ras的下游基因，属于RAF基因家族，定位于7q34，编码的BRAF蛋白 由783个氨基酸组成，有CR1、CR2和CR3三个保守区域，与BRAF蛋白同为 Ras-Raf-MEK-ERK信号通路中上游重要调节因子。该酶将信号从Ras转导至MEK1/2， MEK1/2再激活ERK1/2，激活的ERK可影响核因子KB、细胞周期蛋白D1，使其表达增强。 其中CR1区含有Ras蛋白结合区和富含半胱氨酸区，CR3区为ATP结合位点和激活区，有 多个磷酸化位点，其中T598和S601最为重要，这两个磷酸化位点同时活化后，可激活BRAF 蛋白和诱导性激活ERK，而这两个位点氨基酸的改变将导致BRAF蛋白的持续激活，从而促 进细胞增殖并减少细胞凋亡，使血管生成因子、表皮细胞生长因子受体表达增加，促进血管 生成，可使β整合素表达增加，促进组织侵袭和迁移。BRAF基因90％的突变集中在编码部 分CR3激活区的15号外显子中，这些突变位点大多为1799核苷酸T突变为A，导致谷氨酸 突变为缬氨酸(V600E)。BRAF基因突变导致Raf激酶的活性大力增加并活化下游激酶Erk， MAPK通路持续激活，使前有丝分裂原有效分裂能力增强，同时抑制促凋亡因子BIM，引起 细胞异常增殖分化。
结直肠癌(CRC)是人类常见的恶性肿瘤之一，其发病率及死亡率在我国呈逐年上升之 势，患者中约15％的患者BRAF基因发生了突变。国内有实验证实，大约65％的结直肠癌与 BARF基因突变有关，BARF基因突变后，产生MAPK信号通路的持续激活，导致细胞增殖 和分化。免疫组化研究结果显示，BARF蛋白在结直肠癌中高度表达，阳性率达到80％，且 低分化癌的表达强度明显高于高分化癌，在统计学上的表达模式符合“增生性息肉-锯齿状腺 瘤-癌”递增趋势。
目前，结直肠癌的治疗方式主要以手术方式为主，以化学药物治疗和放射性治疗为辅助 疗法。随着生物与医学相关科学的发展，结直肠癌治疗中的分子靶向药物和靶向预测指标越 来越受到重视，并逐渐将结果运用到临床治疗之中。2009年，美国国立综合癌症网络(National  Comprehensive Cancer Network，NCCN)公布了已被证实的结直肠癌个体化治疗的相关药物 与检测靶标，与其相关的靶向治疗药物为西妥昔单抗和帕尼单抗。
西妥昔单抗是嵌合型抗体，与BRAF能够特异性结合，以阻止EGF激活受体，抑制下游 信号向BRAF传递，从而干扰肿瘤生长、侵袭、迁移、细胞修复和血管生成。与帕尼单抗的 区别在于，后者是完全人源化的单克隆抗体，临床中，可以在提供有效治疗的同时减少免疫 应答反应，较少发生输液反应、变态反应和过敏反应。然而，随着对西妥昔单抗研究的不断 深入，西妥昔单抗的使用受限于BRAF基因为野生型的患者，而且BARF基因中不能存在特 殊突变，否则抗BRAF的治疗无效。因此，2010年NCCN的结直肠癌临床实践指南中，推荐 在使用抗BRAF单克隆抗体进行治疗之前，要增加对BRAF基因野生型患者的BARF基因突 变的检测，对于存在BARF基因中存在V600E突变的患者，不推荐使用抗BRAF单克隆抗体 进行治疗。因此，BRAF基因是一个很好的早期预防及治疗结直肠癌的靶点。
各种来源的结直肠癌组织是检测突变的最佳样本，但部分中晚期患者难以得到较佳的病 理组织，检测血浆中来自肿瘤的DNA是否有突变是一种趋势。肿瘤患者的血浆循环DNA， 亦称非细胞游离DNA(cell-free DNA，cfDNA)中包含肿瘤起源的DNA，与原发肿瘤基因组 DNA具有相同的遗传特征。肿瘤cfDNA包括来源于正常细胞的野生型DNA和肿瘤细胞 DNA，多项研究表明肿瘤患者血浆中可以检测到与自身肿瘤相一致的DNA突变。
因此，检测组织或血浆BRAF基因突变对于指导CRC病人临床用药，具有重要的参考价 值。
目前检测基因突变的方法主要有以下几种：
(1)直接测序法。直接测序法的原理是：首先针对突变位点设计探针(每个基因设计一 对探针，探针所对应的产物尽可能的包含突变位点所在的位置)，然后通过简单PCR扩增获 得目的基因产物，最后对PCR产物进行测序并且对测序结果进行初步分析。初步分析完成后， 对一些可能的突变样品的PCR产物，需要对目的条带进行切胶回收；回收后的PCR产物连 接克隆载体；挑选阳性克隆测序并对测序结果进行分析。此过程比较繁琐、耗时长，而且由 于测序方法本身的限制导致其灵敏度不高，只能对含量大于20％的基因突变进行检测。因此， 此法不适合在临床中的应用与大量的临床样本分析。
(2)变性高效液相色谱法(denaturing high-performance liquid chromatograph，DHPLC)。 该方法的原理是基于发生错配的杂合双链DNA与完全匹配的纯合双链DNA解链特征的差异 将他们分离开。由于杂合双链在突变位点处出现错配，更易于形成“Y”形结构，与固定相的结 合能力降低，因此杂合DNA链要比纯合DNA链优先洗脱出来，通过洗脱峰的不同判断有无 突变存在。DHPLC可检测出含有单个检测的突变、插入或者缺失的异源双链片段。该法对已 知和未知的突变位点均可以检测，敏感性在5％左右，但检测过程中需要打开反应管，容易造 成污染，而且阳性结果不能确认其具体未知，最终还需测序确认。
(3)高分辨率溶解曲线(high resolution melting，HRM)。高分辨率溶解曲线是基于核 酸的物理性质，通过饱和染料结合于PCR扩增产物，监控产物熔解曲线的变化分析基因突变。 检测敏感性在5％左右，对于阳性结果并不能确定其具体位置，最终还需要通过测序加以确认。
(4)探针扩增阻滞突变法(amplification refractory mutation system，ARMS)。利用PCR 探针的3’端末位碱基必须与其模板DNA互补才能有效扩增的原理，设计针对突变位点的特 异性PCR扩增探针，在严格的条件下，只有在探针3’碱基与模板配对时PCR扩增反应才能 正常进行，从而检测出突变。通过设计两个5’端探针，一个与正常DNA互补，一个与突变 DNA互补，对于纯和性突变，分别加入两种探针及3’端探针进行两个平行的PCR，结合有与 突变DNA完全互补的探针才可以延伸并得到PCR扩增产物，该检测方法的灵敏度在1％左右。
(5)等位基因特异的Taqman聚合酶链式反应(competitive allele-specific TaqMan  polymerase chain reaction，CAST-PCR)。CAST-PCR法采用优化TaqMan探针，通过一段特 异设计的MGB探针来阻止探针与野生型DNA结合，选择性的优先扩增突变型DNA，该检 测方法的灵敏度在1-0.1％左右。
因此，急需一种提高检测BRAF基因的灵敏度的方法和相应的检测试剂盒，为结直肠癌 个体化用药提供指导。
发明内容
有鉴于此，本发明的目的在于提供检测BRAF基因突变的试剂盒，该试剂盒特异性强且 灵敏度高；本发明的目的之二在于提供检测BRAF基因突变方法，该方法检测周期短。
为实现上述发明目的，本发明提供如下技术方案：
1、检测BRAF基因突变的试剂盒，所述试剂盒含有针对BRAF基因V600E突变位点的 LNA锁核酸修饰的特异探针。
优选的，所述LNA锁核酸修饰的特异探针的核苷酸序列为 CAG+TGA+AA+TC+TC+GA+TGGAG-PO4，其中“+”后的T，A或G表示锁核酸修饰的碱 基。
优选的，所述试剂盒中还包含检测BRAF基因突变的引物，所述引物的核苷酸序列如SEQ  ID NO.1和SEQ ID NO.2所示。
优选的，所述试剂盒中还包括PCR缓冲液、dNTPs、Eva Green和二氯化镁。
优选的，所述试剂盒中各组分的终浓度如下：1×PCR buffer、2.5mM MgCl2、dNTP 250μM、 引物250nM、探针500nM、1×EVE GREEN、DNA聚合酶1U和DNA模板2～20ng。
2、所述检测BRAF基因突变的试剂盒在非疾病诊断中检测BRAF基因突变的方法，包括 如下步骤：
a.设计检测BRAF基因突变的引物和针对BRAF基因突变位点的LNA锁核酸修饰的特异 探针；
b.从待测样品中提取模板DNA，然后利用步骤a得到的引物和特异探针进行荧光定量PCR 扩增反应；
c.根据扩增曲线判读Ct值，再根据熔解曲线判读Tm值；然后根据Ct值及Tm值判断待 测样品中BRAF基因突变情况，若溶解曲线最高峰的Tm在84～87范围内，并且Ct<45，表 明扩增区段发生突变。
本发明的检测原理如图1所示。
优选的，所述LNA锁核酸修饰的特异探针的核苷酸序列为 CAG+TGA+AA+TC+TC+GA+TGGAG-PO4，其中“+”后的T，A或G表示锁核酸修饰碱基。 8、根据权利要求6所述的方法，其特征在于：所述检测BRAF基因突变的引物如SEQ ID NO. 1与SEQ ID NO.2所示。
优选的，所述荧光定量PCR扩增反应的条件如下：92～97℃预变性5～15分钟；92～97℃ 变性10～20s，50～65℃退火10～30s，70～75℃延伸10～35s，进行35～55个循环；然后92～97℃ 预变性0.2～5分钟，20～55℃退火0.2～5分钟，60～97℃溶解，每秒钟升温0.06℃-0.02℃，每 摄氏度采集荧光10～30次，最后40℃保存95℃预变性5min。
本发明的有益效果在于：(1)特异性强：加入能与野生型特异性结合的LNA锁核酸修 饰的特异探针；(2)灵敏度高，检测灵敏度达到0.01％；(3)检测过程为闭管反应，减少 污染的可能性；(4)操作简单快速，整个PCR反应过程只有90分钟；而直接测序法则需要 2天的时间，且为开管操作，大大增加污染的可能性；(5)结果判读明确客观，只需根据扩 增数据和熔解曲线即可完成对样本基因类型的判读；(6)安全性好，整个体系不包含有毒有 害物质，无需PCR产物的开管，对试验人员以及环境都无危害。
附图说明
为了使本发明的目的、技术方案和有益效果更加清楚，本发明提供如下附图：
图1本发明的检测原理图。
具体实施方式
下面将结合附图，对本发明的优选实施例进行详细的描述。实施例中未注明具体条件的 实验方法，通常按照常规条件，例如分子克隆实验指南(第三版，J.萨姆布鲁克等著)中所 述的条件，或按照制造厂商所建议的条件。本项目由“江苏省科技成果转化专项资金资助” 和“国家高技术研究发展计划(863计划)资助”，项目编号2014AA020803。
本发明中所使用的仪器如下：Lightcycler 480、nanodrop 1000、高速离心机、水浴锅、漩 涡震荡仪、冰箱、烘箱、灭菌锅。
本发明中所使用的试剂：DNA聚合酶(罗氏公司)、10×PCR Buffer(罗氏公司)、MgCl2 (罗氏公司)、dNTP(TaKaRa)、纯化水。
本发明中所使用探针：所有探针纯度应达到电泳级(PAGE)或HPLC级，不含杂带。提 供合成机构出具的合成产物的质检证明，如PAGE电泳结果或HPLC分析图谱，证明使用 PAGE或者HPLC纯化后应有明显单峰PAGE或者HPLC纯化图谱，浓度为10ng/μl备用。
实施例1
BRAF基因阴性质控品为BRAF基因未突变的人血基因组DNA，然后稀释至10ng/μL浓 度(拷贝数约为103)。BRAF基因阳性质控品由BRAF基因V600E突变位点的突变序列连 接到pUC57-Amp载体，然后转化大肠杆菌后，经提取纯化，然后稀释成浓度为103拷贝数(浓 度约为10-5ng/μl)。其中突变位点信息来源于Cosmic数据库，突变位点的序列由苏州金唯智 生物技术公司合成，具体序列如下：
ttatagaaattagatctcttacctaaactcttcataatgcttgctctgataggaaaatgagatctactgttttcctttacttactacacctcagatatatttcttcatgaaga cctcacagtaaaaataggtgattttggtctagctacagagaaatctcgatggagtgggtcccatcagtttgaacagttgtctggatccattttgtggatggtaagaattgag gctatttttccactgattaaatttttggccctgagatgctgctgag。
然后根据含突变位点的序列设计检测BRAF基因V600E突变位点的引物，具体引物如下：
表1、检测BRAF基因突变的引物
名称 原始序列 长度 V600E-F 5’-taggtgattttggtctagctacaga-3’(SEQ ID NO.1) 25 V600E-R 5’-catccacaaaatggatccagac-3’(SEQ ID NO.2) 22
Block是指一种寡核苷酸，其3’端做过以下修饰：磷酸化或者间臂：Spacer 3、Spacer 6 和Spacer 18处理中的一种或多种处理，在PCR反应过程中，没有探针延伸扩增的功能。Block 以锁核酸(LNA)修饰以硫化修饰后的野生型DNA为模板，进行设计序列和合成。Block和 模板的特异结合的部位覆盖了探针的结合部位，当非突变DNA存在时，Block与之结合，提 高了探针和突变DNA结合的特异性。设计的Block具体为 CAG+TGA+AA+TC+TC+GA+TGGAG-PO4，核酸序列中“+”后的T，A或G为锁核酸修饰 碱基)。
根据设计的引物和Block，对各组分在如下条件下进行优化：1～10×PCR缓冲液、0.1～1mM  dNTPs、0.1～1μM BRAF正向探针、0.1～1μM BRAF基因反向探针、0.1～2μM block、0.05～2ng/μl 模版DNA、Eva Green染料0.5～2μl、1～5mM二氯化镁，反应程序为；95℃变性10s，60℃退 火15s，72℃延伸25s，50个循环；95℃变性1min，40℃退火1min，然后65-95℃溶解、每 秒钟升温0.02℃，每秒收集25次荧光信号最后溶解，40℃保存。考虑到实验过程中可能存在 加样或人为因素导致的差异，故选择重复测定3次，并设置浓度梯度的样本和空白对照。
荧光定量结束后根据CT值和熔解曲线进行结果判定，具体方法如下：
1、运行Abs Quant/2nd Derivative Max程序来判断扩增曲线有无，如有扩增曲线，计算 Ct值(Cp值)。
2、运行Tm Calling程序来查看熔解曲线并计算Tm值，如果熔解曲线有2个或者2个 以上的峰，以最高峰对应的Tm为准。
3、运行阳性质控品(STD)，阳性质控有扩增曲线且Ct值<40，V600E突变位点Tm值 范围为84≤Tm≤87。
4、运行Control，如果有扩增曲线，组织样本Ct值<32或血浆样本Ct值<39，且熔解峰 型(Tm值)在参考范围内，则样本合格可继续分析；如无扩增曲线，或组织样本Ct值≥32 或血浆样本Ct值≥39，或熔解峰型(Tm值)不在参考范围内说明样品DNA降解严重，不 适合试验需要。
5、运行无模板对照(NTC)，应无扩增曲线；或有扩增曲线，但是Ct≥45；或是每个位 点熔解峰Tm值不在参考范围内。
7、符合上述条件，运行待检样本，首先判读扩增曲线有无，如无扩增曲线，可直接判读 为阴性；如有扩增曲线，但是每个位点的Ct值大于或等于45，判断为阴性；如果有扩增曲 线且Ct值小于45，且熔解峰型Tm值在参考范围内，判断为V600E突变；如果熔解峰型Tm 值不在参考范围内判断为阴性。
不符合上述第3，5项要求，重做本次实验；不符合第4项要求，重新从样本中提取DNA， 再次检测。
对反应体系的优化结果显示，如表2所示的反应体系效果最佳。
表2、最优反应体系
原材料 体系(反应最终体系浓度) 10×PCR buffer 1× MgCl2 2.5mM dNTP 250μM 引物(上下游) 250nM Block 500nM EVE-GREEN 1× DNA聚合酶 1U DNA模板 2-20ng 总体系 20μL
最佳反应条件为：95℃预变性5min；95℃变性10s，60℃退火15s，72℃延伸25s，50 个循环；95℃变性1min，40℃退火1min，65-95℃溶解，每秒钟升温0.02℃，每秒采集荧光 信号25次，最后40℃保存。
实施例2
利用优化的检测体系和反应程序分析BRAF基因V600E突变位点的最低检测限度。 最低检测限度研究主要包括以下两方面：1)突变比例最低检测限的研究：在DNA浓度一定 的条件下能检出的最低突变DNA的比例；2)DNA浓度的最低检测限的研究：在突变比例一 定的情况下能检出的最低DNA浓度；3)最低检测拷贝数研究结果。
1)突变比例最低检测限的研究
首先对V600E突变阳性质控品以及Control质控品进行准确稀释，统一稀释到103拷贝 数，稀释液为10ng/μl的野生型DNA；再将阳性质控品与10ng/ul的阴性基因组按照体积比 为0:100、0.01:99.99、0.5:99.5、1:99和5:95进行混合，得突变率分别为0％、0.01％、0.5％、 1％和5％，然后按照实施例1的最优体系和反应程序分析最低检测限度。考虑到实验过程中 可能存在加样或个人因素导致的差异，故选择重复测定3次，每次将混合样本与0％的进行对 比分析，检测其灵敏度，根据结果中的平局值分析对应的灵敏度区间，结果如表3所示。根 据最低检测限度实验结果，所有位点空白样本都没有发生扩增，实验可信。
表3、突变比例最低检测限研究结果


由表3可知，BRAF基因V600E突变位点的突变率最低检测限度为0.01％。
2)DNA浓度最低检测限研究
首先对突变阳性质控品以及Control质控品进行准确稀释，统一稀释到103拷贝数，然后 根据10:90(前为突变DNA，后为野生DNA)进行稀释，然后对背景DNA浓度进行调节， 寻找突变比例(10％)DNA浓度的最低检测限。考虑到实验过程中可能存在加样或个人因素 导致的差异，故选择重复测定3次，每次将其他梯度样本与0％的进行对比分析，检测其灵敏 度，根据最终得的平局值分析对应的灵敏度区间，结果如表4所示。据最低检测限度实验结 果，所有位点空白样本都没有发生扩增，实验可信。
表4：DNA浓度最低检测限研究结果

BRAF基因V600E突变位点的最低DNA背景浓度为0.1ng/μl。
3)最低拷贝数研究
首先对突变阳性质控品进行准确稀释，稀释液为10ng/μl的野生型DNA。将阳性质控品 梯度稀释至10拷贝-1拷贝，寻找体系的最低检测拷贝数。
表5：最低检测拷贝数研究结果

最低检测拷贝数研究结果表明其最低检测限度可达到2～5拷贝数。
体液最低检测限度，检测结果与组织参考品检测结果一致，具体数据未展示。
实施例3
采集10份结直肠癌患者组织样本及所配对的术前的的血浆样本，样本均采集自浙江大学 医学院附属第一医院。样本采集后，立即放入-80度冰箱中保存。组织样本中的DNA与血浆 中游离的DNA(cf-DNA)，均采用Qiagen试剂盒进行抽提，并进行琼脂糖凝胶电泳和浓度 测定。
然后使用实施例1的方法分别检测5例用组织测序方法检测验证有V600E突变的结直肠 癌患者，5例用组织测序方法检测验证没有V600E突变的结直肠癌患者和10例健康人的组织 样本和血浆样本，其结果如表6所示。
表6、采用本发明的方法检测结直肠癌患者结果


注：“-”代表该样本V600E检测结果未有扩增曲线
结果显示，使用本发明的方法检测组织样本与测序方法检测组织样本的突变符合率在 95％。用本发明的方法检测血浆样本和与测序方法检测组织样本的符合率为90％。
以上实施例对于体液的研究仅选用血浆样本进行研究。基于检测结直肠癌样本检测的可 行性对于唾液，尿液等体液未进行研究。但对于应用本发明技术方案检测唾液尿液等突变含 量低的体液的BRAF基因突变检测研究亦属于本发明范畴。
最后说明的是，以上优选实施例仅用以说明本发明的技术方案而非限制，尽管通过上述 优选实施例已经对本发明进行了详细的描述，但本领域技术人员应当理解，可以在形式上和 细节上对其作出各种各样的改变，而不偏离本发明权利要求书所限定的范围。