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一种悬浮培养细胞生产霍山石斛多糖的方法.pdf

1、(19)中华人民共和国国家知识产权局 (12)发明专利申请 (10)申请公布号 (43)申请公布日 (21)申请号 201610353014.0 (22)申请日 2016.05.20 (71)申请人 皖西学院 地址 237012 安徽省六安市安裕安区云路 桥西月亮岛 (72)发明人 邓辉陈乃富陈存武韩邦兴 王广林 (74)专利代理机构 合肥市浩智运专利代理事务 所(普通合伙) 34124 代理人 丁瑞瑞 (51)Int.Cl. C12P 19/04(2006.01) C12N 5/02(2006.01) C12N 5/04(2006.01) (54)发明名称 一种悬浮培养细胞生产霍山石斛多糖的

2、方 法 (57)摘要 本发明公开一种悬浮培养细胞生产霍山石 斛多糖的方法, 是一种利用细胞培养反应器悬浮 培养霍山石斛细胞来生产霍山石斛多糖的方法。 包括以下步骤: (1)单细胞制备,(2)单细胞系培 养, (3)细胞群放大培养, (4)提取霍山石斛多糖: 当细胞密度达到60000-80000个/ml收集霍山石 斛细胞, 提取霍山石斛多糖。 本发明能够大幅度 缩短细胞培养周期, 提高霍山石斛多糖产品收 率, 且工艺简单、 稳定, 适合工业化生产。 权利要求书1页 说明书9页 CN 105861589 A 2016.08.17 CN 105861589 A 1.一种悬浮培养细胞生产霍山石斛多糖的

3、方法, 其特征在于, 包括以下步骤: (1)单细胞制备: 取霍山石斛蒴果消毒后用固体培养基进行无菌播种, 待萌发成原球茎 后取出, 采用酶解法分离制备单细胞, 并离心过滤除杂, 收集单细胞; (2)单细胞系培养: 将收集到的单细胞接种到第一MS液体培养基中培养; (3)细胞群放大培养: 将培养好的单细胞系接种于第二MS液体培养基中培养; 所述第二 MS液体培养基中的磷元素含量为MS液体培养基的2-3倍, 所述第二MS液体培养基中还添加 有1-2mg/L的锗元素、 0.02-0.1mg/L硒元素和0.1-0.2g/L的酸水解酪蛋白, pH值为5.8 0.4; (4)提取霍山石斛多糖: 当细胞密度

4、达到60000-80000个/ml, 采用离心收集霍山石斛细 胞; 再提取霍山石斛多糖。 2.根据权利要求1所述的一种悬浮培养细胞生产霍山石斛多糖的方法, 其特征在于, 所 述步骤(1)播种采用的培养基为适合兰科植物生长的固体培养基。 3.根据权利要求2所述的一种悬浮培养细胞生产霍山石斛多糖的方法, 其特征在于, 所 述固体培养基为1/2MS固体培养基。 4.根据权利要求1所述的一种悬浮培养细胞生产霍山石斛多糖的方法, 其特征在于, 所 述步骤(2)中单细胞接种量为252g/L, 光强度为2000-4000lux, 色温为4000-6000K, 震荡 培养, 温度222, 当细胞密度达到100

5、00-20000个/mL, 即可放大培养。 5.根据权利要求1所述的一种悬浮培养细胞生产霍山石斛多糖的方法, 其特征在于, 所 述步骤(3)中单细胞系接种量为302g/L, 光强度为2000-4000lux, 色温为4000-6000K, 温 度222, 气升搅拌悬浮培养, 调节通气速率和搅拌速率维持溶氧在30。 6.根据权利要求1所述的一种悬浮培养细胞生产霍山石斛多糖的方法, 其特征在于, 所 述第二液体MS培养基中还添加有0.1-2mg/LNAA、 0.1-2mg/L6-BA、 50-100mg/L果胶酶、 10- 50mg/L纤维素酶, pH值为5.80.4。 7.根据权利要求1所述的一

6、种悬浮培养细胞生产霍山石斛多糖的方法, 其特征在于, 所 述锗元素来源于GeO2或有机锗。 8.根据权利要求1所述的一种悬浮培养细胞生产霍山石斛多糖的方法, 其特征在于, 所 述硒元素来源于Na2SeO3或有机硒。 权利要求书 1/1 页 2 CN 105861589 A 2 一种悬浮培养细胞生产霍山石斛多糖的方法 技术领域 0001 本发明涉及霍山石斛技术领域, 尤其涉及一种悬浮培养细胞生产霍山石斛多糖的 方法。 背景技术 0002 霍山石斛多糖类是霍山石斛的主要成分之一, 霍山石斛多糖的药理作用主要表现 在免疫、 强壮、 抗衰老、 抗肿瘤等作用。 随着社会发展, 人们对健康的关注越来越高,

7、 其需求 量也会越来越大, 但传统霍山石斛多糖的提取方法是用霍山石斛属植物的根、 茎、 叶等植物 体提取所得, 这种工艺所得的产品已经不能满足未来市场对霍山石斛精深加工的需求。 0003 随着植物细胞工程技术的发展, 用细胞进行人工培养扩增提取植物的代谢产物, 可以不受土地面积、 气候环境、 地域、 病虫害等限制影响, 适于工业化生产。 利用细胞工程技 术生产霍山石斛多糖的技术, 在国内外早有研究, 也取得了诸多成果, 但在生产过程中存在 很多难题问题, 如工艺复杂、 生物量增速低、 目标产物收率低、 生产周期长等。 关于利用气升 搅拌罐悬浮培养霍山石斛细胞生产霍山石斛多糖的研究还没有报道,

8、因此开发一种高效生 产霍山石斛多糖类天然产物的方法是十分有意义的。 发明内容 0004 本发明针对现有技术的不足, 提供一种工艺简单、 稳定, 适合工业化生产悬浮培养 细胞生产霍山石斛多糖的方法。 0005 本发明通过以下技术手段去解决上述技术问题的: 一种悬浮培养细胞生产霍山石 斛多糖的方法, 包括以下步骤: 0006 (1)单细胞制备: 取霍山石斛蒴果消毒后用固体培养基进行无菌播种, 待萌发成原 球茎后取出, 采用酶解法分离制备单细胞, 并离心过滤除杂, 收集单细胞; 0007 (2)单细胞系培养: 将收集到的单细胞接种到第一MS液体培养基中培养; 0008 (3)细胞群放大培养: 将培养

9、好的单细胞系接种于第二MS液体培养基中培养; 所述 第二MS液体培养基中的P元素含量为MS液体培养基的2-3倍, 所述第二MS液体培养基中还添 加有1-2mg/L的锗元素、 0.02-0.1mg/L硒元素和0.1-0.2g/L的酸水解酪蛋白, pH值为5.8 0.4。 0009 使用本发明的第二MS液体培养基, 相对于MS液体培养基能延长分批培养细胞生长 时间2倍以上, 提高细胞密度2倍以上。 锗元素、 硒元素、 酸水解酪蛋白能够显著增加霍山石 斛悬浮细胞的鲜重、 提高蛋白质和叶绿素的含量,使细胞抗氧化活性明显升高。 0010 (4)提取霍山石斛多糖: 当细胞密度达到60000-80000个/

10、ml, 采用离心收集霍山石 斛细胞; 再提取霍山石斛多糖。 0011 优选地, 所述步骤(1)播种采用的培养基为适合兰科植物生长的固体培养基。 0012 优选地, 所述固体培养基为1/2MS培养基。 1/2MS培养基中大量元素减半, 适合兰科 植物种子萌发。 说明书 1/9 页 3 CN 105861589 A 3 0013 优选地, 所述步骤(2)中单细胞接种量为252g/L, 光强度为2000-4000lux, 色温 为4000-6000K, 震荡培养, 温度222, 当细胞密度达到10000-20000个/mL, 即可放大培 养。 该光强度范围有助于细胞的形态建成和活力提升, 过高则浪费

11、电能, 过低则达不到效 果。 该色温为暖光, 蓝紫光较为均衡, 有利于代谢产物的合成。 该温度范围为霍山石斛生长 和代谢最为均衡的温度。 该密度下, 细胞的群体生长处于指对数时期, 即活力最旺盛的时 期。 0014 优选地, 所述步骤(3)中单细胞系接种量为302g/L, 光强度为2000-4000lux, 色 温为4000-6000K, 气升搅拌悬浮培养, 调节通气速率和搅拌速率维持溶氧在30。 0015 优选地, 所述第二MS液体培养基中还添加有0.1-2mg/LNAA、 0.1-2mg/L6-BA、 50- 100mg/L果胶酶、 10-50mg/L纤维素酶, pH值为5.80.4。 添

12、加植物生长调节剂和生物酶制剂 到培养基中, 能激活细胞分裂生长, 并防止细胞聚集结块, 保证营养和溶氧和二氧化碳供应 均匀、 充分。 0016 优选地, 所述第一MS液体培养基中的P元素含量为MS液体培养基的2-3倍, pH值为 5.80.4。 0017 优选地, 所述锗元素来源于GeO2或有机锗。 0018 优选地, 所述硒元素来源于Na2SeO3或有机硒 0019 本发明的优点在于: 本发明首先对霍山石斛种子无菌播种萌发形成的原球茎, 利 用酶解法分离出高活力原球茎中的单细胞, 进一步培养成单细胞系, 最后进行细胞群放大 培养, 在放大培养中, 添加植物生长调节剂和生物酶制剂到培养基中,

13、能激活细胞分裂生 长, 并防止细胞聚集结块, 保证营养和溶氧和二氧化碳供应均匀、 充分。 本发明能够大幅度 缩短细胞培养周期, 提高产品收率, 且工艺简单、 稳定, 适合工业化生产。 另外, 在细胞群放 大培养阶段, 使用本发明的第二MS液体培养基, 相对于MS液体培养基能延长分批培养细胞 生长时间2倍以上, 提高细胞密度2倍以上。 具体实施方式 0020 本发明多糖含量的检测方法 0021 1、 参照2010版药典中铁皮石斛质量标准, 对实施例提取的霍山石斛多糖进行分 析, 具体分析方法如下。 0022 对照品溶液的制备: 取105干燥至恒重的无水葡萄糖对照品适量, 精密称定, 加 水溶解并

14、定量制成每1ml中含100 g的溶液, 即得。 0023 标准曲线的绘制: 吸取葡萄糖对照品溶液(浓度为0.1g/L)0.1、 0.2、 0.3、 0.4、 0.5ml于10mL试管中, 分别补加蒸馏水到1.0ml, 加5苯酚溶液1ml, 摇匀, 再加硫酸5ml, 摇 匀, 置沸水浴中加热20min, 取出, 放入冰浴中冷却5min, 以相应的试剂为空白, 在488nm的波 长处测定吸光度, 以吸光度为纵坐标, 浓度为横坐标, 绘制标准曲线。 以吸收度A为纵坐标, 葡萄糖浓度C为横坐标, 作对照曲线, 得回归方程为A0.0367C+0.0412, r0.9998, 线性范 围4.3621.8

15、g/mL。 0024 样品的测定: 称取本实验制得的霍山石斛多糖样品50mg, 稀释至溶液吸光值在标 准曲线范围内(10-100倍)稀释后, 按上述方法进行测定。 每个样品测试10次, 取线性范围内 的值求均值。 说明书 2/9 页 4 CN 105861589 A 4 0025 实施例1 0026 本实施例公开一种悬浮培养细胞生产霍山石斛多糖的方法, 包括以下步骤: 0027 1、 培养阶段 0028 (1)单细胞制备 0029 取霍山石斛蒴果, 按照组培技术要求消毒后进行无菌播种, 播种培养基为固体1/ 2MS培养基, 待萌发成原球茎后取出, 选择色泽鲜艳、 个体硕大、 活力旺盛的原球茎,

16、 采用酶 解法分离制备单细胞, 用80微米孔径的微孔滤器过滤, 滤液经低速离心机分离, 收集沉淀下 的细胞; 0030 (2)单细胞系培养 0031 将收集到的单细胞接种到含有第一MS液体培养基的挡板摇瓶中, 单细胞接种量为 23g/L, 光强度为2000lux, 色温为4000K, 震荡培养, 调pH值为5.4, 温度20, 当细胞密度达 到10000个/mL, 即可放大培养; 0032 (3)细胞群放大培养: 0033 将培养好的单细胞系接种于含有第二MS(该MS液体培养基中的P元素为常规MS液 体培养基的2倍)+0.1mg/LNAA(1-Naphthaleneaceticacid, 萘乙

17、酸)+0.1mg/L6-BA(6- Benzylaminopurine, 6-苄氨基嘌呤)+50mg/L中性果胶酶+10mg/L中性纤维素酶+1mg/L的锗 元素(来源于GeO2)+0.02mg/L硒元素(来源于Na2SeO3)+0.1g/L的酸水解酪蛋白的液体培养 基的30L气升式搅拌发酵罐中, 鲜细胞接种量为28g/L, 光强度为2000lux, 色温为4000K, 气 升搅拌悬浮培养, 调节通气速率和搅拌速率维持溶O2在30, 溶CO2在3, 调节补料液流加 量保持糖含量在3和NaOH溶液流加量保持pH在5.4; 补料液为2倍浓度的第二MS液体培养 基; 0034 (4)当细胞密度达到6

18、0000个/ml即停止培养, 时间15天, 采用1000rpm低速离心, 10min, 收集霍山石斛细胞, 经测定每毫升培养液中细胞鲜重0.55g/mL、 每克鲜细胞中蛋白 质含量12.1mg/g、 每克鲜细胞中叶绿素含量0.18mg/g,每克鲜细胞中SOD活性302U/g, 将收 集到的霍山石斛细胞杀青后70干燥至恒重, 并磨成粉末, 常温封闭保存备用。 0035 2、 提取阶段: 0036 (1)水提: 称取过20目筛的干燥的霍山石斛粉末50g, 加入10倍质量的水, 沸水浸提 2h, 4000rpm/min, 离心10min, 获得第一上清液和第一沉淀, 收集第一上清液; 0037 (2

19、)醇沉: 将上述的第一上清液减压浓缩至1/5体积, 加入3倍体积的95乙醇充分 混合后静置, 4000rpm/min, 离心10min, 获得第二上清液和第二沉淀; 0038 (3)干燥: 对第二沉淀在100干燥至恒重, 获得可溶性霍山石斛多糖粉。 称量得到 的石斛多糖的重量为7.66g, 收率为15.32。 0039 本发明消毒具体采用的方式是75酒精消毒1min, 0.1HgCl2消毒15min, 无菌水 洗涤3次。 以下实施例均采用该方法进行消毒。 0040 本发明的酶解法分离采用的是现有技术, 具体是在20uM蔗糖, 10uMMgCl2, 20uM PH7.8TrisHCL缓冲液中,

20、使用果胶酶、 纤维素酶对细胞团室温处理4-8h。 并在500rpm、 10min条件下离心、 清洗后收集单细胞。 以下实施例均采用该方法进进行分离。 0041 实施例2 0042 1、 培养阶段 说明书 3/9 页 5 CN 105861589 A 5 0043 (1)单细胞制备 0044 取霍山石斛蒴果, 按照组培技术要求消毒后进行无菌播种, 播种培养基为固体1/ 2MS培养基, 待萌发成原球茎后取出, 选择色泽鲜艳、 个体硕大、 活力旺盛的原球茎, 采用酶 解法分离制备单细胞, 用80微米孔径的微孔滤器过滤, 滤液经低速离心机分离, 收集沉淀下 的细胞; 0045 (2)单细胞系培养 00

21、46 将收集到的单细胞接种到含有第一MS液体培养基的挡板摇瓶中, 单细胞接种量为 25g/L, 光强度为3000lux, 色温为5000K, 震荡培养, 调pH值为5.8, 温度22, 当细胞密度达 到15000个/mL, 即可放大培养; 0047 (3)细胞群放大培养: 0048 将培养好的单细胞系接种于含有第二MS(该MS液体培养基中的P元素为常规MS液 体培养基的3倍)+1mg/LNAA(1-Naphthaleneaceticacid, 萘乙酸)+1mg/L6-BA(6- Benzylaminopurine, 6-苄氨基嘌呤)+70mg/L中性果胶酶+30mg/L中性纤维素酶+1.5mg

22、/L的 锗元素(来源于GeO2)+0.05mg/L硒元素(来源于Na2SeO3)+0.13g/L的酸水解酪蛋白的液体培 养基的30L气升式搅拌发酵罐中, 鲜细胞接种量为30g/L, 光强度为3000lux, 色温为5000K, 气升搅拌悬浮培养, 调节通气速率和搅拌速率维持溶O2在30, 溶CO2在3, 调节补料液流 加量保持糖含量在3和NaOH溶液流加量保持pH在5.8; 补料液为2倍浓度的第二MS液体培 养基; 0049 (4)当细胞密度达到70000个/ml即停止培养, 时间15天, 采用1000rpm低速离心, 10min, 收集霍山石斛细胞, 经测定每毫升培养液中细胞鲜重0.58g/

23、mL、 每克鲜细胞中蛋白 质含量12.0mg/g、 每克鲜细胞中叶绿素含量0.18mg/g,每克鲜细胞中SOD活性317U/g, 将收 集到的霍山石斛细胞杀青后70干燥至恒重, 并磨成粉末, 常温封闭保存备用。 0050 2、 提取阶段: 0051 (1)水提: 称取过20目筛的干燥的霍山石斛粉末50g, 加入10倍质量的水, 沸水浸提 2h, 4000rpm/min, 离心10min, 获得第一上清液和第一沉淀, 收集第一上清液; 0052 (2)醇沉: 将上述的第一上清液减压浓缩至1/5体积, 加入3倍体积的95乙醇充分 混合后静置, 4000rpm/min, 离心10min, 获得第二上

24、清液和第二沉淀; 0053 (3)干燥: 对第二沉淀在100干燥至恒重, 获得可溶性霍山石斛多糖粉。 称量得到 的石斛多糖的重量为8.14g, 收率为16.28。 0054 实施例3 0055 1、 培养阶段 0056 (1)单细胞制备 0057 取霍山石斛蒴果, 按照组培技术要求消毒后进行无菌播种, 播种培养基为固体1/ 2MS培养基, 待萌发成原球茎后取出, 选择色泽鲜艳、 个体硕大、 活力旺盛的原球茎, 采用酶 解法分离制备单细胞, 用80微米孔径的微孔滤器过滤, 滤液经低速离心机分离, 收集沉淀下 的细胞; 0058 (2)单细胞系培养 0059 将收集到的单细胞接种到含有第一MS液体

25、培养基的挡板摇瓶中, 单细胞接种量为 27g/L, 光强度为4000lux, 色温为6000K, 震荡培养, 调pH值为6.2, 温度24, 当细胞密度达 说明书 4/9 页 6 CN 105861589 A 6 到20000个/mL, 即可放大培养; 0060 (3)细胞群放大培养: 0061 将培养好的单细胞系接种于含有第二MS(该MS液体培养基中的P元素为常规MS液 体培养基的2倍)+2mg/LNAA(1-Naphthaleneaceticacid, 萘乙酸)+2mg/L6-BA(6- Benzylaminopurine, 6-苄氨基嘌呤)+100mg/L中性果胶酶+50mg/L中性纤维

26、素酶+2mg/L的 锗元素(来源于有机锗)+0.1mg/L硒元素(来源于Na2SeO3)+0.2g/L的酸水解酪蛋白的液体培 养基的30L气升式搅拌发酵罐中, 鲜细胞接种量为32g/L, 光强度为4000lux, 色温为6000K, 气升搅拌悬浮培养, 调节通气速率和搅拌速率维持溶O2在30, 溶CO2在3, 调节补料液流 加量保持糖含量在3和NaOH溶液流加量保持pH在6.2; 补料液为2倍浓度的第二MS液体培 养基; 0062 (4)当细胞密度达到80000个/ml即停止培养, 时间15天, 采用1000rpm低速离心, 10min, 收集霍山石斛细胞, 经测定每毫升培养液中细胞鲜重0.5

27、9g/mL、 每克鲜细胞中蛋白 质含量11.8mg/g、 每克鲜细胞中叶绿素含量0.20mg/g,每克鲜细胞中SOD活性323U/g, 将收 集到的霍山石斛细胞杀青后70干燥至恒重, 并磨成粉末, 常温封闭保存备用。 细胞达到该 密度后, 就不能继续增加了密度了, 达到30L气升式发酵罐的搅动极限。 0063 2、 提取阶段 0064 (1)水提: 称取过20目筛的干燥的霍山石斛粉末50g, 加入10倍质量的水, 沸水浸提 2h, 4000rpm/min, 离心10min, 获得第一上清液和第一沉淀, 收集第一上清液; 0065 (2)醇沉: 将上述的第一上清液减压浓缩至1/5体积, 加入3倍

28、体积的95乙醇充分 混合后静置, 4000rpm/min, 离心10min, 获得第二上清液和第二沉淀; 0066 (3)干燥: 对第二沉淀在100干燥至恒重, 获得可溶性霍山石斛多糖粉。 称量得到 的石斛多糖的重量为9.06g, 收率为18.12。 0067 实施例4 0068 1、 培养阶段 0069 (1)单细胞制备 0070 取霍山石斛蒴果, 按照组培技术要求消毒后进行无菌播种, 播种培养基为固体1/ 2MS培养基, 待萌发成原球茎后取出, 选择色泽鲜艳、 个体硕大、 活力旺盛的原球茎, 采用酶 解法分离制备单细胞, 用80微米孔径的微孔滤器过滤, 滤液经低速离心机分离, 收集沉淀下

29、的细胞; 0071 (2)单细胞系培养 0072 将收集到的单细胞接种到含有第一MS液体培养基的挡板摇瓶中, 单细胞接种量为 24g/L, 光强度为2500lux, 色温为4500K, 震荡培养, 调pH值为5.6, 温度21, 当细胞密度达 到12000个/mL, 即可放大培养; 0073 (3)细胞群放大培养: 0074 将培养好的单细胞系接种于含有第二MS(该MS液体培养基中的P元素为常规MS液 体培养基的2倍)+0.5mg/LNAA(1-Naphthaleneaceticacid, 萘乙酸)+0.7mg/L6-BA(6- Benzylaminopurine, 6-苄氨基嘌呤)+70mg

30、/L中性果胶酶+20mg/L中性纤维素酶+1.8mg/L的 锗元素(来源于有机锗)+0.06mg/L硒元素(来源于有机硒)+0.16g/L的酸水解酪蛋白的液体 培养基的30L气升式搅拌发酵罐中, 鲜细胞接种量为29g/L, 光强度为2500lux, 色温为 说明书 5/9 页 7 CN 105861589 A 7 4500K, 气升搅拌悬浮培养, 调节通气速率和搅拌速率维持溶O2在30, 溶CO2在3, 调节补 料液流加量保持糖含量在3和NaOH溶液流加量保持pH在5.9; 补料液为2倍浓度的第二MS 液体培养基; 0075 (4)当细胞密度达到60000个/ml即停止培养, 时间15天, 采

31、用1000rpm低速离心, 10min, 收集霍山石斛细胞, 经测定每毫升培养液中细胞鲜重0.54g/mL、 每克鲜细胞中蛋白 质含量12.2mg/g、 每克鲜细胞中叶绿素含量0.19mg/g, 每克鲜细胞中SOD活性298U/g, 将收 集到的霍山石斛细胞杀青后70干燥至恒重, 并磨成粉末, 常温封闭保存备用。 0076 2、 提取阶段: 0077 (1)水提: 称取过20目筛的干燥的霍山石斛粉末50g, 加入10倍质量的水, 沸水浸提 2h, 4000rpm/min, 离心10min, 获得第一上清液和第一沉淀, 收集第一上清液; 0078 (2)醇沉: 将上述的第一上清液减压浓缩至1/5

32、体积, 加入3倍体积的95乙醇充分 混合后静置, 4000rpm/min, 离心10min, 获得第二上清液和第二沉淀; 0079 (3)干燥: 对第二沉淀在100干燥至恒重, 获得可溶性霍山石斛多糖粉。 称量得到 的石斛多糖的重量为8.14g, 收率为16.28。 0080 实施例5 0081 1、 培养阶段 0082 (1)单细胞制备 0083 取霍山石斛蒴果, 按照组培技术要求消毒后进行无菌播种, 播种培养基为固体1/ 2MS培养基, 待萌发成原球茎后取出, 选择色泽鲜艳、 个体硕大、 活力旺盛的原球茎, 采用酶 解法分离制备单细胞, 用80微米孔径的微孔滤器过滤, 滤液经低速离心机分离

33、, 收集沉淀下 的细胞; 0084 (2)单细胞系培养 0085 将收集到的单细胞接种到含有第一MS液体培养基的挡板摇瓶中, 单细胞接种量为 25g/L, 光强度为3000lux, 色温为4400K, 震荡培养, 调pH值为5.7, 温度22, 当细胞密度达 到18000个/mL, 即可放大培养; 0086 (3)细胞群放大培养: 0087 将培养好的单细胞系接种于含有第二MS(该MS液体培养基中的P元素为常规MS液 体培养基的2倍)+1mg/LNAA(1-Naphthaleneaceticacid, 萘乙酸)+1.2mg/L6-BA(6- Benzylaminopurine, 6-苄氨基嘌呤

34、)+60mg/L中性果胶酶+25mg/L中性纤维素酶+1.8mg/L的 锗元素(来源于GeO2)+0.08mg/L硒元素(来源于有机硒)+0.17g/L的酸水解酪蛋白的液体培 养基的30L气升式搅拌发酵罐中, 鲜细胞接种量为30g/L, 光强度为2000lux, 色温为5200K, 气升搅拌悬浮培养, 调节通气速率和搅拌速率维持溶O2在30, 溶CO2在3, 调节补料液流 加量保持糖含量在3和NaOH溶液流加量保持pH在5.8; 补料液为2倍浓度的第二MS液体培 养基; 0088 (4)当细胞密度达到60000个/ml即停止培养, 时间15天, 采用1000rpm低速离心, 10min, 收集

35、霍山石斛细胞, 经测定每毫升培养液中细胞鲜重0.58g/mL、 每克鲜细胞中蛋白 质含量11.9mg/g、 每克鲜细胞中叶绿素含量0.18mg/g, 每克鲜细胞中SOD活性331U/g, 将收 集到的霍山石斛细胞杀青后70干燥至恒重, 并磨成粉末, 常温封闭保存备用。 0089 2、 提取阶段: 说明书 6/9 页 8 CN 105861589 A 8 0090 (1)水提: 称取过20目筛的干燥的霍山石斛粉末50g, 加入10倍质量的水, 沸水浸提 2h, 4000rpm/min, 离心10min, 获得第一上清液和第一沉淀, 收集第一上清液; 0091 (2)醇沉: 将上述的第一上清液减压

36、浓缩至1/5体积, 加入3倍体积的95乙醇充分 混合后静置, 4000rpm/min, 离心10min, 获得第二上清液和第二沉淀; 0092 (3)干燥: 对第二沉淀在100干燥至恒重, 获得可溶性霍山石斛多糖粉。 称量得到 的石斛多糖的重量为8.35g, 收率为16.70。 0093 实施例6 0094 1、 培养阶段 0095 (1)单细胞制备 0096 取霍山石斛蒴果, 按照组培技术要求消毒后进行无菌播种, 播种培养基为固体1/ 2MS培养基, 待萌发成原球茎后取出, 选择色泽鲜艳、 个体硕大、 活力旺盛的原球茎, 采用酶 解法分离制备单细胞, 用80微米孔径的微孔滤器过滤, 滤液经低

37、速离心机分离, 收集沉淀下 的细胞; 0097 (2)单细胞系培养 0098 将收集到的单细胞接种到含有第一MS液体培养基的挡板摇瓶中, 单细胞接种量为 26g/L, 光强度为3000lux, 色温为5000K, 震荡培养, 调pH值为6.1, 温度20, 当细胞密度达 到12000个/mL, 即可放大培养; 0099 (3)细胞群放大培养: 0100 将培养好的单细胞系接种于含有第二MS(该MS液体培养基中的P元素为常规MS液 体培养基的3倍)+0.3mg/LNAA(1-Naphthaleneaceticacid, 萘乙酸)+1.4mg/L6-BA(6- Benzylaminopurine,

38、 6-苄氨基嘌呤)+60mg/L中性果胶酶+30mg/L中性纤维素酶+2mg/L的锗 元素(来源于GeO2)+0.05mg/L硒元素(来源于有机硒)+0.18g/L的酸水解酪蛋白的液体培养 基的30L气升式搅拌发酵罐中, 鲜细胞接种量为30g/L, 光强度为3000lux, 色温为5000K, 气 升搅拌悬浮培养, 调节通气速率和搅拌速率维持溶O2在30, 溶CO2在3, 调节补料液流加 量保持糖含量在3和NaOH溶液流加量保持pH在5.8; 补料液为2倍浓度的第二MS液体培养 基; 0101 (4)当细胞密度达到60000个/ml即停止培养, 时间15天, 采用1000rpm低速离心, 10

39、min, 收集霍山石斛细胞, 经测定每毫升培养液中细胞鲜重0.56g/mL、 每克鲜细胞中蛋白 质含量12.1mg/g、 每克鲜细胞中叶绿素含量0.18mg/g,每克鲜细胞中SOD活性317U/g, 将收 集到的霍山石斛细胞杀青后70干燥至恒重, 并磨成粉末, 常温封闭保存备用。 0102 2、 提取阶段: 0103 (1)水提: 称取过20目筛的干燥的霍山石斛粉末50g, 加入10倍质量的水, 沸水浸提 2h, 4000rpm/min, 离心10min, 获得第一上清液和第一沉淀, 收集第一上清液; 0104 (2)醇沉: 将上述的第一上清液减压浓缩至1/5体积, 加入3倍体积的95乙醇充分

40、 混合后静置, 4000rpm/min, 离心10min, 获得第二上清液和第二沉淀; 0105 (3)干燥: 对第二沉淀在100干燥至恒重, 获得可溶性霍山石斛多糖粉。 称量得到 的石斛多糖的重量为8.11g, 收率为16.22。 0106 实施例7 0107 1、 培养阶段 说明书 7/9 页 9 CN 105861589 A 9 0108 (1)单细胞制备 0109 取霍山石斛蒴果, 按照组培技术要求消毒后进行无菌播种, 播种培养基为固体1/ 2MS培养基, 待萌发成原球茎后取出, 选择色泽鲜艳、 个体硕大、 活力旺盛的原球茎, 采用酶 解法分离制备单细胞, 用80微米孔径的微孔滤器过滤

41、, 滤液经低速离心机分离, 收集沉淀下 的细胞; 0110 (2)单细胞系培养 0111 将收集到的单细胞接种到含有第一MS液体培养基的挡板摇瓶中, 单细胞接种量为 26g/L, 光强度为4000lux, 色温为6000K, 震荡培养, 调pH值为6.2, 温度23, 当细胞密度达 到13000个/mL, 即可放大培养; 0112 (3)细胞群放大培养: 0113 将培养好的单细胞系接种于含有第二MS(该MS液体培养基中的P元素为常规MS液 体培养基的2倍)+1.3mg/LNAA(1-Naphthaleneaceticacid, 萘乙酸)+0.8mg/L6-BA(6- Benzylaminop

42、urine, 6-苄氨基嘌呤)+70mg/L中性果胶酶+35mg/L中性纤维素酶+1.6mg/L的 锗元素(来源于GeO2)+0.1mg/L硒元素(来源于有机硒)+0.17g/L的酸水解酪蛋白的液体培 养基的30L气升式搅拌发酵罐中, 鲜细胞接种量为30g/L, 光强度为3000lux, 色温为5000K, 气升搅拌悬浮培养, 调节通气速率和搅拌速率维持溶O2在30, 溶CO2在3, 调节补料液流 加量保持糖含量在3和NaOH溶液流加量保持pH在5.6; 补料液为2倍浓度的第二MS液体培 养基; 0114 (4)当细胞密度达到70000个/ml即停止培养, 时间15天, 采用1000rpm低速

43、离心, 10min, 收集霍山石斛细胞, 经测定每毫升培养液中细胞鲜重0.50g/mL、 每克鲜细胞中蛋白 质含量12.2mg/g、 每克鲜细胞中叶绿素含量0.19mg/g,每克鲜细胞中SOD活性314U/g, 将收 集到的霍山石斛细胞杀青后70干燥至恒重, 并磨成粉末, 常温封闭保存备用。 0115 2、 提取阶段: 0116 (1)水提: 称取过20目筛的干燥的霍山石斛粉末50g, 加入10倍质量的水, 沸水浸提 2h, 4000rpm/min, 离心10min, 获得第一上清液和第一沉淀, 收集第一上清液; 0117 (2)醇沉: 将上述的第一上清液减压浓缩至1/5体积, 加入3倍体积的

44、95乙醇充分 混合后静置, 4000rpm/min, 离心10min, 获得第二上清液和第二沉淀; 0118 (3)干燥: 对第二沉淀在100干燥至恒重, 获得可溶性霍山石斛多糖粉。 称量得到 的石斛多糖的重量为8.31g, 收率为16.62。 0119 对比例1 0120 选取播种生长8个月的霍山石斛组培苗, 将组培苗洗净沥干后杀青, 再70干燥至 恒重, 并磨成粉末, 常温封闭保存备用。 0121 (1)水提: 称取过20目筛的干燥的霍山石斛粉末50g, 加入10倍质量的水, 沸水浸提 2h, 4000rpm/min, 离心10min, 获得第一上清液和第一沉淀, 收集第一上清液; 012

45、2 (2)醇沉: 将上述的第一上清液减压浓缩至1/5体积, 加入3倍体积的95乙醇充分 混合后静置, 4000rpm/min, 离心10min, 获得第二上清液和第二沉淀; 0123 (3)干燥: 对第二沉淀在100干燥至恒重, 获得可溶性霍山石斛多糖粉。 称量得到 的霍山石斛多糖的重量为8.28g, 收率为16.57。 0124 通过上述的培养和提取, 可以很清楚的判定本发明所述的细胞培养法在细胞培养 说明书 8/9 页 10 CN 105861589 A 10 15天后生产的霍山石斛多糖在收率上可以接近甚至超过同期播种生长8个月的组培苗生产 的霍山石斛多糖。 0125 本发明的方法不限制霍山石斛多糖的生产, 还适用于其他食用或药用石斛属植物 多糖的生产。 本发明的第一MS液体培养基为常规MS液体培养基或者P元素为常规MS液体培 养基P元素2-3倍的培养基。 0126 以上所述仅为本发明创造的较佳实施例而已, 并不用以限制本发明创造, 凡在本 发明创造的精神和原则之内所作的任何修改、 等同替换和改进等, 均应包含在本发明创造 的保护范围之内。 说明书 9/9 页 11 CN 105861589 A 11

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