PDGFRA基因突变检测体系及其试剂盒.pdf

1、(19)中华人民共和国国家知识产权局 (12)发明专利申请 (10)申请公布号 (43)申请公布日 (21)申请号 201711094026.7 (22)申请日 2017.11.09 (71)申请人 上海赛安生物医药科技股份有限公 司 地址 200436 上海市宝山区上大路1号文景 楼2楼 (72)发明人 王明赵国玲 (74)专利代理机构 上海海颂知识产权代理事务 所(普通合伙) 31258 代理人 任益 (51)Int.Cl. C12Q 1/6858(2018.01) C12Q 1/6886(2018.01) (54)发明名称 PDGFRA基因突变检测体系及其试剂盒 (57)摘要 本发明涉及

2、一种PDGFRA基因突变的检测体 系及其试剂盒， 试剂盒包括PCR检测液A、 PCR检测 液B和SYBRGreenI混合液； PCR检测液A包括用于 检测PDGFRA基因第12外显子V516D位点的上下游 引物A和肽核酸A， PCR检测液B包括用于检测 PDGFRA基因第18外显子D842V位点的上下游引物 B和肽核酸B。 本发明的PDGFRA基因突变检测体系 及其试剂盒灵敏度和特异性高， 样品需求量少， 可以快速便捷准确地进行PDGFRA基因突变检测。 权利要求书2页 说明书6页 序列表2页 附图2页 CN 107904290 A 2018.04.13 CN 107904290 A 1.一种

3、PDGFRA基因突变检测体系， 其特征在于： 包括用于检测PDGFRA基因第12外显子 V516D位点的上下游引物A， 用于检测PDGFRA基因第18外显子D842V位点的上下游引物B， 荧 光染料SYBR Green ， 以及肽核酸； 所述上游引物A的核苷酸序列如SEQ ID No.1所示， 所述下游引物A的核苷酸序列如SEQ ID No.2所示； 所述上游引物B的核苷酸序列如SEQ ID No.3所示， 所述下游引物B的核苷酸序列如SEQ ID No.4所示； 所述肽核酸包括核苷酸序列与PDGFRA野生型基因第12外显子V516D位点完全互补且核 苷酸序列如SEQ ID No.5所示的肽核

4、酸A， 以及核苷酸序列与PDGFRA野生型基因第18外显子 D842V位点完全互补且核苷酸序列如SEQ ID No.6所示的肽核酸B。 2.根据权利要求1所述的PDGFRA基因突变检测体系， 其特征在于： 所述上下游引物A、 B 进行了LNA修饰。 3.根据权利要求1所述的PDGFRA基因突变检测体系， 其特征在于： 所述上下游引物A、 B 在反应体系中的最终浓度均为0.10.3 M/L。 4.根据权利要求3所述的PDGFRA基因突变检测体系， 其特征在于： 所述上下游引物A在 反应体系中的最终浓度为0.19 M/L， 所述上下游引物B在反应体系中的最终浓度为0.2 M/ L。 5.根据权利要

5、求1所述的PDGFRA基因突变检测体系， 其特征在于： 所述肽核酸A、 B在反 应体系中的最终浓度均为11.5 M/L。 6.根据权利要求5所述的PDGFRA基因突变检测体系， 其特征在于： 所述肽核酸A、 B在反 应体系中的最终浓度均为1.25 M/L。 7.一种采用如权利要求1所述的检测体系的PDGFRA基因突变检测产品。 8.一种PDGFRA基因突变检测试剂盒， 其特征在于： 包括PCR检测液A、 PCR检测液B和SYBR Green 混合液； 所述PCR检测液A包括用于检测PDGFRA基因第12外显子V516D位点的上下游引物A和肽 核酸A， 所述PCR检测液B包括用于检测PDGFRA

6、基因第18外显子D842V位点的上下游引物B和 肽核酸B； 所述上游引物A的核苷酸序列如SEQ ID No.1所示， 所述下游引物A的核苷酸序列如SEQ ID No.2所示， 所述上游引物B的核苷酸序列如SEQ ID No.3所示， 所述下游引物B的核苷酸序列如SEQ ID No.4所示， 所述肽核酸包括核苷酸序列与PDGFRA野生型基因第12外显子V516D位点完全互补且核 苷酸序列如SEQ ID No.5所示的肽核酸A， 以及核苷酸序列与PDGFRA野生型基因第18外显子 D842V位点完全互补且核苷酸序列如SEQ ID No.6所示的肽核酸B。 9.根据权利要求8所述的PDGFRA基因突

7、变检测试剂盒， 其特征在于： 所述上下游引物A、 B进行了LNA修饰； 所述上下游引物A、 B在反应体系中的最终浓度均为0.10.3 M/L； 所述肽 核酸A、 B在反应体系中的最终浓度均为11.5 M/L。 10.根据权利要求8所述的PDGFRA基因突变检测试剂盒， 其特征在于： 还包括阳性对照 权利要求书 1/2 页 2 CN 107904290 A 2 P1、 阳性对照P2和阴性对照； 所述阳性对照液P1是浓度为100ng/ L的包含PDGFRA基因第12外显子V516D位点和第18 外显子D842V位点的野生型质粒溶液； 所述阳性对照液P2是浓度为100ng/ L的包含PDGFRA基因

8、第12外显子V516D位点和第18 外显子D842V位点的突变型质粒溶液； 所述阴性对照液是不含PDGFRA基因的基因组DNA溶液。 权利要求书 2/2 页 3 CN 107904290 A 3 PDGFRA基因突变检测体系及其试剂盒 技术领域 0001 本发明涉及一种检测PDGFRA基因突变的方法和检测产品， 属于生物技术领域。 背景技术 0002 研究已经发现在多种人类癌症(胃肠道间质瘤、 胶质母细胞瘤、 恶性外周神经鞘等 肿瘤)中存在PDGFRA的扩增、 缺失、 及体细胞突变， 研究发现， PDGFRA的突变不仅与人类恶性 肿瘤的发生发展有关， 而且与肿瘤的分期、 分级及预后也有密切关系

9、。 因此， 检测肿瘤患者 不同阶段中PDGFRA突变， 对患者判断预后有着重要的意义 0003 探索患者PDGFRA耐药机制及预测预后成为一条可行的途径， 现在已经明确肿瘤细 胞会释放DNA进入循环系统， 使得通过 “液态活检” 的方式， 能够对早期及晚期肿瘤患者特定 的核酸序列进行分析， 是一种非侵入性的检测肿瘤基因及临床治疗效果的一种方法， 而且 患者对非侵入性样本采集方式的接受度更高。 0004 但是由于大多数人血清/血浆中cfDNA含量低， 在肿瘤早期阶段， ctDNA仅占总游离 DNA的0.01， 且cfDNA片段相对小等原因， 目前对肿瘤相关基因的临床检测主要是测序法 和ARMS法

10、， 并不适用。 使用灵敏度较低的常规方法检测只能发现小部分患者在接受特定治 疗前的肿瘤变异， 采用高灵敏度法(如dPCR)检测则可以发现较高比例的携带突变型患者。 目前进行PDGFRA基因突变检测的方法主要有芯片技术、 探针引物技术、 酶切、 焦磷酸测序技 术和HRM分析技术等， 价格贵、 繁琐或准确性不高。 因此， 开发一种检测PDGFRA基因突变的产 品， 以实现更高灵敏度、 更低成本、 更方便快捷的PDGFRA基因突变检测是非常有必要的。 发明内容 0005 本发明要解决的技术问题是提供一种灵敏度和特异性高， 样品需求量少， 可以快 速便捷准确地进行PDGFRA基因突变检测的PDGFRA

11、基因突变检测体系及其试剂盒。 0006 本发明为解决上述技术问题提出的一种技术方案是： 一种PDGFRA基因突变检测体 系， 包括用于检测PDGFRA基因第12外显子V516D位点的上下游引物A， 用于PDGFRA基因检测 第18外显子D842V位点的上下游引物B， 荧光染料SYBR GreenI， 以及肽核酸； 0007 所述上游引物A的核苷酸序列如SEQ ID No.1所示， 所述下游引物A的核苷酸序列 如SEQ ID No.2所示； 0008 所述上游引物B的核苷酸序列如SEQ ID No.3所示， 所述下游引物B的核苷酸序列 如SEQ ID No.4所示； 0009 所述肽核酸包括核苷

12、酸序列与野生型PDGFRA基因第12外显子V516D位点完全互补 且核苷酸序列如SEQ ID No.5所示的肽核酸A， 以及核苷酸序列与野生型PDGFRA基因第18外 显子D842V位点完全互补且核苷酸序列如SEQ ID No.6所示的肽核酸B。 0010 上述上下游引物A、 B进行了LNA修饰。 0011 上述上下游引物A、 B在反应体系中的最终浓度均为0.10.3 M/L。 0012 上述上下游引物A在反应体系中的最终浓度为0.19 M/L， 所述上下游引物B在反应 说明书 1/6 页 4 CN 107904290 A 4 体系中的最终浓度为0.2 M/L。 0013 上述肽核酸A、 B在

13、反应体系中的最终浓度均为11.5 M/L。 0014 上述肽核酸A、 B在反应体系中的最终浓度均为1.25 M/L。 0015 本发明为解决上述技术问题提出的一种技术方案是： 一种采用上述的检测体系的 PDGFRA基因突变检测产品。 0016 本发明为解决上述技术问题提出的一种技术方案是： 一种PDGFRA基因突变检测试 剂盒， 包括PCR检测液A、 PCR检测液B和SYBR GreenI混合液； 0017 所述PCR检测液A包括用于检测PDGFRA基因第12外显子V516D位点的上下游引物A 和肽核酸A， 所述PCR检测液B包括用于检测PDGFRA基因第18外显子D842V位点的上下游引物

14、B和肽核酸B； 0018 所述上游引物A的核苷酸序列如SEQ ID No.1所示， 所述下游引物A的核苷酸序列 如SEQ ID No.2所示， 0019 所述上游引物B的核苷酸序列如SEQ ID No.3所示， 所述下游引物B的核苷酸序列 如SEQ ID No.4所示， 0020 所述肽核酸包括核苷酸序列与野生型PDGFRA基因第12外显子V516D位点完全互补 且核苷酸序列如SEQ ID No.5所示的肽核酸A， 以及核苷酸序列与野生型PDGFRA基因第18外 显子D842V位点完全互补且核苷酸序列如SEQ ID No.6所示的肽核酸B。 0021 上述上下游引物A、 B进行了LNA修饰；

15、所述上下游引物A、 B在反应体系中的最终浓 度均为0.10.3 M/L， 所述肽核酸A、 B在反应体系中的最终浓度均为11.5 M/L。 0022 上述PDGFRA基因突变检测试剂盒还包括阳性对照P1、 阳性对照P2和阴性对照； 0023 所述阳性对照液P1是浓度为100ng/ L的包含PDGFRA基因第12外显子V516D位点和 第18外显子D842V位点的野生型质粒溶液； 0024 所述阳性对照液P2是浓度为100ng/ L的包含PDGFRA基因第12外显子V516D位点和 第18外显子D842V位点的突变型质粒溶液； 0025 所述阴性对照液是不含PDGFRA基因的基因组DNA溶液。 0

16、026 本发明具有积极的效果： 0027 (1)本发明采用PNA钳制实时定量PCR检测法， 仅需通过熔解曲线分析， 即可将 PDGFRA基因突变型与野生型区分开。 通过一步反应， 可解决PCR扩增、 突变富集及定量整个 过程， 无需诸如电泳、 杂交、 酶切等后续步骤， 大大简化了实验过程， 整个反应过程在密封管 内完成， 最大限度地减少了污染的可能， 降低假阳性率。 0028 (2)本发明的PDGFRA基因突变检测方法及其试剂盒， 可同时检测第12、 18外显子任 意一种突变， 灵敏度高。 灵敏度可达到0.10.5， 与常规PCR的浓度相比， 本发明容易地 检测出非常低浓度样本的PDGFRA基

17、因突变状态， 克服了TaqMan探针法需要使用多条特异性 探针分别进行检测的缺点， 满足大样本量临床筛查的要求。 0029 (3)本发明选择SYBR GreenI作为荧光染料， 价格低廉， 大大降低检测成本。 附图说明 0030 图1采用实施例的试剂盒检测阳性对照P1的V516D野生型位点特异性产物峰Tm值。 0031 图2是采用实施例的试剂盒检测阳性对照P1的D842V野生型位点特异性产物峰Tm 说明书 2/6 页 5 CN 107904290 A 5 值。 0032 图3是采用实施例的试剂盒检测阳性对照P2的V516D突变型位点特异性产物峰Tm 值。 0033 图4是采用实施例的试剂盒检测

18、阳性对照P2的D842V突变型位点特异性产物峰Tm 值。 具体实施方式 0034 下面通过实施例对本发明进行具体的描述， 有必要在此指出的是以下实施例只用 于对本发明进行进一步说明， 不能理解为对本发明保护范围的限制， 该领域的技术人员可 以根据上述本发明内容对本发明作出一些非本质的改进和调整。 下述实施例中， 若非特意 表明， 所用的试剂均为分析纯， 所用试剂均可从商业渠道获得。 文中未注明具体条件的实验 方法， 通常按照常规条件如J.萨姆布鲁克等编著的科学出版社2002年出版的 分子克隆实 验指南 一书中所述的条件， 或按照制造商所建议的条件。 除非另行定义， 文中所使用的所 有专业与科学

19、用语与本领域熟练人员所熟悉的意义相同。 此外， 任何与所记载内容相似或 均等的方法及材料皆可应用于本发明中。 0035 一、 试剂盒的组成。 0036 本实施例的PDGFRA基因突变检测试剂盒， 包括PCR检测液A、 PCR检测液B、 SYBR GreenI混合液、 阴性对照、 阳性对照P1和阳性对照P2。 试剂盒各成分如表1所示。 0037 表1试剂盒成分表 0038 成分分装组成 PCR检测液A1管V516D位点引物、 肽核酸 PCR检测液B1管D842V位点引物、 肽核酸 SYBR GreenI混合液1管 阳性对照P11管含PDGFRA野生型基因的质粒 阳性对照P21管含PDGFRA突变

20、型基因的质粒 阴性对照1管不含PDGFRA基因的基因组DNA溶液 0039 上述表1中试剂盒组分的说明如下： 0040 1)SYBR GreenI混合液的主要成分包括DNA聚合酶、 超纯水、 dNTPs混合液、 SYBR GreenI、 缓冲液等(由Bioer公司提供， 货号： B255l1)。 0041 2)PCR检测液A包括:用于检测PDGFRA基因第12外显子V516D位点的上下游引物A和 与野生型第12外显子V516D位点完全互补的肽核酸A。 PCR检测液B包括:用于检测第18外显 子D842V位点的上下游引物B和与野生型第18外显子D842V位点完全互补的肽核酸B。 0042 本实施

21、例对上下游引物A、 B进行了LNA修饰。 即在寡核苷酸链中引入一个LNA碱基， 并通过调整LNA碱基在引物中的位置来调节最佳熔点(Tm)和杂交的特异性。 经过修饰后的 引物具有更高的Tm值， 能够更好与突变模板结合， 修饰后的实时定量PCR引物， 长度较短， 可 以增加设计的灵活性。 0043 本实施例在PCR检测液A、 B中加入少量肽核酸(PNA)， 不足以完全抑制野生型基因 扩增， 此时野生型的Tm值无变化， 扩增效率较未加入PNA时明显降低， 而对突变型基因扩增 说明书 3/6 页 6 CN 107904290 A 6 无影响， 但其Tm下降明显， 二者的Tm差值增大， 此时可通过溶解曲

22、线分析将两种类型的基因 区分开。 0044 3)阳性对照液P1是浓度为100ng/ l的含PDGFRA野生型基因V516D和D842V位点质 粒的溶液。 0045 4)阳性对照液P2是浓度为100ng/ l的含PDGFRA突变型基因V516D和D842V位点质 粒的溶液。 0046 5)阴性对照液是不含PDGFRA基因野生型、 突变型的基因组DNA溶液。 0047 野生型质粒的获取为野生型质粒常规构建步骤： 设计位于突变位点两侧的引物， 扩增含对应位点的野生型产物， 构建入质粒， 挑选并测序验证。 0048 突变型质粒的获取为纯合子突变质粒常规构建步骤： 设计一条覆盖相应多态性位 点并将等位碱

23、基引入到引物序列中的特异引物， 与相对应的上游或下游野生型引物配对， 扩增含相应位点的目的片段产物， 构建入质粒， 挑选并测序验证。 0049 二、 引物、 肽核酸设计。 0050 本发明设计的引物长度为1822bp， 产物长度200220bp.针对野生型序列的特 异性肽核酸PNA片段A与其中PDGFRA基因第12外显子V516D位点序列完全互补， 针对野生型 序列的特异性肽核酸PNA片段B与其中PDGFRA基因第18外显子D842V位点序列完全互补,长 度为1520bp。 肽核酸A和肽核酸B的5 如表2所示。 0051 表2引物肽核酸序列表 0052 位置检测类别Seq No.Sequenc

24、e(5 3 ) V516D上游引物A1TGTCCTGGTCATTTATAGAA V516D下游引物A2TATATTCATGTCCATCTGGG V516D肽核酸A5TTCAATACCCTCCAGCG D842V上游引物B3TGATCTGGCTGCTCGCAACG D842V下游引物B4TTTCGACACATAGTTCGAAT D842V肽核酸B6ATGATGTCTCTGGCCA 0053 引物和肽核酸由上海百力格生物技术有限公司合成， 按照引物说明书由干粉稀释 成工作母液， 再由母液配置成检测工作液， 引物和肽核酸混合液均由母液加入灭菌超纯水 稀释而成。 0054 本发明中肽核酸PNA在反应体

25、系中的浓度至关重要， 0.258.0 mol/L浓度范围 内， 当PNA浓度低于3.75 mol/L时， 野生型模板的熔解曲线上出现野生特异性扩增峰， 表明 野生型基因背景未完全抑制， 此时无法判断是否存在突变基因； 当PNA浓度在3.754.0 mol/L时， 突变型模板经PCR扩增后的熔解曲线可观察到突变峰， 而野生型只有引物二聚体 峰， 即野生型模板完全被抑制无法扩增； 随着PNA浓度的增加， 可观察到无论是野生型还是 突变型模板的扩增效率均逐渐降低， 当PNA浓度高于引物40倍， 达8.0 mol/L时， 所有的模板 均受抑制而无任何扩增峰存在。 0055 三试剂盒的使用方法。 005

26、6 1、 样本DNA提取 0057 采用试剂盒(Axygen Multisource Genomic DNA Miniprep Kit)提取样本血液样 说明书 4/6 页 7 CN 107904290 A 7 本DNA， 或者采用康为世纪生物科技有限公司的口腔拭子基因组DNA提取试剂盒(货号： CW0530S)抽提口腔黏膜样本DNA， 具体的操作参见试剂盒产品说明书。 0058 2、 样本DNA质量检测。 0059 获得样本DNA后， 通过Thermo-Fisher核酸蛋白定量仪(NanoDrop 2000)测定浓度 和纯度， 控制样本质量， 最终加入反应体系中的样本。 OD260/OD280

27、的比值在1.82.0之间 的可获得最优反应结果， 浓度稀释为520ng/ l。 0060 3、 PCR反应。 0061 采用本实施例的PDGFRA基因突变检测试剂盒试进行检测， 反应体系的体积为10 l， 其中PCR检测液2 l， SYBR GreenI混合液5 l， 模板DNA 1 l， 超纯水2 l。 (反应体系的体积 还可以是20 l， 在配制时将10 l反应体系中的组分翻倍即可)。 采用两个突变位点对应引物 的PCR反应体系A和B分别检测同一个样本。 0062 1)配制10 l的检测PCR反应体系： 0063 检测PCR反应体系： 分别取2 l PCR检测液， 5 l SYBR Gre

28、enI混合液， 2 l超纯水， 1 l模板(如果是DNA样本， 浓度520ng/ l)， 并设置重复。 0064 反应体系中的模板分别指对应的样本DNA， 阳性对照， 阴性对照。 0065 2)PCR反应程序。 0066 各反应体系在ABI实时荧光定量PCR扩增仪(stepone)上进行实时荧光PCR反应， 最 优反应程序如表3所示。 0067 表3 PCR反应程序表 0068 0069 优选地， PCR扩增的条件为： 预变性阶段的条件95， 1min； 循环1， 40个循环， 条件 为9515s， 70PNA结合10s， 引物退火及延伸温度60， 时间为1min； ； 循环2条件为4保 温。

29、 0070 反应结束后立即进行溶解曲线分析： 95持续15s， 冷却至65保持1min， 并以0.3 /s的速度逐渐升温至95持续15s。 仪器软件自动分析出Ct值， 即SYBR Green I检测荧光 信号显著高于背景信号时的循环数。 0071 4、 PCR结果判定。 0072 1)试剂盒有效性的判定。 0073 阳性对照P1： 阳性对照FAM信号通道所有的扩增曲线有明显的指数增长期， 且Ct值 均阳性30； 溶解曲线分析， A位点PCR产物的Tm值为(87.50.5)， B位点PCR产物的Tm值 为(77.30.7)。 说明书 5/6 页 8 CN 107904290 A 8 0074 阳

30、性对照P2:阳性对照FAM信号通道所有的扩增曲线有明显的指数增长期， 且Ct值 均阳性30； 溶解曲线分析， A位点PCR产物的Tm值为(81.80.6)， B位点PCR产物的Tm值 为(74.50.5)。 0075 阴性对照： 阴性对照FAM信号通道所有的扩增曲线无明显的指数增长期， 或溶解曲 线上无特异性产物峰。 0076 2)基因突变检测结果的判定。 0077 通过以上步骤， 确定实验结果有效的前提下， 再对样本的结果进行判定。 按照样本 溶解曲线Tm值与野生型阳性对照溶解曲线Tm值的差值对样本检测结果进行判读， 确定样本 基因型。 0078 A.若检测液A检测的FAM信号通道的扩增曲线

31、有明显的指数增长期， 且|Tm(P1A)- Tm(样 本)|6， 产物峰Tm值类似于图1所示， 则检测样本的PDGFRA基因V516D位点为野生型。 0079 B.若检测液A检测的FAM信号通道的扩增曲线有明显的指数增长期， 且|Tm(P1A)- Tm(样 本)|6， 产物峰Tm值类似于图3所示， 则检测样本的PDGFRA基因V516D位点为突变型。 0080 C.若检测液B检测的FAM信号通道的扩增曲线有明显的指数增长期， 且|Tm(P1B)- Tm(样 本)|3， 产物峰Tm值类似于图2所示， 则检测样本的PDGFRA基因D842V位点为野生型。 0081 D.若检测液B检测的FAM信号通

32、道的扩增曲线有明显的指数增长期， 且|Tm(P1B)- Tm(样 本)|3， 产物峰Tm值类似于图4所示， 则检测样本的PDGFRA基因D842V位点为突变型。 0082 显然， 上述实施例仅仅是为清楚地说明本发明所作的举例， 而并非是对本发明的 实施方式的限定。 对于所属领域的普通技术人员来说， 在上述说明的基础上还可以做出其 它不同形式的变化或变动。 这里无需也无法对所有的实施方式予以穷举。 而这些属于本发 明的精神所引伸出的显而易见的变化或变动仍处于本发明的保护范围之中。 说明书 6/6 页 9 CN 107904290 A 9 序列表 上海赛安生物医药科技股份有限公司 PDGFRA基因

33、突变检测体系及其试剂盒 无 6 SIPOSequenceListing 1.0 1 20 DNA 人工序列(无) 1 tgtcctggtc atttatagaa 20 2 20 DNA 人工序列(无) 2 tatattcatg tccatctggg 20 3 20 DNA 人工序列(无) 3 tgatctggct gctcgcaacg 20 4 20 DNA 人工序列(无) 4 tttcgacaca tagttcgaat 20 5 17 DNA 人工序列(无) 5 ttcaataccc tccagcg 17 6 16 序列表 1/2 页 10 CN 107904290 A 10 DNA 人工序列(无) 6 atgatgtctc tggcca 16 序列表 2/2 页 11 CN 107904290 A 11 图1 图2 说明书附图 1/2 页 12 CN 107904290 A 12 图3 图4 说明书附图 2/2 页 13 CN 107904290 A 13